memoire de fin d’etudes pour l’obtention du diplôme d...
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UNIVERSITE D’ANTANANARIVO
ECOLE SUPERIEURE DES SCIENCES AGRONOMIQUES
DEPARTEMENT ELEVAGE
MEMOIRE DE FIN D’ETUDES Pour l’obtention du diplôme d’ingénieur Agronome
Option Elevage
Présenté par : RAZAFIMANANTSOA Lauréat Garcin
Devant le jury composé de :
Monsieur Jean de Neupomuscène RAKOTOZANDRINY (Président) ;
Monsieur Georges RAFOMANANA (Tuteur) ;
Monsieur Braun de Ruffin RAKOTOARISON (Examinateur) ;
Monsieur EDALY (Examinateur) et ;
Monsieur PRASSAD Eswara (Invité).
Date de soutenance : 18 Mai 2007
ÉTUDES DE LA QUALITE DES POSTLARVES CAS DE LA FERME
AQUACULTURE DE CREVETTE DE BESALAMPY (ACB )
i
UNIVERSITÉ D’ANTANANARIVO
ÉCOLE SUPÉRIEURE DES SCIENCES
AGRONOMIQUES
(E.S.S.A)
Tél : (261) 222 228 67 / Fax : (261) 22 340 83
BP : 175 CP : 101 - Antananarivo - Madagascar
MEMOIRE DE FIN D’ETUDES
DIPLOME D’INGENIEUR AGRONOME
Spécialisation : ELEVAGE
Date de réalisation :
Tuteur : Georges RAFOMANANA
Docteur de l’ENSAR, Option : Halieutiques
Mention : Economie Rurale aquacole
Organisme d’accueil : Aquaculture de crevette de
Besalampy
Responsable : Monsieur PRASSAD Eswara
Auteur : RAZAFIMANANTSOA Lauréat Garcin
Titre : « Etude de la qualité des postlarves. Cas de l’Aquaculture de Crevettes de Besalampy »
RESUME Les Pls de bonne qualité sont considérées comme prédicateurs de bon rendement dans la production des crevettes. Cette étude décrit les relations entre les indicateurs de qualité et les performances zootechniques des postlarves P8 à P12 de Penaeus monodon en provenance des centres d’élevage larvaire de Nosy-Be et d’Ambatomifoko pour les productions réalisées entre Janvier et Mai 2006. 2 a roches différentes ont été mises en œuvre. Une observation microscopique de quelques échantillons de Pls attribue une note pour la qualité des lots de Pls reçues au niveau de la ferme. L’a roche quantitative est appréciée au moyen d’un test de résistance à l’eau à 0 ppt pendant une heure. Le taux de survie à ce test et les notes issues constituent les indicateurs de base à confronter aux taux de survie et de croissance journalière en fin d’élevage. Les taux de survie sont relativement élevés du test de stress supérieur à 75%, ainsi que les notes, supérieures à 83 n’ont pas présenté de corrélation significative avec les critères zootechniques.
ABSTRACT Pls of good quality are considered as predictor of good yield in shrimp production. This study describes the relationship between the indicators of quality and the zootechnical performances of P8 and P12 Pls coming from the larval rearing in Nosy-Be and Ambatomifoko larval rearing for the production carried out between January and may 2006. Two differents a roaches were implemented. The qualitative a roach carried out through microscope observation of some samples of Pls allots a note for the quality of batch of Pls. The quantitative a roach is a reciated by means of stress test in water of 0 ppt during one hour. The survival rate to this test and the notes constitute the basic indicators confronted with the rate of survival and growth rate at the end of nursery rearing. The relatively high rates of survival of the test higher than 75%, as well as the higher notes, higher than 83, did not present a significant correlation with the zootechnical criterion. Mots clés : qualité, postlarve, stress, survie, croissance, P. monodon Key-words: quality, postlarvae, stress, survival, growth. P. monodon
Diffusion et référence Non limitée Sous réserves d’abord Non autorisées
Je soussigné, Garcin RAZAFIMANANTSOA, propriétaire des droits de production du résumé du
Mémoire mentionné ci-dessus, autorise par la présente, toutes les sources bibliographiques à signaler et
publier le dit résumé, on émet les réserves suivantes.
Date Signature
ii
REMERCIEMENTS
Ce mémoire n’a pas pu se réaliser sans l’aide et le soutien de plusieurs intervenants.
Nous adressons nos sincères remerciements à l’équipe de l’Aquaculture de Crevette de
Besalampy, pour les moyens de réaliser ce travail de recherche dans les meilleures conditions.
- Nous adressons nos plus sincères remerciements, au Professeur Jean de Neupomuscène
RAKOTOZANDRINY, Président de Jury, Docteur d’Etat ès-Science Naturelle,
Docteur en Sciences Biologiques Appliquées, Chef du Département Elevage à l’ESSA,
qui nous a fait le grand honneur de présider le jury de ce mémoire.
- Nous tenons à exprimer notre profonde gratitude à Monsieur Georges
RAFOMANANA, Directeur de Recherche Associé, Docteur de l’ENSAR en
Halieutiques, Ingénieur Agro Halieute, notre tuteur, pour les critiques et les précieux
conseils formulés conduisant à la réalisation de ce mémoire.
- Nous adressons nos remerciements à Monsieur PRASSAD Eswara, Chef de
Département Nurserie de Besalampy, pour les soutiens d’encouragements et pour
l’intérêt qu’il a porté sur l’évolution de notre travail
- Nous remercions chaleureusement Monsieur EDALY, PhD en Gestion et
Aménagement des Ressources Halieutiques pour avoir accepté de siéger parmi les
membres du jury
- Nous tenons à présenter nos plus grands remerciements à Monsieur Braun de Ruffin
RAKOTOARISON, Enseignant chercheur, Maître de conférences, Enseignant
chercheur à l’ESSA qui nous fait honneur de siéger parmi les membres de jury
Nous remerciements s’adressent également à
� Tous les enseignants et personnel de l’ESSA ;
� Tous les personnels de l’American Information Center ;
� Tout le personnel du Département Elevage de l’ACB et ;
� A tous ceux qui ont contribué de près ou de loin à la réalisation de ce
manuscrit.
iii
SOMMAIRE
RESUME ................................................................................................................................................. i
REMERCIEMENTS ........................................................................................................................... ii
SOMMAIRE ........................................................................................................................................ iii
LISTE DES TABLEAUX ................................................................................................................... v
LISTE DES FIGURES ....................................................................................................................... vi
LISTE DES ABREVIATIONS ...................................................................................................... viii
LISTE DES ACRONYMES .............................................................................................................. ix
GLOSSAIRE ......................................................................................................................................... x
LISTE DES ANNEXES ....................................................................................................................xii
INTRODUCTION GENERALE ..................................................................................... 1
I- CONTEXTE ACTUEL ET PROBLÉMATIQUES DE LA PRODUCTI ON DE
POSTLARVES EN AQUACULTURE CREVETTICOLE ......................................... 2
1.1. Contexte mondial de la crevetticulture .............................................................................. 2
1.1.1 Economie ........................................................................................................................................... 2
1.1.2 Prix....................................................................................................................................................... 2 1.1.3 Production mondiale ....................................................................................................................... 2
1.2 Contexte national ................................................................................................................ 3
1.2.1 Filière aquacole du groupe UNIMA .......................................................................................... 3
1.2.2 Localisation et description du site .............................................................................................. 4
1.3 Objectifs ............................................................................................................................. 5
1.4 Justifications ....................................................................................................................... 6
1.5 Problématiques ................................................................................................................... 6
II- MATERIELS ET METHODES ................................................................................. 9
2.1 Méthodologie d’a roche ...................................................................................................... 9
2.1.1 Contrôle de la qualité des postlarves ......................................................................................... 9 2.1.2 Gestion pratique de raceway ...................................................................................................... 13
2.1.3 Estimation l’évolution du poids moyen des postlarves ...................................................... 17
2.1.4 Estimation de la survie ................................................................................................................. 17
2.1.5 Analyse des données ..................................................................................................................... 18
2.2 Limites .............................................................................................................................. 22
2.3 Matériels ........................................................................................................................... 22
2.3.1 Nurseries .......................................................................................................................................... 22 2.3.2 Matériels pour comptage volumétrique .................................................................................. 23
iv
2.3.3 Matériels d’acclimatation ............................................................................................................ 23
2.3.4 Matériels d’échantillonnage de poids moyen ........................................................................ 23 2.3.5 Matériels de laboratoire ............................................................................................................... 24
2.3.6 Moyens de transport ..................................................................................................................... 24
III- ANALYSES DES RESULTATS .............................................................................. 25
3.1. Croissance journalière ..................................................................................................... 25
3.1.1. Test de stress .................................................................................................................................. 25
3.1.2 Note Aquastar de Besalampy ..................................................................................................... 26
3.2 Survie ................................................................................................................................ 27
3.2.1 Test de stress ................................................................................................................................... 27
3.2.2 Note Aquastar de Besalampy ..................................................................................................... 28
3.3. Paramètres physicochimiques ......................................................................................... 28
3.3.1. Température ................................................................................................................................... 28
3.3.3 Salinité .............................................................................................................................................. 32
3.3.4 pH ....................................................................................................................................................... 34
3.3.5 Ammoniac non ionisé (TAN) .................................................................................................... 38 3.3.6 Oxygène dissous ............................................................................................................................ 42
3.4 Qualité de postlarves ........................................................................................................ 45
3.5 Influence des autres paramètres ........................................................................................ 47
3.5.1 Influence de DTE INI et DUREL sur la survie .................................................................... 47
3.5.2. Influence d’ARTMP sur la croissance ................................................................................... 49
3.5.3. Influence de DUR_EL sur la croissance................................................................................ 50
3.5.4 Influence des paramètres d’expédition sur les performances zootechniques ............... 51
3.6. Recommandations ........................................................................................................... 52
3.7 Plan d’aménagement......................................................................................................... 53
3.7.1 Comparaison des 2 systèmes de production .......................................................................... 54 3.7.2. Système d’aquaculture avec recyclage .................................................................................. 55
3.7.3. Filtrage des effluents ................................................................................................................... 56
CONCLUSION GENERALE ......................................................................................................... 58
BIBLIOGRAPHIE ............................................................................................................................ 59
ANNEXES .....................................................................................................................................
v
LISTE DES TABLEAUX
Tableau 1 : Récapitulation de contrôle de qualité de postlarves ........................................... 10
Tableau 2 : Taux de nutrition utilisé pour les microparticules et Artémia ............................ 15
Tableau 3 : Contrôle des paramètres physicochimiques de l’eau .......................................... 16
Tableau 4 : Corrélation entre les notes Aquastar et les performances zootechniques ........... 45
Tableau 5 : Influence de DTE_INI sur le poids final des Pls ................................................ 48
Tableau 6 : Survie correspondant aux modalités de DTE_INI .............................................. 48
Tableau 7 : Moyenne des croissances journalières correspondant aux modalités
d’ARTMP ........................................................................................................... 49
Tableau 8 : Moyenne des croissances journalières correspondant aux modalités de
DUR_EL ............................................................................................................. 50
Tableau 9 : Corrélation entre les paramètres d’expédition et les performances zootechniques
............................................................................................................................ 51
vi
LISTE DES FIGURES
Figure n°1 : Nécrose sur pléopodes observé sur une PL ................................................................................. 11
Figure n°2 : Antenne tordue observée sur une PL .......................................................................................... 11
Figure n°3 : Hépatopancréas plein d’une PL .................................................................................................. 11
Figure n°4 : Ratio muscle / intestin d’ une PL ................................................................................................ 12
Figure n°5 : Chromatophore observé au dernier segment d’une PL ............................................................... 12
Figure n°6 : Fouling sévère recouvrant les pléopodes d’une PL ..................................................................... 13
Figure n°7 : Cubitainers .................................................................................................................................. 14
Figure n°8 : Diagramme de configuration et de construction d’un raceway ................................................... 23
Figure n°9 : Résultats de croissance correspondant aux modalités de TEST_O ............................................. 25
Figure n°10 : Résultats de croissance correspondant aux NOTAQUA_BES ................................................... 26
Figure n°11 : Résultats de survie correspondant aux TEST_O ......................................................................... 27
Figure n°12 : Résultats de survie correspondant aux NOTAQUA_BES .......................................................... 28
Figure n°13 : Relevés journaliers des températures pour les cycles abordés en fin de janvier ........................ 29
Figure n°14 : Relevés journaliers des températures pour les ensemencements de février ................................ 29
Figure n°15 : Relevés journaliers des températures pour les ensemencements de mars .................................. 30
Figure n°16 : Relevés journaliers des températures pour les ensemencements de mars .................................. 30
Figure n°17 : Relevés journaliers des températures pour les ensemencements d’avril .................................... 31
Figure n°18 : Variations des salinités d’élevage pour les cycles à allure descendante ..................................... 33
Figure n°19 : Variations des salinités d’élevage pour les cycles à allure ascendante ....................................... 33
Figure n°20 : pH des cycles d’élevage pour la classe de DUREL10 ................................................................ 35
Figure n°21 : pH des cycles d’élevage pour la classe de DUREL12 ................................................................ 35
Figure n°22 : pH des cycles d’élevage pour la classe de DUREL12 ................................................................ 36
Figure n°23 : pH des cycles d’élevage pour la classe de DUREL12 ................................................................ 36
Figure n°24 : pH des cycles d’élevage pour la classe de DUREL14 ................................................................ 37
Figure n°25 : Ammoniac non ionisé des cycles correspondant à la modalité de TAN 0 ................................ 38
Figure n°26 : Ammoniac non ionisé des cycles correspondant à la modalité de TAN 0,4 ............................. 39
Figure n°27 : Ammoniac non ionisé des cycles correspondant à la modalité de TAN 0,8 ............................. 39
Figure n°28 : Ammoniac non ionisé des cycles correspondant à la modalité de TAN 1,2 ............................. 40
Figure n°29 : Oxygène dissous des cycles correspondant à la modalité de TAN 0 ........................................ 42
Figure n°30 : Oxygène dissous des cycles correspondant à la modalité de TAN 0,4 ..................................... 43
Figure n°31 : Oxygène dissous des cycles correspondant à la modalité de TAN 0,4 ..................................... 43
Figure n°32 : Oxygène dissous des cycles correspondant à la modalité de TAN 0,8 ..................................... 44
Figure n°33 : Oxygène dissous des cycles correspondant à la modalité de TAN 1,2 ..................................... 44
Figure n°34 : Variation de survie en fonction de DTE INI et DUREL ............................................................. 47
Figure n°35 : Croissance journalière correspondant aux ARTMP .................................................................... 49
Figure n°36 : Croissance journalière correspondant aux DUR_EL .................................................................. 50
vii
LISTE DES CARTES
Carte n°1 : ACB Localisation régionale ..................................................................................... 4
Carte n°2 : ACB Ferme crevetticole Plan du site ....................................................................... 5
viii
LISTE DES ABREVIATIONS
NRTH Nouvelle ration théorique
PNB Pêcherie de Nossi Be
AQUALMA Aquaculture de Mahajamba
FAO Fond Agriculture Organization
ANOVA Analysis of variance
PNUD Programme des Nations -Unies pour le Développement
ESSA Ecole Supérieure des sciences Agronomiques
TN Taux de Nutrition
T Tonne
PLs postlarves
Ppt Part per thousand
OD Oxygène dissous
SPSS Statistical Package for Science Social
ix
LISTE DES ACRONYMES
CHG_ PORT charge de transport de PL en g/l
DUR_ PORT durée de transport
DUR_ ACL durée de l’acclimatation
DUR_ EXP durée de l’expédition
NOTAQ_ ECLO note Aquastar de l'écloserie
∆_NOTAQ variation de la note Aquastar
TEST_0 survie de 20 PLS en eau douce après 1 heure
DTE_INI (nb/l) densité initiale
CR_JR croissance journalière moyenne pendant l'élevage
RE_MOY renouvellement d’eau moyen pendant l'élevage
MICROP quantité de microparticules en g utilisée
ART quantité d'Artémia en g utilisée
ARTMP MICROP+ART
TNG_REEL taux de nutrition global réel utilisé
DUR_EL durée d’élevage
SR W survie en fin d’élevage en raceway des PL
T° MOY Température moyenne durant l’élevage
TAN_MOY ammoniaque total moyen pendant l'élevage
SAL MOY salinité moyenne pendant l'élevage
PH_MOY Potentiel hydrogène moyen pendant l'élevage
AMNI_MOY ammoniaque non ionisé moyen pendant l'élevage
% HO Pourcentage d’eau
EE Taux d’erreur de l’ensemble
EC Erreur par Comparaison
c Nombre de comparaison
paei poids avec eau partiels pour le pourcentage d’eau
psei poids sans eau partiels pour le pourcentage d’eau
PSEi poids sans eau partiels pour la tranche i récoltée
PTi Poids de tranche i de crevettes juvéniles récoltées
PMi Poids moyens de la tranche i
Ni Nombre
NOTAQ_BES note Aquastar de Besalampy
x
GLOSSAIRE
Zone intertidale :
De l'anglais tidal, signifiant "marée". Zone de battement de la marée, où s'effectue le marnage.
Il s'agit d'une zone transitoire entre les domaines marin (toujours immergé) et terrestre
(toujours émergé).
Femelle gravide :
Un géniteur Femelle gravide est une femelle prête à pondre.
Marnage : Le marnage est l'amplitude entre la zone de basse marée et de haute marée. Il est souvent
propice à un écosystème spécifique, comme les marais à mangroves en milieu tropical.
Il y a une nuance avec la zone intertidale alors que le marnage se concentre sur le phénomène,
la zone intertidale représente la zone où a lieu ce phénomène.
Le stress :
Étymologiquement, le mot "stress" provient du latin "stringere" : mettre en tension. D’après,
Hans Selye, le stress est la réponse non spécifique de l'organisme à toute demande. Par
définition, il ne peut être évité. La complète liberté par rapport au stress, c'est la mort
Biologiquement parlant le stress correspond aux contraintes et agressions subies par un
organisme qui vont l'empêcher de vivre dans des conditions optimales et vont engendrer une
réponse de cet organisme pour pouvoir vivre dans de meilleures conditions.
Les nurseries :
Les nurseries sont les parties des élevages de crevettes où les postlarves sont élevées et
accoutumées aux conditions et à la salinité des bassins de grossissement. Les éleveurs
désignent les postlarves par le sigle “ PL ”, suffixé par le nombre de jours (PL-1, PL-2, etc.) ou
P1 ,P2 , etc.
Pregrossissement :
Pregrossissement est une partie de grossissement de crevettes où les postlarves généralement
plus âgées que celles des nurseries ou juvéniles sont élevées et accoutumées aux conditions et à
la salinité des bassins de grossissement.
Le fouling :
Ce sont des microorganismes, généralement des protozoaires parasites comme les
zoothamnium, recouvrant certaine partie des postlarves.
xi
Système en eau claire :
Le principe de ce système consiste à effectuer la production des algues phytoplanctoniques et
des animaux planctoniques qui serviront de proies aux mysis et aux Pls dans d’autres
installations, et de distribuer la nourriture ainsi produite aux élevages en fonction d’une
estimation des besoins journaliers.
Système en eau verte :
En système en eau verte, les larves de crevettes sont nourries à l’aide d’une efflorescence
algale provoquée à l’intérieur même des bassins d’élevage.
Cubitainers :
Les cubitainers sont des paquets composés et constitués d’une boîte en plastique ondulée
enfermée dans une autre boite en plastique.
Les raceways (RW):
Les raceways sont des bassins parallélépipédiques en brique, tapissés à l’intérieur par du
« liner », une bâche en polyéthylène.
Le liner :
C’est une bâche en polyéthylène.
xii
LISTE DES ANNEXES
Annexe I : Données brutes des paramètres physicochimiques des cycles
Annexe II : Modalités des variables
Annexe III : Statistiques descriptives des modalité des variables
Annexe IV : Moyennes des survies et des croissances pour les modalités de variables
Annexe V : Anova de croissance et de survie
Annexe VI : Corrélation entre les DTE_INI et les paramètres physicochimiques
Annexe VII : Données brutes des paramètres d'expédition
Annexe VIII : Présentation du logiciel STATA
Annexe IX : Tableau pour la note Aquastar
1
INTRODUCTION GENERALE
L’élevage des crevettes est passé d’une activité traditionnelle à petite échelle, en Asie
du Sud-Est, à une industrie mondiale. Les progrès technologiques ont permis d’élever des
crevettes avec des densités toujours plus élevées. Et les géniteurs sont expédiés dans le monde
entier. La grande majorité des crevettes d’élevage appartiennent à la famille des Penaeidae et
deux espèces seulement, Penaeus vannamei (crevette à pattes blanches) et Penaeus monodon
(crevette géante tigrée), représentent près de 80% de tous les élevages. Cette monoculture
industrielle est très sensible aux maladies. Ce qui a provoqué régionalement plusieurs vagues
meurtrières dans les populations de crevettes d’élevage. Beaucoup de producteurs utilisent les
systèmes de nurseries comme quarantaine pour minimiser les pertes dues aux nombreux cas de
maladies virales. En élevage de crevette semi-intensif, les nurseries s’appliquent pour le
système d’élevage multiphasé mettant en œuvre 2 ou 3 phases en opposition avec le système à
phase unique, avec un ensemencement direct de postlarves.
