projet : Évaluation de l’acide oxalique et de l’acide ... final 55... · évolution de la...

Rapport final

Projet : Évaluation de l’acide oxalique et de l’acide

formique en traitement du Varroa destructor pendant la période estivale

55-2003

Pierre Giovenazzo Chercheur responsable

Centre de recherche en sciences animales de Deschambault

Mars 2004

AVANT-PROPOS

Ce rapport présente les résultats obtenus au cours des travaux de recherche effectués entre le 1er

juin 2003 et le 31 décembre 2003 au Centre de recherche en sciences animales de Deschambault

(CRSAD).

Les renseignements dans ce rapport concernent spécifiquement les travaux indiqués dans le

contrat de service impliquant CRSAD et le chercheur responsable. Les travaux avaient but la

réalisation d’un projet de recherche visant à vérifier l’efficacité de deux types de traitements

d’été contre le parasite Varroa destructor. Ces deux traitements sont : acide formique de courte

durée et acide oxalique par égouttement.

Collaborateurs

Pascal Dubreuil, Faculté de médecine Vétérinaire, Université de Montréal

Émile Houle, Centre de recherche en science animale de Deschambault

Financement

La réalisation de ce projet a été possible grâce à la contribution financière de la Direction de

l'innovation scientifique et technologique du Ministère de l’agriculture des pêcheries et de

l’alimentation du Québec.

II

RÉSUMÉ PROBLÉMATIQUE

Le parasite Varroa destructor est actuellement responsable de pertes importantes de colonies d’abeilles à travers le Canada. Depuis quelques années, les bandes d’Apistan (produit homologué à base de fluvalinate-tau) n’ont plus l’efficacité nécessaire pour contrôler ce parasite. Plusieurs provinces, dont le Québec, ont obtenu de l’Agence de réglementation pour la lutte antiparasitaire (ARLA) de Santé Canada l’homologation d’urgence et temporaire des bandes de CheckMite (coumaphos) en automne et au printemps (en absence de miel) afin de sauver à court terme leur cheptel. Dans ce contexte, il primordial d’offrir aux apiculteurs canadiens des nouveaux moyens de lutte pour contenir l’action dévastatrice de cet acarien.

Le but de ce travail est de tester des traitements avec l’acide formique et l’acide oxalique au cours de l’été afin de réduire suffisamment les populations d’acariens pour les permettre aux colonies de se rendre jusqu’à l’automne et d’appliquer le traitement au CheckMite.

MATÉRIEL ET MÉTHODE

Le protocole a nécessité 54 ruches infestées par V. destructor provenant du cheptel du CRSAD. Les ruches ont été distribuées aléatoirement dans trois ruchers (3x n=18) et chaque rucher était subdivisé en trois groupes expérimentaux (3x n=6). Il y avait un groupe de ruches témoins et un groupe de ruches traitées avec de l’acide oxalique par égouttement (40 g/litre dans un sirop de sucre 1 :1, 10 ml par entre cadre) dans chacun des ruchers. Il y avait trois dosages différents d’acide formique: une seule dose d’acide formique (deux MiteWipe avec 35ml d’acide formique 65%/MiteWipe), deux doses ou trois doses (chaque dose est appliquée à 24 heures d’intervalle).

Les variables mesurées sont : efficacité des traitements, évolution temporelle de la population de varroas, évolution de la force des colonies, mortalité des abeilles, évolution du poids des ruches et la présence de résidus d’acide oxalique et d’acide formique dans le miel

RÉSULTATS

Les traitements avec l’acide formique 2x et 3x ont donné une efficacité moyenne de 15% et de 36% respectivement. Ces moyennes sont significativement supérieures (< 0,05, test de comparaison multiple de Tukey-Kramer) aux ruches témoins et aux ruches traitées avec l’acide oxalique. Il n’y a pas d’effet notable sur l’évolution du poids des ruches ou sur la population de la colonie. Les résidus d’acide formique dans le miel augmentent après les traitements mais se dissipent graduellement. Après 5 semaines du début des traitements (incluant une semaine de conditionnement du miel en chambre chaude) les concentrations d’acide formique dans les échantillons de miel provenant des ruches sont équivalentes à celles mesurées dans les échantillons avant les traitements. Les analyses des échantillons provenant des barils de miel en vrac montrent une moyenne d’acide formique de 39,3 ppm +- 2,9 ppm. Les échantillons de miel en vrac des groupes témoins et des groupes avec l’acide oxalique ne montrent pas de résidus d’acide formique.

Les trois groupes traités avec l’acide oxalique par égouttement ont donné des moyennes d’efficacité équivalente aux trois groupes témoins n’ayant subit aucun traitement. Tous les groupes (incluant les témoins) ont des concentrations équivalentes de résidus de cet acide dans leur miel.

RECOMMANDATIONS

Un traitement avec deux MiteWipe (35 ml d’acide formique 65% / MiteWipe) trois fois avec intervalle de 24 heures est un moyen qui permet de réduire significativement les varroas en début d’août. Ce moyen de lutte est relativement simple et peu coûteux. Il est recommandé d’enlever le miel avant le début de l’application de l’acide formique afin d’éviter l’incorporation d’acide dans le miel, par contre l’acide incorporé dans le miel se dissipe presque entièrement après 5 semaines (incluant une semaine en chambre de conditionnement). Ce traitement serait utile pour un apiculteur dont les colonies présentent des taux d’infestations élevés au cours de l’été qui pourraient mener à une perte de productivité. Le traitement estival réduit suffisamment les populations de varroas afin d’attendre l’automne et ainsi appliquer les traitements d’efficacité supérieure (CheckMite, acide formique de longue durée ou Apistan s’il n’y a pas encore de résistance)

L’acide oxalique par égouttement n’est pas recommandé pour un traitement en début août.

