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1 TRANSPORTS MEMBRANAIRES ELECTROGENIQUE Fabrice DUPRAT Institut de Pharmacologie Moléculaire et Cellulaire Université de Nice Sophia-Antipolis Décembre 2002 ELECTROPHYSIOLOGIE PRINCIPES ET TECHNIQUES

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TRANSPORTS MEMBRANAIRES ELECTROGENIQUE

Fabrice DUPRATInstitut de Pharmacologie Moléculaire et CellulaireUniversité de Nice Sophia-Antipolis Décembre 2002

ELECTROPHYSIOLOGIEPRINCIPES ET TECHNIQUES

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Objectifs de ce cours

• Comprendre le fonctionnement des canaux ioniques.

• Comprendre les données présentées dans un article scientifique.

Lecture des représentations classiques(courbes courant/potentiel, inactivation, ...)

Signification des paramètres mesurés en électrophysiologie(conductance, seuil d’activation, probabilité d’ouverture, ctes de temps...)

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3

Déroulement du cours

Durée du cours5 h sur les principes et techniques de l'Electrophysiologie.3 h sur les bases de neurosciences et la plasticité synaptique.

Evaluation (examen final du C4):Etude d’un ou plusieurs cas concrets (articles de littérature scientifique en Anglais).Questions de cours sur les principales notions.Prévoir un dictionnaire Anglais/Français et une calculatrice.

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Plan du cours

LES PHENOMENES ELECTRIQUES EN BIOLOGIEETUDE DES PHENOMENES ELECTRIQUES D ’ORIGINE BIOLOGIQUETRANSPORTS MEMBRANAIRESLES CANAUX IONIQUESNOTIONS DE BIOPHYSIQUETECHNIQUES D ’ETUDE: LE POTENTIEL IMPOSEGATING DES CANAUX IONIQUESLE PATCH CLAMPTECHNIQUE D ’ETUDE: LE COURANT IMPOSECANAUX ENDOGENES ET EXOGENESPOINTS DE REPERES

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LES PHENOMENES ELECTRIQUES EN BIOLOGIE

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Les phénomènes électriques en biologie

L'anguille électrique

La torpille

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ETUDE DES PHENOMENES ELECTRIQUES D ’ORIGINE

BIOLOGIQUE

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Animal entier: EEG

Electrodes externes

E.E.G.: Electroencephalogramme

Electrodes implantées

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9

Animal entier: ECG

Electrodes externes

E.C.G.: Electrocardiogramme

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Organe entier: coeur

200 ms

P

Q

R

S

T

Cœur isolé perfusé de souris

Drici et al Circulation 2002

Cœur entier

Electrodes

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Organe entier: cerveau

Microélectrodes

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12

Tissus: tranche de cerveau

Electrodes

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13

Tissus: nerf isolé

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14

Cellules: Neurones en culture

MicroélectrodePipette de patch clamp

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Protéine canal

Zhou et al.

KcsA

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16

TRANSPORTS MEMBRANAIRES

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Assymétrie de la membrane plasmique

Bicouche lipidiqueProtéines membranaires

Interne Externe

Na+ 14 140K+ 160 3Ca++ 10-4 1Cl- 14 150

Concentrations ioniquesdans les cellules de vertébrés

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18

Protéines de la membrane plasmique

x75000

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Notions générales sur les transports membranaires

Gradient de [A]A

Transports passifs

C

ATP

Transports actifs avec consommation d’ATP

Transports actifs secondaires

Gradient de [C]

C

Qté transportée

Gradient de [ ]

Diffusion facilitée

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Transports membranaires

A+ C

Gradient de C

Electrogène

SymportsA B

Gradients de A et B

Electroneutre

A+ B

Electrogène

UniportsA+

Electrogène

AntiportsA+

B+

Electroneutre

A

B

Electroneutre

C

ATP

Electroneutre

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Synapse électrique, jonctions Gap

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100 µm

Synapse électrique, jonctions Gap

30 µm30 µm

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Conclusion sur les transports membranaires

Transports électrogèniques

Possibilité de mesures électrophysiologiques

Cas des canaux ioniques

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LES CANAUX IONIQUES

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Les canaux clonés ou exogènes

Structure protéique connue

• Nombre de segments transmembranaires• Homologies de séquence• Sites consensus• Réalisation d’anticorps, d’antisens, de sonde d’hybridation, ...