L’ensemencement des postlarves dans les raceways est quelque fois suivi de mortalité
plus ou moins importante. Cette mortalité peut provenir des animaux (écloserie, milieu
naturel). Elle peut être due aux maladies et à l’alimentation en écloserie et aux caractéristiques
physicochimiques du nouveau milieu d’élevage. Pour réduire cette mortalité, une appréciation
de l’état physiologique de postlarves lors de la réception de postlarves à la ferme s’impose.
Ceci souligne que la qualité des postlarves est cruciale pour la réussite de grossissement. Les
postlarves de bonne qualité vont résister aux rigueurs de la récolte et du transport, et s’adapter
à une large variation de conditions de bassins. La présente étude intitulée : « Etude de la qualité
de postlarves » contribue à une réévaluation des postlarves pour l’élevage en bassin. L’objectif
principal est de produire des postlarves avec un taux de survie et de croissance aussi élevé que
possible tout en considérant s’il y a des possibles relations entre ces critère zootechniques et les
appréciations de l’observation microscopique et du test de stress.
Le présent mémoire expose dans sa première partie le contexte actuel et problématique de la
production des postlarves en aquaculture crevetticole. Il développe les matériels et méthodes
dans la deuxième partie. Enfin, dans la troisième partie, il essaie d’exposer l’analyse de
résultats.
PREMIERE PARTIEPREMIERE PARTIEPREMIERE PARTIEPREMIERE PARTIE ::::
CONTEXTE ACTUEL ET PCONTEXTE ACTUEL ET PCONTEXTE ACTUEL ET PCONTEXTE ACTUEL ET PROBLÉMATIQUES DE LA ROBLÉMATIQUES DE LA ROBLÉMATIQUES DE LA ROBLÉMATIQUES DE LA
PRODUCTION DE POSTLAPRODUCTION DE POSTLAPRODUCTION DE POSTLAPRODUCTION DE POSTLARVES EN AQUACULTURERVES EN AQUACULTURERVES EN AQUACULTURERVES EN AQUACULTURE
CREVETICOLECREVETICOLECREVETICOLECREVETICOLE
2
I- CONTEXTE ACTUEL ET PROBLÉMATIQUES DE LA
PRODUCTION DE POSTLARVES EN AQUACULTURE
CREVETTICOLE
Cette première partie vise à décrire la situation de la crevetticulture et identifier les
problématiques engendrées par la qualité de postlarves sur le système d’élevage de l’ACB. Il
s’avère indispensable de bien décrire les objectifs et justifications conduisant aux
problématiques susceptibles d’influencer la production de juvéniles en nurserie de type
raceway.
1.1. Contexte mondial de la crevetticulture
1.1.1 Economie
La production mondiale de crevettes d'élevage a atteint plus de 1,6 million de T en
2003, représentant une recette pour les producteurs de près de 9 milliards de dollars (FAO,
2005). Cela représente 25 % de la production totale (élevage et pêche) cette année-là. Le plus
grand marché de consommation est celui des États-Unis, avec plus de 500 000 tonnes de
crevettes en 2003. Environ 250 000 T sont allées au Japon, tandis que les quatre principaux
importateurs européens de crevettes (France, Espagne, Royaume-Uni et Italie) en ont importé
globalement environ 500 000 T (FAO, 2005).
1.1.2 Prix
Le prix des crevettes importées est très variable. En 2003, le prix au kilogramme des
crevettes importées aux États-Unis est de 8,80 $US, légèrement plus élevé qu'au Japon à 8
$US. Le prix moyen à l'importation dans l'Union européenne se situe seulement à 5 $US/kg ;
ce niveau de prix plus bas s'explique par le fait que les importations de l'Union européenne
proviennent davantage de crevettes d'eau froide (produit de la pêche) qui sont plus petites que
les espèces d'élevage en eau chaude. Et cela justifie ainsi le prix plus bas. En outre, les pays
d'Europe méditerranéenne préfèrent les crevettes entières qui pèsent approximativement 30 %
de plus mais qui ont un prix unitaire plus faible (JOSUEIT, 2004).
1.1.3 Production mondiale
Environ 75% de la production mondiale de crevettes d'élevage proviennent des pays
asiatiques ; les deux principaux pays producteurs sont la Chine et la Thaïlande, suivis de près
par le Viêt-Nam, l'Indonésie et l'Inde. Les 25 % restants sont produits dans l'hémisphère
occidental, les pays d'Amérique du Sud (Brésil, Équateur, Mexique). En matière
3
d'exportation, la Thaïlande est de loin le premier exportateur avec une part de marché de plus
de 30 %, suivie par la Chine, l'Indonésie et l'Inde, avec environ 10 % pour chacun. Les autres
pays exportateurs notables sont le Viêt-Nam, le Bangladesh et l’Équateur (FOODMARKET,
2005). La Thaïlande exporte presque toute sa production, tandis qu'en Chine la production
nationale de crevettes est destinée essentiellement pour le marché intérieur. Le seul pays
exportateur important qui dispose d'un marché intérieur développé est le Mexique (MC
CLENNAN, 2004).
1.2 Contexte national
La capture des crevettes sauvages de Madagascar est couramment de l’ordre de 8000T.
Des signes de surexploitation des eaux de Madagascar ont émergé ces années passées. Le taux
des captures est de 20% de moins en 1999, comparé aux années passées, signalant une
réduction des ressources naturelles. Partant de cette situation, une nouvelle orientation a été
adoptée : l’introduction de la notion de crevetticulture.
Ainsi dès la fin des années 80, sur l’initiative du Gouvernement Malgache et des
pêcheries de Nosy be (PNB), les premières ébauches de projet d’aquaculture de crevettes ont
démarré en collaboration avec le PNUD et la FAO (KASPRZYK et al, 1993). Le projet de la
ferme-pilote a permis de conclure que Madagascar présente des conditions physiques,
chimiques, climatiques, pédologiques, biologiques et hydrologiques conformes à la mise en
place de l’activité aquacole.
1.2.1 Filière aquacole du groupe UNIMA
La filière crevettière du groupe est complètement intégrée dès la production des
géniteurs d’élevage à Madagascar jusqu’à la distribution des produits finis en Europe.
Au cœur de cette filière, l’aquaculture axée sur un système semi intensif, est organisée autour
de l’ancien pôle, la ferme de Mahajamba, et d’un nouveau pôle, celle de l’Aquaculture de
Crevette de Besalampy (ACB).
Les installations de Mahajamba s’étendent sur un domaine de 700 ha de grossissement
avec une production annuelle moyenne de 3000T. Par contre, pour l’ACB, au total 435 ha de
bassins ont produit 2000T de crevettes en 2005.
Le centre de domestique de géniteurs, évalués à 48000 environ au total, et de
production de nauplius, d’une capacité d’un milliard, approvisionne les 3 sites d’élevage
larvaires basés à Nosy-be, à Ambatomifoko et Moramba.
Ces derniers ont respectivement une capacité de production de 250 à 400 millions de
postlarves, essentiellement pour les fermes de Mahajamba et d’ACB. Le groupe dispose de 2
4
usines de traitement installées à Besakoa et à Besalampy avec des capacités de traitement
respectif de 10T/j et 13T/j de crevettes, et de production de glace 16T/j et 32T/j. Depuis 1992,
près de 30000T de crevettes d’élevage ont été récoltées par ce groupe.
1.2.2 Localisation et description du site
Le site de l’ACB est localisé sur la côte Ouest de Madagascar à 20 km de Besalampy.
La ferme implantée entre les mangroves et les dunes a une superficie de 5409 ha de tannes et
se situe à l’embouchure de la rivière de Sambao.
L’usine de traitement se trouve au sein même de la ferme. Et, elle est dotée
d’une capacité de traitement de 13T/j et de production de glace de 32T/j.
Carte n°1 : ACB Localisation régionale
Source : Land ressources
5
Carte n°2 : ACB Ferme crevetticole Plan du site
Source : Land ressources
1.3 Objectifs
L’objectif principal est de produire des Pls avec un taux de survie et de croissance aussi
élevé que possible tout en considérant s’il y a des possibles relations entre ces critère
zootechniques et les appréciations de l’observation microscopique et du test de stress.
Pour atteindre ces objectifs, les stratégies suivantes sont préconisées :
- comparer les différents cycles d’élevages à travers leurs croissances et survies vis-à-
vis des paramètres physicochimiques (salinité, pH, température, oxygène dissous,
ammoniaque dissous) et d’autres paramètres d’élevage tels : la durée d’élevage, quantité de
microparticules et d’Artémia et la densité initiale d’élevage.et;
- établir des corrélations entre la croissance, la survie des postlarves avec les
paramètres de qualité de postlarves (test 0 ppt et note Aquastar), les paramètres d’expédition
(durée de transport, d’acclimatation, charge de transport).
6
1.4 Justifications
Les producteurs de crevettes ont un besoin d’une évaluation rapide et d’une manière
simple la qualité de postlarves en accord avec la survie et la croissance future de postlarves.
Même si les éleveurs de crevettes ne peuvent pas identifier directement les facteurs
responsables d’une faible croissance. L’identification précoce d’une mauvaise qualité de
postlarves peut minimiser les dépenses sur les ressources de production.
Les indicateurs les plus intéressants à étudier sont les paramètres larvaires comme la
survie, la durée du cycle larvaire, le poids de postlarves d’un jour. Ces paramètres vont
donner des indicateurs pour une détection précoce d’une mauvaise qualité de postlarves.
1.5 Problématiques
La ferme aquacole ACB reçoit des PLs de 8 à 12 jours d’age provenant des sites d’élevage
larvaire de Nosy Be et d’ Ambatomifoko par avion pour la production de crevette de gros
calibre. Les PLs sont d’abord élevées en nurserie avant d’être transférées en bassin de
prégrossissement et de grossissement.
Le coût initial des Pls et les coûts des microparticules et d’Artémia constituent l’une de
plus grandes dépenses d’une nurserie. Ainsi, leur taux de survie est critique à la rentabilité de
production des juvéniles.
Pour faire face à ce problème de rentabilité, l’ACB a développé des stratégies qui sont
fortement liées sur la qualité de Pls. Cette stratégie de production des crevettes juvéniles, à
travers une faible densité avec des systèmes de production relativement intensifs dépend
énormément de la qualité de postlarves.
Avec de faible densité de 5 à 22 Pls/l, la production va dépendre d’un taux de survie élevé et
de la capacité des crevettes à maintenir un taux de croissance rapide jusqu’à la taille requise
pour la marché.
Par conséquent, un système d’évaluation de la qualité de Pls par un test de stress, et une
notation attribuée aux lots de Pls a été mis en œuvre lors de la réception des Pls.
Les ratios Muscle/TD, l’opacité de muscle, la couleur et l’aspect des hépatopancréas, le
« fouling », les défauts de forme, et les chromatophores ont été considérés comme standard en
termes de qualité de Pls dans le système de notation.
Le concept de test de stress est basé sur la présomption que le stress induit au-dessus de la
capacité d’acclimatation d’un organisme va l’affaiblir et réduire ses performances de
croissance et de survie. Ainsi, un lot de Pls présentant une forte résistance à l’eau à 0 t peut
bien présenter de bonne performance zootechnique.
7
Par ailleurs, ACB accorde aussi beaucoup d’intérêts pour le système de production de
crevettes multiphasée. Ainsi, les Pls sont d’abord élevées dans des serres à raceway avant de
les stocker dans les bassins de pré grossissement et de grossissement. Ce système se heurte
aux problèmes d’excès de manipulations des animaux. En effet, au lieu d’entamer directement
le grossissement des crevettes juvéniles de la nurserie, elles doivent encore passer un pré
grossissement. Les manipulations se traduisent par les pesages séquentiels, le transport lors
des transferts vers les nouveaux bassins, et l’acclimatation au niveau milieu. Ces facteurs
constituent un risque de stress plus ou moins important pour les animaux. Ainsi, il s’avère
important de produire de crevettes juvéniles robustes
Outre, la distance et la durée d’expédition des postlarves. Elles sont aussi transportées
suivant des charges souvent variables.
Quand les crevettes sont élevées dans un environnement peu satisfaisant, la croissance
et la survie des postlarves diminuent.
Lorsque la densité de mise en charge s’intensifie et les animaux sont élevés dans un
environnement de production contrôlé, il y a un grand besoin de réduire les facteurs de stress.
Pour assurer que les animaux soient au-dessus d’un seuil limite de stress, il est nécessaire
d’établir et d’appliquer de bonnes pratiques de gestion d’élevage.
Un des critères très importants pour la réussite d’élevage consiste à maintenir la santé des
animaux.
En effet, les analyses microbiologiques effectuées montrent que les postlarves reçues sont
plus ou moins infectées par des vibrios. Les vibrios sont associés aux facteurs de stress
provoqués par les manipulations, la forte densité, la déficience nutritionnelle, la température
extrême, les niveaux élevés d’ammoniaque et de salinité. Les conditions environnementales
qui augmentent la densité des vibrios peuvent conduire aux maladies.
L’aquaculture commerciale tient une place importante à la sécurité alimentaire. Elle
génère des revenus pour les Gouvernements, pour sa viabilité financière indépendamment des
fonds publics. Madagascar n'est pas loin du seuil maximum exploitable pour la pêche
crevettière, les opérateurs ont commencé à se réorienter vers l'aquaculture. Le pays offre des
sites exceptionnels pour le développement des fermes d'aquaculture qui peuvent amoindrir la
surexploitation des ressources halieutiques. L’Aqualma, implantée dans la région de
Mahajanga depuis 1991 exploite un site de 700 ha à Mahajamba dont la production annuelle
atteint les 3.000 T de crevettes. Unima, a injecté des fonds dans le site de Besalampy qui
s'étend sur plus de 2.800 ha et produit 5000 T de crevettes par an.
8
Actuellement, la stratégie de production de crevettes de gros calibre de l’ACB suit
son cours. Il y a lieu de déterminer la qualité de postlarves au niveau d’une ferme au moyen
d’une méthodologie simple et fiable. Les solutions adoptées reposent sur l’utilisation d'un test
de résistance au stress à l’eau à 0 ppt. Dans cette étude, la survie et la croissance, éléments
clés de qualité de postlarves, sont évaluées à travers de probables relations avec des
indicateurs fournis par les observations microscopiques des postlarves, les divers traitements
supportés par ces derniers depuis leur départ des centres d’élevage larvaire puis pendant un
bref élevage en serre de raceway.
DEUXIEME PARTIEDEUXIEME PARTIEDEUXIEME PARTIEDEUXIEME PARTIE : : : :
MATERIELS ET METHODEMATERIELS ET METHODEMATERIELS ET METHODEMATERIELS ET METHODESSSS
9
II- MATERIELS ET METHODES
La seconde partie de ce document est consacrée à la présentation et à la description
des matières et des méthodes utilisées pour la réalisation de l’étude ainsi que leurs avantages
et leurs limites pour étudier et analyser après les qualités de bonnes postlarves.
2.1 Méthodologie d’a roche
La méthode consiste à :
- contrôler la qualité des postlarves au moyen de test de stress et de la note Aquastar à
leur arrivée ;
- estimer l’évolution du poids moyen des postlarves dans les raceways ;
- assurer la gestion pratique de raceway ;
- estimer la survie finale et;
- enregistrer et l’analyser les données obtenues.
2.1.1 Contrôle de la qualité des postlarves
2.1.1.1 Examen microscopique
Des analyses qualitatives ont été réalisées sur un échantillon aléatoire de 25
postlarves. Chacune des postlarves a été examinée pour attribuer une note aux indicateurs de
qualité. La somme des points obtenus pour tous les indicateurs des 25 postlarves va donner la
qualité des postlarves d’un lot. Le système de notation attribué à ces indicateurs est résumé
dans le tableau ci –après :
10
Tableau 1 : Récapitulation de contrôle de qualité de postlarves
Indicateurs Observations appréciation Score
Opacité Muscle concentrée sur l’aspect du muscle au niveau de la courbure de la queue autour des 4-5ème segments abdominaux
clair 1 Opaque sombre
-1
Defaut de forme Déformations sur rostre, les antennes et la carapace d’une part et les différents nécroses et cannibalismes d’autre part
absent 1 modéré 0 sévère -1
Couleur et aspect de l’Hepatopancreas
Coloration relative de l’hépatopancréas Plein sombre 1 Petit Pale -1
Fouling Degré de fouling dû aux epibionts absent 1 modéré 0 Sévère -1
Très sévère -2 Muscle / TD Comparaison du ratio entre muscle et
l’épaisseur de l’intestin au dernier segment
<50% 1 >50% 0
chromatophores Bien définis le long de l’axe ventral oui 1 Non 0
Source : Auteur, 2007
L’Aquastar consiste en une observation d’un échantillon de 25 postlarves en vue d’une
évaluation de l’état de leur déformation, du tube digestif constitué surtout par
l’hépatopancréas et l’intestin, du muscle, du chromatophore.
• Déformation
Le nombre et la localisation des déformations morphologiques sont des facteurs
d’évaluation de qualité. Leur examen porte sur :
- le rostre ;
- les pattes bien formées et complètes ;
- sur la carapace entière et ;
- les antennes : non tordues et bien développées.
Les signes de nécroses et de cannibalisme font partie aussi des déformations. Ce sont
des signes d’un mauvais état de santé. Les appendices endommagés sont aussi souvent un
indicateur de cannibalisme, quelquefois un signe d’une alimentation inadéquate.
11
Figure n°1 : Nécrose sur pléopodes observé sur une PL
Source : NACA, 2005
Figure n°2 : Antenne tordue observée sur une PL
Source : NACA, 2005
• Contenu et aspect de l’hépatopancréas
L’hépatopancréas ne doit pas être transparent. Normalement, il doit être jaune sombre
ou ocre. Sa couleur est aussi influencée par la qualité et la couleur de microparticules. Une
couleur plus sombre de l’hépatopancréas indique un état de bonne santé de l’animal.
L’hépatopancréas doit être plein et bien développé.
Figure n°3 : Hépatopancréas plein d’une PL
Source : NACA, 2005
12
• Opacité du muscle
Ce signe est un indicateur classique d’une réaction physiologique de stress. Le muscle
doit être translucide et ne doit pas avoir une apparence opaque, granuleuse, striée.
• Ratio muscle / intestin
Ce ratio s’obtient par une évaluation relative du muscle et de l’intestin au niveau du
6ème segment. Ce ratio est un indicateur important de l’état de nutrition de l’animal. Un ratio
élevé est préférable. Le ratio muscle / intestin des postlarves sauvages est pris comme
référence en terme de qualité de postlarves.
Figure n°4 : Ratio muscle / intestin d’une PL
Source : NACA, 2005
• Chromatophore
Le chromatophore doit être bien défini et localisé le long du milieu de l’axe ventral.
Figure n°5 : Chromatophore observé au dernier segment d’une PL
Source : NACA, 2005
• “ Fouling ”
Les postlarves doivent être exemptes de protozoaires parasites comme les
zoothamniums.
13
Figure n°6 : Fouling sévère recouvrant les pléopodes d’une PL
Source : NACA, 2005
2.1.1.2 Test de stress
L’utilisation de test de stress varié constitue aussi un moyen de contrôle qualité. Ces
tests évaluent la survie d’un petit nombre de postlarves, soumises à un changement brutal de
la température, de la salinité, ou de la température et de la salinité ensemble.
Pour chaque réception de postlarves, un test de salinité à 0 ppt est réalisé pour un
échantillon de 20 postlarves. Ce milieu est préparé dans des béchers d’un litre à partir d'eau
douce. La salinité est contrôlée à l'aide d'un réfractomètre. Cinquante animaux, prélevés au
hasard, sont placés dans chaque bêcher sans acclimatation préalable, sans bullage ni
alimentation. Le dénombrement des animaux survivants a lieu toutes les 5 minutes pendant
une heure 1 h. Le critère de mortalité principal est l'absence de mouvement. Et en cas de
doute, sont considérées comme mortes les postlarves ne réagissant pas à des manipulations.
Le taux de survie (S) est exprimé en pourcentage.
