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Biologie Cellulaire &
Biologie Moléculaire
L3 UE 5.2 EP1 2014-‐2015
Cours n° 3 : Vendredi 12 septembre 10h15-‐12h15 Pré-‐requis : enzymes TechADNr, Endonucléases de restricIon,
Chromosome, ChromaIne,
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Pré-‐requis
• Enzymes • Endonucléases • Dualité • Stratégies de clonage
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Enzymes de base de la technologie de l’ADN recombinant
Extrémités ParIe centrale
1 2 3 4
Polymérase 5’-‐3’
Kinase Endonucléase Endonucléase de restricIon
Exonucléase 5’-‐3’ ou Exonucléase 3’-‐5’
Phosphatase Ligase (5’-‐P et 3’OH)
Méthylase (protège de l’endonucléase) (Déméthylase)
5’
5’
5’
5’ 3’
3’
3’
3’
In vivo : Paire atypique pour la parIe centrale de la double hélice et désenroulement (supertour négaIf) • StructuraIon en double hélice spontanée à T°C modérée • hélicase : ouverture double hélice iniIaIon réplicaIon transcripIon (et aux extrémités de l’œil de réplicaIon) • topoisomérase : gesIon des contraintes topologiques intrachromosomiques (RéplicaIon, mouvement des chromosomes, …)
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5’ 3’
3’ 5’
Endonucléases de restricIon : noIon considérée comme acquise
Séquence du site de clivage pour l’endonucléase de restricIon EcoRI
XXGAATTCXX XXCTTAAGXX
Définir les deux sites de clivages : coupe entre G et A de la séquence double brin GAATTC avec libéraIon d’extrémités 5’P et 3’ OH
Définir l’acIvité Méthylase EcoRI : MeEcoRI acIve sur la même séquence que EcoRI
MéthylaIon qui forme des (N) 6 méthyladénines et empêche les séquences GAATTC de la bactérie E. coli d’être clivée par l’enzyme EcoR1.
ADN double brin
Clivage de la séquence double brin GAATTC avec libéraIon de • deux extrémités « double brin » : 5’ débordant de séquence AATT (5’-‐ 3’) • et d’extrémités « simple brin » : 3’OH et 5’ phosphate. • Expression synthéIque : FormaIon d’extrémités cohésives EcoRI
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Dualité des Enzymes de la Technologie de l’ADN recombinant
• Impliquées dans une foncIon cellulaire ou virale – réplicaIon, correcIon, réparaIon, défense, invasion …
• OuIl pour la manipulaIon in vitro des acides nucléiques
Exemple : ADN polymérase I E. Coli qui porte 4 acIvités disInctes (cf chapitre RéplicaIon)
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Stratégies de clonage et d’expression • IdenIficaIon d’une molécule (protéine) issue d’un génome parIculier
porteuse d’une foncIon cellulaire • ou • IdenIficaIon d’un gène muté dans une pathologie
• Nécessite de « récupérer ou purifier » une séquence d’acide nucléique (gène, ARNm), de la « manipuler » in vitro (ex. transformaIon ARNm en ADNc) et de l’ « insérer » dans un « vecteur » (plasmide, virus, …) pour l’introduire dans la cellule appropriée (bactérienne ou eucaryote) permejant ainsi la déterminaIon de la séquence, la producIon de la protéine, l’analyse de sa foncIonnalité, ou bien la correcIon du foncIonnement cellulaire.
• Il faut adapter l’ADNc passager aux zones foncIonnelles d’expression du système choisi pour obtenir la triple cohérence (gène, vecteur, cellule hôte).
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ApplicaIon : Stratégie d’obtenIon d’une Banque ADNc orientée
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Définir un chromosome : aspect moléculaire ?
• Un chromosome est une molécule unique d’ADN double brin (structurée en double hélice) :
• circulaire – pour le chromosome ou génome bactérien – Pour le chromosome mitochondrial ou chloroplasIque
• linéaire pour les chromosomes eucaryotes* avec une structure
télomèrique à chacune de ses extrémités. – Télomère : structure ADN répéIIve, organisée en tétra-‐hélice et
permejant la protecIon et la réplicaIon des extrémités de chromosome.