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Superfamilles des canaux clonés

Canaux Cl-Récepteurs canaux

+ sous unités α,α,α,α,

β,β,β,β,

δ,δ,δ,δ,

γγγγ

Canaux Ca2+

++++

++++

++++

++++

P P P P

Canaux Na+

++++

++++

++++

++++

P P P P

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Sous unités auxiliaires: Kvββββ2

Van Huizen et al. 1999, FEBS Lett. 457, 107-111.

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Structure et assemblage des Kv

1 2 3

5

64

Kv++++

x4=P

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29

Structure et assemblage des Kir

P

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30

Structure et assemblage d’autres canaux

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Structure du récepteur-canal nicotinique

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32

Miller et al.

Passage des ions K+

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Zhou et al2001

Filtre de sélectivité

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34Zhou et al 2001

Deshydratation des ions K+

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Zhou et al 2001

Passage des ions K+

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Classification des canaux ioniques

Nature du/des principaux ions transportés

25.10-9m

Face externe

Face interne

Na+

Ca++

K+Cl-

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Régulation des canaux ioniques

Régulation par un ligand intracellulaire (SMOC)Ca++ AMPc

Régulation par un agoniste (ROC)AMPA GABA

Face externe

Face interne

Régulation par le potentiel (VOC)

+ + +

- - -

++++

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Biophysique des canaux ioniques

Propriétés biophysiques:• Canaux à rectification entrante• Canaux à rectification sortante• Canaux voltage dépendant• Canaux avec une inactivation .…

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Pharmacologie des canaux ioniques

Classification selon la sensibilité

Exemple: Canaux apamine sensible (KCa)

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Pathophysiologie des canaux ioniques

♦ Diabète,♦ Ataxie épisodique de type 1♦ Syndrome du long QT ♦ Syndrome de Bartter

Canaux potassiques

♦ La paramyotonie congénitale, la paralysie périodique familiale hyperkaliémique♦ Syndrome du long QT ♦ Syndrome de Liddle ♦ Pseudohypoaldostéronisme de type 1

Canaux sodiques

♦ La paralysie périodique familiale hypokaliémique ♦ L'hyperthermie maligne♦ Syndrome de Lambert-Eaton, sclérose latérale amyotrophique, diabète de type I

Canaux calciques

♦ La mucoviscidose♦ La myotonie congénitale et la myopathie pseudohypertrophique de Becker.

Canaux chlore

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Pharmacologie clinique des canaux ioniques

• Anti-arythmiques de la classe IA (quinidine, lidocaïne, encaïnide)• Anti-arythmiques de la classe IB (lidocaïne)• Anti-arythmiques de la classe IC (encaïnide)• Pyréthrinoïdes (bioperméthrine)• Diurétiques (amiloride).

Canaux sodiques

Canaux potassiques• Anti-arythmiques de la classe III (amiodarone)• Sulphonylurées (glibenclamide)• Ouvreurs KATP (nicorandil).

♦ Anti-arythmiques de la classe IV (vérapamil).Canaux calciques

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NOTIONS DE BIOPHYSIQUE

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Analogie électricité /eau / ion

Courant électrique: i ou IQté de charges (e-) circulant par unité de temps. Porteurs de charges: électronsProduit par un générateur de courant:Sens positif = celui des charges positives

Courant d’un fleuveDébit d’eau entre 2 pointsPompe péristaltique

Courant ionique: i ou IQuantité de charges (et non d’ions) par unité de temps= flux global entre 2 pointsPorteurs de charges: ionsAmpères: 10-6 A=1µA, 10-9 A=1nA, 10-12A=1pA

PHENOMENE ELECTRIQUE ANALOGIE AVEC L’EAU PHENOMENE IONIQUE

Conductance : g= 1/R

Résistance: R

Obstacle au passage des électrons

Résistance d’un canal:

Résistance R ou r en ohm: Ω (109 Ω = 1 MΩ)

Conductance d’un canal:

r = 1/g

Conductance g ou γ en siemens: 10-12 S = 1 pS

= capacité à laisser passer des ions

Barrage sur un fleuve

Les vannes sont ± ouvertes

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Analogie électricité /eau / ion

Différence de potentielDifférence de quantité de chargesVolts: mV: 10-3 V

Quantité d’eau en un pointPotentiel électrique: E (U, V)Quantité de charges en un point

