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Candidémies et Candidoses Invasives
Isabelle Accoceberry Laboratoire Parasitologie-Mycologie Hôpital Pellegrin CHU Bordeaux
Généralités : Champignons microscopiques
• Règne Fungi • EUCARYOTES (possèdent un noyau)
– = cellules humaines – ≠ bactéries et virus
• Paroi cellulaire externe rigide (glucanes et chitine)
• Thallophytes (appareil végétatif = Thalle )
• Hétérotophes (≠ plantes) – ne peuvent produire seuls leur énergie – assimilation matières organiques par absorption
• croissance sur milieu organique (matières organiques +/- dégradées ou êtres vivants)
• Saprophytes (commensaux) ou parasites • Aérobies stricts • Production de spores par multiplication asexuée (parfois par
reproduction sexuée)
Levures du genre Candida
• Thalle unicellulaire, rond, ovoïde (4-6 x 6-8 μm)
• Phylum Ascomycètes
• 150 à 200 espèces
• Multiplication asexuée par bourgeonnement multilatéral
• Productrices ou non de pseudomycélium (voire de mycélium, C. albicans)
Éléments levuriformes pseudomycélium Culture (24 à 48 h)
Habitat naturel des Candida spp
Champignons endogènes
• Candida albicans commensal du tube digestif (TD) voies génito-urinaires et respiratoires rare sur peau saine, présence dans milieu extérieur = contamination Colonisation dès la naissance (maternelle, personnel soignant)
• Candida glabrata
commensal des voies génito-urinaires retrouvé dans le TD
• 20aine autres Candida spp, saprophytes milieu extérieur, peuvent être présentes à l’état commensal sur muqueuses ou peau : C. parapsilosis (eau, végétaux) � peau +++, voies respiratoires C. tropicalis (céréales, eau, sol), C. krusei (jus de raisin), C. kefyr (produits laitiers fermentés) � TD, voies respiratoires et urinaires …
• Intégrité barrières cutanée/muqueuse • Flore microbienne commensale • Facteurs environnementaux (pH,
sécrétions, mucus …)
• Intégrité barrières cutanée/muqueu
Conditions � altérations barrières cutanéo-muqueuses
Conditions �Déficit immunitaire
• Immunité innée (PNN, MΦ …) • Immunité cellulaire CD4+ T helper • Immunité humorale
Virulence
Colonisation
Facteurs fongiques
• Protéinases • Adhésines • Filamentation/en
docytose • Modulation
réponse immunitaire
• Invasion tissulaire
Hôte Candida spp
Les Candida spp sont des pathogènes opportunistes �� Facteurs favorisants
• Séjour prolongé en USI (> 7 jours)
• Ventilation mécanique (> 7 jours)
• Score Apache II >20 • Colonisation (> 2 sites, candidurie > 105 CFU/mL)
• Antibiothérapie large spectre préalable ou concomitante
• Traumatisme majeur (ISS>20)
• Brûlures étendues (> 50%)
• Diabète
Facteurs de risque des candidoses invasives
Leroy O et al., Crit Care Med 2009, Blumberg HM et al., CID 2001, Chow JK et al., CID 2008, Pfaller MA et al., Clin Microbiol Rev 2007, Sobel JD et al., CID 2001, Eggimann P et al., Lancet Infect Dis 2003
• Perforation digestive • Chirurgie abdominale majeure • Pancréatite aiguë sévère • Chirurgie tractus urinaire (candidurie)
• Chirurgie récente
• Cathéter veineux central • Nutrition parentérale totale • Sonde vésicale • Accès intra-vasculaires multiples • Insuffisance rénale (Hémodialyse)
• Traitement immunosuppresseur • Cancer et chimiothérapie • Corticothérapie • Neutropénie • Transplantation • Âges extrêmes < 32 semaines, > 65 ans
• Poids de naissance < 1000g
Physiopathologie des Candidoses invasives
1- Colonisation Adhésion 2- Invasion 3- Dissémination 4- Extravasation (phase chronique)
Endogène Exogène
è
épithélium
Vaisseau sanguin
Poulain D. les mycoses. Elsevier 2003 • La majorité des candidoses invasives se développent à partir de souches endogènes dont le patient est porteur.