2.1.2 Gestion pratique de raceway
2.1.2.1 Préparation des raceway
La préparation s’effectue en deux étapes :
- le vide sanitaire qui consiste à :
*chlorer à 100 m la surface interne du raceway avec ses accessoires
*à les nettoyer au savon puis les rincer à l’eau douce et,
*à mettre le tout à l’assec pendant 3 jours au moins ;
14
2.1.2.2 Acclimatation
L’acclimatation est un processus complexe impliquant des réactions comportementale
et physiologique face aux dynamismes de conditions de l’environnement. Ces changements
réversibles aident l’organisme à s’ajuster aux fluctuations du milieu causées par la
température et la salinité par exemple
En effet, dans leur milieu naturel et en écloserie d’une part, les stades larvaires et les
postlarves bénéficient d’un environnement stable. D’autre part, les postlarves sont sensibles
aux changements brusques de paramètres physicochimiques de leur milieu comme la
température et la salinité. Les transports de longue durée augmentent toujours la température
de l’eau des “ cubitainers ” (Les cubitainers sont des paquets composés constitués d’une boite
en plastique ondulée enfermée dans une autre boite en plastique).
Figure n°7 : Cubitainers
Source : Auteur, 2007
Dans les raceway, la température de l’eau est encore plus élevée que celle de
l’expédition. Ainsi, une acclimatation s’avère nécessaire. Pour la température, l’acclimatation
consiste à remonter celle du bac d’acclimatation d’une unité tous les quarts d’heure jusqu’à
atteindre la température du raceway, par dilution de l’eau du raceway. Pour la salinité,
l’acclimatation se fait progressivement au niveau des centres d’élevage larvaire. En effet, la
salinité d’expédition reste toujours fixée 3 jours à l’avance. Cette salinité est la même que
celle du raceway lors de l’ensemencement des postlarves
2.1.2.3 Observations de routine
Durant un cycle d’élevage de postlarves, 2 observations sur loupe binoculaire sont
effectuées quotidiennement pour suivre l’évolution des stades de développement, l’évaluation
de l’état de réplétion, de l’estimation les pourcentages de divers cannibalismes, l’appréciation
de l’activité des postlarves, et la détection des zoothamniums et les nécroses.
2.1.2.4 Alimentation
Elle est un facteur essentiel dans la réussite des élevages.2 catégories d’aliments sont
utilisées :
15
-les microparticules et ;
-les Artémia (cyste et/ ou biomasse) ;
Les microparticules se présentent sous plusieurs granulométries de 250 à 1200µ.
Celles de petite dimension s’utilisent pendant les premiers jours d’élevage, puis elles sont
remplacées par les plus grandes ; les Pls. disposent de 6 types de microparticules. Leur
disponibilité n’autorise que l’usage de certains d’entre eux. Leur proportion va dépendre de
l’âge, du poids moyen, et de l’estimation du nombre de postlarves d’une part, puis de la
disponibilité d’aliment d’autre part.
Les microparticules et Artémia sont distribués 8 fois par jour, mais décalés d’une heure,
toutes les 3 heures, de 03 à 09 heures du matin, puis de 11 à 20 heures et à 22 heures.
• Taux de nutrition
C’est le rapport entre la quantité d’aliment distribué et la biomasse ou encore c’est le
pourcentage d’aliment distribué en fonction du poids moyen.
Au premier jour d’élevage, les aliments se distribuent à un taux de nutrition de 45% de
la biomasse totale dont 16% pour les microparticules et 29% pour les Artémia. Ce taux de
45% va baisser de 1% jusqu’à la fin de l’élevage. Les variations des taux de chaque catégorie
d’aliment suivent cette diminution avec suppression de l’Artémia à PL 20.
Tableau 2 : Taux de nutrition utilisé pour les microparticules et Artémia Age Microparticules Artémia TN
8 0,16 0,29 0,45 9 0,18 0,26 0,44
10 0,2 0,23 0,43 11 0,21 0,21 0,42 12 0,22 0,19 0,41 13 0,24 0,16 0,4 14 0,25 0,14 0,39 15 0,26 0,12 0,38 16 0,27 0,1 0,37 17 0,28 0,08 0,36 18 0,29 0,06 0,35 19 0,3 0,04 0,34 20 0,31 0,02 0,33 21 0,32 0 0,32 22 0,31 0 0,31 23 0,3 0 0,3 24 0,3 0 0,3 25 0,3 0 0,3 26 0,29 0 0,29
Source : Auteur, 2007
16
• Taux de nutrition Nouvelle Ration Théorique (NRTH)
La NRTH est calculée à partir du résultat de poids moyen après chaque échantillonnage.
La valeur de NRTH obtenue varie quotidiennement pour chaque nouvel échantillonnage de
poids moyen. Pour les 4 premiers jours d’élevage, une projection de valeur poids moyen
donne de NRTH pour cette période.
2.1.2.5 Changement d’eau
L’eau des raceway est renouvelée constamment pour conserver une bonne qualité de
l’eau pendant l’élevage. Cette opération est essentielle pour réduire les déchets dus à la
décomposition des restes d’aliment, apporter de l’oxygène, et stimuler la mue. Le
renouvellement d’eau quotidien est fonction de l’âge et de la quantité de la ration distribuée et
quelquefois en cas de chute brutale du niveau d’oxygène. Le taux renouvellement varie de 0 à
60% du volume du raceway. Ce taux augmente journalièrement tout au long du cycle et peut
atteindre les 200% en fin de cycle. Dans ce cas, le renouvellement d’eau est exécuté en 3
tranches.
2.1.2.6 Relevés des paramètres physicochimiques
Le tableau ci-dessous montre la fréquence, l’heure de prélèvement des paramètres
physicochimiques de l’eau des raceway.
Tableau 3 : Contrôle des paramètres physicochimiques de l’eau
Paramètres Fréquences Heures de prélèvement
Lieux d’analyse
Salinité Température + oxygène
Secchi Ph
1 x /j 4 x /j 1 x /j 2 x /j
16 h 9 h –11 h - 15 h –
17h 8 h 00
16 h
nurserie
TAN Après le 4ème jour puis tous les 2 jours par suite.
8 h 00
Laboratoire
de contrôle qualité
Source : Auteur, 2006
La mesure du pH est réalisée deux fois par jour le matin à 9 heures et le soir à 16
heures.
La concentration en oxygène dissous est jumelée avec la mesure de la température.
La salinité est contrôlée chacun après-midi. La mesure s’effectue à l’aide d’un
réfractomètre à lecture directe.
17
Le dosage de l’ammoniac dissous (TAN) est fait au cinquième jour d’élevage puis
décalé d’un jour pour les autres dosages si le TAN est inférieur à 1 m.
la Température est prélevée quatre fois par jour. Un oxymètre est utilisée pour relever
la température de chaque raceway.
2.1.3 Estimation l’évolution du poids moyen des postlarves
L’augmentation du poids moyen au cours de l’élevage traduit la croissance des PL. La
connaissance du poids moyen est particulièrement importante. Sa valeur entre dans le calcul
de la ration quotidienne. En outre, elle détermine les conditions et les paramètres de transfert
vers les bassins de prégrossissement.
2.1.3.1 Méthode
Au 4e jour d’élevage, jusqu’à la fin du cycle d’élevage, un échantillon de PL a été
péché en 3 points du raceway (près du trop-plein, au milieu, à la sortie) à l’aide de l’épuisette.
La masse de PLs amassées est égouttée rapidement. 1 à 2 millièmes de PL sont essorées en le
faisant tourner de bas en haut.5 à 15 g de PL essorées sont versées dans un gobelet rempli
d’eau à son quart, taré sur la balance électronique.
Cette quantité est ensuite comptée.
2.1.4 Estimation de la survie
2.1.4.1 Récolte
Au terme d’un cycle d’élevage, les juvéniles sont pêchées à l’intérieur du raceway. La
vidange s’opère par capture progressive des juvéniles au moyen d’un épervier. L’élévation de
la biomasse totale procède successivement à une pesée moyenne de 500 g de l’échantillon
issu de chaque capture d’un filet, suivie d’une estimation du pourcentage d’eau et du poids
moyen correspondant à chaque tranche moyenne de 1,6 à 1, 8 kg de crevettes juvéniles
récoltées. Une moyenne de 4 pesées successives permet d’avoir cette tranche.
Détermination du pourcentage d’eau : %HO de la tranche de juvéniles
A la suite d’une 4ème pesée, le pourcentage d’eau est déterminé. Pour cela, il faut :
- un échantillon de 115 g en moyenne ;
- 3 poids avec eau partielle (paei) issus de 3 tranches égales de crevettes juvéniles de
115 g et ;
- 3 poids sans eau partielle (psei) correspondant à chaque paei.
18
Le pourcentage d’eau s’obtient par la formule :
∑
∑
=
==3
1
3
1%
i
i
paei
pseiHO
Les psei s’obtiennent par pesée de paei essorés.
Détermination du poids moyen d’une tranche de juvéniles
Pour le poids moyen, il faut :
- un échantillon p de 30 g en moyenne et ;
- un nombre ni de crevettes juvéniles de cet échantillon.
La relation suivante donne le poids moyen de la tranche en mg.
1000xn
pPM
ii =
L’estimation de ce paramètre nécessite :
- les Poids de chacune des tranches de crevettes juvéniles récoltées pour un raceway le
(PTi) ;
- %HOi ;
- les PSEi correspondant à chaque tranche récoltée ;
- les PMi et ;
- le nombre estimé de crevettes juvéniles de chaque tranche Ni
La survie est donnée par la relation :
La survie est donnée par la relation :
)%( HOiPTPTPSE iii ×−=
iii PMPSEN /=
[ ]
i
i
ii
n
PM
HOixPTPT
S
∑ −
=
)%(
2.1.5 Analyse des données
Les éventuelles relations du test de stress, des paramètres d’expédition avec sur la survie
et la croissance sont traitées par le biais de corrélation de PEARSON. Par contre, le
coefficient de corrélation de Spearman est utilisée pour les notes. Le SPSS version 10 a
servi à l’élaboration des corrélations.
PTi : Poids de chacune des tranches de crevettes juvéniles
PSEi : Poids sans eau Partiel pour la tranche i récolté PMi : Poids Moyen de la tranche i %HO : Pourcentage d’eau de la tranche i Ni. : Nombre estimé de crevettes S : Survie ni : nombre de crevettes juvéniles de cet échantillon
paei : poids avec eau partielle psei : poids sans eau partielle
19
Les effets des facteurs physicochimiques et des autres facteurs sont comparés
statistiquement au moyen de l’analyse de variance (ANOVA). Un logiciel de statistique stata
version 8 exécute un programme de calcul de l’ANOVA.
En cas de rejet de l’hypothèse nulle, des comparaisons multiples par le test t de DUN-
BONFERRONI identifient les différences significatives de moyenne à travers les différents
niveaux de facteurs.
2.1.5.1 Présentation du logiciel STATA
STATA est un logiciel réputé pour ses multiples fonctions de traitement des données
et d’analyse statistique. Stata possède un jeu complet de fonctions statistiques, graphiques et
de gestion des données avec un langage de programmation. Son langage est simple et
cohérent, et ne requiert pas un long apprentissage.
2.1.5.2 Rappel : le coefficient de corrélation de PEARSON
Le coefficient de corrélation standard de PEARSON s’applique lorsqu’on désire
mesurer le degré de relation entre deux variables continues. Par contre, on ne peut pas calculer
de corrélation sur des variables discrètes.
Le coefficient de corrélation de PEARSON est un indice qui représente le degré de
relation entre deux variables et prend une valeur entre –1 et +1. Un coefficient de corrélation
de zéro indique une absence de relation entre les deux variables.
La valeur absolue du coefficient de corrélation indique l’importance de la relation entre
les variables, tandis que le signe de la relation (+ ou –) désigne le sens de cette relation.
La formule pour calculer le coefficient de corrélation de PEARSON repose sur une autre
statistique appelée covariance :
La covariance est une valeur qui reflète le degré auquel deux variables varient
ensemble. Elle se calcule en multipliant pour chaque paire de données, X et Y et en
appliquant la formule suivante :
20
2.1.5.3 Test de Dunn-Bonferroni
• Principe du test de DUNN-BONFERRONI
Le principe du test de DUNN-BONFERRONI consiste simplement à fixer une valeur
déterminée pour le taux d’erreur de l’ensemble (EE) et à calculer ensuite quel devrait être le
taux d’erreur par comparaison (EC) pour aboutir à cette valeur d’EE.
Dans un test de comparaison multiple, au pire, le taux d’erreur de l’ensemble est égal à
c x EC. Il suffit donc de modifier cette formule afin d’obtenir la valeur de EC pour un EE
fixé :
EE = c x EC devient EC = EE / c ; - c : nombre de comparaison.
- EE : taux d’erreur de l’ensemble
- EC : taux d’erreur par comparaison
Par exemple, si on planifie 10 comparaisons et qu’on veut s’assurer que le taux
d’erreur de l’ensemble ne dépasse pas 0,05, il suffit d’utiliser la formule ci-dessus pour savoir
à quelle valeur il faut fixer le taux d’erreur par comparaison:
EC = EE / c = 0,05 / 10 = 0,005
En fixant le taux d’erreur par comparaison à 0,005 pour 10 comparaisons, on s’assure
donc que le taux d’erreur de l’ensemble est dans le pire des cas égale à 0,05.
Le principe du test de DUNN-BONFERRONI consiste donc simplement à réaliser un
test t classique en fixant le α par comparaison de manière beaucoup plus sévère, de sorte que
le taux d’erreur de l’ensemble reste acceptable.
Pour le test t de DUNN-BONFERRONI, la formule a été légèrement modifiée pour
l’adapter à la situation d’une analyse de variance. Tout d’abord, nous allons dénommer la
statistique t′ plutôt que t pour souligner le fait qu’il s’agit d’un test de DUNN-
BONFERRONI. Comme une des conditions de l’analyse de variance stipule que les variances
des différents groupes doivent être homogènes, on va remplacer S2P dans la formule par CM
erreur. En effet, si les variances des différents groupes sont égales, CM erreur constitue une
meilleure estimation de la variance à l’intérieur des groupes. On obtient donc la formule du
test de DUNN-BONFERRONI
21
• Limites
L’application du
test de DUNN-
BONFERRONI nécessite certaines conditions.
Il faut être attentif aux effectifs des deux groupes à comparer. Si les deux groupes
ont des effectifs inégaux, n1 et n2 dans la formule ne sont pas équivalents.
Si les variances sont hétérogènes, le test de DUNN-BONFERRONI ne peut être
appliqué tel quel et d’autres alternatives doivent être envisagées.
• Avantages
Le test t de DUNN-BONFERRONI vise à contrôler le taux d’erreur de l’ensemble afin
de minimiser le risque de commettre une erreur de première espèce. Ce contrôle de EE a pour
conséquence directe de définir plus sévèrement EC ; le risque d’erreur par comparaison,
conduit aussi à réduire la puissance de chaque comparaison isolée. En réalité, les techniques
de comparaisons multiples visent à trouver le meilleur équilibre possible entre EE et la
puissance des tests de comparaison. Il s’agit de minimiser le risque d’erreur de première
espèce sans trop sacrifier de puissance, c’est-à-dire en conservant une probabilité raisonnable
de mettre en évidence une différence réelle.
2.1.5.4 Analyse de variance en bloc à un facteur
L’ANOVA porte sur l’étude de la survie et de la croissance des cycles d’élevage de
postlarves pour les paramètres de qualité de l’eau et les autres paramètres. Le but est de savoir
si les survies et les croissances diffèrent selon ces paramètres. En d’autres termes, il s’agit
d’étudier l’effet de chaque facteur lié au cycle sur les variables survie et croissance.
• Principe
L’ANOVA est le test statistique à appliquer lorsqu’il s’agit de comparer plus de
deux moyennes.
L’analyse de variance est une technique statistique élaborée pour permettre de tester
la différence entre les moyennes de nombreux groupes en une seule analyse. En outre, elle
maintient le risque d’erreur de première espèce à 0,05 quel que soit le nombre de moyennes à
comparer. L'existence de cette différence permet d'inférer que la variable explicative ou
facteur est bien la cause de la variable dépendante.
22
• Avantages
Dans une ANOVA, chaque facteur peut être testé tout en contrôlant les autres ; c'est la
raison pour laquelle l'ANOVA est statistiquement plus puissante (est plus significatives) que
le simple test.
2.2 Limites
Le contrôle de la qualité de postlarves requiert la connaissance des conditions d’élevage
durant le cycle larvaire et l’examen microscopique de postlarves. Les différentes observations
microscopiques sont tributaires des appréciations des techniciens.
Une nutrition inadéquate ou des expositions aux salinités ou températures extrêmes
peuvent entraîner des effets néfastes. Le non respect des limites de tolérance aux paramètres
physicochimiques durant l’élevage larvaire peut compromettre la vigueur des postlarves, leur
capacité à résister la transition de l’écloserie aux autres étapes du cycle d’élevage. Les
conséquences de tels stress ne sont pas toujours apparentes à travers les examens
microscopiques, mais peuvent se manifester par des mortalités imprévisibles causées par une
faible résistance aux conditions des autres étapes du cycle.
L’importance des chaînes de détritus pour la croissance des crevettes n’est pas
appréciée pour tous les cycles considérés. Pour certains raceways, la croissance des algues
sont difficiles à contrôler. Par conséquent, les postlarves dépendent complètement des
microparticules pour leur nutrition.
2.3 Matériels
2.3.1 Nurseries
La nurserie est faite de serre, à RW. Les raceways sont des bassins
parallélépipédiques en brique, tapissées à l’intérieur par du liner, une bâche en polyéthylène.
L’eau de mer passe par un filtre à sable de 50µ et ne subit pas d’autres traitements. Des
conduits d’air et d’eau suspendus verticalement assurent l’aération, le renouvellement de
l’eau. Chaque raceway est équipé :
-d’air lift ;
-de filtre ;
-d’ aquamats ;
-bassine et;
-tuyaux de siphonnage.
23
Figure n°8 : Diagramme de configuration et de construction d’un raceway
Source : OLIN et al, 1992
2.3.2 Matériels pour comptage volumétrique
Le comptage nécessite :
- de seaux ;
-de gobelets de 1l;
-de fût de 100 l et;
-d’air stones pour le brassage ou homogénéisation de l’eau.
Pour le matériel de test de stress, Il est nécessaire de disposer :
- d’Eurlenmeyer ;
-de l’eau douce à 0 t ;
-de pipette et;
-d’horloge.
2.3.3 Matériels d’acclimatation
Les matériels nécessaires pour une acclimatation sont :
-bac d’acclimatation ;
-motopompe électrique ;
-ph-mètre ;
-oxymètre ;
-gobelets ;
-casques et;
-horloge.
2.3.4 Matériels d’échantillonnage de poids moyen
Il est nécessaire de disposer :
24
- d’une cuillère ;
- de gobelets ;
- de seaux ;
- d’une épuisette ;
- d’une balance de précision et;
- d’une passoire cylindrique.
2.3.5 Matériels de laboratoire
Ce sont :
- microscope optique ;
- loupe binoculaire ;
- balance de précision et;
- pipette.
2.3.6 Moyens de transport
Ils sont constitués par :
- avion ;
- tracteur ;
- moto et;
- vedette.
Le transport de postlarves des centres d’élevage larvaire à la ferme, l’acclimatation et
l’ensemencement sont des aspects importants de l’élevage de crevettes. Tout cela exige de
soigneuses planifications. Le principal intérêt de ces opérations est d’éviter le stress des
postlarves. Par ailleurs, en nurserie, les postlarves bénéficient d’une meilleure qualité de
contrôle de l’eau de croissance et de précision du nombre de juvéniles pour les
prégrossissements et grossissements. En effet, la nurserie type « raceway » opère
intensivement dans les serres pour augmenter les contrôles sur les paramètres zootechniques
(survie et croissance), physicochimiques, et sur des agents pathogènes. De cette manière, un
certain nombre d’informations supplémentaires ont été disponibles sur l’état et le nombre de
juvéniles élevés en grossissement par rapport à un ensemencement direct de postlarves issues
des centres d’élevage larvaire.
TROISIEME PARTIETROISIEME PARTIETROISIEME PARTIETROISIEME PARTIE ::::
ANALYSEANALYSEANALYSEANALYSESSSS DES RESULTATSDES RESULTATSDES RESULTATSDES RESULTATS
25
III- ANALYSES DES RESULTATS
Cette partie est consacrée essentiellement à la présentation des résultats de l’étude, des
interprétations et des discussions afin de pouvoir apprécier les relations entre les indicateurs
de qualité utilisés, les paramètres d’expédition, les paramètres physicochimiques, et les
performances zootechniques (survie, et croissance journalière). Les recommandations et le
plan d’aménagement ont été développés pour améliorer non seulement la gestion de la qualité
de postlarve, mais également le processus de production et les impacts d’élevage sur
l’environnement.