III

TABLE DES MATIÈRES AVANT-PROPOS........................................................................................ II RÉSUMÉ......................................................................................................III TABLE DES MATIÈRES..........................................................................IV 1. Description et déroulement des travaux effectués ................................. 1 2. Problématique ........................................................................................... 4

2.1 Le parasite Varroa destructor 2.2 La lutte intégrée contre varroa 2.3 L’acide oxalique 2.4 L’acide formique

3. Matériel et méthodes................................................................................. 7 3.1 Les colonies 3.2 Protocole expérimental 3.3 Application de l’acide oxalique 3.4 Application de l’acide formique 3.5 Concentrations d’acide formique dans les ruches 3.6 Analyses de résidus dans le miel 3.7 Les variables mesurées

4. Résultats ................................................................................................... 13

4.1 Efficacité des traitements 4.2 Concentration d’acide formique dans les ruches 4.3 Évolution de la force des colonies 4.4 Évolution du poids des colonies 4.5 Les résidus d’acides dans le miel prélevé directement des ruches 4.6 Les résidus d’acides dans le miel en vrac

5. Conclusions .............................................................................................. 22 6. Réalisations issues du projet .................................................................. 24

IV

1. Description et déroulement des travaux effectués Année 2003 16 au 22 juil déménager ruches sur les différents sites pour le projet 28-juil am pm équilibrage de certaines ruches par Jpierre et Michael installer grillage sur plateaux ruches au fleuve 29-juil Insérer un papier blanc en attendant les cartons collants 30-juil Installer des tapis en dessous des ruches. Évaluer ruche à l'autoroute 31-juil fini évaluation autoroute Évaluation au fleuve 01-août fini évaluation fleuve et début au centre 16h00 fini évaluation centre plus échanger ruches défectueuse Installer tapis de couleur en avant des ruches Installer cartons collants sur toutes les 54 ruches 04-août Préparer matériel pour le test Mélange acide oxalique provient de P Dubreuil St-Haycinthe

Fait les traitements dans les ruches autoroute et centre J.Pierre, Mic, P Gio, Scott

Fait 1 er traitement à l'acide formique 2 Mite-Wipe autoroute et centre apicole

05-août Enlever miel au souffleur Changer cartons Autoroute et Centre apicole Fait les traitements au Fleuve Changer cartons au fleuve Fait traitement à l'acide formique 2 Mite-Wipe 7 ou 8 août ??? Refait 2 ieme traitement AF 2 Mite-Wipe au centre apicole et autoroute 06-août Pris concentration acide formique dans certaines ruches 07-août Pris échantillons miel dans le miel chambre chaude Jpierre Refait 3 ieme traitement AF 2 Mite-Wipe au centre apicole 11-août Changer cartons sur tous les sites 18-août ???? ????? Changer cartons sur tous les sites P Gio et Mic

Ramasser échantillons de miel dans les ruches avec miel autoroute et centre apicole Mic

19-août Repris concentration AF dans 3 ruches avec miel au centre apicole Peser les ruches autoroute et centre apicole 25-août am Ramasser échantillons de miel dans les ruches avec miel au fleuve Mic

1

02-sept am Peser les ruches Fleuve pm Changer cartons sur tous les sites JPet Mic Changer cartons sur tous les sites JPet Mic et Scott Peser les ruches sur tous les sites JP, Mic, Scott, Émile Enlever le miel jusqu'au garde reine sur tous les sites Ramasser un échantillon de miel dans les ruches du groupe avec miel

03-sept am Extraction du miel d'une hausse de la ruche (219 AF2) sans chauffage et mis 2 pots de 750g au réfrigérateur

pour analyse demandée par Jean Noreau.

Début évaluation des ruches (couvain et abeilles) et descendre les ruches à 1 chambre à couvain autoroute JP Mic Scott Émile

04-sept am

Continuer évaluation des ruches (couvain et abeilles) et descendre les ruches à 1 chambre à couvain fleuve et 11 ruches au centre apicole JP Mic Scott Émile Yannick et P Gio

08-sept

Début du traitement contrôle au CheckMite dans toutes les ruches Décompte varroas et saisie sur ordinateur Yannick

09-sept Fini évaluation au centre apicole 7 ruches JP Mic Émile 10-sept Changer cartons sur tous les sites JPet Mic 15-sept am pris échantillons de miel dans chambre chaude pm JP début extraction miel acide formique mais pas fini Changer cartons sur tous les sites Émile et Mic

16-sept am Autoroute et Fleuve Descendu le couvain dans le chambre du bas et installer chasse abeille ruches

22-sept am Changer cartons sur tous les sites JPet Mic 23-sept am Fini extraction miel groupe acide formique pm Extraction du miel des ruches groupe témoin. 24-sept am Extraction du miel des ruches groupe acide oxalique. pm Ramasser toutes les hausses à miel qui étaient sur les chasses abeilles

25-sept Yannick décompte des varroas sur cartons du 15 sept, beaucoup de varroas très long à faire

pm Installer nourrisseurs de surface (miller) et nourrit toutes les ruches JP et Mic

26-sept Yannick continuer et saisie du décompte des varroas sur cartons du 15 sept, beaucoup de varroas très long à faire

29-sept am Changer cartons sur tous les sites JPet Mic 30-sept Fini décompte varroa 15 sept et saisie sur ordi Yannick 01-oct Saisie évaluation sélection Yannick Décompte varroas du 22 sept Yannick 03-oct am Nourri 2 ieme fois 4 gallon sirop 2/1 JP et Mic

Yannick continuer des varroas sur cartons du 22 sept, beaucoup de varroas très long à faire

06-oct am Changer cartons sur tous les sites JPet Mic

Yannick saisie du décompte des varroas sur cartons du 22 sept, décompte varroa Arla, décompte varroa du 29 sept, début ceux apiguard. Saisie données 22 et 29 sept

2

08-oct pm Vérifier, corriger et préparer les séries d'échantillons de miel et les apporter au réfrigérateur à Nancy Émile

Préparer feuille avec les numéros et saisie sur ordi Émile 14-oct am Changer cartons pour des choroplasts huilés sur tous les sites JPet Mic 20-oct am Changer choroplast sur tous les sites JPet Mic pm Décompte des varroas de la semaine du 14 au 20 oct Mic NB compte complet des varroas sur toute la surface et non le 1/3 Soir Saisie décompte de la semaine du 14 au 20 oct Émile 27-oct am Changer choroplast sur tous les sites JPet Mic 28-oct pm Décompte des varroas de la semaine du 14 au 20 oct Mic am Enlever tout les nourrisseurs JP et Mic NB compte complet des varroas sur toute la surface et non le 1/3 29-oct pm Décompte des varroas de la semaine du 14 au 20 oct Émile NB compte complet des varroas sur toute la surface et non le 1/3

30-oct pm Enlever les bandes de coumaphos dans les ruches de tous les groupesÉmile

Évaluer toutes les ruches en Nb de cadres d'abeilles

NB Les proches du fleuve ont été déplacées par une montée d'eau du fleuvelors de la pluie de mardi ou mercredi

03-nov pm Nettoyer et préparer choroplast Émile Changer choroplast sur tous les sites Émile

Mis 2 bandes de Check Mites dans 3 ruches de chacun des groupestémoin pour vérifier s'il va tomber plus de varroas