− Tractus gastrointestinal +++ (translocation) Revisiting the source of candidemia : skin or gut ? Nucci M et al., CID 2001 Données cliniques, expérimentales, moléculaires
− Peau, tractus respiratoire ou urogénital (KT: colonisation 2ndaire lors candidémie transitoire à partir d’un autre foyer)
• Transmission nosocomiale exogène rare mais connue
− manuportage (ex C. parapsilosis levure commensale de la peau en RéaPéd), contamination des solutés de perfusion, KT
J1, J7 et J25
Portes d’entrée des candidoses invasives Clinique des Candidoses invasives
• Symptomatologie pauvre non caractéristique – fièvre résistante antibiothérapie avec altération état général
• Candidémie = au moins une hémoculture positive
• Candidose profonde = atteinte d’un organe profond
• Candidose disséminée aiguë = atteinte de 2 organes ou 2 sites stériles non contigus
– Hémoculture + ou – – dissémination à bas bruit : œil, peau, cœur, os, rein, foie, poumons ….
• Candidose disséminée chronique = candidose hépatosplénique
nodules rétiniens blanchâtres duveteux
papulopustules (tronc, extrémités)
Spectre des manifestations cliniques Infections non-hématogènes Infections hématogènes
Candidoses superficielles Candidémies Candidoses cutanées Candidoses systémiques ou disséminées Candidoses oropharyngées Endophtalmie vaginites Infections sur cathéter
Trombophlébites septiques Candidoses profondes Endocardites, péricardite Candidose oesophagienne Arthrites, Ostéomyélites Cystites Méningites Péritonites, abcès intra-abdominal Infection sur matériel Abcès de paroi Pyélonéphrites
Abcès (foie, rate, rein …) candidose hépatosplénique
Pneumopathie ?? Métastases cutanées
TE
Epidémiologie en pleine évolution
Martin GS et al N Engl J Med 2003
• Candidoses 70-90 % des infections fongiques invasives • Candida spp. 4ème agent (9%) responsable septicémies nosoc après SCN, S.
aureus, entérocoques (USA SCOPE 2002, 49 hôpitaux), 3ème rang en USI (10%) • Candidémies 5 à 10% des septicémies (NNISS, 1990-1999, 790 USI) • Candidoses 17% (EPICI, 1992, 14171 USI, 17 pays Europe Ouest), 18,5% (EPIC II,
2007, 764 USI Europe) des infections en réanimation
Modification des pratiques en 25 ans (multiplication actes invasifs, ATB, greffe, TT immunosuppresseurs…) et � survie des patients à risque
USI 37,1% Médecine 28,6% Chirurgie 16,4% Hématologie 8,3% Autres 9,8%
Taux de mortalité globale 35% (>50% USI) Incidence 0,75 / 10 000 patients-jour
Candidémies CHU Bordeaux 2005-2011 519 candidémies
• � proportion des Candida non albicans − USI FDR : chir gastrointestinale récente, exposition récente ATF
systémiques, exposition récente au fluconazole pour espèces résistantes • Emergence d’espèces rares Playford EG et al., Crit Care Med 2008
Impact des Candidoses invasives
• Délai moyen de survenue 22 jours après hospitalisation – vs 13 jours E. coli et 16 jours S. aureus
• Prolongation durée de séjour en réanimation (1 à quelques semaines)
• Prolongation de la durée de ventilation
• Augmentation du coût des soins
• Taux de mortalité globale reste élevé de 40 à 60% – � âge, sévérité pathologie sous-jacente, USI
– C. albicans 35,6%, C. glabrata 38,1%, C. tropicalis 41,1%, C. parapsilosis 23,7%
• Taux de mortalité attribuable (cas-témoins) de 5 à 71%
Wisplinghoff et al., CID 2004 ; Leroy O et al., Crit Care Med 2009 ; Bougnoux ME et al., Intensive Care Med 2008 ; Horn DL et al., CID 2009 ; Kett DH et al., Crit Care Med 2011 ; Leleu et al., J Critical care 2002 ; Gudlaugsson et al., CID 2003 ; Falagas ME et al., Eur J Clin Microbiol Infect Dis 2006
Retard à la mise en route du traitement
157 patients avec candidémie, 134 traités après résultat Hémoc + Morrell M et al., AAC 2005
9 pts
10 pts 86 pts 52 pts
230 patients avec candidémie, 192 pas de traitement antérieur par Fluco Garey KW et al., CID 2006
Diagnostic Mycologique conventionnel par culture
Tableau clinique → CI ?