3.1. Croissance journalière
3.1.1. Test de stress
Le test de stress consiste à évaluer la survie d’un échantillon de PLs à l’eau à 0 ppt. Figure n°9 : Résultats de croissance correspondant aux modalités de TEST_O
0
1
2
3
4
5
6
7
8
9
RW
11 P
0601
8
RW
11 P
0600
3
RW
13 P
0601
7
RW
14 P
0605
1
RW
10 P
0603
1
RW
15 P
0600
7
RW
11 P
0605
0
RW
15 P
0603
6
RW
14 P
0603
5
RW
02 P
0603
9
RW
05 P
0605
4
RW
02 P
0605
8
RW
05 P
0603
4
RW
06 P
0601
6
RW
04 P
0601
5
RW
14 P
0601
1
RW
07 P
0605
3
RW
15 P
0605
2
RW
06 P
0603
0
RW
04 P
0602
9
Cycles des racew ays
Cro
issa
nce
jour
naliè
re (
mg/
j)
0
10
20
30
40
50
60
70
80
90
Sur
vie
au te
st d
e st
ress
( )
CR_JR
TEST_0
Source : Auteur, 2007
CR_JR : Croissance journalière
TEST 0 : Survie de 20 PLs en eau douce après une heure
La figure n°9 montre les résultats de test de stress avec la croissance journalière des
cycles correspondants. D’après cette figure, la croissance journalière des PLs oscille entre un
maximum de 7,6 et un minimum de 2,2 à travers les valeurs croissantes de survie au test de
stress des PLs représentées. Quelle que soit la résistance des PLs au test, les croissances
journalières prennent une toute autre allure différente de celle de la résistance au stress.
(%)
26
3.1.2 Note Aquastar de Besalampy
Figure n°10 : Résultats de croissance correspondant aux NOTAQUA_BES
2
3
4
5
6
7
8
RW
06 P
0601
6
RW
02 P
0605
8
RW
14 P
0605
1
RW
11 P
0601
8
RW
10 P
0603
1
RW
04 P
0601
5
RW
11 P
0600
3
RW
13 P
0601
7
RW
06 P
0603
0
RW
04 P
0602
9
RW
05 P
0603
4
RW
14 P
0601
1
RW
02 P
0603
9
RW
15 P
0605
2
RW
15 P
0600
7
RW
15 P
0603
6
RW
14 P
0603
5
RW
05 P
0605
4
RW
07 P
0605
3
RW
11 P
0605
0
Cycle des raceways
Cro
issa
nce
jour
naliè
re (
mg/
j)
0
20
40
60
80
100
120
Not
e A
quas
tar
CR_JR
NOTAQ_BES
Source : Auteur, 2007
NOTAQ_BES : note Aquastar de Besalampy
CR_JR : Croissance journalière
La figure n°10 montre les résultats des notes Aquastar de Besalampy avec la
croissance journalière des cycles correspondants. D’après cette figure, la croissance
journalière des PLs oscille entre un maximum de 7,6 et un minimum de 2,2 à travers les
valeurs croissantes de la note Aquastar de Besalampy représentées. Quelles que soient les
valeurs prises par l’évaluation de la qualité des postlarves, les croissances journalières
prennent des valeurs qui ne tiennent pas compte de ce paramètre.
27
3.2 Survie
3.2.1 Test de stress
Figure n°11 : Résultats de survie correspondant aux TEST_O
0,65
0,7
0,75
0,8
0,85
0,9
0,95
1R
W11
P06
018
RW
11 P
0600
3
RW
13 P
0601
7
RW
14 P
0605
1
RW
10 P
0603
1
RW
15 P
0600
7
RW
11 P
0605
0
RW
15 P
0603
6
RW
14 P
0603
5
RW
02 P
0603
9
RW
05 P
0605
4
RW
02 P
0605
8
RW
05 P
0603
4
RW
04 P
0601
5
RW
07 P
0605
3
RW
06 P
0601
6
RW
14 P
0601
1
RW
15 P
0605
2
RW
06 P
0603
0
RW
04 P
0602
9
Cycle des raceways
Sur
vie
en F
in d
'éle
vage
0
10
20
30
40
50
60
70
80
90
Sur
vie
au te
st d
e st
ress
S_RW
TEST_0
Source : Auteur, 2007
TEST 0 : Survie de 20 PLs en eau douce après une heure
SR_W : Survie en fin d’élevage
La figure n°11 représente les résultats des tests de stress avec la survie en fin
d’élevage des cycles correspondants. La survie finale des PLs en fin de cycle présente des
valeurs supérieures à 80% pour les valeurs croissantes de la résistance au test de stress à
l’exception de la première performance de 40% pour le test de stress. Malgré, la tendance de
l’augmentation de survie liée aux valeurs croissantes de TEST_O, l’allure de l’accroissement
de survie n’est pas très régulière. La survie est la plus élevée pour la valeur de test de stress
correspondant à 67 % et la plus faible pour une valeur de 45%.
(%)
28
3.2.2 Note Aquastar de Besalampy
Figure n°12 : Résultats de survie correspondant aux NOTAQUA_BES
0,65
0,7
0,75
0,8
0,85
0,9
0,95
1
RW
06 P
0601
6
RW
02 P
0605
8
RW
14 P
0605
1
RW
11 P
0601
8
RW
10 P
0603
1
RW
04 P
0601
5
RW
11 P
0600
3
RW
13 P
0601
7
RW
06 P
0603
0
RW
04 P
0602
9
RW
05 P
0603
4
RW
14 P
0601
1
RW
02 P
0603
9
RW
15 P
0605
2
RW
15 P
0600
7
RW
15 P
0603
6
RW
14 P
0603
5
RW
05 P
0605
4
RW
07 P
0605
3
RW
11 P
0605
0
Cycles des racew ays
Sur
vie
en fi
n d'
élev
age
0
20
40
60
80
100
120
Not
e A
quas
tar
S_RW
NOTAQ_BES
Source : Auteur, 2007
NOTAQ_BES : note Aquastar de Besalampy
SR_W : Survie en fin d’élevage
La figure n°12 montre les résultats des notes Aquastar de Besalampy avec la survie en
fin d’élevage des cycles correspondants. D’après cette figure, la survie finale des PLs prend
aussi une allure irrégulière à travers les valeurs croissantes de la note Aquastar. Les valeurs de
survie supérieure à 85% se concentrent surtout entre les notes Aquastar 85 et 90. Des notes
supérieures à 90 ne présentent pas des survies semblables. La survie est la plus élevée pour la
note correspondant à 88 et la plus faible pour une note de 84.
3.3. Paramètres physicochimiques
Les résultats des paramètres physicochimiques sont présentés sous forme de courbe.
3.3.1. Température
Les températures moyennes pour l’ensemble des cycles ne présentent pas de variations
relativement importantes. Elles oscillent entre un minimum de 28,06 °C et un maximum de
34,92 °C avec une moyenne de 30,51°C. Les variations des températures sont toujours
comprises dans les normes d’élevage de crevettes Penaeus monodon.
Les résultats des 4 relevés journaliers de température sont représentés à l’intérieur de
2 axes principaux parallèles à l’axe des ordonnées. Par exemple, pour le raceway RW06
29
P06016, au 4 è jour d’élevage, les températures enregistrées sont respectivement à 9, 11, 15 et
17 heures sont 32,9°C ; 32,1°C ; 29,5°C ; 30,9°C. L’évolution journalière des températures
prend une allure en forme d’un V lorsque les 4 relevés ont été effectués. Les variations des
températures ambiantes sont à l’origine de ces fluctuations. Les figures ci-après montrent que
les températures des raceways ont évolué différemment selon les périodes d’élevage.
Figure n°13 : Relevés journaliers des températures pour les cycles abordés en fin de janvier
27
28
29
30
31
32
33
34
35
0 4 8 12 16 20 24 28 32 36 40 44 48 52 56 60 64 68 72
RW15 P06007 RW14 P0611
Source : Auteur, 2007
Les 4 relevés journaliers n’ont pas été possibles. Ceci est à l’origine de la défaillance
de l’oxymètre. Ce problème n’a pas permis d’avoir la totalité des relevés de RW15 P06007.
Les températures ont légèrement diminué dans la première moitié d’élevage pour augmenter
progressivement et atteindre les 35°C vers la fin du cycle.
Figure n°14 : Relevés journaliers des températures pour les ensemencements de février
28,00
30,00
32,00
34,00
36,00
38,00
0 4 8 12 16 20 24
RW04 P06015 RW06 P06016 RW11 P0618 RW13 P06017
Source : Auteur, 2007
Le problème lié à la défaillance de l’oxymètre s’est poursuivi pour les
ensemencements entrepris au mois de février. La totalité de relevés de température n’a pas
été enregistrée.
30
Figure n°15 : Relevés journaliers des températures pour les ensemencements de mars
2 7
2 8
2 9
3 0
3 1
3 2
3 3
0 4 8 1 2 1 6 2 0 2 4 2 8 3 2 3 6 4 0 4 4 4 8 5 2 5 6 6 0R W 0 5 P 0 6 0 3 4 R W 1 0 P 0 6 0 3 1 R W 1 4 P 0 6 0 3 5 R W 1 5 P 0 6 0 3 6
Source : Auteur, 2007
La figure montre que les 4 séries de raceways (RW05 P06034, RW10 P06031, RW15
P06036, RW14 P06035) ont évolué de la même façon. Une augmentation progressive de
température s’est produite pour atteindre leur maximum respectif de 32,8 °C pour le RW14
P06035, 32,6°C pour le RW15 P06036, et 32°C pour RW05 P06034 et RW10 P06031 en fin
des cycles.
Figure n°16 : Relevés journaliers des températures pour les ensemencements de mars
27
28
29
30
31
32
0 4 8 12 16 20 24 28 32 36 40 44 48 52 56RW 04 P 06029 RW 04 P 06030
Source : Auteur, 2007
Pour ces 2 raceways, contrairement aux 4 séries précédentes, les températures ont
généralement augmenté pendant la première moitié d’élevage et ont atteint leur maximum
respectif de 32°C (RW 04 P06029) et 31°C (RW04 P06030) pour diminuer progressivement,
malgré une légère augmentation de température en fin de cycle.
31
Figure n°17 : Relevés journaliers des températures pour les ensemencements d’avril
25,00
26,00
27,00
28,00
29,00
30,00
31,00
32,00
0 4 8 12 16 20 24 28 32 36 40 44 48 52 56 60 64 68
RW07 P06053 RW02 P06039 RW11 P06050 RW14 P06051
RW07 P06053 RW06 P06044
Source : Auteur, 2007
Au mois d’avril, les températures les plus élevées sont généralement enregistrées en
début d’élevage pour diminuer lentement et progressivement par la suite à l’exception des
RW11 P06050 et RW14 P0605.
Le taux de croissance de PLs pour la modalité de température de 31° C (5,421mg/j)
est plus élevée que les taux rencontrés pour les autres modalités (28 - 30 ° C).Cependant les
différences de croissances ne sont pas significatives. De même, PARADO-ESTEPA a
rapporté que la croissance PLs de P monodon à 22°C est sensiblement inférieure à celle de
33°C. Il s'avère que ce niveau de basse température diminue la fréquence de mue en raison du
faible taux de métabolisme des crevettes penéides. La température est connue pour avoir une
forte influence sur le taux de métabolisme d'organismes aquatiques. Il y a diminution de taux
de métabolisme quand la température de l'eau est au-dessous de la gamme de température
optimale et augmentation quand la température est en haut cette gamme. La prise de
nourriture et le taux de croissance montrent également une diminution au-dessous ou au-
dessus du niveau de température optimale. À des températures au-dessus du niveau optimal,
la consommation de nourriture peut augmenter pour s’adapter à une activité métabolique plus
élevée. Cependant, lorsque la température atteint la limite de tolérance supérieure pour une
espèce particulière, le taux de métabolisme diminue et finalement la mortalité se produit.
Malgré le fait que les PLs pour la modalité de température de 31° C (5,421mg/j) a
affiché la croissance la plus élevée dans les cycles considérés, la survie diffère
significativement pour la modalité de température de 29° C. En effet, l’analyse des données
montre qu’il y a différence significative de survie. Le degré de signification 0,0176 de F,
32
égale à 4,45 pour ce paramètre est inférieur à 5%. Le test de BONNFERRONI montre que la
modalité de température de 29°C diffère significativement de la modalité de température de
31° C pour une différence de survie de -0,136 avec une probabilité de 0,015. La survie
correspondant à la modalité de température de 31° C (75,375%) est inférieure à celle de 29°C
(89 %) (p<0.05).
Ceci est en accord avec les résultats de PARADO-ESTEPA qui stipule que le taux de
survie de PLs ou de juvéniles de P. monodon est réduit à 33°C. En effet, les moyennes de
températures moyennes, au de sa modalité de température, de ces cycles ont une moyenne de
33,42 °C.
3.3.3 Salinité
La salinité de l’eau des cycles de raceway varie presque quotidiennement. Les
renouvellements d’eau sont à l’origine des fluctuations. Malgré ces interventions, les
fluctuations ne dépassent pas les 3 ppt par jour. Par conséquent, pour certains cycles, la
salinité décroît du 1er jour d’élevage jusqu'à la fin du cycle. Pour d’autres par contre, elle va
croître du début jusqu'à la fin du cycle. Pour les valeurs de salinité moyenne, les valeurs
minimale et maximale sont respectivement de 12 et 20 ppt. La moyenne enregistrée pour
l’ensemble des cycles est de 15,02 ± 1,82, valeur favorable à la croissance de Penaeus
monodon.
La salinité des cycles d’élevage prend deux types d’allure : une allure ascendante pour
les cycles qui se sont déroulés à partir du mois de février et descendante pour ceux abordés
en fin du mois de janvier.
Pour les cycles à allure descendante, les cycles d’élevage débutent en général avec une
salinité maximale pour descendre petit à petit vers un minimum en fin de cycle. Cette allure
est principalement due aux précipitations de la saison pluvieuse. Les pluies plus ou moins
importantes vont causer une dessalure de l’eau destinée aux raceways pour les changements
d’eau. Ceci entraîne une certaine dilution de l’eau d’élevage après chaque changement d’eau
suivant l’importance des différences de salinité de l’eau entrant dans les raceways.
33
Figure n°18 : Variations des salinités d’élevage pour les cycles à allure descendante
8
10
12
14
16
18
20
0 2 4 6 8 10 12 14 16 18
RW05 P06034 RW15 P06007 RW10 P06031 RW04 P06029
RW06 P06030 RW14 P06035 RW15 P06036 RW14 P06011
Source : Auteur, 2007
Par contre, pour les cycles à allure ascendante, le phénomène inverse se produit.
L’absence ou la rareté de pluies occasionnées par la fin de la saison fraîche ne permet plus
une dessalure importante de l’eau et favorise même une élévation progressive des salinités des
raceways.
Figure n°19 : Variations des salinités d’élevage pour les cycles à allure ascendante
10
12
14
16
18
20
22
24
0 2 4 6 8 10 12 14 16 18
RW02 P06039 RW11 P06050 RW14 P06051 RW05 P06054 RW06 PO6016
RW11 P06018 RW13 P06017 RW06 P06044 RW07 P06053 RW15 P06052
RW02 P06058 RW05 P06054 RW07 P06053
Source : Auteur, 2007
34
La plupart des crevettes penéides en particulier le P monodon sont connues pour être
des espèces euryhalines. Elles croissent dans un large éventail de salinité à l’exception de
leurs stades larvaires et de reproduction. A travers les données obtenues, les postlarves âgées
de 8 à 35 jours ont présenté de bonne survie et de croissance pour des basses salinités. Ces
différents niveaux de salinité utilisée dans cette étude se trouvent encore dans les limites
optimales pour le Penaeus monodon (ALLAN et al, 1992).
La salinité de l’eau dans le cycle de raceway varie presque quotidiennement. Les
renouvellements d’eau sont à l’origine des fluctuations. Malgré ces interventions, les
fluctuations ne dépassent pas les 3 ppt /jour.
Par conséquent, pour certains cycles, la salinité décroît du 1er jour d’élevage jusqu'à la
fin du cycle. Pour d’autres par contre, elle va croître du début jusqu’à la fin du cycle.
Les dessalures et les élévations observées journalièrement se font dans un petit écart
de salinité qui ne peut affecter les Pls car les variations de salinité se produisent encore dans
les limites acceptables pour la croissance et la survie de la Pls. De plus ces fluctuations sont
d’autant plus supportables pour les Pls à mesure que leur âge augmente. LE-MOULLAC et al
(1991) ont découvert de façon analogue que la survie s’améliore de PL-2 à PL-20.
PARADO- ESTEPA , en1998, a démontré aussi que la capacité des P. mondon à s’adapter
aux changements de salinité s’améliore aussi au fur de la croissance des animaux.
En effet, à un âge plus avancé, les branchies se développent de plus en plus. Ainsi, l’efficacité
d’osmorégulation est plus élevée. Autrement dit, malgré les fluctuations de salinité encourues
jusqu’à la fin d’élevage, les Pls acquièrent un état physiologie qui ne leur permet pas de
succomber aux conditions environnementales.
3.3.4 pH
Les résultats des pH sont présentés suivants les classes de durée d’élevage. Deux
courbes représentatives de pH sont simultanément décrites dans les figures n°19 et 20. Les
courbes en trait décrivent les relevés de pH de la matinée tandis que les courbes en gras de la
même couleur, les relevés de l’après-midi. Le pH est assez faible tout au long de la durée
d’élevages avec des moyennes comprises entre 7,430 à 8,1. Ce niveau de pH est plus bas que
celui de l'eau de mer qui est de 8,20.
35
Figure n°20 : pH des cycles d’élevage pour la classe de DUREL10
7
7,2
7,4
7,6
7,8
8
8,2
8,4
0 2 4 6 8 10 12
RW02 P06039 RW02 P06039
Source : Auteur, 2007
Les résultats des relevés des pH sont incomplets.
Figure n°21 : pH des cycles d’élevage pour la classe de DUREL12
6.5
7.5
8.5
0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15
RW11 P06003 RW11 P06003 RW14 P06035 RW14 P06035
RW15 P06036 RW15 P06036 RW06 P06016 RW06 P06016
Source : Auteur, 2007
Les valeurs du pH en après-midi enregistrées, pour le RW06 P06016 évoluent dans
une plage de pH faible entre 7,5-8,5. Apres une baisse des valeurs jusqu’au environ de 7,5
durant les 4 premiers jours d’élevage, une hausse de pH atteignant les 8,5 est notée jusqu’au
8 ème jour. Apres ce maximum, le pH baisse irrégulièrement jusqu’à 7,5 à la fin du cycle. Les
pH enregistrés dans la matinée pour ce même raceway dépassent rarement les valeurs prises
dans l’après-midi. Les pH évoluent tout juste au-dessus de 7,5 pendant les 9 premiers jours
tout en déclinant depuis les valeurs plus élevées proches 8,5 enregistrées les du début du
cycle.
Pour le RW11 P06003, les valeurs de pH de l’après-midi tendent à baisser, atteignant
7,5 au 8ème jour d’élevage. Pour ce même raceway, les valeurs enregistrées dans la matinée se
stabilisent autour de 7,5.
36
Figure n°22 : pH des cycles d’élevage pour la classe de DUREL12
6,5
7,5
8,5
0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15RW14 P06035 RW14 P06035 RW15 P06036 RW15 P06036
Source : Auteur, 2007
Pour RW14 P06035, les valeurs de pH de l’après-midi sont relativement faibles et
restent inférieures à 7,5 et tendent à diminuer jusqu’à 6,5 au 7ème jour. Une hausse des
valeurs s’amorce par la suite pour atteindre un maximum de 8,7 vers la fin du cycle. Les
valeurs enregistrées dans la matinée tendent à suivre cette allure.
Pour le RW15 P06035, les valeurs enregistrées dans l’après-midi se stabilisent autour
de 7,5. Cette allure fait suite à une légère hausse après le 7ème jour d’élevage atteignant jusque
dans les 8,7 vers la fin du cycle. Les valeurs de pH de la matinée tendent à suivre cette allure
avec des valeurs généralement inférieures à celles enregistrées dans l’après-midi.
Figure n°23 : pH des cycles d’élevage pour la classe de DUREL12
6,5
7,5
8,5
9,5
0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14
RW14 P06051 RW14 P06051 RW11 P06050
RW11 P06050 RW04 P06029 RW04 P06029
RW06 P06030 RW06 P06030
Source : Auteur, 2007
Les valeurs de pH prélevé dans l’après-midi des figures n°22 ont tendance à diminuer
au cours des cycles. Les courbes de pH de matinée correspondante suivent cette allure avec
37
des valeurs généralement plus faibles que celles enregistrées dans l’après-midi à l’exception
des courbes des RW04 P06029 et RW14 P06051. Ces dernières enregistrent des valeurs de
pH relativement élevés en première moitié de cycles d’élevage avec des pics de pH dépassant
les 8,5.