04-nov am Peser les ruches avec balance portable Émile Déménager 6 ruches près du fleuve pour éviter inondation Émile 05-nov am Décompte des varroas de la semaine du 27 oct au 3 nov Émile pm Saisie des données Émile

3

2. Problématique 2.1 Le parasite Varroa destructor

Ce parasite est actuellement responsable de pertes importantes de colonies d’abeilles à travers

le Canada. Depuis quelques années, les bandes d’Apistan (produit homologué à base de fluvalinate-tau) n’ont plus l’efficacité nécessaire pour contrôler ce parasite. Plusieurs provinces, dont le Québec, ont obtenu de l’Agence de réglementation pour la lutte antiparasitaire (ARLA) de Santé Canada l’homologation d’urgence et temporaire des bandes de CheckMite (coumaphos) afin de sauver à court terme leur cheptel. Dans ce contexte, il primordial d’offrir aux apiculteurs canadiens des moyens de lutte qui pourront contenir l’action dévastatrice de l’acarien Varroa destructor.

Une bonne connaissance de la biologie de l’abeille et du parasite est essentielle afin de bien

saisir la complexité du problème. Sans entrer dans les détails de la symbiose parasitaire de entre ces deux animaux, il faut néanmoins souligner certains faits saillants de leur interaction. Premièrement, chez varroa seule la femelle peut être facilement observée sur les abeilles. Pour se reproduire, elle quitte l’abeille qu’elle parasite pour s’introduire dans une cellule de couvain quelques heures avant l’operculation. Là, elle se nourrit de l’hémolymphe de la nymphe et complète son cycle vital. Pendant cette période, les acaricides ne parviennent pas à agir efficacement sur le parasite. Deuxièmement, la relation entre la reproduction des varroas et le développement larvaire des abeilles fait en sorte que la reproduction des varroas s’accélère au fur et à mesure que saison apicole progresse. On observe donc une croissance exponentielle des populations de varroas dans les ruches à partir de la mi-juillet jusqu’en octobre. Cette prolifération du parasite en fin de saison doit être évitée sinon les colonies s’affaiblissent et meurent suite à des infections secondaires (infections bactériennes ou virales) durant l’automne ou pendant l’hivernage. 2.2 La lutte intégrée contre varroa

Cette approche repose sur l’utilisation d’une stratégie de lutte. Elle nécessite une intervention

réfléchie d’un apiculteur averti. Les mesures de la lutte intégrée comportent à la fois des interventions préventives et des interventions curatives. Elle nécessite de la part de l’intervenant, une bonne connaissance de la maladie, une surveillance de l’évolution du taux de parasitisme au cours de la saison apicole et l’utilisation de moyens de contrôles variés. L’intervenant utilise donc une stratégie complexe afin de réduire les populations de varroas dans ses ruches.

Dans le cas de la varroase, plusieurs travaux (Centre suisse de recherche en apiculture) ont

démontré que la lutte intégrée est un moyen efficace pour contrer la progression du parasite. Il existe plusieurs produits disponibles mais malheureusement seulement quelques-uns ont fait l’objet de recherches scientifiques qui ont démontré leur efficacité. Au cours de la dernière réunion sur la lutte intégrée contre varroa (8th Européen Meeting on integrated Varroa Control, Kirchain Germany-22 et 23 mai 2003) tous les produits actuellement utilisés ont fait l’objet de

4

présentations scientifiques et de comptes rendus. À la sortie de cette réunion trois produits ont été clairement identifiés comme étant efficaces dans le cadre d’une lutte intégrée contre Varroa destructor : l’acide oxalique, l’acide formique et le thymol. Ces produits doivent être utilisés à des moments précis de la saison apicole et chaque produit offre des avantages et des désavantages. 2.3 L’acide oxalique

Cet acide est utilisé dans une solution sucrée par égouttement entre les cadres d’abeilles, par

sublimation dans la ruche ou par pulvérisation d’une solution aqueuse directement sur les abeilles. Les travaux scientifiques ont démontré une efficacité au-dessus de 95% pour ces trois méthodes en absence de couvain operculé dans la ruche. En présence de couvain l’efficacité est inférieure à 50%.

Dans les colonies d’abeilles, l’absence de couvain survient en novembre lorsque la ponte de la

reine est interrompue à la suite du nourrissage d’automne. L’acide oxalique est très efficace à la condition que les ruches puissent se rendre jusqu’à ce moment sans dépérir…Souvent l’apiculteur doit faire un autre type de traitement en fin d’été (acide formique ou thymol) afin de permettre aux ruches infestées de se rendre au traitement d’acide oxalique.

Notre recherche a pour but de vérifier l’efficacité d’un traitement avec de l’acide oxalique en

solution sucrée par égouttement au cours de l’été entre deux périodes de miellée. Le projet vise également à vérifier si un tel traitement occasionnerait la présence de résidus dans les produits de la ruche. 2.4 L’acide formique

Cet acide s’évapore facilement. On trouve sur le marché différents diffuseurs pour les

traitements de longue durée. L’acide est soit imbibée dans un matériel absorbant et s’évapore par une surface d’évaporation réglable ou l’acide est contenu dans un réservoir et s’évapore par une mèche.

Le succès du traitement à l’acide formique est très variable. Il dépend en premier lieu de la

température extérieure. Certaines études ont montré que l’on peut obtenir un succès de traitement de plus de 90% en appliquant deux traitements de longue durée.

Différents dosages sont appliqués en fonction du taux d’infestation. Lorsque les taux

d’infestation sont élevés (tombée naturelle des varroas supérieure à 10 par jour) il faut faire immédiatement deux traitements de longue durée. Si les taux d’infestation sont plus bas un seul traitement suffit afin de maintenir les taux de varroas suffisamment bas jusqu’au traitement d’acide oxalique prévu en novembre.

L’acide formique est un produit qui possède une homologation temporaire de l’ARLA. Cette

5

homologation est présentement en réévaluation. La directive indique que ce produit doit être utilisé en dehors des périodes de miellées. Notre recherche a pour but de vérifier l’efficacité d’un traitement de courte durée avec de l’acide formique au cours de l’été entre deux périodes de miellée. Le projet vise également à vérifier si un tel traitement occasionnerait la présence de résidus dans les produits de la ruche.

