Etude de la bio-écologie des Névroptères (Hémérobes et Chrysopes)

dans une démarche de lutte biologique par conservation

Johanna Villenave

Encadrante : Dr Elizabeth Rat-Morris Laboratoire de PBI - INH

Directeur de thèse : Pr Thierry Lodé UMR Paysages et biodiversité

La lutte biologique par conservation

Principe : Favoriser l’attraction ou le maintien des auxiliairesGestion de l’environnement

Quelles sont les conditions favorables aux auxiliaires ?- diagnostic de la diversité biologique et analyse de sa dynamique (écologie du paysage)

- connaissances de la biologie des espèces

Introduction : Problématiques

J. Villenave

• Les Névroptères

- Ailes avec un réseau de nervures important- Ailes repliées en toit au dessus de l’animal

Super Ordre : Neuropteroidea s. l.

Plannipennia ouNeuroptera s. str.

Raphidioptera Megaloptera

Coniopterygidae Chrysopidae Hemerobiidae

• Les Hémérobes

discrets, peu connus, végétation basse, plantes herbacées et maraîchères, dans jardins et cultures

Larves et adultes entomophagesutilisés en Australie et Nouvelle-Zélande

• Les Chrysopes

Déjà commercialisées pour la PBI

Larve entomophage

Adulte glycopalynophage

Favoriser le cycle de vie au sein des agroécosystèmes

Chrysoperla spp.naturellement présents dans les agroécosystèmes

parcelles cultivées zones environnantesnon cultivées

Introduction : Modèle animal

SyngentaC. Verdun - INH

Cycle de vie de Chrysoperla spp.

La LBC est-elle possible avec Chrysoperla ?- habitats hors des cultures ?- flux de dispersion entre les ≠ compartiments ?- facteurs de cette dispersion ?- facteurs limitants (alimentation) ?

Bases pour caractériser les habitats favorables

Introduction : Objectifs

1. Présentation des sites agricoles étudiés

Critères

• choux porte-graine• au moins un en :- agriculture conventionnelle, - agriculture biologique, - PBI• avec ou sans lâchers

de Chrysoperla• avec ou sans végétation

environnante

Matériels et méthodes

3. Inventaire floristique

• Plantes présentes sur l’exploitation :cultures et végétation environnante

• Tous les 15 jours de mars à octobre (16 visites)

• Identification jusqu’à l’espèce, sauf pour les Gramineae

Matériels et méthodes

4. Inventaire des Névroptères (mars à octobre)

Matériels et méthodes

4. Inventaire des Névroptères (mars à octobre)

- Aspirateur à essence dans la strate herbacée

Matériels et méthodes

J. Villenave

4. Inventaire des Névroptères (mars à octobre) :

- Aspirateur à essence dans la strate herbacée- Filet à main dans la strate arborescente

Matériels et méthodes

4. Inventaire des Névroptères (mars à octobre)

- Aspirateur à essence dans la strate herbacée- Filet à main dans la strate arborescente- Tente Malaise (piège d’interception) : 1/site

Matériels et méthodes

J. Villenave

4. Inventaire des Névroptères (mars à octobre)

- Aspirateur à essence dans la strate herbacée- Filet à main dans la strate arborescente- Tente Malaise (piège d’interception)- Boîtes d’hivernage : 4/site

installées en septembrerelevées en janvier

Matériels et méthodes

J. Villenave

6. Analyse du contenu du tube digestif

Structures du tube digestif des Chrysopes(Canard et al., 1990)

1 mm

- Chrysoperla affinis- Chrysoperla lucasina

Matériels et méthodes

J. Villenave

Villenave J.Villenave J.

Villenave J.

Jabot plein x 4 Pollen de chou x 40 x 40

INRA Le Magneraud

Grains de pollen

INRA Le Magneraud

Apiaceae

INRA Le Magneraud

Pinaceae

Identification : collection de l’INRA- Le Magneraud

Tournesol

x 400

Matériels et méthodes

Résultats1. Inventaire

J. Villenave

Espèces Total %Chrysopidae

Chrysopa formosa (Brauer) 3 0.3Chrysopa pallens (Rambur) 1 0.1Chrysopa perla (L.) 4 0.4Chrysopa phyllochroma (Wesmael) 4 0.4Chrysopa viridana (Schneider) 1 0.1Chrysoperla affinis (Stephens) 408 39.5Chrysoperla carnea (Stephens) 51 5.2Chrysoperla lucasina (Lacroix) 426 41.1Dichochrysa flavifrons (Brauer) 35 3.5Dichochrysa inornata (Navas) 33 3.3Dichochrysa prasina (Burmeister) 12 1.2

HemerobiidaeHemerobius humulinus L. 2 0.4Micromus angulatus (Stephens) 12 1.6Micromus variegatus (Fabricius) 21 2.0Psectra diptera (Burmeister) 7 0.7Sympherobius pygmaeus (Rambur) 3 0.3Wesmaelius nervosus (Fabricius) 1 0.1