Figure n°24 : Figure n° 1 : pH des cycles d’élevage pour la classe de DUREL14
6
6,5
7
7,5
8
8,5
9
9,5
0 2 4 6 8 10 12 14 16 18RW13 P06017 RW13 P06017 RW14 P06011RW14 P06011 RW11 P06018 RW11 P06018
Source : Auteur, 2007
Les valeurs de pH de l’après-midi ont tendance s’élever et présentent même des pics
dans la deuxième moitié et en fin d’élevage. Les écarts avec les valeurs prélevées dans la
matinée ne sont pas très importants. Le pH est assez faible tout au long des élevages avec des
moyennes de 7,430 à 8,1. Ce niveau de pH est plus bas que celui de l'eau de mer qui est de
8,20.
Il diminue au cours de la première moitié d'élevage en raison de la diminution du
phytoplancton et du faible renouvellement d'eau quotidien. En deuxième moitié d'élevage, le
pH remonte légèrement à cause de l'augmentation des renouvellements d'eau quotidienne.
Les valeurs de pH prélevées dans la matinée sont généralement plus basses que celles
enregistrées dans l’après-midi. Ceci vient du fait que le CO2 dissous est encore plus élevé le
matin alors qu’il est très bas vers mi-après-midi.
Comme conséquence de la respiration, le dioxyde de carbone (CO2) est libéré dans
l’eau. Le CO2 se combine avec l’eau pour former l’acide carbonique. Une série de réaction
d’équilibre réversible se produit pour aboutir à la formation de l’ion H, ion bicarbonate
(HCO3 -) et ion carbonate (CO3
- ) à travers la réaction suivante :
CO2 +H2O H2CO3 HCO3-H+ + CO3--
38
Lorsque CO2 est éliminé de l’eau par la photosynthèse, les réactions décrites dans
l’équation en sens inverse (de droite à gauche). Les ions hydrogène libres de l’eau vont réagir
avec les ions carbonates et bicarbonates, réduction de la concentration globale d’hydrogène et
élevant le pH de l’eau. Ainsi, la photosynthèse a pour effet d’augmenter le pH, alors que la
respiration a pour effet de le diminuer. L'augmentation du pH de la présente étude n'a pas
semblé augmenter la survie des crevettes. WICKENS (1984) a observé de bonnes croissance
et survie de P. monodon aux valeurs du pH s'étendant de 6,7 à 7,9. Les résultats de l’ANOVA
ne décèlent aucune différence significative au sein des différentes modalités de variation de
pH. Le degré de signification de F, pour une valeur de 0,45 de cette variable est de 0,719,
pour la croissance journalière tandis que ce degré est de 0,08 pour la valeur de F égale à 0,967
pour la survie.
Les oscillations de pH de 2 unités sont possibles tôt le matin et tard le soir. Les écarts
de pH de cette magnitude sont stressants pour les crevettes.
Le pH moyen rencontré dans l’ensemble des cycles correspond bien à l’optimum pour
les postlarves. Ainsi, l’effet négatif du pH sur le cycle est très minime voire inexistant
(NACA, 1994 ; NOOR-HAMID et al, 1994 ; ALLAN et al, 1992).
Le pH n'atteint pas habituellement les niveaux qui affectent les postlarves. Les valeurs
excèdent rarement la gamme de 7-9 dans les raceways. Un niveau élevé pH (> 9) représente
un grand risque toxicité de l’ammoniaque. Un pH faible peut affecter le dépôt minéral de
l'exosquelette de la crevette après avoir mué, entraînant des crevettes molles après la mue.
Les pH acides peuvent aussi déstabiliser certaines espèces de phytoplancton qui ont une
préférence pour le milieu alcalin.
3.3.5 Ammoniac non ionisé (TAN)
Figure n°25 : Ammoniac non ionisé des cycles correspondant à la modalité de TAN 0
0
0,005
0,01
0,015
0,02
0,025
0,03
0,035
0 1 2 3 4 5 6
RW15 P06036 RW05 P06034 RW06 P06044
Source : Auteur, 2007
39
Figure n°26 : Ammoniac non ionisé des cycles correspondant à la modalité de TAN 0,4
0
0,005
0,01
0,015
0,02
0,025
0,03
0,035
0,04
0,045
0 1 2 3RW14 P06035 RW06 P06030 RW04 P06029 RW11 P06050
Source : Auteur, 2007
Pour les figures n°26 et 27, les valeurs de l’ammoniac non ionisé ont été généralement
inférieures à 0,015 à l’exception RW15 P06036 et RW04 P06029. Les résultats de deux
raceways présentent des écarts (0,03) relativement importants entre les premiers résultats et
les derniers contrôles. En outre, les résultats ne sont pas complets.
Figure n°27 : Ammoniac non ionisé des cycles correspondant à la modalité de TAN 0,8
0
0,01
0,02
0,03
0,04
0,05
0,06
0 2 4 6 8RW07 P06053 RW11 P06018 RW13 P06017 RW10 P06031
RW14 P06011 RW04 P06015 RW06 P06016 RW05 P06054
Source : Auteur, 2007
40
Les valeurs mesurées ont été relativement faibles pour l’ensemble des raceways de ce
groupe. Les valeurs enregistrées oscillent, par la suite, entre 0 et 0,05 m. Les valeurs ont
tendance à baisser au cours des mesures successives malgré certains pics pour prendre
respectivement des valeurs inférieures aux premiers résultats généralement 0,01 m, à
l’exception de RW07 P06053.
Figure n°28 : Ammoniac non ionisé des cycles correspondant à la modalité de TAN 1,2
0,010
0,015
0,020
0,025
0,030
0,035
0,040
0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10RW02 P06058 RW11 P06003 RW15 P06052
Source : Auteur, 2007
Les mesures ont donné des valeurs relativement faibles pour les premiers résultats
d’analyse sauf le RW02 P06039. Les valeurs enregistrées vont osciller, par la suite, entre 0,01
et 0,04 m pour prendre respectivement des valeurs proches des résultats de premières
analyses 0,015et 0,025 m en fin de contrôle.
Les mesures ont presque donné des résultats proches du centième de m pour
l’ammoniac non ionisé. Toutefois, pour ce type d'élevage intensif à densité relativement basse
(densité initiale entre 5 et 24 PLs/l), il est peu probable que l'on ait pu trouver des doses de
NH3 significatives qui puissent affecter les survies en fin de cycle. Au cours d'élevage, les
moyennes des renouvellements d'eau quotidiens entre 30 et 80 % limitent la production
d'ammoniac non ionisé. En effet, le renouvellement d’eau a pour effet de diluer la
concentration d’ammoniaque dissoute dans le milieu, et constitue ainsi un moyen efficace
pour diminuer la concentration de cette dernière.
La majeure partie de l’ammoniaque dissoute est issue des excrétions des postlarves,
d’autres déchets de microorganismes, et de la décomposition de microparticules non
41
assimilées par les postlarves à l’intérieur des raceways. Plus la densité des deux espèces
présentes dans le milieu est élevée, plus la production d’ammoniaque est importante.
L’ammoniaque est par la suite convertie en nitrate. Mais il y a un grand danger que la
production d’ammoniaque excède la capacité des raceways. Quelques espèces d’algues
planctoniques telles que les Chlorella sp peuvent utiliser l’ammoniaque et le nitrate
directement. Si ces algues sont présentes dans le milieu, le danger de production
d’ammoniaque est réduit. Cependant, il est très difficile de contrôler la croissance d’algues à
l’intérieur des raceways.
La toxicité de l’ammoniac dissous, surtout par la forme non ionisée, est une des
principales causes de mortalité des crevettes. Ainsi une élévation de sa concentration pose
une sévère menace aux animaux (NOOR – HAMID et al, 1994). Comme pour les autres
composés azotés, la tolérance des stades larvaires de P. monodon à l’ammoniaque dissoute
augmente du stade nauplius jusqu’au stade postlarves.
La toxicité de l’ammoniaque ne dépend pas seulement de l’âge des crevettes. Les
paramètres physicochimiques comme la salinité pH, et la durée d’exposition l’influencent
aussi.
Le point iso- osmotique pour P. monodon est équivalent à 25 ppt (FERRARIS et al,
1986). Cela signifie que l’environnement hypo- osmotique, avec la valeur de salinité
maximale de 20 ppt, utilisée lors des cycles d’élevage ne peut pas causer une forte
susceptibilité de l’ammoniaque (CHEN et al, 1991).
L’effet du pH sur la toxicité de l’ammoniaque est presque probablement lié à l’effet du
pH sur la forme de l’ammoniaque. Un pH élevé provoque une élévation des concentrations de
l’ammoniaque non ionisée et par conséquent augmente la toxicité (NOOR – HAMID et al,
1994). Dans le cadre des cycles étudiés, le pH ne présente aucune relation significative avec la
forme non ionisés. De plus, il n’y a aucune corrélation significative entre la survie finale et
l’ammoniaque dissoute. Ainsi, la toxicité de l’ammoniaque est donc sans effet.
Les PLs et crevettes juvéniles de petite taille sont moins tolérantes vis à vis de
concentrations élevées d’ammoniac non ionisé que les crevettes plus grandes et adultes. Le
DL 50 de 96 heures d’ammoniaque non ionisée est de 0,2 ppm pour les PLs (CHIN et al,
1988) de la santé des crevettes et le taux de croissance ne sont pas affectés par des niveaux
d’ammoniaque non ionisée en dessous de 0,03 ppm. Pourtant, des expositions chroniques aux
concentrations sublethales élevées peuvent avoir des effets négatifs sur les crevettes. Le taux
de croissance diminue et le taux de conversion augmente. Des concentrations élevées
d’ammoniac dissous irritent les branchies des crevettes et peuvent entrainer une hyperplasie
42
de branchie. Ceci réduit la capacité des crevettes à extraire de l’oxygène de l’eau. En plus, les
niveaux élevés d’ammoniac dissous de l’eau conduisent à une élévation de la concentration
sanguine de ce composé. Les concentrations élevées d’ammoniac dissous du sang réduisent
l’affinité de l’hémocyanine pour l’oxygène. Ensemble, les effets de ces derniers réduisent la
tolérance des crevettes à des faibles niveaux d’oxygène.
3.3.6 Oxygène dissous
Les résultats des 4 relevés journaliers d’oxygène dissous sont représentés à
l’intérieur de 2 axes principaux parallèles à l’axe des ordonnées. Par exemple, pour le
raceway RW05 P06034, au 1è jour d’élevage, les valeurs d’oxygène dissous enregistrées
respectivement à 9, 11,15 et 17 heures sont 4,1, 4,08, 4,04, 3,95. Les valeurs prélevées dans
la matinée sont légèrement plus élevées que celles enregistrées dans la matinée. Les variations
journalières de l’activité photosynthétique sont à l’origine des fluctuations d’oxygène dissous.
Pour tous les cycles, l’aération à travers les airstones est continue pour maintenir des
concentrations d’oxygène dissous acceptable. Les figures n°26 jusqu’au 29 montrent que les
taux d’oxygène dissous des raceways ont évolué différemment selon les modalités de
TAN_MOY des cycles d’élevage.
Figure n°29 : Oxygène dissous des cycles correspondant à la modalité de TAN 0
RW14 P06051 0
RW15 P06036 0
RW06 P06044 0
RW05 P06034 0
3,6
3,8
4
4,2
4,4
4,6
4,8
0 4 8 12 16 20 24 28 32 36 40 44 48 52 56 60 64 68
Oxygène dissous
RW05 P06034 RW15 P06036 RW06 P06044
Source : Auteur, 2007
D’une manière globale, les valeurs des relevés d’OD tendent à croître légèrement pour
chaque raceway. Les valeurs incomplètes prélevées pour le RW15 P06007 tendent à diminuer
légèrement jusqu’à la fin du cycle.
43
Figure n°30 : Oxygène dissous des cycles correspondant à la modalité de TAN 0,4
4
4 ,2
4 ,4
4 ,6
4 ,8
5
5 ,2
0 10 20 30 40 50 60RW 15 P 06007 RW 11 P 06050 RW 14 P 06035
Source : Auteur, 2007
Les valeurs d’OD prélevées pour les raceways considérés dans cette figure évoluent
différemment pour chaque raceway.
Les valeurs incomplètes prélevées pour le RW15 P06007 tendent à diminuer
légèrement jusqu’à la fin du cycle.
Pour le RW14 P06035, les valeurs des relevés d’OD diminuent légèrement pour
stagner autour 4,4mg/l après le 5 ème jour d’élevage. Une très faible hausse des valeurs est
notée vers les derniers jours du cycle.
Les valeurs d’OD du RW11 P06050 tendent à stagner pour toute la durée du cycle
après une brève augmentation du premier jour d’élevage malgré quelque faibles pics. Une
faible augmentation de ces valeurs s’amorce pour les 4 derniers jours du cycle.
Figure n°31 : Oxygène dissous des cycles correspondant à la modalité de TAN 0,4
4
4,1
4,2
4,3
4,4
4,5
4,6
0 10 20 30 40 50 60 RW04 P06029 RW06 P06030 RW02 P06039
Source : Auteur, 2007
D’ après la figure n° 32, les relevés d’OD des raceways RW04 P06029 et RW06
P06030 semblent adopter une même allure par rapport à celle adoptée par RW02 P06039.En
effet, les valeurs enregistrées pour le RW02 P06039 sont relativement plus élevées que celles
des RW04 P06029 et RW06 P06030 pendant les quatre premiers jours du cycle. Puis les pics
44
journaliers des valeurs d’ OD de ces derniers entament une certaine hausse alors que ceux
RW02 P06039 diminuent légèrement durant trois successifs. Enfin, les valeurs de RW02
P06039 tendent à se stabiliser tandis que celles des deux autres ne font que baisser pour
n’augmenter qu’à la fin du cycle.
Figure n°32 : Oxygène dissous des cycles correspondant à la modalité de TAN 0,8
3,60
3,80
4,00
4,20
4,40
4,60
4,80
5,00
0 4 8 12 16 20 24 28 32 36 40 44 48 52 56 60 64 68 72
Oxygène dissous
RW05 P06054 RW14 P06011 RW10 P06031
Source : Auteur, 2007
Les courbes d’évolution d’OD des RW05 P06054 et RW10 P06031 présentent une
certaine similitude. Les valeurs d’OD augmentent légèrement tout au début du cycle pendant
les 4 premiers jours du cycle pour baisser un peu au milieu du cycle. L’OD entame une faible
hausse pour descendre de nouveau vers la fin du cycle. Malgré cette similitude, les valeurs
d’OD du RW10 P06031 sont un peu plus élevées que celles de RW05 P06054.
Les valeurs d’OD du RW14 P06011 ne sont pas complètes. L’allure de la courbe ressemble à
celle des 2 autres. Cependant les valeurs enregistrées à la fin d’élevage sont plus élevées.
Figure n°33 : Oxygène dissous des cycles correspondant à la modalité de TAN 1,2
3,80
3,90
4,00
4,10
4,20
4,30
4,40
4,50
4,60
0 4 8 12 16 20 24 28 32 36 40 44 48 52 56 60
Oxy
gène
disso
us
RW02 P06058 RW11 P06003 RW15 P06052
Source : Auteur, 2007
45
Les relevés des valeurs d’OD du RW11 P06003 sont aussi incomplets, les valeurs
enregistrées durant la première moitié du cycle sont relativement plus élevées que celles
constatées durant la seconde moitié. Une baisse constante est notée tout au long de cette
période.
Les relevés du RW15 P06052 tendent à la hausse d’une manière globale. Cependant,
au milieu du cycle, une légère baisse est constatée.
Pour le RW02 P06058, une allure semblable est constatée sauf que la baisse du niveau
d’OD se présente seulement vers la fin du cycle.
Certains résultats n’ont pu être rapportés dans ces figures par suite de la défaillance de
l’oxymètre.
Un faible niveau d’OD déprime le système immunitaire des crevettes et peut entraîner
des infections bactériennes qui sont souvent le résultat final des mortalités des crevettes
(FLEGEL et al, 1995).
BOYD, en 1989, a rapporté que les fortes températures et concentrations des matières
organiques dans le fond réduisent les concentrations d’oxygène dissous en milieu d’élevage
(CLIFFORD, 1992), et ils sont largement impliqués dans les brusques manifestations de
diverses maladies causées par des pathogènes opportunistes (LIGHTNER, 1992). Ces
informations suggèrent que le déficit en OD peut souvent être la conséquence première cause
de mortalité de crevette en milieu d’élevage. Des fluctuations excessives des facteurs
abiotiques comme l’oxygène, salinité et température peuvent augmenter la susceptibilité des
maladies des crevettes (KAUTSKY et al, 2000) cité par (HUGUES et al, 2006).
3.4 Qualité de postlarves
Tableau 4 : Corrélation entre les notes Aquastar et les performances zootechniques
CR_JR S_RW Coefficient de Corrélation 0,399 -0,393 NOTAQ_ECLO Sig 0,081 0,086
Spearman's rho N 20 20 Coefficient de Corrélation -0,001 -0,218 NOTAQ_BES Sig 0,996 0,343 N 21 21
Corrélation est significative au seuil 0,05.
Source : Auteur 2007
L’analyse du tableau de corrélation ci-dessus ne fournit aucune corrélation
significative entre les notes Aquastars des deux sites et les performances zootechniques des
46
cycles. Les notes ne constituent d’indicateurs fiables des performances des postlarves durant
leurs stades de nurseries.
La variation de la qualité de postlarves peut avoir une influence sur la performance
future en nurseries ou en grossissement. Les tests de résistance au stress ont été largement
utilisés dans l’aquaculture des crustacées comme mesure de contrôle de qualité (passé en
revue par FEGAN 1992). Une critique générale est que les a roches employées manquent des
critères clairs ou de justification pour la méthodologie et il y a peu de preuve quantitative
d'une corrélation entre les résultats des tests et les performances futures en grossissement. En
1998, SAMOCHA et al ont décrit un protocole utilisé dans le développement du test de
résistance au stress des postlarves de Penaeus vannamei (Boone) de différents âges, en
utilisant le formol et la réduction de salinité. Au commencement, les valeurs DL50 ont été
calculées pour une gamme d’âges de PL pour établir l'effet de l'âge. Et de là, à partir des
valeurs obtenues, des concentrations d'exposition recommandées de formol et de salinités ont
été indiquées (MAC NIVEN et al, 2000).
BAUMANN et al, en 1990, ont rapporté une bonne performance des postlarves qui ont passé
leurs tests de stress au formol et à la salinité. Mais, ils n'ont pas présenté des résultats
d’analyse statistique. BRIGGS, en 1992, a décrit une méthodologie de test basée sur une
combinaison de la réduction de température et de salinité pour le Penaeus monodon (Fab.)
sans tenir compte des différences relatives d'âge dans la capacité d’osmorégulation (MAC
NIVEN et al, 2000).
Durant des décennies passées, les tests de stress ont été utilisés comme méthode
d’évaluation. Malgré l’appel à ces tests de stress, il y a peu ou aucune preuve quantifiable
confirmant la liaison entre la performance fournie par un test particulier et la performance
future en nurserie ou en bassin (FEGAN 1992).
L’aptitude des postlarves à résister à un test particulier peut être liée à leur âge qu’à la
variation de la qualité de postlarves.
Par exemple, la tolérance ou la fluctuation de salinité s’améliore à mesure que les postlarves
croissent. Ceci est dû au développement des branchies et à l’amélioration de la capacité
d’osmorégulation.
D’autres recherches ont étudiées en détail la liaison entre les mesures portées sur la
qualité de PL et les résultats en bassin. Pour conclure, d’autres facteurs comme l’alimentation,
la qualité de l’eau, l’effet des saisons semblent avoir un rôle dominant (RIGOLET et al, 1999
cité par LEE et al, 1992).
47
Bien qu’il y ait peu de consensus sur les traits caractéristiques les plus importants dans
la détermination de la qualité de postlarves, certaines mesures de contrôle qualité tiennent une
place importante pour s’assurer qu’une écloserie produit des postlarves adéquates.
Une combinaison d’observation microscopique de postlarves et au moins d’un stress
test peut former une base d’informations essentielles. Et cela aide dans l’élimination des lots
susceptibles de compromettre la performance future.
3.5 Influence des autres paramètres
Ces paramètres sont constitués par la densité initiale, la durée d’élevage, la quantité de
microparticules et d’Artemia.