PHENOMENE ELECTRIQUE ANALOGIE AVEC L’EAU PHENOMENE IONIQUE

Différence de potentiel ou tension: U, V (E)

Différence en quantité de charges entre 2 points

Produit par un générateur de tension

Différence niveau d’eau

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Analogie électricité /eau / ion

PHENOMENE ELECTRIQUE ANALOGIE AVEC L’EAU PHENOMENE IONIQUE

2 réservoirs

Loi d’ohm: U = RI

Si U = constante:

si R alors I

Si I=constante:

si R alors U

Capacité: C

composé d’un isolant entouré de 2 surfaces de conducteur

= capacité d’accumuler des charges

Capacité membranaire

=la membrane plasmique est un isolant entouré de 2 conducteurs

Capacité spécifique (µF/cm2)

Barrage:

si le courant alors la différence de niveau

-------

++++

+ -

---

+

+

+

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Potentiel d’équilibre - Loi de Nernst

Interne Externe Eion = 58 log [ion]ext / [ion]int

Na+ 14 140 + 58 mVK+ 160 3 - 100 mVCa++ 10-4 1 + 232 mVCl- 14 150 + 60 mV

Potentiels d’inversion dans les cellules de vertébrés-90 mVPolarisée

- +

Gradient de chargesInclusion d ’un canal K+

K+ Na+Cl- Cl- K+

Na+Cl- Cl-

K+

Na+Cl- Cl- K+

Na+Cl- Cl-

K+ Na+Cl- Cl-

K+ Na+Cl- Cl-

Gradient de [Na+]Gradient de [K+]

Gradient de charges

Voltmètre0 mV

Gradient de [Na+]Gradient de [K+]

K+ Cl- Cl-

K+ Na+Cl- Cl-

K+ Na+Cl- Cl-

K+ Na+Cl- Cl-

K+ Na+Cl- Cl-

K+ Na+Cl- Cl-

Gradient de charges

+60 mVDépolarisée

-+

Inclusion d ’un canal Na+

Gradient de [Na+]Gradient de [K+]

K+ Cl- Cl-

K+ Na+Cl- Cl-

K+

Na+Cl- Cl-

K+ Na+Cl- Cl-

K+Na+Cl- Cl-

K+ Na+Cl- Cl-

Na+

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Enoncé de la loi de Nernst

Potentiel d’équilibre d’un ion Eionint][][ln

ionion

zFRTE ext

ion =

R: constante des gaz parfaits: 8,315 J.K-1.mole-1 (1 J = 1 V.C)T: température absolue en °K (°K = °C + 273,16)z: valence de l’ion (+1 pour Na+ et K+, +2 pour Ca2+ et -1 pour Cl-)F: constante de Faraday: 9,648.104 C.mole-1

Valeurs de RT/F selon la température:

Température RT/F(°C) (mV)

0 23,545 23,9710 24,4015 24,8320 25,2625 25,6930 26,1235 26,5537 26,73int][

][log58ionionE ext

ion =

Ln = 2,303 LogSi z = +1 et à 20°C on a:

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TECHNIQUES D ’ETUDELE POTENTIEL IMPOSE

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ImposéE

Eimposé

Aspect technique du potentiel imposé

Double microélectrodesCalculé

= R

Emb

x IMesuré

Iinjecté

Calculé= 1/gE / I = 1 / gI / E = g

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Le modèle de l’ovocyte de xénope

Ovocytes de xénopes

Injection d’ARN ou d’ADN

Double microélectrodes

Etude des canaux clonés ou exogènes

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Préparation des ovocytes de xénopes

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52

Ovocytes: Injection d’ARN ou d’ADN

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53

Le poste d’enregistrement en double microélectrodes

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Préparation des pipettes

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55

Etude des courants natifs ou endogènes

Preparation d’un tissu

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56

Potentiel imposé par l’expérimentateur[ + ]Gradient de charges imposé

[ - ]Flux net de K+ sortant

Flux net de K+ nul

= état d’équilibre (Nernst)Flux net de K+ entrant

[K+]

[ K+ ]

Gradient de [K+]

Interne

Externe

Flux net de K+ sortant

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57

Potentiel imposé

E = R x IImposé MesuréCalculé

Potentiel (mV)

Courant (µA, nA, pA)

0 +50-50-100

+5

-5 Interne

ExterneEK+=-70 mV

Gradient [K+]