1. Prélèvement
2. Examen direct Histologie
3. Mise en culture
antifongigramme
SANG, LCR, biopsies, LBA, cathéters… (urines, selles, expectorations, peau, muqueuse …)
Isolement Identification
Cuenca-Estrella M et al., 21th ECCMID, MILAN 2011
Intérêt +++ une seule hémoculture positive = infection prouvée
Cuenca-Estrella M et al., 21th ECCMID, MILAN 2011 Cuenca-Estrella M et al., 21th ECCMID, MILAN 2011
Coloration caractéristique - C. albicans
+ C. dublinensis Bichrodubli®
Si orientation : Tests spécifiques d’espèce C. krusei
Krusei-color®
C. glabrata GlabrataRTT®
Absence d’orientation
Candida spp
CHROMagar® Candida ID 2®
CandiSelect 4®
Caractères physiologiques Galeries ID 24H à 48H
ID rapide quelques minutes
24 H à 48 H
Identification phénotypique
ID phénotypique à priori suffisante pour les espèces les plus fréquemment isolées
MALDI-TOF Matrix assisted laser desorption / ionization time of flight
m/z range 2-20 kDa
Spectrométrie de masse
• Validé pour l’identification des bactéries et des levures − Identification simple, reproductible, fiable, rapide et économique − 5 minutes (+/- extraction 10-15 minutes), < 1 € par échantillon • Performance > ID conventionnelle − Discrimination complexes espèces, ID espèces rares émergentes
Spanu T et al., JCM 2012
Bader O et al., CMI 2011
Taur Y et al., AAC 2010, 54:184-190
Blood culture collected
Culture turns positive
Healthcare provider notified
Antifungal started
Incubation period
Notification period
Antifungal initiation period
Membrane plasmique ß-(1-3)-glucanes
Complexe protéique de la -(1,3)-D-glucane synthase
Mannanes
Chitine Phospholipides
Paroi
noyau ADN
ß-(1-6)-glucanes
Marqueurs diagnostiques précoces Tests non basés sur la culture
Identification des patients à haut risque de CI Index de colonisation Candida Score
Polysaccharide de D- glucose naturel ubiquiste dans l’environnement (paroi bactéries, cellulose des plantes …) et composant majeur de la paroi de la plupart des micromycètes (sauf C. neoformans, zygomycètes)
Recherche combinée mannanes / anti-mannanes Platelia® Candida Ag / Platelia® Candida Ac (BioRad)
14 études, 453 patients et 767 contrôles
Platelia Mn Platelia Ac-Mn Mn/Ac-Mn
Sensibilité 58% 59% 10 études
83% 10 études
Spécificité 93% 11 études
83% 7 études
86% 6 études
Délai positivité Mn et/ou Ac-Mn chez 73% des 45 pts avec candidémie moy = - 6 jours Mn / - 7 jours Ac-Mn (5 études)
• 1 seule étude prospective, 7 études USI • Marqueur précoce • VPN élevée • Nécessité évaluation prospective : cut-off
optimal, fréquence suivi …
Mikulska et al., Critical Care, 2010,
