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Techniques en histo-cytologie et anatomie végétale http://www.cirad.fr/enseignement-formation/offre-de-formation/histo-cytologie Objectifs Maîtriser le réglage et l’utilisation d’un microscope optique (lumière transmise et épifluorescence) Savoir choisir, réaliser et interpréter sa coloration en fonction de sa problématique Acquérir des bases ou renforcer ses connaissances en anatomie végétale. Découvrir l’intérêt de l’anatomie comparative chez les végétaux. Contexte Consulter le site de la Plate-forme d'histocytologie et d'imagerie cellulaire végétale) PHIV imagerie cellulaire végétale Public Chercheurs, techniciens, ingénieur de l’unité mixte de recherche (5 à 8 personnes par session) sur financement des institutions. Langue français Programme Jour 1 Le microscope et ses applications Les bons usages du microscope (description, principaux réglages et entretien). Contraste de phase, contraste interférentiel (Nomarski), fond noir, fond clair, épifluorescence : principes et utilisations. La prise d’image - photographie argentique, - photographie numérique. Jour 2 Préparation des échantillons Spécificité de l’histologie végétale Fixation, déshydratation, inclusions en paraffine, en résine (glycol-méthacrylate) (avantages et inconvénients respectifs). Les échantillons végétaux récalcitrants aux inclusions (caractéristiques, propositions de traitements adaptés). La réalisation des coupes au microtome et au vibratome

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Techniques en histo-cytologie et anatomie végétalehttp://www.cirad.fr/enseignement-formation/offre-de-formation/histo-cytologie

ObjectifsMaîtriser le réglage et l’utilisation d’un microscope optique (lumière transmise et épifluorescence)Savoir choisir, réaliser et interpréter sa coloration en fonction de sa problématiqueAcquérir des bases ou renforcer ses connaissances en anatomie végétale.Découvrir l’intérêt de l’anatomie comparative chez les végétaux.

ContexteConsulter le site de la Plate-forme d'histocytologie et d'imagerie cellulaire végétale)PHIV imagerie cellulaire végétale

PublicChercheurs, techniciens, ingénieur de l’unité mixte de recherche (5 à 8 personnes par session) sur financement des institutions.

Languefrançais

ProgrammeJour 1Le microscope et ses applicationsLes bons usages du microscope (description, principaux réglages et entretien).Contraste de phase, contraste interférentiel (Nomarski), fond noir, fond clair, épifluorescence : principes et utilisations.La prise d’image- photographie argentique,- photographie numérique.

Jour 2Préparation des échantillonsSpécificité de l’histologie végétaleFixation, déshydratation, inclusions en paraffine, en résine (glycol-méthacrylate) (avantages et inconvénients respectifs).Les échantillons végétaux récalcitrants aux inclusions (caractéristiques, propositions de traitements adaptés).La réalisation des coupes au microtome et au vibratome

Les fluorochromes et leurs utilisations (fluorochromes spécifiques Nile Red lipides, calcofluor cellulose, DAPI noyaux), IP paroi et noyaux, Réactif de Neu polyphénols, d’organites, pH, ions etc.)

Jour 3Anatomie végétaleLes tissus végétaux (leurs principales caractéristiques et leurs fonctions).Exercices de reconnaissance de tissus sur lame.Structure des principaux organes végétaux (tiges, racines, feuilles et fleurs).Anatomie comparée, relations structure/fonction (adaptation à différents milieux et biotopes)

Jour 4Choix et spécificité des colorations, topologiques et histochimiques.Notions d’histo-enzymologie : localisation d’activités enzymatiques sur coupes

Le stage donnera lieu à des travaux pratiques pour chacun des thèmes abordés.

IntervenantsJacques Escoute [email protected] et Jean-Luc Verdeil verdeil [email protected]