3.5.1 Influence de DTE INI et DUREL sur la survie
Figure n°34 : Variation de survie en fonction de DTE INI et DUREL
5
7
9
11
13
1517
19
21
23
25
RW
02 P
0605
8
RW
05 P
0603
4
RW
02 P
0603
9
RW
15 P
0605
2
RW
15 P
0600
7
RW
04 P
0601
5
RW
10 P
0603
1
RW
05 P
0605
4
RW
14 P
0605
1
RW
07 P
0605
3
RW
04 P
0602
9
RW
06 P
0603
0
RW
11 P
0605
0
RW
15 P
0603
6
RW
06 P
0601
6
RW
14 P
0603
5
RW
11 P
0600
3
RW
13 P
0601
7
RW
11 P
0601
8
RW
06 P
0604
4
RW
14 P
0601
1
C yc le d e s ra ce w a ys
Den
sité
initi
ale
(Pls
/l)
0
0 ,2
0 ,4
0 ,6
0 ,8
1
1 ,2
Sur
vie
en fi
n d'
élev
age
D U R _E L
D TE _IN IN B L
S _R W
Source : Auteur, 2007
DUR_EL : durée d’élevage ;
DTE_INIBL : Densité initiale.
Le graphe de la figure ci dessus fait apparaître les survies en fin d’élevage avec leurs
densités initiales d’ensemencement correspondantes suivant les durées d’élevage croissantes
des cycles des raceways. D’une manière générale, les allures des pics de survie et de densité
initiale d’ensemencement s’opposent.. Un pic d’accroissement de survie correspond
généralement à un pic renversé pour la densité.
La survie des PLs pour des cycles à densité relativement élevée est typique des
cadences de production. Des taux de survie élevés observés pour des faibles densités sont
probablement dus à une combinaison des facteurs liés à une plus courte durée d’élevage, une
48
survie dépendant de densité et une réduction de mortalité après les 4 premiers jours
d’ensemencement. Ceci est aussi en accord avec les résultats observés dans les conditions de
production du site. En plus d’excellent taux de survie de crevettes juvéniles récoltées, pour les
faibles densités d’élevage, les crevettes juvéniles présentent aussi un poids élevé pour une
même durée d’élevage. C’est le cas des cycles présentés ci-dessous et tant d’autres sur la
figure n°35.
Tableau 5 : Influence de DTE_INI sur le poids final des Pls
CYCLECOMPLET DTE_ININBL PM_FIN AGE_FIN SR_W RW05 P06054 8,66 0,039 22 0,73 RW14 P06051 12,85 0,033 21 0,94 RW07 P06053 15,65 0,039 23 0,85 RW04 P06029 18,48 0,035 20 0,82 RW06 P06030 20,12 0,031 20 0,86 RW11 P06050 20,57 0,039 21 0,77
Source : Auteur, 2007
Les valeurs prises des DTE_INI de la figure ci-dessus ont été classées comme suit en
vue de réaliser une ANOVA.
Tableau 6 : Survie correspondant aux modalités de DTE_INI
DTE_INI2 Freq. Moyenne (S_RW) <12 11 0,86
entre 12- 20 3 0,80 >20 7 0,85 Total 21
Source : Auteur, 2007
D’après ce tableau, les postlarves stockées aussi bien à une plus faible densité qu’à
une plus forte densité présentent un bon taux de survie.
Les résultats montrent que les différences de survie liées aux DTE_INI ne sont pas
statistiquement significatives. Le degré de signification de F, pour une valeur de 0,62 de cette
variable est de 0,5495. En d’autres termes, il y a seulement 0,5495 de chance sur 100 que
l’hypothèse nulle soit vérifiée.
Parmi les divers paramètres physicochimiques considérés, seule l’influence de DTE-
INI sur l’AMNI-MOY est significative. Cette influence n’est que moyenne et s’exerce au
détriment d’une densité initiale de plus en plus élevée.
49
3.5.2. Influence d’ARTMP sur la croissance
Figure n°35 : Croissance journalière correspondant aux ARTMP
0
50000
100000
150000
200000
250000
300000R
W14
P06
035
RW
02 P
0605
8
RW
15 P
0603
6
RW
05 P
0605
4
RW
05 P
0603
4
RW
14 P
0605
1
RW
02 P
0603
9
RW
15 P
0605
2
RW
04 P
0601
5
RW
07 P
0605
3
RW
06 P
0603
0
RW
04 P
0602
9
RW
11 P
0605
0
RW
06 P
0601
6
RW
10 P
0603
1
RW
06 P
0604
4
RW
15 P
0600
7
RW
11 P
0601
8
RW
13 P
0601
7
RW
11 P
0600
3
RW
14 P
0601
1
Cycles des raceways
Qua
ntité
d' A
RT
MP
0
1
2
3
4
5
6
7
8
9
Cro
issa
nce
jour
naliè
re (
mg/
j)
ARTMP
CR_JR
Source : Auteur, 2007
ART_MP = Quantité de microparticules et d’Artémia.
Les valeurs prises des ART_MP de la figure ci-dessus ont été classées comme suit en
vue de réaliser une ANOVA.
Tableau 7 : Moyenne des croissances journalières correspondant aux modalités d’ARTMP
ART_MP moyenne(CR_JR) <50000 3,02
Entre 50000 et 100000 3,72 >100000 5,41
Source : Auteur, 2007
Pour la quantité de microparticules et d’Artémia, on a respectivement les valeurs de
F=4,21, avec le degré de signification correspondant à 0,0317. Cette valeur est inférieure à
5%.
Il existe donc au moins une différence significative au sein des différents niveaux de ces
paramètres.
La quantité de microparticules et d’Artémia, au niveau 0 ne donne pas la même
croissance que le niveau égal à 100000, avec une différence de croissance de 2,39085 pour
une probabilité de 0,030.
50
D’après le tableau 12, la modalité d’ARTMP correspondant à 100000 donne une
croissance plus élevée (5,4136) que celle de 50000 avec une croissance de 3,51005 (p<0.05).
Il n’y a aucune différence significative de croissance pour la modalité 0 et 50000 (p>0.05).
3.5.3. Influence de DUR_EL sur la croissance
Figure n°36 : Croissance journalière correspondant aux DUR_EL
0
2
4
6
8
10
12
14
16
18
RW02
P060
58
RW05
P060
34
RW02
P060
39
RW15
P060
52
RW15
P060
07
RW04
P060
15
RW10
P060
31
RW04
P060
29
RW06
P060
30
RW11
P060
50
RW14
P060
51
RW07
P060
53
RW05
P060
54
RW11
P060
03
RW06
P060
16
RW14
P060
35
RW15
P060
36
RW11
P060
18
RW13
P060
17
RW06
P060
44
RW14
P060
11
Cycle des raceways
Dur
ée d
'éle
vage
0
1
2
3
4
5
6
7
8
9
Cro
issa
nce
jour
naliè
re (
mg/
j)
DUR_EL
CR_JR
Source : Auteur, 2007
DUR_EL = Durée d’élevage
Une classification des DUR_EL selon le modèle suivant est réalisée en vue d’une
ANOVA.
Tableau 8 : Moyenne des croissances journalières correspondant aux modalités de DUR_EL
DUR_EL Moyenne (CR_JR) ≤10 3,10
[10 ; 12[ 3,98 [12 et 14[ 3,35 [14 ; 16[ 6,67 ≥16 2,25
Source : Auteur, 2007
Pour la durée d’élevage et la quantité de microparticules et d’Artémia, on a
respectivement les valeurs de F=4,85, avec les degrés de signification correspondant à
0, 0094. Cette valeur est inférieure à 5%.
Il existe donc au moins une différence significative au sein des différents niveaux de ce
paramètre. Le test de Dunn BOFERRONI montre que la croissance pour les modalités de
durée d’élevage 8 et 12 diffère significativement de celle de 14 au seuil de 5%. Les
51
différences de croissance sont respectivement de 3,57 et 3,31 pour de probabilité respective de
0,031 et 0,01. D’après le tableau 13, la croissance la plus élevée (6,67) se produit pour la
modalité de DUR_EL égale à 14. La seconde performance est donnée par la modalité égale à
10 (3,98) (p<0.05). Les croissances obtenues pour les modalités de DUR_EL 8 et 10 ne se
distinguent pas significativement les unes des autres (p>0.05).
3.5.4 Influence des paramètres d’expédition sur les performances zootechniques
Par contre, les autres paramètres relatifs aux expéditions des postlarves entre autres les
charges de transport, la durée de transport, la durée d’acclimatation, les variations de note
Aquastar entre les écloséries et le site ne décèlent aucune corrélation significative avec les
performances zootechniques (p > 0.05).
Tableau 9 : Corrélation entre les paramètres d’expédition et les performances zootechniques
CR_JR S_RW
CHG_PORT Corrélation de
PEARSON -0,17 0,27
Sig. 0,44 0,23 N 21 21
DNOTAQ
Corrélation de PEARSON
-0,37 0,19
Sig. 0,10 0,41 N 20 20
DUR_ACL
Corrélation de PEARSON
0,11 -0,04
Sig. 0,61 0,85 N 21 21
DUR_PORT
Corrélation de PEARSON
-0,25 0,30
Sig. 0,26 0,18 N 21 21
Source : Auteur 2007
CHG_PORT : Charge de transport de PL en g/l ;
DUR_PORT : Durée de transport ;
DUR_ACL : Durée de l’acclimatation ;
DNOTAQ : Variation de la note Aquastar.
Corrélation est significative au seuil 0,05.
L’absence de corrélation entre les paramètres d’expéditions et les performances
zootechniques des Pls indiquent les paramètres d’expéditions ne constituent pas des
indicateurs satisfaisants de qualité de Pls pour les données analysés.
52
Les résultats de l’étude n’ont pas relevé de lien significatif entre les performances
zootechniques avec le système de notation de la qualité de Pls, et le test de stress.
Les variables de qualité de l’eau peuvent être exclues pour causer des effets majeurs sur la
croissance des PLs. Par contre, seule la température a montré une différence significative de
survie de Pls pour les paramètres physicochimiques considérés.
En outre, l’analyse des données a montré que la densité initiale, les paramètres d’expédition,
la durée d’élevage, la quantité de microparticule et d’Artémia n’ont aucun effet sur les taux
de survie. Par ailleurs, l’influence de ces deux derniers facteurs est déterminante sur la
croissance journalière de Pls.
3.6. Recommandations
Elles sont de divers ordres :
- Faire parvenir en temps requis les microparticules nécessaires pour les cycles
d’élevage.
- Respecter l’heure de distribution d’aliments et la composition des microparticules
des rations.
- Faire des études sur des possibles relations entre la mue des postlarves et le cycle
lunaire.
- Eviter les transports de longue durée des postlarves.
- Etablir un planning de personnel satisfaisant aux besoins pour les périodes de pleines
activités.
Un système de chauffage est requis pour obtenir une croissance constante tout au
long de l’année au sein de la nurserie. Des études sont nécessaires pour déterminer le système
le plus économique de chauffage des RW.
Des recherches doivent être menées pour déterminer comment créer un système stable
de production avec des algues et détritus riches.
Il s’avère aussi nécessaire d’étudier la capacité des substrats artificiels dans la
réduction de cannibalisme des postlarves.
S’il est possible, inclure d’autres indicateurs de qualité dans l’évaluation de la qualité
des postlarves comme le degré de mélanisation, l’état des hépatopancréas,.la présence de
virus.
La condition générale des hépatopancréas est principalement indiquée par la taille
globale et le nombre de vacuoles lipidiques. La présence d’hépatopancréas relativement
53
grande avec un grand nombre de vacuoles est considérée comme un signe de bonne santé ; par
contre les petits hépatopancréas contenant peu de vacuoles lipidiques est un signe d’une
alimentation inadéquate. Ce qui nécessite une amélioration de l’alimentation avant
l’expédition pour augmenter la qualité des postlarves.
La mélanisation se produit souvent au niveau des membres cannibalisés où là les
infections bactériennes se sont produites. Une mélanisation excessive est un sujet
d’inquiétude et exige un traitement de la qualité de l’eau et une amélioration de
l’alimentation. Et parfois, cela demande une réduction de la densité de mise en charge pour
réduire le cannibalisme et la charge bactérienne.
Il existe des produits pharmaceutiques à base de plantes qui ont la propriété
d’augmenter la croissance, l’appétit et la résistance de stress des postlarves. Des postlarves de
Penaeus monodon ont été alimentées d’un régime à base de 5 différentes plantes dotées de
ces propriétés pharmaceutiques, préparé à partir de Hygrophila spinosa, Withania somnifera,
Zingiber officinalis, Solanum trilobatum, Andrographis paniculata, Psoralea corylifolia et de
l’huile de foie de morue.
Ces produits sont d’abord utilisés dans l’enrichisssement des Artemia avant de les
donner aux postlarves. Une étude comparative est faite pour tester l’efficacité du produit sur
des groupes de postlarves élevées avec de l’Artemia enrichi avec le composé d’une part et non
enrinchi d’autre part. L’usage de ces produits est d’une immense utilité dans l’élevage des
crevettes. Cette pratique va réduire les effets secondaires provoqués par l’utilisation des
composés chimiques synthétiques. Par conséquent, les alternatives offertes par ces composés,
à travers le taux de survie, de croissance, et la résistance au stress élevé, s'avèrent très
efficaces dans la crevetticulture. Grâce à ces produits, la qualité des postlarves est désormais
garantie.
3.7 Plan d’aménagement
L’ACB est bien situé pour profiter sur les technologies courantes déjà employées dans
d’autres pays par la synthèse des “ best practise ” prônée par AQUALMA pour développer
une industrie d’aquaculture qui a le potentiel d’être profitable. En particulier, l’utilisation des
serres à raceway doté d’un système avec recyclage d’eau fournit un moyen de réaliser un
degré plus élevé de bio-sécurité.
54
− Pour un “ turn over ” plus élevé.
La nurserie en serre peut augmenter davantage le nombre de cycle de production en
grossissement (“ turn over ”) en réduisant le temps de culture pour la taille commercialisable
dans les bassins de grossissement.
Un système de grossissement à deux phases utilisant une phase de nurserie plus
rallongée que celle adoptée doit alors su rimer la phase de pré grossissement pour ensemencer
les juvéniles directement dans les bassins de grossissement. Par conséquent, les bassins de
grossissement sont utilisés plus efficacement. Avant de se lancer dans ce nouveau système,
une étude comparative concernant la rentabilité d’un système actuel avec le système préconisé
s’avère importante.
Deux systèmes de production différents doivent être évalués dans cette production
de juvéniles :
-un système à phase unique (ensemencement direct pour toute la durée de nurserie) et ;
-un système à 2 phases de production.
3.7.1 Comparaison des 2 systèmes de production
Dans le premier système, la densité de mise en charge dans les raceway est basée sur
une densité finale de transfert désirée plus un surplus de PLs pour compenser d’éventuelle
mortalité en cours d’élevage. Initialement, le système biomasse est extrêmement bas pour la
capacité d’accueil du système, qui est seulement atteint à la fin du cycle de production.
Dans le deuxième système, le processus de production est divisé en deux phases
distinctes ; chaque phase se déroule dans différents raceway. Les PLs occupent typiquement
chaque moitié de la période totale d’élevage dans chaque raceway destiné à leur élevage.
L’objectif d’un tel système est d’utiliser des surfaces de production disponibles plus
efficacement en opérant plus près de la capacité d’accueil du système pour un plus grand
pourcentage de période d’élevage.
Dans un système de production à phase unique, le système de biomasse est très bas et
est fonction de la capacité d’accueil de raceway pour les deux de cycles d’élevage. Le nombre
des PLs ensemencées dans la section de nurserie est déterminé par la densité finale fixée à
l’avance avec un surplus de PLs pour compenser d’éventuelle mortalité de PLs.
Le système de production à deux phases permet un niveau de production plus élevé
qui peut être atteint dans un système de production à phase unique. Chaque section du
système de production à deux phases est ensemencée à une densité qui croît avec la capacité
55
d’accueil pour la surface allouée dans chaque moitié du temps qu’il faut pour les crevettes en
système à phase unique pour atteindre la capacité d’accueil.
L’espace des raceways est utilisé plus efficacement que le système à phase unique
dans lequel les raceways sont maintenus à faible densité, tôt dans la nurserie de la production
d’un système à 2 phases.
3.7.2. Système d’aquaculture avec recyclage
Un Système d’aquaculture dans lequel l’eau est recyclée est le système de production
le plus intensif en aquaculture marine. Ce système à travers le traitement et la réutilisation de
l’eau peut utiliser moins d’eau qu’exigent les bassins pour produire les rendements
semblables. Par conséquent, avec l’augmentation du souci de conservation de la ressource et
la demande de la qualité des produits aquacoles, ce système présente beaucoup d’intérêts.
Bien qu’il y ait eu peu de rapports sur la rentabilité de ce système de recyclage à l’échelle
commerciale, la viabilité économique d’élevage des crevettes juvéniles dans ces systèmes fait
l’objet de controverse. Néanmoins, ces systèmes sont généralement chers à construire. Ces
systèmes ne sont pas employés sur une base répandue que lorsque les coûts totaux de
production des PLs soient comparables aux coûts de production dans les bassins et d’autres
systèmes semblables. Le défi posé par ce système requiert un développement d’un système
qui maximise la capacité de production par unité de capital investi mais va maintenir la
fiabilité sur le contrôle de l’environnement.
Les principaux avantages de l’utilisation de ces systèmes de recyclage en aquaculture
viennent du faible besoin d’eau, de la possibilité de contrôler la température de l’eau, de la
capacité de contrôler la qualité de l’eau, et de la flexibilité aux conditions atmosphériques
défavorables. Par conséquent, l’aquaculteur à la capacité de mesurer et contrôler la plupart des
variables qui composent l’environnement du système de recyclage et maximise la production
de crevettes juvéniles.
Les paramètres environnementaux critiques de l’eau du système de production
incluent les concentrations de l’oxygène dissous, d’ammoniaque non ionisé, de l’azote nitrite,
du nitrate, de l’anhydride carbonique, du pH, et de l’alcalinité. Les sous-produits du
métabolisme de crevettes juvéniles incluent l’anhydride carbonique, l’ammoniaque dissous,
les substances particulaires, et les fèces solides dissous. Grâce au système de recyclage des
réservoirs, une qualité d’eau appropriée est maintenue en pompant l’eau du réservoir à travers
des équipements de filtration et d’aération spécialisés. Des composants de traitement de l’eau
doivent être conçus pour éliminer les effets de ces déchets.
56
Il y a quatre principaux composants de ces systèmes : l’enlèvement de déchets solides,
le contrôle de l’ammoniaque dissous et de nitrite, le contrôle de gaz dissous en suspension et
la désinfection.
Les déchets solides incluent les solides précipitables et en suspension. Les solides
précipitables tombent au fond des réservoirs et sont siphonnés et jetés hors du système. Les
solides en suspension sont enlevés par des filtres de sable. Le contrôle d’ammoniaque dissous
et de nitrite est accompli avec un biofiltre qui dépend des bactéries pour enlever ces déchets
azotés. Le contrôle de gaz dissous implique un apport d’oxygène dissous de l’élimination de
l’anhydride carbonique. Le dernier composant d’un système de recyclage est la désinfection
des microorganismes pathogènes qui peuvent être accomplis avec de l’ozone ou l’irradiation
ultra-violette.
3.7.3. Filtrage des effluents
De nombreux mollusques sont utilisés pour filtrer les eaux rejetées par l’aquaculture et
constituent ainsi des ateliers secondaires disposés en aval des installations de production
principale. L’utilisation des huîtres en tant que filtre naturel des effluents d’aquaculture en est
un exemple.
Une étude doit être lancée par la ferme de crevettes pour une éventuelle ostréiculture
dans les environs d’Ankokoabo. Le premier objectif est d'exploiter le potentiel des huîtres qui
vivent dans les environs de la ferme de crevettes. Cette manière d’élever les huîtres peut être
considérée comme potentiellement avantageuse pour les deux industries. Les aquaculteurs
sont intéressés par l’emploi des huîtres pour filtrer les déchets de l'effluent des bassins avant
leur recyclage ou leur décharge. Les oestréoculteurs sont aussi intéressés par l’augmentation
de la croissance des huîtres en utilisant la forte biomasse de phytoplancton contenu dans
l'effluent de l'étang des crevettes.
Les objectifs de l'étude sont de :
- mesurer la capacité de biofiltration des huîtres et leurs effets sur la qualité de l'eau
de l'effluent des bassins d'aquaculture et ;
- déterminer la croissance des huîtres élevées dans les canaux effluents de l'étang par
rapport à un élevage traditionnel.