Mohr JF et al., JCM 2011 - 57 patients RéaChir : séjour > 5 j et signes cliniques infection - 15/57 CI (3 prouvées, 6 probables, 6 possibles) , moy 4 sérums/patient Del Bono V et al., Clin Vacc Immun 2011 - 152 patients Réas (Chir. abdom. et Mal. Infect.) : signes cliniques infection
(bactériémie -) et FDR de Candidémies - 53 Candidémie, 47 Candidémie possible, 52 pas de Candidémie, 1 sérum/patient
-D-glucane Fungitell® et diagnostic des CI en USI
Cut-off ≥ 80 pg/mL
SENS %
SPEC %
VPP %
VPN %
Délai positivité CI prouv/prob
Mohr 2011 1 test 2 tests
87 73
73 80
-6 j / -4 j
* 2 tests 78 86 25% Faux positifs J1-J3
DelBono 2011 1 test 77 83 dans les 48H
** 79 83 90 67 cand possibles en cand prouvées
(1,3)- -D-glucane
• Test d’intérêt pour le diagnostic des CI : VPN élevée pour éliminer l’infection et spécificité intrinsèque intéressante
• Risques de faux positifs : hémodialyse sur membrane de cellulose, immunoglobulines, albumine ou autres composants sanguins commerciaux, gazes ou compresses chirurgicales, adjuvants anti-cancéreux, antibiothérapie IV (bétalactamines), bactériémies (P. aeruginosa, Bacilles Gram-)
• Coûteux, procédure analytique complexe (risque contamination)
• Performance du test non influencée par traitement ATF empirique (échinocandines), ou par l’espèce (sauf C. parapsilosis)
Pickering J et al.,JCM 2005; Kelaher A et al., Clin lab Scien 2006 ; Ostrosky-Zeichner L et al., CID 2004 ; Takesue Y et al.,J surg 2004 ; Koo S et al;, CID 2009
54 études (1993-2009): 4694 pts dont 963 avec CI prouvée/probable/possible
• Taux de positivité Hémocs vs PCR dans le sang – CI prouv/prob : 38% (29-46) vs 85% (78-91) (10 études)
Sensibilité supérieure de la PCR avec une spécificité > 90% • Marqueur précoce: 1 j à 4 sem avant Hémoc + ou signes cliniques • Manque de standardisation mais technique prometteuse
Avni T et al., JCM 2011
PCR vs Pts à risque de CI
SENS %
SPEC %
OR
CI prouv (49 études) 95 (88-98) (31 études: 100%)
92 (88-95)
229,1
CI prouv/prob (17 études) 92 (88-95) 95 (87-98) 251,9
CI prouv/prob/poss (20 études) 73 (58-83) 91 (82-96) 26,9
Vers la détection combinée de plusieurs marqueurs sériques et de l’ADN ?
27 Pts Candidémie (32 sérums)
39 Pts CI possible (51 sérums) A. Mn B. BG C. Ac-Mn D. Mn+BG E. Mn+Ac-Mn F. DNA G. Mn+BG+DNA
Alam F et al., BMC Infect Dis 2007, 7:103
PCR plus sensible que BG (80% vs 56%, p=0,03) avec spécificité comparable (70%)
Sensibilité Hémocs combinée PCR 98% ou BG 79%
Index de Colonisation (IC)
Infectés Colonisés
IC = nombre sites colonisés
nombre sites prélevés
nombre sites “fortement” colonisés
nombre sites prélevés ICC =
Pittet et al, Ann Surg 1994
• IC ≥ 0,5 Sens 100%, Spéc 69%, VPP 66%, VPN 100%
• ICC ≥ 0,4
• Colonisation facteur de risque majeur d’infection En USI, 50 à 86% des patients seront colonisés par des Candida spp, 5 à 30% développeront une CI.