-‐ * A l’excepIon du chromosome métaphasique formé de 2 chromaIdes issues de la duplicaIon, lors de la réplicaIon, d’un chromosome et redonnant après la division
cellulaire chacune un chromosome unique (chromosome interphasique). (ChromaIde=1 molécule d’ADN db linéaire)
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Définir un chromosome eucaryote : Aspect cellulaire
• Molécule d’ADN double brin linéaire foncIonnalisée capable de se répliquer, de permejre l’expression de l’informaIon généIque dont elle est porteuse et de subir les opéraIons de maintenance nécessaire à la conservaIon de son intégrité et à son mainIen dans la cellule.
TransiIon : une altéraIon (cf zone centrale) peut se produire sur la structure du chromosome avec des
conséquences cellulaires variables.
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Un danger majeur : le clivage double brin (dans la cellule et dans les manipulaIons in vitro)
• Double Strand Break : DSB
hjp://www.hindawi.com/journals/jna/2010/646109/fig1/ hjp://atlasgeneIcsoncology.org/Deep/DoubleStrandBreaksID20008.html
Schéma (simpliste) : Contexte Génome/Chromosome/ChromaIne/Nucléosome
DSB induits au cours de la réplicaIon des cellules tumorales traitées par un inhibiIon des topoisomérases (camptothécine)
Cellule tumorale
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10 DSB/jour/cellule
camptothécine
Génomique
• Séquençage des génomes (perso : 1 000 € )
• Taille et Nombre de gènes
• Génomique foncIonnelle
• IntégraIons sous-‐jacentes – (territoires cellulaires et nucléaires, complexes intégraIfs et réseaux géniques)
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Carte d'Iden8té : Génome (s) humain (polycopié 1 page 7)
LocalisaIon Noyau
Nature ADN double brin linéaire
Taille des chromosomes 50 000 000 à 250 000 000 pb
Taille du génome 3 300 000 000 pb/génome haploïde Nombre de copies diploïde (sauf cellules de la reproducIon)
Nombre de chromosomes 23 x 2 (cellule diploïde)
Nombre de gènes (2010) environ 20 000 gènes codant une protéine idenIfiée
Taille moyenne des gènes 3000 pb : 4 exons totalisant 1350 pb, protéine de 450 acides aminés
Nombre unité de transcripIon 100 000 à 200 000
Structure de gènes dystrophine (79 exons dans 2 400 000 pb), IIne (363 exons, 38 000 acides aminés)
Nature des gènes ARNt, ARNr, ARNm, miARN, snARN, lncARN…
Spécificité nombreux facteurs de transcripIon et nombreuses séquences régulatrices de l'expression génique
LocalisaIon Mitochondrie Nature ADN double brin circulaire unique par mitochondrie Taille du génome 16 569 pb Nombre de gènes 37 Nombre de copies /cellule n (0,1 % ADN total) Spécificité peu de recombinaison, taux de mutaIon élevé
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GesIon de l’état de compacIon et des mouvements du chromosome.
Système de signalisaIon permejant une mise en œuvre rapide et fiables des foncIons concernées
Chromosome 1 humain taille : 250 000 000 pb longueur physique 8,5 cm Taille cellulaire = qq micromètres (facteur de compacIon : ordre de 10 000)
DSB
Gènes ChromaIne Nucléosome Code Histone OrganisaIon du génome Domaines régulateurs
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Deux contraintes majeures
CompacIon maximale : Métaphase Caryotype spectral : photographie de l'étalement chromosomique après hybridaIon
3000
Chromosomes métaphasiques Cycle cellulaire
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Chromosome idenIficaIon facile même si instabilité généIque
Nombre de gènes : quesIon plus problémaIque
StructuraIon du chromosome eucaryote
Gène
Domaine régulateur
T T C
Gènes
Amas de gènes
Gènes
Chromosome
Zones foncIonnelles de domaine
Zones foncIonnelles de domaine
O OO O
Séquences intergéniques Séquences répétées
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Structure du gène eucaryote (protéine)
Environnement et mémoire
IntégraIon des signaux ou informaIons
Modules ou ER
AUG stop
C AAAAAA
5’ UTR codante 3’ UTR
Pré-‐ARN messager ou transcrit primaire introns
ARNm
Promoteur Z. R.