57
Cette étude est réalisée dans le but d’analyser si le test de stress et les variations de la
note Aquastar constituent des facteurs responsables de fluctuations de la survie et de la
croissance dans les conditions d’élevage du site à travers les données disponibles. Les
données présentent certains inconvénients du fait de certains mélanges des différents lots de
postlarves dans un même raceway ; cette situation intervient dans l’obligation de remplir un
nombre minimal de postlarves pour un raceway, ou bien dans le cas contraire d’élever un
excédent de production de post larve provenant des centres d’élevage larvaire. La
disponibilité d’aliment conduit aussi à une certaine différence de traitement entre certains
élevages. Enfin, l’écart de comptage de postlarves définies par le nombre annoncé des centres
d’élevage larvaire et le comptage au niveau de la nurserie constitue aussi un des facteurs
essentiels des taux de survie et de mortalité des postlarves.
58
CONCLUSION GENERALE
Plusieurs facteurs affectent la qualité des postlarves. La qualité et la quantité
d’alimentation, la qualité de l’eau (la température, la salinité, l’ammoniac dissous, l’oxygène
dissous), les maladies et les mauvaises procédures de gestion peuvent tout avoir un impact sur
la qualité des postlarves produites. A travers l’analyse des données utilisées, la nurserie n’a
pas pratiquement rencontré de problèmes des postlarves affaiblies ou mourantes lors de leur
réception à la ferme. Les indicateurs de qualité utilisés ont permis de déterminer la sévérité de
fouling bactérien, de différentes déformations, des états du ratio muscle /tube digestif, du
chromatophore, de l’opacité du muscle des postlarves. La qualité des postlarves fournies par
le système de notation de ces indicateurs et le test de résistance au stress ne présentent pas une
corrélation significative avec la survie finale en nurserie.
D’une manière générale, la survie finale des raceway n’est affectée ni par la qualité
initiale des postlarves ensemencées ni par les conditions dans lesquelles s’effectue leur
acclimatation ni par les paramètres physicochimiques, à l’exception de la température
moyenne. L’analyse de données a montré que la quantité de microparticules et d’Artemia, la
durée d’élevage, sont à l’origine des différences de croissance des postlarves parmi les divers
facteurs considérés.
Une quantité d’aliment plus importante, avec la modalité de 100 000 donne une plus
forte croissance que les autres modalités. Les postlarves élevées en moins de deux semaines
correspondant aux modalités inférieures à 14, présentent aussi une plus faible croissance que
celles soumises à une durée d’élevage plus prolongée. La notion de qualité des postlarves de
crevettes pénéides, qui sous-entend un potentiel de survie, est un paramètre resté longtemps
subjectif. Les critères zootechniques, les observations visuelles et la résistance aux chocs de
salinité peuvent être tout de même considérés comme des paramètres suffisants pour apprécier
la condition physiologique des postlarves sorties de la nurserie. Mais, ces techniques
nécessitent à être correctement évaluées si elles doivent être principalement utilisées dans
l’étude de la qualité de postlarves.
59
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- 1 -
ANNEXES
Annexe I : Données brutes des paramètres physicochimiques des cycles
RW11 P06018
Date Age PM Paramètres physico -chimiques
(mg) T°C Oxygène Salinité pH MES AnNI TAN
11-févr. P09 4
90
32,9 12 34 8,8
12-févr P10 4,48
34,1 8,5
33,7 12 90 34,7 34,3 13 7,1
13-févr. P11 5,71
33,9 7,8
33,7 13 90 35,2
15 7,7
14-févr P12 6,85
7,8
15 85 7,7
15-févr. P13 9,63
7,8
0,026 0,62 15 75 16 7,9
16-févr P14 11,56
7,8
16 75 16 7,7
17-févr. P15 15,34
7,9
0,025 0,44 16 70 16 7,8
18-févr P16 19,05
7,8
16 7,9 45 16
19-févr. P17 24,91
7,3
0,007 0,62 16 60 16 7,6
20-févr P18 27,18
7,4
16 55 16 7,4
21-févr. P19 34,16
7,3
0,026 1,56 17 60 7,5
22-févr P20 42,85
7,3
0,012 1,57 17 55 7,2
23-févr. P21 53,3
7,4
0,028 1,63 17 50 7,5
24-févr P22 60,2
7,1
0,04 1,28 20 55
25-févr. P23 86,07
0,011 1,04 22 50 7,3
- 2 -
RW13 P06017
Date Age PM Paramètres physico-chimiques
(mg) T°C Oxygène Salinité pH MES AnNI TAN
11-févr. P09 4,7
90
33,6 12 35,5 8,9
12-févr P10 5,64
35,2 8,7
35,2 12 90 35,8 33,5 13 7,4
13-févr. P11 6,71
32,8 7,8
36,7 13 90 36 15 7,8
14-févr P12 8,05
7,9
15 85 7,9
15-févr. P13 9,77
8
0,026 0,64 15 85 7,9
16-févr P14 11,72
7,9
15 80 16 7,8
17-févr. P15 19,13
7,9
0,022 0,38 16 7,9 75 16
18-févr P16 24,2
7,4
16 45 16 7,6
19-févr. P17 29,48
7,3
0,007 0,68 16 55 16 8,3
20-févr P18 35,59
7,4
16 60 16 7,4
21-févr. P19 44,68
0,052 1,93 17 60 7,4
22-févr P20 53
7,3
0,01 1,26 17 65 9,1
23-févr. P21 70,99
7,5
0,016 1,82 17 55 7,8
24-févr P22 80,64
7,1
0,03 1,5 20 60
25-févr. P23 105,42
0,013 1,17
- 3 -
RW10 P06031
Date Age
PM Paramètres physico-chimiques
(mg) T°C Oxygène Salinité pH MES AnNI TAN
18-mars P10 6,05
28,6 4,09 18 8,1
29 4,14
29,3 4,19 18 8,5
19-mars P11 6,05
29,4 4,2
29 4,14 18 7,9 90
0
29 4,14 8,2
20-mars P12 8,14
30,5 4,36 7,7
28,9 4,13 17 75
30,3 4,33
30,6 4,37 17
21-mars P13 9,44
31,1 4,44
30,4 4,34 16 75
30,5 4,36
30,7 4,39 15 7
22-mars P14 9,12
30,9 4,41
29,1 4,16 14 7,5 70
29,4 4,2
29,6 4,23 7,2
23-mars P15 12,54
0
0,024 0,78 27,8 3,97 13 7,5 70
0
0
24-mars P16 16,16
0
28 4 13 6,4 65
28,4 4,06
29,6 4,23 7,3
25-mars P17 20,19
29,1 4,16
30 4,29 7,1 60
29,6 4,23
29,5 4,21 13 7,4
26-mars P18 25,16
29,7 4,24
28,5 4,07 13 7 55
29,7 4,24
30,5 4,36 12 6,5
27-mars P19 28,72
30,7 4,39
0,026 1,56 29,9 4,27 12 7,3 55
0
32 4,57 13
28-mars P20 35,72
31,6 4,51
30,1 4,3 7,9 55
31 4,43
30,6 4,37 11 7,7
29-mars P21 48,5
30,6 4,37 7,6
30,1 4,3 7,9 45
30,4 4,34
30,8 4,4 14 7,8
- 4 -
RW14 P06011
Date Age PM Paramètres physico-chimiques
(mg) T°C Oxygène Salinité pH MES AnNI TAN
25-janv. P08 4,95
7,7
85 30,5 4,36 30,6 4,37 18 7,8
26-janv P09 5,09
0 7,8
0 90 30,6 4,37
0 16 7,4
27-janv. P10 6,54
0 7,4
30,1 4,3 90 0 0 15 7,8
28-janv P11 7,52
0 7,7
29,8 4,26 85 29,8 4,26
0 15
29-janv. P12 8,18
0
0,021 1,05 0 7,3 80 0
29,9 4,27 14
30-janv P13 9,41
0
29,6 4,23 50 0
29,5 4,21 13
31-janv. P14 12,21
0
0,011 0,55 0 60 0
29,1 4,16 10 7,6
01-févr P15 15,28
28,5 4,07 7,4
0,01 1,15 0 60 0 0 8 7,2
2-févr. P16 21,78
27,2 3,89
0,009 0,55 27,6 3,94 60 0 0 10 8
03-févr P17 39,62
0 7,4
28,5 4,07 44 28,8 4,11
0 10 7,6
4-févr. P18 46,02
0 7,5
0,007 0,65 0 50 28,9 4,13
0 10 8,3
05-févr P19 49,5
0 7,6
0 50 0
30,1 4,3 10 8,2
6-févr. P20 54,5
0 7,6
0,023 1,15 0 50 0
31,3 4,47 10 8,2
07-févr P21 56,1
0
0 40 31,3 4,47 32,5 4,64 10 7,9
8-févr. P22 67,3
32,9 4,7 7,8
0,008 1 32,5 4,64 45 32,5 4,64 34,5 4,93 10 7,9
09-févr P23 68,6
32,4 4,63 8
34,5 4,93 45 0 0 10
10-févr. P24 74,69
32,8 4,69 8,1
32,8 4,69 45 33,4 4,77
18 7,3
- 5 -
RW04 P06015
Date Age PM Paramètres physico-chimiques
(mg) T°C Oxygène Salinité pH MES AnNI TAN
9-févr. P09 3,66
10 8,7 90
10-févr P10 4,21
30 8,3
30,4 10 90 30,9 31,3 11 8,1
11-févr. P11 5,05
30,7 8
28,4 11 85 30,7 32,3 11 8,1
12-févr P12 6,21
32,2 8
32 11 85
33,4 33,6 13 7,8
13-févr. P13 7,47
32,5 7,7
0,022 1,08 31,9 13 7,9 85 35,4 13 7,7 36,5 16 7,8
14-févr P14 9,31
7,8
16 7,7 85 7,7 15 8,4
15-févr. P15 10,21
7,8
0,023 0,86 16 7,6 80 16 8,6
16-févr P16 13,6
7,7
16 7,7 60 16 8,6
17-févr. P17 18,04
7,8
0,034 0,7 16 7,7 55 16
18-févr P18 21,62
7,3
17 7,6 50 17 8,3
19-févr. P19 27
0,007 1 19 7,6 45 7,4
20-févr P20 30,7
19 7,6 50 7,3
- 6 -
RW06 P06016
Date Age PM Paramètres physico-chimiques
(mg) T°C Oxygène Salinité pH MES AnNI TAN
9-févr. P08 3,59
10
10-févr P09 4,13
30 8
31 10 90 32,6 32,9 12 8,4
11-févr. P10 4,96
32,1 8,3
29,5 12 90 30,9 32,7 12 8
12-févr P11 5,39
32,6
32,7 12 90 33,8 33,9 14 7,6
13-févr. P12 6,41
33,5 7,8
0,02 0,98 35,3 14 85 37,3 14
16 7,7
14-févr P13 7,5
7,8
16 85 16 8,4
15-févr. P14 9
7,8
0,036 0,86 16 80 16 8,3
16-févr P15 13,7
7,8
16 65 16 8,6
17-févr. P16 19,64
7,8
0,03 0,84 17 7,7 60 17
18-févr P17 21,45
7,3
17 50 17 8
19-févr. P18 25,58
7,2
0,012 1,14 16 50 17 8
20-févr P19 27,43
7,4
17 45 17 7,4
21-févr. P20 34,33
7,3
0,017 1,59 17 45 8
22-févr P21 45,08
7,4
0,013 1,61 17 55 7,5
- 7 -
RW05 P06054
Date Age PM Paramètres physico-chimiques
(mg) T°C Oxygène Salinité pH MES AnNI TAN
16-avr. P10 4,50
75,0
27,60 3,94 27,80 3,97 15 8,5
17-avr P11 5,22
27,40 3,91 8,4
26,60 3,80 70,0 27,20 3,89 27,40 3,91 16 7,8
18-avr. P12 6,06
25,70 3,67 8,2
26,30 3,76 8,2 70,0 26,90 3,84 16 28,30 4,04 17
19-avr P13 7,03
27,40 3,91
26,80 3,83 19 65,0 27,60 3,94 8,1 28,40 4,06
20-avr. P14 8,72
28,00 4,00
27,50 3,93 19 7,7 60,0 28,10 4,01 28,90 4,13
21-avr P15 10,12
28,30 4,04
0,00 55,0 0,00
28,30 4,04 19
22-avr. P16 11,49
27,90 3,99
27,50 3,93 17 50,0 27,50 3,93 29,10 4,16 17
23-avr P17 13,70
28,80 4,11
27,70 3,96 50,0 0,00
29,30 4,19 19
24-avr. P18 15,62
28,90 4,13
28,10 4,01 19 45,0 28,90 4,13 29,40 4,20
25-avr P19 19,60
27,70 3,96
0,044 1,65 27,60 3,94 19 50,0 28,30 4,04 30,60 4,37
26-avr. P20 23,86
29,60 4,23
28,30 4,04 50,0 28,70 4,10
0,00 19
27-avr P21 28,57
29,00 4,14
0,001 0,25 27,80 3,97 19 55,0 28,50 4,07 29,00 4,14
28-avr. P22 35,39
28,00 4,00 22
0,008 1,15 27,90 3,99 20 50,0 28,30 4,04
22
- 8 -
RW 02 P06058
Date Age PM Paramètres physico-chimiques
(mg) T°C Oxygène Salinité pH MES AnNI TAN
19-avr. P13 6,80
85,0
28,30 0,00 15
28,50 0,00 8,1
20-avr P14 7,89
28,00 0,00 7,8
27,70 0,00 15 80,0
28,60 0,00
29,10 0,00
21-avr. P15 9,15
28,80 0,00
15 75,0
29,40 0,00
22-avr P16 11,67
28,80 0,00
28,00 0,00 16 75,0
28,20 0,00
29,60 0,00 16
23-avr. P17 14,20
28,90 0,00
27,70 0,00 70,0
27,80 0,00 18
24-avr P18 17,21
28,80 0,00
28,70 0,00 19 65,0
29,20 0,00
30,10 0,00
25-avr. P19 22,72
29,20 0,00
27,70 0,00 19 65,0
28,80 0,00
30,70 0,00
26-avr P20 27,93
29,70 0,00
0,036 1,35 28,10 0,00 19 60,0
29,40 0,00
19
27-avr. P21 36,63
29,70 0,00
27,90 0,00 19 55,0
29,10
29,80 4,26
- 9 -
RW11 P06003
Date Age PM Paramètres ph ysico -chimiques (mg) T°C Oxygène Salinité pH MES AnNI TAN
20-janv. P09 5,86
30,8 4,4 7,6 70
0 30,5 4,36 18 7,8
21-janv P10 6,74
30,6 4,37 7,4
30,6 4,37 65 30,7 4,39 31,8 4,54 16 8,2
22-janv. P11 7,75
0 7,3
0 70 0
31,6 4,51 15 7,7
23-janv P12 8,81
30,5 4,36 7,3
30,6 4,37 60 31 4,43
30,7 4,39 15 7,7
24-janv. P13 11,4
0 7,3
0,017 1 0 65
30,6 4,37 0 15 8,2
25-janv P14 13,11
0 7,6
0 70
31,1 4,44 31,9 4,56 13 7,8
26-janv. P15 21,23
0 7,5
0,012 1,56 0 65
30,6 4,37 0 14 8,1
27-janv P16 28,7
0 7,3
0,016 1,46 0 65
30,5 4,36 0 13 7,5
28-janv. P17 35,07
0 7,4
0,034 1,5 29,7 4,24 60 29,8 4,26
0 13
29-janv P18 41,25
0
0,019 1,6 0 7,2 80 0
31,7 4,53 11
30-janv. P19 46,95
0
0,018 2,1 29,2 4,17 40
0 28,5 4,07 11
31-janv P20 54,58
0
0,027 2,1 0 55 0
28,5 4,07 10 7,1
1-févr. P21 68,08
28,2 4,03 7
0,024 2,7 0 50 0 0 10 7,4
02-févr P22 71
0
0,016 2,1 0 50
27,4 3,91 10
- 10 -
RW15 P06052
Date Age PM Paramètres physico-chimiques
(mg) T°C Oxygène Salinité pH MES AnNI TAN
16-avr. P12 5,80
90,0
28,40 4,06 28,80 4,11 15
17-avr P13 6,23
28,50 4,07 8,0
28,60 4,09 70,0 28,30 4,04 16 28,60 4,09 8,3
18-avr. P14 7,81
27,90 3,99 8,1
28,00 4,00 8,2 70,0 28,50 4,07 16 29,00 4,14 16
19-avr P15 9,06
29,00 4,14
28,10 4,01 16 65,0 29,00 4,14 29,00 4,14 7,5
20-avr. P16 10,33
29,50 4,21 7,6
29,20 4,17 16 60,0 29,50 4,21 29,70 4,24
21-avr P17 12,27
30,10 4,30
55,0
30,00 4,29 17
22-avr. P18 17,14
30,00 4,29
29,10 4,16 17 55,0
29,90 4,27 19
23-avr P19 20,34
29,80 4,26
28,80 4,11 50,0
31,20 4,46 20
24-avr. P20 25,31
30,80 4,40
0,026 1,56 29,60 4,23 20 45,0 30,20 4,31 31,20 4,46
25-avr P21 29,85
31,00 4,43
0,031 2,00 30,00 4,29 20 45,0 30,70 4,39 31,00 4,43
26-avr. P22 39,94
30,90 4,41
0,024 2,20 29,90 4,27 45,0 30,30 4,33
16
- 11 -
RW15 P06036
Date Age PM Paramètres physico-chimiques
(mg) T°C Oxygène Salinité pH MES AnNI TAN
20-mars P08 4,49
18 90
31,1 4,44 18
21-mars P09 5,21
30,9 4,41
30 4,29 18 90
30,6 4,37 30,7 4,39 16 7,6
22-mars P10 6,04
31,1 4,44
30,1 4,3 15 7,6 85 30,2 4,31 30,4 4,34 7,3
23-mars P11 7,01
0
29,3 4,19 7,4 80
0 0 14 7,5
24-mars P12 7,92
0
28,2 4,03 14 6,5 80 30,2 4,31 30,2 4,31 7,2
25-mars P13 9,19
30,2 4,31
0,004 0,39 30,1 4,3 14 7 75 30,4 4,34 30,3 4,33 7,2
26-mars P14 12,29
31,1 4,44
30,1 4,3 14 6,9 70 30,7 4,39 30,6 4,37 7,5
27-mars P15 15,48
31,1 4,44
30,7 4,39 14 7,6 65
0 31,2 4,46
28-mars P16 18,2
30,6 4,37
30,5 4,36 12 7,7 55 31,4 4,49 31,9 4,56 8,7
29-mars P17 24,64
31,7 4,53
0,03 0,39 31,4 4,49 13 7,8 50 31,6 4,51 7,6 32,3 4,61 14
30-mars P18 29,39
31,2 4,46 7,6
31,1 4,44 14 65 32,5 4,64 32,2 4,6 14 8,4
31-mars P19 35,9
31,2 4,46 8,1
29,9 4,27 14 7,9 55 31,1 4,44 32,3 4,61 14 9
1-avr. P20 45,52
31,2 4,46
31,2 4,46 15 60 31,6 4,51
0
02-avr P21 49,82
30,9 4,41
31,1 4,44 15 8,6 55
0 31,7 4,53 7,9
0
- 12 -
RW05 P06034
Date Age PM Paramètres physico-chimiques
(mg) T°C Oxygène Salinité pH MES AnNI TAN
13-mars P09 4,89
90
28,7 4,1 28,6 4,09 18
14-mars P10 5,67