• Suivi dynamique colonisation Culture sites non stériles (1 à 2 fois/semaine)
1 oropharyngé, écouv anal ou selles, urines, 1 respiratoire, liq gastrique …
• Identité souche colonisante / souche infectante
• Intérêt (clinique et économique) non validé par une étude randomisée
• Ecologie service
IC
P < 0,01
C. albicans
Répartition des espèces isolées par service (%) CHU Bordeaux 2009-2010
0
5
1 0
1 5
2 0
2 5
3 0
3 5
C. gla
brata
C. para
psilosis
C. tro
picalis
C. kefy
r
C. kru
sei
C. dublin
iensis
C. lusita
niae
C. in
conspicu
a
C. guill
ierm
ondii
autres C
andida
Réa Med SA ( n= 5 9 4 )Réa Med PEL ( n= 4 2 1 )U1 1 ( n= 3 3 8 )G5 G6 Hém ato ( n= 4 8 3 )
3 0 ,0
4 0 ,0
5 0 ,0
6 0 ,0
C C. aCEPICANDI : Différences épidémiologiques en fonction du site de prélèvement, du service d’hospitalisation et même du centre hospitalier
• Candida score associe facteurs de risque et colonisation
• Etudes prospectives en USI
- CS ≥ 3 � Pts à haut risque CI
- CS < 3 � CI fortement improbable avec VPN 97,7%
Candida score (CS) : Réa > 7 jours Sepsis sévère 2 points Chirurgie 1 point Nutrition parentérale 1 point Colonisation multifocale 1 point
Incidence des candidoses invasives selon le CS
Leon C et al, Crit Care Med 2006
CS ≥ 3 IC ≥ 0,5
AUC 0,774 (0,715-0,832)
0,633 (0,557-0,709)
RR de CI 5,98 (3,28-10,92)
2,24 (1,28-3,93)
Leon C et al, Crit Care Med 2009 Leroy G et al., Ann Intens Care 2011
%
Antifongiques IV disponibles en France
Biosynthèse de la paroi Echinocandines
Intégrité membrane Amphotéricine B
Biosynthèse ADN/ARN 5-fluorocytosine
Voie de synthèse l’ergostérol Azolés
Cibles des antifongiques systémiques
Inh synthèse du 1,3 D glucane � rupture de la paroi �instabilité osmotique et lyse cellulaire Liaison avec l’ergosterol de la
membrane cytoplasmique � permeabilité � Mort cellulaire
Inhibition de la synthèse de la C14- d methylase � ergosterol � stérols toxiques
� capté par la cytosine perméase � Transformé en 5 FU (cytosine désaminase) �altération de l’ARN
Cuenca-Estrella M et al., 21th ECCMID, MILAN 2011
Sensibilité in vitro aux antifongiques
• Méthodes de référence (Levures) CLSI M27 A3 dilution, M44 A2 diffusion EUCAST (document 7.1) dilution
• Tests commercialisés Etest®
Sensititre YeastOne®, Fungitest® …
Seuils de sensibilité (CMI μg/mL) Candida spp
Spectre des antifongiques
1 Spectre de sensibilité similaire pour toutes les échinocandines 2 Spectre de sensibilité posocanazole = voriconazole mais pas de formulation IV 3 Résistance très rare mais peut se développer chez des espèces initialement sensibles 4 Espèces avec CMI en échinocandines intrisèquemment plus élevées
Espèces AMB 5-FC CAS1 FCZ VRZ2
C. albicans S S S S S
C. tropicalis S S S S S
C. parapsilosis S S S à I4 S S
C. glabrata S S S S-DD à R S à R
C. krusei S I à R S R S
C. lusitaniae S à R3 S S S S
C. guillermondii S S S à I4 S S
fongicides fongistatiques
S=sensible ; SDD=sensibilité dose-dépendante ; I=intermédiaire ; R=résistant amphotéricine B (AMB), 5-fluorocytosine (5FC), caspofungine (CAS), fluconazole (FCZ), voriconazole (VRZ)
EUCAST CLSI S I R S S-DD/I R
AmphoB ≤ 1 >1
Fluconazole
C. albicans ≤ 2 4 > 4 ≤ 2 4 ≥ 8
C. glabrata - - - - ≤ 32 ≥ 64
C. krusei Espèce intrinsèquement résistante
C. parapsilosis ≤ 2 4 > 4 ≤ 2 4 ≥ 8
C. tropicalis ≤ 2 4 > 4 ≤ 2 4 ≥ 8
Voriconazole
C. albicans ≤ 0,125 - > 0,125 ≤ 0,12 0,25-0,5 ≥ 1
C. glabrata CMI ≤ 0,5 (souche sauvage)
C. krusei ≤ 0,5 1 ≥ 2