6

3. Matériel et méthodes 3.1 Les colonies

Nous avons utilisé 54 ruches provenant du cheptel du CRSAD. Les taux d’infestation de ces

ruches ont été évalués avant les traitements expérimentaux par la méthode de la tombée naturelle sur des cartons collants. Les ruches ont été distribuées aléatoirement dans trois ruchers situés sur les terrains du CRSAD (rucher Fleuve, rucher Autoroute, rucher Centre). 3.2 Protocole expérimental

Le protocole expérimental est présenté au tableau 1. Chaque rucher est divisé en trois groupes

de six ruches : un groupe témoin et deux groupes expérimentaux. Un traitement avec l’acide oxalique par égouttement (40g d’acide oxalique/litre d’une solution sucrée 1 :1, 10 ml par entre cadre) est répété dans les trois ruchers tandis qu’il y a trois traitements différents avec l’acide formique. Nous avons choisi trois dosages de l’acide formique à la suite d’essais préliminaires qui montraient une efficacité faible avec un seul traitement. Les ruches reçoivent soit une seule dose d’acide formique (deux MiteWipes, 35ml d’acide formique 65%/MiteWipe), deux doses d’acide formique ou trois doses (à 24 heures d’intervalles).

Les traitements ont débuté le 4 août pour toutes les colonies et se sont terminés le 7 août pour

le groupe avec trois doses d’acide formique. Au début du mois de septembre, les colonies ont été ramenées à une hausse et nourries avec un sirop de sucre. Le traitement contrôle au coumaphos (deux bandes de Checkmite) a débuté le 8 septembre et s’est terminé le 27 octobre. Tableau 1. Description des différents groupes expérimentaux du protocole expérimental

GROUPE 1 Traitement témoin

GROUPE 2 Traitement acide oxalique

GROUPE 3 Traitement acide formique

Sans traitement

6 ruches/ rucher (3 ruchers)

Solution AO 30g/L dans une

solution sucrée 1 :1

5 ml par entre cadre avec abeilles (maximum 50 ml)


Solution AF 65%

2x 35 ml dans un tampon

absorbant (‘’Mite wipe’’) placé au-dessus de la boite de couvain.

1x ; 2x ; 3x


A) 3 ruches avec miel

B) 3 ruches sans miel





7

3.3 Application de l’acide oxalique Une concentration d’acide oxalique, 40 g/litre de sirop de sucre (1 :1) est appliquée par

égouttement (adaptation de la méthode suisse) entre chaque cadre et directement sur les abeilles (photos 1 et 2). Un volume prédéterminé de 10 ml de la solution d’acide oxalique est versé à l’aide d’une pompe Dispensette (Brinkmann) entre chaque cadre. Une ruche reçoit donc un maximum de 100 ml de la solution acide.

Photo 1. Application de la solution sucrée d’acide oxalique. La pompe Dispensette (Brinkmann) permet de donner avec précision le dosage requis entre les cadres d’une ruche. Des tissus en géotextile sont placés en avant de chaque ruche afin de pouvoir compter les abeilles mortes lors des traitements.

Photo 2. Application de la solution sucrée d’acide oxalique dans une ruche. 10 ml de la solution sont coulés entre les cadres avec des abeilles (maximum 100ml/ ruche).

8

3.4 Application de l’acide formique L’acide formique est appliqué en incorporant sur le dessus des ruches deux tampons MiteWipe

imbibés d’acide (photos 3 et 4). Chaque tampon contient 35 ml d’une solution d’acide formique à 65%. Un groupe de 6 ruches dans chaque rucher reçoit un des traitements suivants :

Fleuve : deux MiteWipes (total 70 ml d’acide formique) Autoroute : 2x 2 MiteWipes à 24 heures d’intervalle (140 ml d’acide formique) Centre : 3x 2 MiteWipes à 24 heures d’intervalle (210 ml d’acide formique)

Photo 3. Les tampons imbibés MiteWipe. Le volume correspondant d’acide formique 65% est versé les tampons placés dans un bac.

Photo 4. Deux tampons MiteWipes imbibés sont placés directement sur les cadres d’une ruche. Le dosage correspondant pour un traitement journalier est de 70ml d’acide formique par ruche.

9

3.5 Concentrations d’acide formique dans les ruches Afin de décrire l’évaporation de l’acide formique dans les ruches et d’être en mesure d’évaluer

les concentrations intra ruches toxiques pour les varroas, nous avons fait des mesures de concentrations d’acide formique dans les ruches recevant les différents dosages de cet acide. Les tubes Gastec pour l’acide acétique (photo 5) permettent d’évaluer des concentrations intra ruches d’acide formique (facteur de correction x 2,6) variant entre 0 ppm et 500 ppm. L’échantillonnage de l’air dans les ruches (photo 6) a été effectué à partir du début des traitements aux intervalles suivants : 2 heures, 6 heures, 24 heures, 2 jours, 3 jours, 4 jours, 5 jours, 6 jours et 7 jours. Ces mesures nous ont permis d’établir une courbe de concentration en fonction de l’efficacité du traitement (n=3 ruches par dosage d’acide formique).

Photo 5. Tubes Gastec et pompe utilisés pour les mesures d’acide formique dans les ruches lors des traitements.

Photo 6. Introduction d’un tube Gastec dans une ruche afin de prendre une lecture de la concentration d’acide formique intra ruche.

3.6 Analyses de résidus dans le miel

Des échantillons de miel ont été prélevés dans les ruches avant les traitements, deux semaines

après les traitements, 4 semaines après les traitements juste avant le traitement contrôle au coumaphos (Checkmite) et après une semaine de conditionnement du miel en chambre chaude. Environ 5ml de miel a été prélevé directement d’un cadre périphérique d’une hausse de chaque colonie. Chaque groupe expérimental est subdivisé en deux blocs de trois ruches. Pour un même groupe il y a un bloc de ruches qui conserve le miel pendant la période des traitements tandis que le miel des ruches de l’autre bloc est enlevé avant l’application des acides.

10

Nous avons également pris des échantillons dans le miel mis en vrac à la suite de l’extraction. Les échantillons ont été prélevés directement dans les barils de miel (45 gallons). Il y avait trois barils :un baril contenant le miel des groupes témoins, un baril contenant le miel des groupes traités avec l’acide oxalique et un baril contenant le miel des trois groupes traités avec l’acide formique. Trois échantillons de miel ont été prélevés dans chaque baril et deux réplications de chaque échantillon ont été faites en laboratoire.