Potentiel imposé

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58

Représentation schématique d’un canal

Externe

Interne

gK = 0gNa = 0

IK = 0INa = 0

Vm = 0 mV

Externe

Interne

gK > 0gNa = 0

IK > 0INa = 0

Vm = EK = - 84 mV

Externe

Interne

gK = 0gNa > 0

IK = 0INa > 0

Vm = ENa = + 58 mV

- - - -+ + + +

+ + + +- - - -

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59

Loi de Goldman Hodgkin Katz

Flux sortant

Flux entrant

Flux sortant

Flux entrant

TotalEK+

[K+]int > [K+]ext[K+]int = [K+]ext

Total

EK+

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Technique d’étude: le voltage clamp

Courants totaux

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61

Technique d’étude: le voltage clamp

Courants totaux

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62

GATING DES CANAUX IONIQUES

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63

Biggin & Sansom 2001

Structure et gating des canaux clonés

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64

Canaux voltage-dépendant

Seuil d’activation

EK+

[K+]int > [K+]ext

EK+

[K+]int = [K+]ext

Seuil d’activation

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Interactionssenseur au voltage et pore (Kcsa)

Fermé(rétracté)

Inactivé(rétracté)

Inactivé(extrudé)

Ouvert(extrudé)

Gandhi et al. 2000

ActivationInactivation

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Gating des canaux ioniques

Rectification entrante

V

I

Diffusion facilitée

V

I

Blocage des courants sortants

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Rectification entrante

Milieu interne

K+

Membrane

Milieu externe

K+Spermine

Mg2+

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Canaux temps-dépendant

InactivationActivation

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Patch Clamp

Enregistrements de courants unitaires

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LE PATCH CLAMP

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Configurations du Patch Clamp

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Poste de Patch clamp

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Courant unitaire

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Courant unitaire

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Modèle

F2 OF1 Ik2

k-2

k1

k-1

ki

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Histogramme d’amplitude

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Sommation des courants unitaires

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Courant total

Itotal = iunitaire . N . Po = gion . (Vm-Eion)

iunitaire = γion . (Vm-Eion)

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Cas d’une membrane comportant plusieurs conductances

Courants du nœud de Ranvier

Schéma électrique

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TECHNIQUE D ’ETUDELE COURANT IMPOSE

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Current clamp

Potentiel d’action en current-clamp

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CANAUX ENDOGENES ET EXOGENES

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Etude des canaux natifs ou endogènes

Patch clamp

Dissociation mécanique et enzymatique

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84

Etuce des canaux clonés ou exogènes

Cultures de cellules

Transfection, infection, injection

Patch clamp

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POINTS DE REPERES

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Canaux ioniques des végétaux: Arabidopsis thaliana

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Historique 1

2600 ans avant JCLes Egyptiens étudient les phénomènes liés à l’anguille électrique.1790 GALVANI:Existence de phénomènes électriques au niveau de la matière vivante.1827: Loi d’OHM.1848 DU BOIS REYMOND:Propriétés électrogènique de la peau de grenouille.1868 BERNSTEIN:L’intérieur et l’extérieur des cellules sont composés d’électrolytes de différentes concentrations séparées par une membrane perméable à ces électrolytes.1888 NERNST:Loi de Nernst donnant le potentiel d’équilibre d’un ion.1902 BERNSTEIN: Théorie de la membrane:- le potentiel de repos est du à la membrane,- notion de membrane électrique et de membrane biologique,- les concentrations ioniques sont différentes de part et d’autres de la membrane- au repos la membrane n’est perméable qu’au potassium.

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Historique 2

1910 EINTHOVEN:Naissance de l’ECG (électrocardiogramme) 1920-1945:Naissance de l’électrophysiologie, due aux améliorations techniques après la II nde guerre mondiale .1935: Microélectrode intracellulaire.1937 HODGKIN:Des courants locaux peuvent dépolariser la membrane.1948 ROSENBERG-USSING:Différence entre les transports actifs et les transports passifs, au niveau des épithéliums. 1949 LING-GERARD:Première microélectrode de verre.1952 HODGKIN-HUXLEY:Technique du voltage clamp1952 CORABOEUF:Naissance de l’électrophysiologie en France.1958 USSING:Etude des différentes perméabilités (K+ et Na+) sur les épithéliums, chambre de Ussing.1981 NEHER - SAKMANN:Technique de patch clamp.2000 NEHER - SAKMANN :Prix Nobel de Médecine.