TOTAL Nombre d'espèces 17Quantité 1008

1. Structure du peuplement (2003 et 2004)

C. lucasina42%

C. affinis40%

C. carnea 5%

2. Répartition des Névroptères / végétation

Arbres etarbustes

Strateherbacée

Cultures

ChrysopidaeChrysoperla lucasina 113 278 35Chrysoperla affinis 153 226 29Chrysoperla carnea 48 3 0Dichochrysa flavifrons 9 25 1Dichochrysa inornata 12 21 0Dichochrysa prasina 3 8 1Chrysopa perla 3 1 0Chrysopa phyllochroma 0 4 0Chrysopa formosa 0 3 0Chrysopa pallens 1 0 0Chrysopa viridana 0 1 0

HemerobiidaeMicromus variegatus 1 20 0Micromus angulatus 0 12 0Psectra diptera 0 7 0Sympherobius pygmaeus 3 0 0Hemerobius humulinus 2 0 0

mars avril mai juin juillet août sept. oct.

0

20

40

60

80

100

120

12 14 16 18 20 22 24 26 28 30 32 34 36 38 40 42 44

Chrysoperla affinis

0

20

40

60

80

100

120

12 14 16 18 20 22 24 26 28 30 32 34 36 38 40 42 44

Nb

d’in

d. c

o lle

c tés

Nb

d’in

d. c

o lle

c tés Chrysoperla lucasina

herbaceous stratumtreecrops

mars avril mai juin juillet août sept. oct.

Résultats3. Dynamique et phénologie

Résultats2. Analyse de l’alimentation

Printemps26 indiv.

pollen61%miellat

8%

jabot vide31%

Total = 235 individus analysés

Eté

pollen62%

miellat3%

jabot vide35%

Types d’aliments et périodes de consommation

Résultats2. Analyse de l’alimentation

167 indiv.

Le pollen- périodes- strates végétales

Family Species 12 14 16 18 20 22 24 26 28 30 32 34Apiaceae Daucus carota

Apium, AethusaArantaceae Aranthus spAristolochiaceae Aristolochia clematidisAstéraceae Cirsium arvense

Senecio spHelianthus annuus

Betulaceae Corylus avelanaothers

Brassicaceae Capsella bursa-pastorisBrassica oleraceaBrassica rape

Caprifoliaceae Sambucus spCaryophyllaceae Cerastium sp

Stellaria spChenopodiaceae Chenopodium spPinaceae Pinus spEricaceae Vaccinum spFabaceae Cornilla sp

Medicago sativaothers

GramineaeLamiaceae Lamium purpureaLiliaceae Allium porumRenonculaceae Ranunculus bulbosus

othersRosaceae Amelanchier sp

Malus domesticaPrunus aviumPyrus pyrasterSpiraea spothers

Solanaceae Lycopersicum esculentumTaxacéeae Taxus baccataTiliaceae Tilia spUrticaceae Urtica dioica

July AugustMarch April May June

plantes herbacées

plantes cultivées

strate arborescente

Le Miellat

Résultats2. Analyse de l’alimentation

J. Villenave

Automne 42 indiv.jabot vide

0%pollen

2%

miellat98%

Le pollen

• Hiver 2003-2004 (23 obs.)Pollen : 65 % des jabots

• Hiver 2004-2005 (30 obs.)Pollen : 20 % des jabots

Mercuriale

Asteraceae

Lierre

Résultats2. Analyse de l’alimentation

J. Villenave

J. Villenave

J. Villenave

Déplacements des Chrysoperla spp dans les agroécosystèmes

Cultures Strate herbacée Haie

Sites d’hivernage

miellatPollen

Pollen

mars

octobre

juin

août

Discussion / Vol de migration

7,6 % des adultes ont consommé des grains de pollennon répertoriés sur les sites étudiés

Peu de pollens de plantes communes dans la régionet non présentes sur les sites étudiés(ex. chêne, vigne, maïs, tournesol…)

Pollens de plantes peu communes, ex. Aristoloches

Les adultes semblent se nourrirprès de leurs sites de repos

Discussion / Dispersion

Conclusion générale

• Végétation environnante : essentielle au maintien desdes Névroptères (Chrysopes et Hémérobes)

Maintien des espèces possible grâce à la conservation par l’installation d’une végétation appropriéedans les sites agricoles

• Habitats : - refuges- sites d’alimentation

• Lutte Biologique par Conservation possible avecC. affinis et C. lucasina

• En association avec des lâchers inondatifs ponctuelsde Chrysopes et d’Hémérobes

Conclusion générale

M. Beucher

M. Travers - INH

M. Travers - INH

J. Villenave

Merci pour votre attention