Les échantillons de miel furent acheminés au laboratoire du CRSAD. Les analyses des résidus d’acide oxalique et formique dans miel ont été faites par une méthode HPLC (high precision liquid chromatography) sous la supervision de Jean Noreau chimiste au Ministère des pêcheries et de l’alimentation du Québec. 3.7 Les variables mesurées Évolution de la population de Varroa destructor : le décompte des varroas fut réalisé en plaçant un carton collant sous les rayons d’une ruche. Une tombée naturelle journalière a été évaluée pendant 4 jours avant le début des traitements. Par la suite, un décompte continuel des Varroa fut réalisé jusqu’au 30 octobre 2003. Les cartons furent remplacés à toutes les semaines et les varroas comptées en utilisant une grille d’échantillonnage aléatoire (photos 7 et 8).

Photo 7. Carton collant après son retrait d’une ruche en traitement. Les varroas sont comptées à l’aide d’une grille d’échantillonnage.

Photo 8. Grille d’échantillonnage aléatoire basée sur un modèle connu (Sammataro 2000, Calderone 1999). La grille (plaque de vitre) est placée directement sur un carton collant. Les varroas apparaissant dans les espaces transparents sont comptées.

11

Efficacité des traitements : L’efficacité des traitements est exprimée en fonction du nombre de varroas tuées lors des traitements expérimentaux par rapport au nombre de varroas tuées pendant un traitement contrôle de 42 jours avec deux bandes de CheckMite (coumaphos).

EFFICACITÉ = varroas tuées traitement expérimental X 100 Varroas tuées traitement expérimental + varroas tuées traitement contrôle

Mortalité des abeilles en traitement : Une pièce de tissu géotextile d’un mètre carré fut placée à l’avant de la ruche. Les abeilles mortes trouvées sur ce tissu furent comptées pendant les traitements. Évolution de la force des colonies: Des évaluations des populations d’abeilles et de couvain de chaque ruche furent réalisées avant les traitements et un mois après les traitements. Évolution du poids des ruches : Les ruches furent pesées avant le début des traitements et trois fois après l’application des produits acaricides (2 semaines, 4 semaines et 8 semaines post traitement). Résidus d’acides dans le miel : Les échantillons de 5 ml miel ont été prélevés directement dans les ruches sur les cadres périphériques des hausses. Ces échantillons ont été analysés pour la présence de résidus d’acide oxalique et d’acide formique. Le protocole d’échantillonnage de miel est représenté dans le tableau 2. Tableau 2 Protocole d’échantillonnage de miel. Pré traitement Post traitement Groupes expérimentaux

En champ

6 août

En champ

18 août

Avant

conditionnement 2 septembre

Après

conditionnement9 septembre

Témoin N=3 N=3 N=3 N=3

Acide oxalique N=3 N=3 N=3 N=3

Acide formique 1x N=3 N=3 N=3 N=3



12

4. Résultats 4.1 Efficacité des traitements Évolution de la mortalité des varroas

Figure 1. Évolution de la tombée journalière des varroas au cours de la période expérimentale. La figure indique le nombre de varroas qui tombent par jour avant les traitements (pré Rx) pendant les traitements (Rx), après les traitements (post Rx) et pendant le traitement contrôle au CheckMite.

CheckMitePré Rx Rx Post Rx

Acide form

iqueA

cide oxaliqueTém

oin

Groupes expérimentauxau fleuve

(1 x 2 x 35 ml)

Groupesexpérimentauxà l'autoroute

(2 x 2 x 35 ml)

Groupes expérimentauxau Centre(3 x 2 x 35 ml)

Nb

de v

arro

as/jo

ur s

ur c

arto

ns c

olla

nts

0

200

400

600

0

200

400

600

0

200

400

600

1-ao

ût

8-ao

ût

15-a

oût

22-a

oût

29-a

oût

5-se

pt

12-s

ept

19-s

ept

26-s

ept

3-oc

t

10-o

ct

17-o

ct

24-o

ct

Dates

CheckMitePré Rx Rx Post Rx

Acide form

iqueA

cide oxaliqueTém

oin


(1 x 2 x 35 ml)


(2 x 2 x 35 ml)


Nb

de v

arro

as/jo

ur s

ur c

arto

ns c

olla

nts

0

200

400

600

0

200

400

600

0

200

400

600

1-ao

ût

8-ao

ût

15-a

oût

22-a

oût

29-a

oût

5-se

pt

12-s

ept

19-s

ept

26-s

ept

3-oc

t

10-o

ct

17-o

ct

24-o

ct

Dates

Acide form

iqueA

cide oxaliqueTém

oinA

cide formique

Acide oxalique

Témoin


(1 x 2 x 35 ml)


(2 x 2 x 35 ml)


Nb

de v

arro

as/jo

ur s

ur c

arto

ns c

olla

nts

0

200

400

600

0

200

400

600

0

200

400

600

0

200

400

600

0

200

400

600

1-ao

ût

8-ao

ût

15-a

oût

22-a

oût

29-a

oût

5-se

pt

12-s

ept

19-s

ept

26-s

ept

3-oc

t

10-o

ct

17-o

ct

24-o

ct

Dates

0

200

400

600

1-ao

ût

8-ao

ût

15-a

oût

22-a

oût

29-a

oût

5-se

pt

12-s

ept

19-s

ept

26-s

ept

3-oc

t

10-o

ct

17-o

ct

24-o

ct

Dates

Pendant la semaine suivant le début des traitements (4 août) il y a eu une augmentation de la tombée des varroas sur les cartons collants dans les ruches traitées avec l’acide oxalique et les ruches traitées avec l’acide formique 2x et 3x (figure 1). La plus forte tombée fut mesurée dans les ruches traitées avec l’acide formique 3x (moyenne de 348,5 +- 248,7 varroas par jour du 4 au 7 août). L’effet des traitements s’est estompé graduellement du 11 au 18 août. La tombée naturelle est demeurée relativement stable jusqu’au mois de septembre.