Gène
ZR zone régulatrice de la transcripIon ZR zone régulatrice
de la transcripIon
Z. R.
Coiffe extension polyadénylée
StructuraIon 3D Site de fixaIon miARN
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Gènes de protéines Unités de transcripIon
Isoformes ARN
Non coding ARN
Isoformes protéiques
Régions intergéniques Brin anI-‐sens Introns
Chaque gène peut être employé de manière différente
en foncIon de la cellule concernée
•Niveaux de régulaIons •Réseaux géniques •Epissage alternaIf •RégulaIon intégraIve •miARN … •Richesse en protéines (x10) •ModificaIons épigénéIques
1 gène = 1 environnement chromosomique unique 1 gène = 1 régulaIon transcripIonnelle intégrée unique
1 Type Cellulaire : Panorama d’expression génique spécifique, dépendant de l’instant et du micro-‐environnement.
Transcrits mulIples
(chroma8ne)
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Puces ADN
Technique 1 : Puces ADN /transcriptomique
Puces ADN gene array
1 PréparaIon des ARNm (ou ARN cellulaires totaux)
2 TranscripIon inverse
3 Couplage des ADNc à des fluorophores
4 HybridaIon sur support mulIsondes ADN (ex. 20 000 gènes humains)/lavage
5 Lecture de la fluorescence
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Transcriptomique. : technique d’analyse globlale uIlisant les puces ADN qui permet de déterminer simultanément le niveau d’expression de chacun des gènes protéiques d’un type cellulaire ou d’un Issu dans pour une circonstance expérimentale donnée. Définissant ainsi « panorama d’expression génique » de la cellule ou du Issu. Ce panorama d’expression génique est très sensible aux modificaIons de l’environnement cellulaire (hormone, stress, …).
Ceje technique peut aussi être appliquée à l’analyse de l’expression des gènes de miARN, ou bien de l’ensemble des ARN exprimés (ARNm et ARN non-‐codant) au sein d’une cellule parIculière.
Puces ADN
hjp://en.wikipedia.org/wiki/File:NA_hybrid.svg
ReproducIon effectuée par l’Université François Rabelais de Tours Avec l’autorisaIon du C 20 rue des Grands AugusIns 75006 Paris . F. C.
ARN cellulaires marquage
Basée sur la propriété d’hybridaIon des acides nucléiques selon laquelle les séquences nucléoIdiques complémentaires se reconnaissent et s’apparient pour former une double hélice. D’une manière très générale, la double hélice de l’ADN est ouverte expérimentalement par la soude, la chaleurs, les solvants (formamide) ou
enzymaIquement par les hélicases. 55
1-‐2% génome exprimé ≈ 20 000 gènes Taille moyenne 3000 pb Exons
Sondes systémaIques
1 n 10 % génome exprimé 180 000 unités de transcripIon StructuraIon de la chroma8ne Plus d’ARN (LncARN, …) , Moins de gènes
Sondes géniques
Conclusion : TranscripIon et StructuraIon de la chromaIne concerne la globalité du génome et l’ensemble des foncIons ajachées aux acides nucléiques
EpigénéIque ChromaIne
Puces ADN
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ChromaIne : règle des 2
• 2 niveaux de condensaIon (interphase/métaphase)
• 2 niveaux d’organisaIon (nucléosome/domaine)
• 2 cibles de modificaIons covalentes (histone/ADN)
• 2 approches analyIques (spécifique/globale)
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Chromosome métaphasique Microscopie électronique
RéplicaIon DuplicaIon Centromère Télomère ChromaIde Chromosome
Principe/excepIon 1 chromosome = 1 ADN double brin Sauf Chromosome métaphasique formé de 2 chromaIdes reliée par le centromère et qui donneront un chromosome interphasique dans chacune des deux cellules filles 58
ChromaIne : Deux degrés de condensaIon
•1• État décondensé dans le noyau interphasique : Territoires disIncts
Microscopie électronique
(hjp://academics.hamilton.edu/biology/kbart/image/nucleus.jpg)
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ChromaIne : 2 niveaux d’organisaIon et deux principes unificateurs
• Nucléosome • Domaines régulateurs
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Nucléosome
Une fracIon importante de protéines de structuraIon ou régulatrices complètent la structure nucléosomique in vivo
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Autant d’ADN que de protéines histones dans un nucléosome,
Un nucléosome : Quatre paires d’histones
2 H2A 2 H2B 2 H3 2 H4 ou Octamère
auquel peut se rajouter un histone H1
Nucléosome : assemblage doté d’une grande plasIcité structurale
Structure du nucléosome
Extension N-‐terminales des histones H2A, H2B, H3 et H4 stabilisant le nucléosome
Accessibilité parIelle de la double hélice de l’ADN à certaines protéines régulatrices (zone hachurée).
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Histone H1 permet de verrouiller la structure nucléosomique, pour des niveaux d’organisaIon supérieurs