C. parapsilosis ≤ 0,125 - > 0,125 ≤ 0,12 0,25-0,5 ≥ 1
C. tropicalis ≤ 0,125 - > 0,125 ≤ 0,12 0,25-0,5 ≥ 1
Pfaller et al., Drug resist updat 2010 et Diag Microbiol Infect Dis 2011
Nouveaux seuils adaptés à l’espèce (CMI μg/mL)
CLSI Caspofungine Micafungine Anidulafungine
Espèces S I R S I R S I R
C. albicans ≤ 0,25 0,5 ≥ 1 ≤ 0,25 0,5 ≥ 1 ≤ 0,25 0,5 ≥ 1
C. glabrata ≤ 0,12 0,25 ≥ 0,5 ≤ 0,06 0,12 ≥ 0,25 ≤ 0,12 0,25 ≥ 0,5
C. krusei ≤ 0,25 0,5 ≥ 1 ≤ 0,25 0,5 ≥ 1 ≤ 0,25 0,5 ≥ 1
C. parapsilosis ≤ 2 4 ≥ 8 ≤ 2 4 ≥ 8 ≤ 2 4 ≥ 8
C. tropicalis ≤ 0,25 0,5 ≥ 1 ≤ 0,25 0,5 ≥ 1 ≤ 0,25 0,5 ≥ 1
EUCAST Anidulafungine
C. albicans S ≤ 0,03 et R > 0,03
C. glabrata, C. krusei, C. tropicalis : S ≤ 0,06 et R > 0,06
Pfaller et al., Drug resist updat 2011
Nouveaux seuils adaptés à l’espèce (CMI μg/mL) Traitements
pas d’infection �infection possible �infection probable
ou marqueur sérique
AmB = amphotéricine B désoxycholate ABLp = amphotéricine B liposomale
B h té i i BBB é h l tdé t
Créatininémie
caspofungine IV (70 mg J1 puis 50 mg/j) OU
ABLp IV (3mg/kg/j)
Neutropénique Non-Neutropénique
Traitement antérieur par un azolé?
1,5 fois la normale
Neutropénique
Recevant 2 traitements néphrotoxiques ?
Non-Neutropénique
Traitement antérieur par un azolé ?
< 1,5 fois la normale
OUI NON OUI NON OUI NON
AmB IV (1 mg/kg/j) OU
fluconazole IV (12 mg/kg/j)
AmB IV (1 mg/kg/j)
fluconazole IV (12 mg/kg/j)
APRES isolement d’une levure et AVANT identification de l’espèce de Candida
zolleezolleee IVVIVIVVIV/kg//kggg//j)/j)
Prise en charge des Candisoses Invasives Conférence de consensus 2004, SFAR, SPILF, SRLF
Nouvelles recommandations IDSA 2009
Treatment Guidelines for Candidiasis • CID 2009:48 (1 March)
• 2004 : neutropénie • 2006 : neutropénie / sepsis sévère/ exposition azolés • 2009 : exposition azolés / gravité / C. non albicans
Nouvelles recommandations
AMB conventionnelle néphrotoxique ; émergence de Candida non-albicans SDD-R au Fluco ou CMI élevée à AMB, Résistance croisée entre azolés
AAC 2007
Sensibilité in vitro au FCZ /exposition antérieure aux azolés Etude AMARCAND France 2005-2006
Leroy O et al., crit care Med 2009
Traitement initial
Modérément sévère ou sévère
Peu sévère
fluconazole échinocandine
Evaluation clinique du patient
Pré-exposition azolé ? Risque C. glabrata ou C. krusei
Oui Non
Candidémies chez le patient non neutropénique Recommandations IDSA 2009
Candidémies chez le patient non neutropénique Recommandations IDSA 2009
• Avant identification de l’espèce (A-I) :
– soit fluconazole (800 mg à J1 puis 400 mg/j)
– soit une échinocandine :
• caspofungine (70 mg à J1 puis 50 mg/j)
• micafungine (100 mg/j)
• anidulafungine (200 mg à J1 puis 100 mg/j)
• Une échinocandine est préférable (A-III) :
– pour les infections modérées à sévères,
– et chez les patients récemment exposés à un azolé.
Réévaluation du traitement
Non Oui
fluconazole
echinocandine
Stabilité clinique
Connaissance de l’espèce
C. parapsilosis C. lusitaniae ou autre espèce
C. glabrata C. krusei
Sensible au fluconazole
Oui Non
�Durée du traitement : 2 semaines après négativation des hémocultures et résolution des symptômes
Traitement candidémies après identification de l’espèce Recommandations IDSA 2009
p
O
p
parapsilosisusitaniaepar
hiOuiO
e
Traitement des candidémies après identification de l’espèce
• Remplacer l’échinocandine par le fluconazole si le patient est stable et infecté par une espèce sensible.