13

Le traitement contrôle au CheckMite a débuté le 8 septembre. La tombée des varroas lors de ce

traitement contrôle révèle une forte densité de varroas dans toutes les ruches expérimentales à cette date. Le nombre moyen de varroas mortes tout au long du traitement contrôle de 42 jours au CheckMite varie entre 2000 et 8000 varroas au total pour l’ensemble des groupes expérimentaux. Comparaison de l’efficacité des traitements expérimentaux

Figure 2. Efficacité des différents traitements expérimentaux et des groupes témoins dans les trois ruchers expérimentaux (Fleuve : une dose d’acide formique; Autoroute : deux doses d’acide formique; Centre : trois doses d’acide formique). Les lettres différentes au-dessus des colonnes indiquent une différence significative intra rucher (<0,05, test de comparaison multiple deTukey-Kramer)

0

10

20

30

40

50

60

Fleuve Autoroute Centre

Eff

icac

ité (%

)

acide formique acide oxalique Témoin

a a

a

a

a

b b

bb

L’efficacité moyenne des traitements est inférieure à 20% pour les trois groupes traités avec l’acide oxalique. Les groupes traités à l’acide oxalique ont une efficacité qui est supérieure, mais non significative (< 0,05, test de comparaison multiple deTukey-Kramer) aux groupes témoins qui n’on subit aucun traitement. Les traitements avec l’acide formique 2x et 3x ont donné une efficacité moyenne supérieure aux témoins et aux groupes d’acide oxalique (< 0,05, test de comparaison multiple deTukey-Kramer). La plus forte moyenne d’efficacité fut mesurée dans le groupe traité 3x avec l’acide formique. Cette application de l’acide formique donne une efficacité moyenne de 36,2% +- 17,8 (minimum 11,5% et maximum 60,3%) et correspond à une moyenne de 3548 varroas (+- 453) tuées dans les colonies lors des traitements expérimentaux entre le 4 août et 11 août.

14

Tombée naturelle avant et après les traitements

A B

0

50

100

150

200

01-août-03 01-sept-03

Varr

oa /

jour acide formique 2

acide oxaliquetémoin

Autoroute

0

50

100

150

200

01-août-03 01-sept-03

Var

roas

/ jo

ur

acide formique 1acide oxaliquetémoin

Fleuve

C D Figure 3. Nombre de varroas (tombée naturelle par jour) sur cartons collants avant le traitement (moyenne sur 4 jours de tombée) et un mois après le traitement (moyenne sur 7 jours de tombée) dans les différents ruchers expérimentaux (figure 3A : Fleuve ; figure 3B : Autoroute ; figure 3C : Centre). La figure 3D représente le ratio de la tombée naturelle après/avant dans les différents traitements et dans les différents ruchers.

0

50

100

150

200

1-août-03 1-sept-03

Varr

oas

/ jou

r

acide formique 3acide oxaliquetémoin

Centre

0

2

4

6

8

10

12

14

16

Fleuve Autoroute Centre

Rat

io v

arro

as p

ar jo

ur a

près

/ av

ant

acide formiqueacide oxaliquetémoin

Les figures 3A, B et C montrent la tombée naturelle des varroas sur les cartons collants avant le début des traitements et un mois après le début des traitements juste avant l’application du traitement contrôle au CheckMite. Tous les groupes expérimentaux ont connu une augmentation de leur tombée naturelle de varroas entre ces deux dates. Les plus fortes croissances de la tombée naturelle (figure 3D) furent mesurées dans les groupes témoins du Fleuve et du Centre. Par contre, les plus faibles augmentations ont été mesurées dans les colonies traitées avec l’acide formique 2x et 3x et le groupe témoin de l’Autoroute.

15

4.2 Concentration d’acide formique dans les ruches

A

B Figure 4. Évolution de la concentration d’acide formique à l’intérieur des ruches. La figure 4A représente les ruches (n=3) avec une dose unique d’acide formique (deux MitesWipes; 75 ml d’acide formique) et la figure 4B représente les ruches avec trois doses d’acide formique (trois fois deux MitesWipes à 24 heures d’intervalles; 210 ml d’acide formique au total).

0

50

100

150

200

250

0 24 48 72 96 120 144 168

Heures

Con

cent

ratio

n (p

pm)

0

50

100

150

200

250

0 24 48 72 96 120 144 168

Heures

Con

cent

ratio

n (p

pm)

La prise d’échantillon d’air dans trois ruches ayant reçu deux tampons MiteWipe (35 ml d’acide formique 65% par MiteWipe) une seule fois (figure 4A) montre que la concentration d’acide atteint plus de 100 ppm trois heures après l’application, par contre la concentration baisse rapidement sous 50 ppm au bout de 6 heures. La concentration s’atténue graduellement pendant plusieurs jours et devient nulle au 6e jour. L’application répétée de deux tampons (figure 4B) permet de maintenir dans la ruche des concentrations d’acide formique au-dessus de 50 ppm pendant plus de deux jours. Après la troisième journée les concentrations baissent en dessous de 50 ppm et s’atténuent graduellement. Les concentrations d’acide sont presque nulles au 7e jour.

16

4.3 Évolution de la force des colonies

Figure 5. Évolution de la force des colonies avant les traitements (30 juillet) et un peu plus d’un mois après les traitements (3 septembre) pour les différents traitements dans les trois ruchers expérimentaux.

0

20000

40000

Nom

bre

0

20000

40000

0

20000

40000

Dates

0

20000

40000

0

20000

40000

0

20000

40000

0

20000

40000

Dates

Abeilles Couvain total

0

20000

40000

30 - juil 3-sept0

20000

40000

30 - juil 3-sept0

20000

40000

30-juil 3 - sept 0

20000

40000

30-juil 3 - sept

Acide formique

Acide oxalique

Témoin

Aci

de fo

rmiq

ue

Aci

de o

xaliq

ue

Tém

oin

Fleuve

Autoroute

Centre

En moyenne, le nombre d’abeilles et la quantité totale de couvain (operculé ou non) n’ont pas augmenté ou ont peu augmenté entre la fin juillet et le début septembre dans les différents groupes du protocole expérimental (figure 5). Au 3 septembre, la quantité de couvain est similaire dans toutes les ruches d’un même rucher et la quantité d’abeilles est supérieure dans les colonies du rucher Centre traitées avec l’acide oxalique.

17

4.4 Évolution du poids des colonies

Figure 6. Évolution du poids des ruches avant le début des traitements (4 août), deux semaines après les traitements (18 août), 4 semaines après les traitements (2 septembre) et avant l’hivernage en caveau (4 novembre).

0

20

40

60

80

100

120

4-aout 18-août 02-sept 04-nov


Fleuveruches avec miel

0

20

40

60

80

100

120


acide formiqueacide oxaliqueTémoin

Fleuveruches sans miel

0

20

40

60

80

100

120



Autorouteruches avec miel

0

20

40

60

80

100

120



Autorouteruches sans miel

0 20 40 60 80

100 120



Centreruches avec miel

0

20

40

60

80

100

120



Centreruches sans miel

L’évolution du poids des ruches dans les trois ruchers est représentée à la figure 6. Le poids moyen des colonies est équivalent entre les groupes d’un même rucher peu importe si le miel a été enlevé ou pas avant les traitements (ruches avec miel et ruches sans miel). Les moyennes de poids entre les ruches des différents ruchers sont similaires.