• En cas de candidémie à Candida glabatra, une échinocandine est recommandée (B-III),
Si le choix initial était un triazolé et que l’état du patient est satisfaisant, on peut ne pas modifier le traitement.
Traitement des candidémies après identification de l’espèce
• En cas de candidémie à Candida parapsilosis, le fluconazole est recommandé (B-III), Si le choix initial était une échinocandine et que l’état du patient est satisfaisant, on ne modifie pas le traitement.
• Dans les pays ou établissements où les échinocandines ne sont pas disponibles, le traitement initial peut être l’amphotéricine B chez les patients en état grave.
• Le voriconazole n’est pas recommandé comme traitement initial. Il peut être utilisé par voie orale après changement de traitement en cas de candidémie à Candida krusei (B-III).
Candidémie chez le patient non neutropénique Recommandations ESCMID 2011
Hémoc + à levure ou TT empirique (CIII)
Fortement recommandé Echinocandine (AI)
Modérement recommandé AMB liposomale ou Voriconazole (BI)
Accessoirement recommandé Fluconazole ou
ABLC (CI)
Débuter Traitement antifongique (AII)
Non recommandé AMB conventionnelle
Itraconazole Posaconazole Association
Cornely OA et al., 21st ECCMID, Milan 2011 http://www.escmid.org
Après 10 jours : - Patient stable - Espèce sensible au FCZ - VO possible
Candidémie chez le patient non neutropénique Recommandations ESCMID 2011
Traitement par une échinocandine (AI)
Durée du traitement au moins 14 jours après résolution candidémie (BII)
NON
Poursuivre Echinocandine
OUI Désescalade
Fluconazole (BII)
Procédures diagnostiques recommandées : - 1 Hémoc / Jour jusqu’à négativation - Fond d’œil - ETO
Cornely OA et al., 21st ECCMID, Milan 2011 http://www.escmid.org
5,6 +/- 0,8 j vs 2,6 +/-0,5 j p < 0,001
Diminution de la durée de la candidémie Diminution de la mortalité
272 épisodes de candidémie 206 patients avec candidémie
Rex RH et al. Clin Infect Dis 1995
p < 0,0001
Ablation du KT
70
60
50
40
30
20
10
0
%
KT laissé en place
Weinberger M et al. J Hosp Infect 2005
Retrait des cathéters en réanimation dans les 48 H suivant candidémie
Mortalité
Retrait rapide du cathéter < 72 H � impact sur survie (p < 0,001) Liu CY et al., J Infect 2009
Traitement prophylactique • Pas la règle en réanimation médicale
– Aucun bénéfice si incidence CI faible (<10%)
• Résultats variables selon les études – Chez le neutropénique: fluconazole � candidémie – Chez le non neutropénique : quels patients? Quelle
prophylaxie? Durée ? Coût ? (manque de données) – Prophylaxie � colonisation – Prophylaxie �
candidémie,
mortalité
• IDSA
– Fluconazole* (400 mg/j) si patient à haut risque, et unité à forte incidence de candidose invasive BI
• ESCMID – Pas d’info sur indication – Si décision, privilégier Fluconazole* 400 mg/j BI
Schelenz, JAC 2008; Cruciani, Int Care Med 2005; Lipsett, CID 2004; Garbino, Int Care Med 2002 & CID 2005; Shorr, Crit Care Med 2005; Eggimann, Int Care Med 2005
Pelz RK et al., Ann Surg 2001 Rex JH et al., CID 2001
Traitement empirique chez le patient non neutropénique en USI
Eggimman P et al, Annals Intensiive Care 2011
Période 6 mois, 377 patients (83,7%) avec sepsis admis en RéaMéd – 95 patients inclus (séjour > 5 j, pas d’IFIs, pas d’ATF, PNN ≥ 500/mm3) – 16 patients (16,8%) IFIs : 14 CI (13 candidémies, 1 médiastinite)
Posteraro et al., Critical Care, 2011
• BG (≥ 80 pg/mL) : 1 sérum début de l’épisode PVT veineux = PVT artériel
• VPN élevée et CI prouvée BG+ -1 à - 3 jours avant Hémoc