18

4.5 Les résidus d’acides dans le miel prélevé directement des ruches Résidus d’acide formique

A B Figure 7. Résidus d’acide formique dans le miel. A) Ruches avec hausses à miel; avant le début des traitements (6 août, en champ), deux semaines après les traitements (18 août, en champ), 4 semaines après les traitements (2 septembre, juste avant le conditionnement en chambre chaude) et 5 semaines après les traitements (9 septembre, après le conditionnement en chambre chaude). B) Ruches sans hausses à miel; avant le début des traitements (6 août, en champ) et 5 semaines après les traitements (9 septembre, après le conditionnement en chambre chaude).

Ruches sans miel

0

50

100

150

200

250

300

350

400

450

500

6 aout 9 sept

acid

e fo

rmiq

ue d

ans

le m

iel (

ppm

)

acide formique 1x (n=3) formique 2x (n=3) acide formique 3x (n=3)

Ruches avec miel

0 50

100 150 200 250 300 350 400 450 500

6 aout 18 aout 2 sept 9 sept

acid

e fo

rmiq

ue d

ans

le m

iel (

ppm

)

pré traitement (n=16) acide formique 1x (n=3) acide formique 2x (n=3) acide formique 3x (n=3)

Les analyses de résidus d’acide formique dans les échantillons de miel des ruches ayant gardé

leurs hausses à miel montrent la présence de cet acide dans le miel naturel (figure 7A, échantillonnage du 6 août, 18.2 ppm +- 32.5ppm dans 16 ruches échantillonnées). Dans certains groupes, il y a beaucoup de variance. Par exemple, dans le groupe de ruches traitées avec l’acide formique 3x, les valeurs mesurées pour les trois ruches échantillonnées sont de : 53 ppm, 71 ppm et 488 ppm. En général, les résultats montrent qu’il y a augmentation de l’acide formique à la suite des 3 dosages d’acide formique appliqués. Pour le groupe ayant reçu le traitement d’acide formique 3x, on a mesuré 204,3 ppm (+- 246,3 ppm) après deux semaines, 83,9 ppm (+- 54,2 ppm) après 4 semaines et 71,5 ppm (+- 107,4 ppm) après 5 semaines et incluant 1 semaine de conditionnement en chambre. Cette diminution s’observe dans les deux autres traitements avec l’acide formique (1x, 2x).

Dans les ruches dont le miel a été enlevé avant le début des traitements (figure 7B) les

moyennes de résidus dans le miel un mois après les traitements sont inférieures ou équivalentes à celles mesurées dans le miel avant le début des traitements. Dans le groupe de colonies ayant reçu le traitement d’acide formique 3x aucune trace d’acide n’a pu être mesurée dans le miel des trois ruches échantillonnées.

19

Résidus d’acide oxalique

A B

Ruches avec miel

0 5

10 15 20 25 30

6 août 18 août 2 sept 9 septacid

e ox

aliq

ue d

ans

le m

iel (

ppm

)

pré traitement (n=6) acide oxalique (n=3) Témoin (n=6)

Ruches sans miel

0

5

10

15

20

25

30

6 août 9 sept acid

e ox

aliq

ue d

ans

le m

iel (

ppm

)

acide oxalique (n=3) témoin (n=3)

Figure 8. Résidus d’acide oxalique dans le miel. A) Ruches avec hausses à miel; avant le début des traitements (6 août, en champ), deux semaines après les traitements (18 août, en champ), 4 semaines après les traitements (2 septembre, juste avant le conditionnement en chambre chaude) et 5 semaines après les traitements (9 septembre, après le conditionnement en chambre chaude). B) Ruches sans hausses à miel; avant le début des traitements (6 août, en champ) et 5 semaines après les traitements (9 septembre, après le conditionnement en chambre chaude).

Les analyses de résidus d’acide oxalique dans les ruches ayant gardé leur miel montrent la présence de cet acide dans le miel avant le début des traitements (figure 8A, 8,4 ppm +- 6,5 ppm, n=6). Les concentrations moyennes de résidus dans les colonies traitées et témoins augmentent légèrement après les traitements et sont au-dessus des valeurs initiales dans les échantillonnages du 18 août et du 2 septembre. Les moyennes de résidus au 9 septembre sont équivalentes aux valeurs mesurées avant le début des traitements.

Dans les ruches dont on a enlevé le miel (figure 8B) il y a une différence entre les ruches

témoins et traitées avant le début des traitements. Cette différence se maintient un mois plus tard, par contre, les valeurs moyennes ont diminué dans les deux groupes.

20

4.6 Les résidus d’acides dans le miel en vrac

0,00 0,00

39,16

19,05 18,9918,57

0

10

20

30

40

50

Groupes traités avecl'acide formique

Groupe traités avecl'acide oxalique

Groupes témoins

Rés

idus

d'a

cide

s da

ns le

mie

l (pp

m)

acide formiqueacide oxalique

Résidus

Figure 9. Résultats des analyses de résidus d’acide formique et d’acide oxalique dans le miel en vrac après l’extraction. Le miel extrait des différentes colonies traitées avec l’acide oxalique a été regroupé , de même pour les trois groupes traités avec l’acide oxalique et les trois groupes expérimentaux. Trois échantillons ont été prélevés dans chaque baril (trois barils) de miel en vrac et chaque échantillon de miel a été analysé en deux réplications pour la présence d’acide oxalique et d’acide formique (n=6 pour chaque colonne).

La figure 9 montre qu’il y a présence d’acide formique dans le miel en vrac à la suite des traitements. On a mesuré une moyenne de 39,2 ppm (+- 2,9 ppm) pour les échantillons prélevés directement du baril de miel en vrac en septembre 2003 (n=1 avec deux réplications) et en janvier 2004 (n=2 avec deux réplications). Il n’y a pas de traces d’acide formique dans le miel en vrac dans les deux autres barils de miel en vrac provenant des groupes traités avec l’acide oxalique et des groupes témoins.

Les concentrations d’acide oxalique sont équivalentes dans les trois groupes.

21

5. Conclusions Efficacité des traitements

Un traitement avec deux dessous (35 ml d’acide formique 65% / MiteWipe) répété deux fois ou trois fois à intervalle de 24 heures sont des moyens permettant de réduire significativement les varroas en début d’août. Le traitement de 3x donne la meilleure efficacité avec 36,7%.

L’utilisation de la tombée naturelle comme moyen d’évaluer l’efficacité d’un traitement n’est

pas une méthode qui donne des valeurs justes. Il faut utiliser un traitement contrôle avec un pesticide de famille chimique différente aux produits testés. Le pesticide de contrôles doit avoir une efficacité reconnue pour le traitement contre les varroas. Effet sur les abeilles

Les différents traitements expérimentaux n’ont pas eu d’effet sur les abeilles ni sur le couvain. Résidus dans le miel

Les propriétés chimiques de l’acide formique (c’est un acide volatile et hydrophile) occasionnent beaucoup de difficultés dans l’analyse des résidus provenant des échantillons de miel pris directement dans les ruches. Chaque colonie a un niveau d’activité spécifique et une circulation d’air intra ruche variable. Ces distinctions entre les colonies ont un effet sur le taux d’évaporation de l’acide oxalique et son niveau d’incorporation dans le miel. De plus, les abeilles manipulent régulièrement le miel qui est mis dans les alvéoles et du miel est continuellement introduit dans les ruches. Ces facteurs font en sorte que la prise d’un échantillon unique de miel dans une ruche est problématique dans l’analyse des résidus. Deux échantillons de miel dans une même ruche peuvent donc donner des niveaux de résidus très différents car un échantillon peut contenir du miel plus ancien (donc présent lors des traitements) et l’autre échantillon peut contenir du miel nouvellement introduit par les abeilles. Néanmoins, l’interprétation globale des analyses de résidus dans notre recherche démontre que l’acide formique s’incorpore dans le miel pendant les traitements et que l’acide en ressort graduellement au cours des semaines suivantes. Dans les analyses futures, il serait préférable de prélever des échantillons provenant d’un regroupement du miel issu de l’extraction de plusieurs cadres de miel de ruches d’un même groupe expérimental.

L’échantillonnage du miel en vrac donne des résultats moins variables que les échantillonnages

de miel pris dans les ruches. Ces échantillons montrent la présence de résidus d’acide formique uniquement dans le miel provenant des ruches traitées avec l’acide formique. Il n’y a pas de traces de cet acide dans le miel en vrac provenant des autres groupes. On doit conclure que le traitement estival avec l’acide formique a incorporé de l’acide dans le miel destiné pour la vente. On doit tout de même rappeler que des concentrations d’acide formique ont été mesurées dans certains échantillons de miel prélevés dans les ruches avant le début des traitements et dans les ruches des groupes témoins. Donc cet acide est naturellement présent dans le miel.

22

En Europe, il n’est pas rare d’obtenir des valeurs de résidus dans le miel naturel au-dessus de 100 ppm. Actuellement, il n’y a pas de valeur établissant des concentrations d’acide formique ou d’acide oxalique minimales tolérables dans le miel de consommation en Europe ou au Canada. Recommandations

Un traitement avec deux MitesWipes (35 ml d’acide formique 65% / MiteWipe) trois fois avec

intervalle de 24 heures est un moyen qui permet de réduire significativement les varroas en début d’août. Il est recommandé d’enlever le miel avant le début de l’application de l’acide formique afin d’éviter l’incorporation d’acide dans le miel, par contre l’acide incorporé dans le miel se dissipe graduellement après 4 semaines sans toutefois disparaître complètement à la suite d’une semaine en chambre de conditionnement.

La faible efficacité d’un traitement avec l’acide oxalique par égouttement nous porte à conclure

que ce moyen de contrôle n’est pas recommandable pour un traitement en début août. La pleine efficacité de l’acide oxalique par égouttement est atteinte lorsque la reine ralentie sa ponte et que le couvain d’abeille est rare ou absent (novembre).

23

6. Réalisations issues du Projet L’homologation d’une méthode de contrôle contre Varroa destructor

Le projet a permis de poursuivre le travail déjà entrepris dans le cadre du projet Concertaction

‘’Homologation d’une méthode de contrôle contre le parasite Varroa destructor’’. Tous nos résultats seront utiles afin de démontrer l’efficacité de l’acide oxalique et formique auprès des responsables de l’Agence de réglementation pour la lutte antiparasitaire de Santé Canada (ARLA). Plusieurs rencontres ont eu lieu entre le responsable scientifique de ce projet et les représentants du MAPAQ (Michel Letendre et Marie Garon, Spécialistes en gestion intégrée des ennemis des cultures et répondants en matière de pesticides Direction de l'innovation scientifique et technologique). Ces rencontres avaient pour objectif principal de développer une stratégie de lutte intégrée pour le contrôle de la varroase. Les intervenants du Québec (Monsieur Michel Letendre en avait la direction) ont réussi à regrouper la majorité des représentants apicoles des différentes provinces afin que tous puissent s’unir et faire une demande pan canadienne auprès de l’ARLA pour l’homologation de l’acide oxalique et de l’acide formique. Depuis septembre 2003, il y a eu une rencontre à Ottawa avec les représentants apicoles de la majorité des provinces canadiennes et quelques conférences téléphoniques qui ont permis d’élaborer un plan d’action. En janvier 2004 que le Conseil Canadien du Miel (CCM) donnait son appui à la démarche du groupe et accepta de devenir le coordonnateur du processus d’homologation pour l’acide oxalique et l’acide formique. Deux compagnies canadiennes ont accepté d’être les demandeurs d’homologation pour l’acide oxalique; Pronatex (Québec) et Medivet (Alberta) et David VanderDussen de la compagnie NOD Apiary Products Ltd. poursuit ses démarches pour l’homologation de l’acide formique sous la forme du MiteAway2. Le CCM a mandaté Medhat Nasr (Chef de l’apiculture en Alberta) afin qu’il négocie avec le groupe de recherche sur le varroa en Europe pour qu’il obtienne toute la documentation scientifique pertinente ayant mené à l’homologation européenne de l’acide oxalique en décembre 2003.

Nous avons confiance en la possibilité que le processus canadien d’homologation de l’acide

oxalique et formique puisse se terminer au cours de l’année 2004 et que les apiculteurs puissent l’utiliser ces nouveaux produits à l’automne 2004.

24

Participation à des congrès, réunion et symposium de recherche Congrès de la fédération des apiculteurs du Québec, Présentation orale Pierre Giovenazzo et Pascal Dubreuil

2004 Évaluation des acides oxalique et formique en traitement du varroa destructor pendant la période estivale

Union des syndicats apicoles du Québec, Présentation orale Émile Houle

2004 Évaluation des acides oxalique et formique en traitement du varroa destructor pendant la période estivale

Research symposium at the CHC/CAPA/MBA convention in Winnipeg, 28-31 January 2004, Présentation orale Pierre Giovenazzo

2004 Mid summer treatments using formic acid and oxalic acid

25

projet : Évaluation de l’acide oxalique et de l’acide ... final 55... · évolution de la...

Documents