• Inclure BG screening patients avec risque CI 15-20% � TT pré-emptif
SENS% SPEC% VPP% VPN% AUC
BG 92,9 93,7 72,2 98,7 0,98
CS ≥ 3 85,7 88,6 57,1 97,2 0,80
IC ≥ 0,5 64,3 69,6 27,3 91,7 0,63
BG + CS ≥ 3 100 83,5 51,8 100
Eggimann et Marchetti Critical Care 2011
Traitement empirique • IDSA (empirique ciblé)
– Indication: faisceau d’arguments (Facteurs de risque, marqueurs, colonisation) B3
– Identique à celui des candidémies B3 • ESCMID
– Patients à risque et fièvre d’origine inconnue C3 (pas d’indication molécule)
– Par contre, adultes avec fièvre malgré ATB D1
Traitement probabiliste • IDSA
– Identique à celui des candidémies B3
Traitement pré-emptif • ESCMID
– -D-glucane positif : C2 IDSA: Pappas CID 2009 ; Handout ECCMID2011 sur escmid.org
Conclusions
Andes DR et al., CID 2012
• 1915 patients, 7 études : mortalité globale 31,4% succès thérapeutique 67,4%
Diminution mortalité à 30 jours Succès clinique et mycologique
Traitement par échinocandine (p=0,02) Retrait du cathéter (p=0,0001)
• Le traitement est efficace si il est mis en route rapidement !
• Nécessité d’identifier les patients à risque et d’améliorer le diagnostic précoce
• Incertitude : indications des traitements prophylactique, empirique, préemptif et choix du fluconazole vs d’autres molécules
• Inquiétude : impact écologique et financier de l’utilisation large des ATF
• Les candidoses invasives sont les plus fréquentes des infections fongiques invasives
Diapositives de réserve
Lortholary O et al., AAC 2011
2002-2009 : 2618 Candida spp. isolées de 2441 candidémies (+ 97 récurrentes)
� C. krusei et C. glabrata � globale CMIs
� C. parapsilosis � C. tropicalis
n=159
n=61
10% patients sous antifongiques (≤30 jours)
� C. parapsilosis et C. glabrata � globale CMIs
• Force de la recommandation – A: suffisamment d’éléments pour donner une recommandation
pour (ou contre: IDSA)
– B: des éléments pour donner une recommandation pour (ou contre: IDSA)
– C: peu d’éléments permettant de donner une recommandation
– D: (ECIL/ESCMID) ne pas employer
• Qualité de la preuve – I: au moins 1 bon essai randomisé
– II: 1 bon essai clinique (sans rando) : cohorte ou cas-témoin (et > 1 centre); série temporelle, ou résultats “dramatiques” d’une expérimentation non contrôlée
– III: avis d’experts, études descriptives etc..
Gradation des recommandations
Posologie des principaux antifongiques
• Amphotéricine B (Fungizone®) : 0,7 à 1 mg/kg/jour, Formes lipidiques : Ambisome® 3 mg/kg/jour
• Voriconazole (VFend®) : Posologie (IV) : 6 mg/kg x 2 pendant 24 h puis 4 mg/kg x 2 Biodisponibilité orale absolue : 96 % (200 mg x 2/j) Privilégier la voie orale en cas d’insuffisance rénale
• Fluconazole (Triflucan®) : 800 mg/jour à J1 puis 400 mg/jour les jours suivants,
• Les échinocandines : Caspofungine (Cancidas®) : Dose de charge à J1 : 70 mg/jour puis 50 mg/jour (70 mg si > 80 kg)
Effets indésirables des antifongiques systémiques
Traitement des Candidoses invasives Recommandations ESCMID 2011
Traitement des Candidoses invasives Recommandations ESCMID 2011
Traitement des Candidoses invasives Recommandations ESCMID 2011
Recherche combinée mannanes / anti-mannanes Platelia® Candida Ag / Platelia® Candida Ac (BioRad)
Candidémies
Candidoses hépatospléniques Ellis M et al., 2009; Prella et al. 2005
Mn et/ou A-Mn + 16j avant signes radio chez 18/21 pts
Cuenca-Estrella M et al., 21th ECCMID, MILAN 2011
Nécessité évaluation prospective : cut-off optimal, fréquence suivi … Non inclus dans les critères diagnostiques EORTC/MSG 2008