28,3 4,04
27,7 3,96 18 70 28,9 4,13 30,7 4,39 17 8,2
15-mars P11 6,58
29,4 4,2 7,4
29,3 4,19 90
0 30 4,29 16
16-mars P12 6,67
28,4 4,06 7,7
28,2 4,03 19 7,7 70 29,9 4,27 29,9 4,27 15
17-mars P13 7,74
30,2 4,31
29,3 4,19 65 29,7 4,24 29,7 4,24 14
18-mars P14 9,3
30,5 4,36 7,6
0,004 0,39 29,8 4,26 14 7,5 65 29,6 4,23 29,8 4,26 14 7,7
19-mars P15 10,79
31,1 4,44 7,4
29,8 4,26 14 7,5 65
0 31 4,43 14 8,2
20-mars P16 14
31,3 4,47 7,6
30,4 4,34 13 50 30,8 4,4 31,9 4,56
21-mars P17 18,58
31 4,43
30,4 4,34 14 65 30,4 4,34 30,5 4,36 13 7,1
22-mars P18 24,36
30,8 4,4
28,3 4,04 12 7,5 60 29,1 4,16 29,3 4,19
- 13 -
RW06 P06044
Date Age PM Paramètres physico-chimiques
(mg) T°C Oxygène Salinité pH MES AnNI TAN
2-avr. P11 6,28
28,9 4,13 12 8,3 90
03-avr P12 7,28
29 4,14 8,1
28,8 4,11 12 7,8 90 29,3 4,19 30,3 4,33 12 8,5
4-avr. P13 8,44
29,1 4,16 8
29,1 4,16 11 8 85 29,4 4,2 30,5 4,36 12 8,8
05-avr P14 9,79
29,4 4,2 12 8
29,1 4,16 8 80 29,5 4,21 10 30,9 4,41 8,7
6-avr. P15 15,6
28,9 4,13 7,9
29 4,14 85 0 0 10 8,8
07-avr P16 19,24
0 7,9
0,003 0,2 29 4,14 10 8 80
29,3 4,19 29,7 4,24 13 9,1
8-avr. P17 23,57
28,6 4,09 8,1
28,7 4,1 85 28,9 4,13 30,1 4,3 16 9,2
09-avr P18 30,73
28,9 4,13 8,1
0 70 0 0 16
10-avr. P19 38,37
0
29,9 4,27 7,4 29,3 4,19 30,5 4,36 15 8,2
11-avr P20 49,34
29,9 4,27 7,1
0,004 0,19 29,5 4,21 14 7,7
0 29,8 4,26 8,4
12-avr. P21 57
28,7 4,1 8,2
29,3 4,19 14 7,6 29,5 4,21 29,4 4,2 7,3
13-avr P22 68,17
29,2 4,17 7,2
29 4,14 7,6
28,8 4,11 7,6 28,7 4,1 7,6
14-avr. P23 81,08
28,5 4,07 7,4
27,9 3,99 16 7,4 28,1 4,01 7,4 28,3 4,04 19 7,7
15-avr P24 92,02
28 4 7,6
0,005 0,78 27,5 3,93 7,6 30 28 4
28,2 4,03 17 7,7
16-avr. P25 99,66
28 4 7,6
28,2 4,03 7,5 25 26,6 3,8 27,8 3,97 18 8,8
17-avr P26 115,03
27,3 3,9 8
27,7 3,96 30 28,4 4,06 28,5 4,07 19 7,6
- 14 -
RW15 P06007
Date Ag PM Paramètres physico-chimiques
(mg) T°C Oxygène Salinité pH MES AnNI TAN
25-janv. P12 8,26
30,4 5,07 30,5 5,08 18 7,9
26-janv P13 9,49
0 8
0 90 30,2 5,03
0 18 7,6
27-janv. P14 10,92
0 7,3
0 90 29,9 4,98
0 17 7,7
28-janv P15 12,55
0 7,7
29,6 4,93 85 29,6 4,93
0 15
29-janv. P16 17,85
0
0,023 1,15
0 7,4 80 0 0 14
30-janv P17 23,42
0
29,4 4,9 45 0
29,4 4,9 12
31-janv. P18 25,83
0
0,018 0,9
0 60 0
29,4 4,9 10 7,5
01-févr P19 28,75
28,5 4,75 7,2
0 60 0 0 8 7,3
2-févr. P20 39,89
0
0,55 0,01
0 45 27,1 4,52 27,4 4,57 10 7,7
03-févr P21 52,45
0 7,4
28,4 4,73 41 28,6 4,77 29 4,83 10 7,5
4-févr. P22 53,1
0 7,3
0,006 0,5
0 40 28,7 4,78
0 10
05-févr P23 78,68
0 7,6
0 41 0 0 10 8,6
- 15 -
RW14 P06035
Date Age PM Paramètres physico -chimiques
(mg) T°C Oxygène Salinité pH MES AnNI TAN
20-mars P09 5,67
18 90
31,3 4,47 18
21-mars P10 6,58
31,3 4,47
30,5 4,36 18 90 30,8 4,4 31 4,43 16 7
22-mars P11 7,63
31,2 4,46
29,8 4,26 15 7,5 85 30,1 4,3 30,4 4,34 7,3
23-mars P12 8,85
0
29,1 4,16 7,4 85 0 0 14 7,5
24-mars P13 8,59
0
28,4 4,06 14 6,5 75 30,1 4,3 30,6 4,37 7,2
25-mars P14 9,96
30,4 4,34
0,003 0,2
30 4,29 14 7 70 30,6 4,37 30,5 4,36 7,4
26-mars P15 11,84
31 4,43
30 4,29 14 7,2 65 31,6 4,51 30,7 4,39 6,5
27-mars P16 14,52
30,8 4,4
30,4 4,34 14 7,5 60 0
31 4,43
28-mars P17 17,22
30,4 4,34
30,2 4,31 12 7,9 55 30,9 4,41 30,9 4,41 12 7,7
29-mars P18 22,17
30,8 4,4
0,004 0,78
31,4 4,49 7,6 55 31,8 4,54 31,8 4,54 11 7,9
30-mars P19 27,66
31,2 4,46 7,8
30,9 4,41 14 60 31,6 4,51 32,2 4,6 14 8,3
31-mars P20 32,47
31,3 4,47 8,1
30,6 4,37 14 50 31,4 4,49 7,8 32,7 4,67 14 8,8
1-avr. P21 39,92
31,2 4,46 8,5
31,3 4,47 15 60 31,7 4,53
0
02-avr P22 44,56
31 4,43
30,8 4,4 15 8,2 55 0
31,8 4,54 7,9
- 16 -
RW06 P06030
Date Age PM Paramètres physico -chimiques
(mg) T°C Oxygène Salinité pH MES AnNI TAN
15-mars P08 4,46
90
28,9 4,13 18
16-mars P09 5,17
28,6 4,09 7,7
28,2 4,03 18 90 28,4 4,06 28,9 4,13 16 7,5
17-mars P10 5,03
29,1 4,16 7,6
28,4 4,06 7,5 75 28,9 4,13 28,9 4,13 17 8,1
18-mars P11 5,83
30 4,29 7,9
29,4 4,2 16 7,6 70 28,5 4,07 30,3 4,33 14 7,9
19-mars P12 6,77
30,5 4,36 7,9
29,4 4,2 15 7,6 60 0
30,2 4,31 15 7,9
20-mars P13 7,8
30,4 4,34 7,2
0,002 0,19
30,6 4,37 14 50 30,1 4,3 30 4,29
21-mars P14 9,86
31,3 4,47
30,6 4,37 13 60 30,3 4,33 30,6 4,37 7
22-mars P15 13
30,6 4,37
28,4 4,06 12 7 60 29,2 4,17 29,3 4,19
23-mars P16 14,52
0
28,8 4,11 13 7,6 55 0 0 7,2
24-mars P17 18,6
0
0,007 0,78
28,2 4,03 12 6,5 50 28,8 4,11 28,9 4,13 7,1
25-mars P18 21,61
28,6 4,09
29 4,14 12 7,2 50 29,1 4,16 29,8 4,26 7,5
26-mars P19 23,96
29 4,14
29 4,14 12 7,2 55 31,2 4,46 30,5 4,36 6,7
27-mars P20 28,3
29,8 4,26
29,5 4,21 12 7,6 50 0
30,7 4,39 12
- 17 -
RW04 P06029
Date Age PM Paramètres physico -chimiques
(mg) T°C Oxygène Salinité pH MES AnNI TAN
15-mars P08 4,89
90
28,6 4,09 18
16-mars P09 5,67
29,7 4,24 7,6
29,3 4,19 18 7,6 90 28,3 4,04 28,6 4,09 16
17-mars P10 5,32
29,5 4,21
28 4 75 29,2 4,17 29,2 4,17 14 7,8
18-mars P11 6,17
29,9 4,27 7,7
28,4 4,06 14 7,5 70 30,1 4,3 31 4,43 14 9,6
19-mars P12 7,16
30,7 4,39 7,9
29,8 4,26 14 7,8 55 0
31,8 4,54 14 8
20-mars P13 8,31
30,8 4,4 7,7
0,004 0,39
29,8 4,26 13 50 30,4 4,34 31,8 4,54
21-mars P14 11,76
30,9 4,41
30,3 4,33 14 55 30,1 4,3 31,3 4,47 13 7,1
22-mars P15 13,81
30,8 4,4 7,7
28,4 4,06 12 55 29,2 4,17 29,7 4,24 7,3
23-mars P16 17,1
0
28,8 4,11 7,6 50 0 0 11 7,7
24-mars P17 22,02
0
0,04 0,78
28,4 4,06 12 7,5 50 28,9 4,13 29,8 4,26 7
25-mars P18 25
28,4 4,06
28,9 4,13 12 7,1 50 29 4,14
29,8 4,26 7,3
26-mars P19 32,1
28,6 4,09
28,8 4,11 12 45 29,8 4,26 30,8 4,4 6,7
27-mars P20 35,15
29,9 4,27
29,4 4,2 12 7,4 45 0
30 4,29 12
- 18 -
RW11 P06050
Date Age PM Paramètres physico -chimiques
(mg) T°C Oxygène Salinité pH MES AnNI TAN
11-avr. P09 3,9
29,4 4,2 15 8,2
12-avr P10 4,52
28,7 4,1 8,2
29,2 4,17 15 7,9 29,3 4,19 29,9 4,27 7,9
13-avr. P11 5,24
29,6 4,23 7,8
29 4,14 16 7,9 29 4,14 7,9 29 4,14 7,8
14-avr P12 6,08
28,9 4,13 7,7
28,8 4,11 16 7,9 28,8 4,11 7,9 28,9 4,13 16 7,9
15-avr. P13 6,84
28,6 4,09 7,8
28,1 4,01 7,9 70 28,6 4,09 16 28,8 4,11 8,1
16-avr P14 7,93
28,7 4,1 8
0,01 0,39
28,5 4,07 7,9 65 28,7 4,1 16 29,2 4,17 8,5
17-avr. P15 12,73
28,6 4,09 8,3
28,6 4,09 50 28,4 4,06 29,2 4,17 17 8,1
18-avr P16 16,38
28,8 4,11 8
28,6 4,09 18 8 50 29,1 4,16 18 29,2 4,17
19-avr. P17 18,7
29,2 4,17
28,6 4,09 50 29,1 4,16 18 7,2 29,3 4,19
20-avr P18 22,68
29,8 4,26
0,015 0,78
29,6 4,23 7,2 45 29,7 4,24 18 30 4,29
21-avr. P19 25,64
30,1 4,3
0 40 0
29,7 4,24 18
22-avr P20 32,05
30 4,29
28,6 4,09 19 40 29,5 4,21 19 29,9 4,27
23-avr. P21 34,86
30 4,29
27,8 3,97 45 0
30,4 4,34 20
Source : Nurserie Besalampy, 2006
- 19 -
Annexe II : Modalités des variables
PARAMETRES
PHYSICOCHIMIQUES
CYCLECOMPLET AMNI_MOY AMNI_MOY2 RW05 P06034 0,004 0 RW06 P06030 0,004 0 RW14 P06035 0,004 0 RW06 P06044 0,004 0 RW14 P06051 0,008 0 RW02 P06039 0,009 0 RW07 P06053 0,01 0,01 RW14 P06011 0,013 0,01 RW11 P06050 0,013 0,01 RW15 P06036 0,017 0,01 RW05 P06054 0,018 0,01 RW11 P06003 0,02 0,02 RW06 P06016 0,021 0,02 RW04 P06015 0,022 0,02 RW11 P06018 0,022 0,02 RW13 P06017 0,022 0,02 RW04 P06029 0,022 0,02 RW10 P06031 0,025 0,02 RW15 P06052 0,027 0,02 RW02 P06058 0,036 0,02 RW15 P06007 0,149 0,02
Source : Auteur, 2007
- 20 -
CYCLECOMPLET SALMOY SALMOY2
RW11 P06003 13 12 RW15 P06007 13 12 RW14 P06011 12 12 RW04 P06015 14,5 12 RW06 P06016 13,5 12 RW11 P06018 17 15 RW13 P06017 17 15 RW04 P06029 14,5 12 RW05 P06034 15,5 15 RW06 P06030 15 15 RW10 P06031 14,5 12 RW14 P06035 14,5 12 RW15 P06036 15 15 RW02 P06039 13,5 12 RW06 P06044 14,5 12 RW11 P06050 17,5 15 RW14 P06051 16,5 15 RW15 P06052 17,5 15 RW07 P06053 18,5 18 RW05 P06054 18,5 18 RW02 P06058 17 15
Source : Auteur,2007
- 21 -
CYCLECOMPLET TMOY TMOY2
RW05 P06054 28,064 28 RW07 P06053 28,411 28 RW02 P06058 28,81 28 RW06 P06044 28,923 28 RW14 P06051 29,059 29 RW11 P06050 29,12 29 RW15 P06007 29,131 29 RW06 P06030 29,51 29 RW15 P06052 29,516 29 RW04 P06029 29,65 29 RW05 P06034 29,8 29 RW10 P06031 29,87 29 RW11 P06003 30,3 30 RW02 P06039 30,449 30 RW14 P06011 30,776 30 RW14 P06035 30,86 30 RW15 P06036 30,87 30 RW04 P06015 32,013 31 RW06 P06016 32,72 31 RW11 P06018 34,056 31 RW13 P06017 34,922 31
Source : Auteur,2007
- 22 -
CYCLECOMPLET OX_MOY OX_MOY2
RW05 P06054 4,01 4 RW07 P06053 4,06 4 RW02 P06058 4,12 4 RW06 P06044 4,13 4 RW14 P06051 4,15 4,1 RW11 P06050 4,16 4,1 RW15 P06007 4,16 4,1 RW06 P06030 4,22 4,1 RW15 P06052 4,22 4,1 RW04 P06029 4,24 4,1 RW05 P06034 4,26 4,1 RW10 P06031 4,27 4,1 RW11 P06003 4,33 4,3 RW02 P06039 4,35 4,3 RW14 P06011 4,4 4,3 RW14 P06035 4,41 4,3 RW15 P06036 4,41 4,3 RW04 P06015 4,57 4,4 RW06 P06016 4,67 4,4 RW11 P06018 4,87 4,4 RW13 P06017 4,99 4,4
Source : Auteur,2007
- 23 -
AUTRES PARAMETRES
CYCLECOMPLET DUR_EL DUR_EL2 RW02 P06058 8 8 RW05 P06034 9 8 RW02 P06039 9 8 RW15 P06052 10 10 RW15 P06007 11 10 RW04 P06015 11 10 RW10 P06031 11 10 RW04 P06029 12 12 RW06 P06030 12 12 RW11 P06050 12 12 RW14 P06051 12 12 RW07 P06053 12 12 RW05 P06054 12 12 RW11 P06003 13 12 RW06 P06016 13 12 RW14 P06035 13 12 RW15 P06036 13 12 RW11 P06018 14 14 RW13 P06017 14 14 RW06 P06044 15 14 RW14 P06011 16 16
Source : Auteur,2007
- 24 -
CYCLECOMPLET DTE_ININBL DTE_INI2
RW02 P06058 5,567 12 RW06 P06044 7,398 12 RW05 P06054 8,66 12 RW15 P06036 12,592 12 RW13 P06017 12,843 12 RW14 P06051 12,857 12 RW11 P06018 13,059 12 RW15 P06052 13,763 12 RW15 P06007 14,32 12 RW05 P06034 14,953 12 RW07 P06053 15,651 12 RW04 P06015 17,597 16 RW04 P06029 18,487 16 RW06 P06016 18,512 16 RW06 P06030 20,124 20 RW14 P06035 20,511 20 RW11 P06050 20,571 20 RW02 P06039 21,959 20 RW11 P06003 22,345 20 RW14 P06011 22,357 20 RW10 P06031 23,556 20
Source : Auteur,2007
- 25 -
CYCLECOMPLET ARTMP ARTMP2
RW14 P06035 15374 0 RW02 P06058 16787 0 RW15 P06036 18990 0 RW05 P06054 32918 0 RW05 P06034 36433 0 RW14 P06051 44560 0 RW02 P06039 48536 0 RW15 P06052 49989 0 RW04 P06015 60386 50000 RW07 P06053 68523 50000 RW06 P06030 70108 50000 RW04 P06029 72845 50000 RW11 P06050 81547 50000 RW06 P06016 81777 50000 RW10 P06031 83917 50000 RW06 P06044 92176 50000 RW15 P06007 101502 100000 RW11 P06018 113643 100000 RW13 P06017 125537 100000 RW11 P06003 192036 100000 RW14 P06011 238308 100000
Source : Auteur, 2007
- 26 -
Annexe III : Statistiques descriptives des modalité des variables
foreach X of varlist AMNI_MOY2-TNG_REEL2 { tab `X', m
ARTMP2 Freq. Percent Cum. 0 8 38,1 38,1
50000 8 38,1 76,19 100000 5 23,81 100 Total 21 100
DUR_EL2 Freq. Percent Cum. 8 3 14,29 14,29 10 4 19,05 33,33 12 10 47,62 80,95 14 3 14,29 95,24 16 1 4,76 100
Total 21 100 AMNI_MOY2 Freq. Percent Cum.
0 6 28,57 28,57 0,01 5 23,81 52,38 0,02 10 47,62 100 Total 21 100
PH_MOY2 Freq. Percent Cum. 7,4 3 14,29 14,29 7,6 8 38,1 52,38 7,8 6 28,57 80,95 8 4 19,05 100
Total 21 100 SALMOY2 Freq. Percent Cum.
12 10 47,62 47,62 15 9 42,86 90,48 18 2 9,52 100
Total 21 100 OX_MOY2 Freq. Percent Cum.
4 4 19,05 19,05 4,1 6 28,57 47,62 4,2 8 38,1 85,71 4,3 3 14,29 100
Total 21 100 TMOY2 Freq. Percent Cum.
28 4 19,05 19,05 29 8 38,1 57,14 30 5 23,81 80,95 31 4 19,05 100
Total 21 100 Source : Auteur, 2007
- 27 -
Annexe IV : Moyennes des survies et des croissances pour les modalités de variables
. foreach X of varlist AMNI_MOY3-TNG_REEL3 {
2. table `X', c(moyenne CR_JR moyenne S_RW ) 3. }
ARTMP3 moyenne(CR_JR) moyenne(S_RW)
32948,375 3,02275 0,885375
76409,875 3,727 0,830125 154205,2 5,4136 0,8232
DUR_EL3 moyenne(CR_JR) moyenne(S_RW) 8,6666667 3,1013333 0,90166667
10,75 3,9815 0,8925 12,4 3,3563 0,8396
14,333333 6,6733333 0,75966667 16 2,253 0,89
AMNI_MOY3 moyenne(CR_JR) moyenne(S_RW) 0,0055 3,3 0,87983333 0,0142 2,9114 0,8334 0,0366 4,6709 0,8394
PH_MOY3 moyenne(CR_JR) moyenne(S_RW) 7,4783333 3,8203333 0,86533333 7,650875 4,10325 0,841625 7,8661667 4,1486667 0,84533333
8,05 2,97175 0,85975 SALMOY3 moyenne(CR_JR) moyenne(S_RW)
13,75 4,1821 0,8535 16,444444 3,7313333 0,85755556
18,5 2,8315 0,7935 OX_MOY3 moyenne(CR_JR) moyenne(S_RW)
4,39 3,79825 0,90475 4,56083333 3,343 0,85383333
4,7031 4,16625 0,796375 4,887 4,1616667 0,909
TMOY3 moyenne(CR_JR) moyenne(S_RW) 28,552 4,102 0,837 29,457 3,188125 0,89 30,651 3,4938 0,8714
33,42775 5,421 0,75375
Source : Auteur, 2007
- 28 -
Annexe V : Anova de croissance et de survie
. foreach DEP of varlist CR_JR S_RW { foreach X of varlist AMNI_MOY2-
TNG_REEL2 {
anova `DEP' `X'
R-squared = 0,3186 Number of obs = 21 Adj R-squared = 0,2429
Root MSE 1,45491 Source Partial SS df MS F Prob > F Model 17,8177756 2 8,90888779 4,21 0,0317
ARTMP2 17,8177756 2 8,90888779 4,21 0,0317 Residual 38,1014827 18 2,11674904
Total 55,9192583 20 2,79596291
R-squared = 0,5481 Number of obs = 21 Adj R-squared = 0,4351
Root MSE 1,25672
Source Partial SS df MS F Prob > F Model 30,6498919 4 7,66247296 4,85 0,0094
DUR_EL2 30,6498919 4 7,66247296 4,85 0,0094 Residual 25,2693664 16 1,5793354
Total 55,9192583 20 2,79596291 R-squared = 0,2317
Number of obs = 21 Adj R-squared = 0,1463 Root MSE 1,54494
Source Partial SS df MS F Prob > F Model 12,9563962 2 6,47819809 2,71 0,0933
AMNI_MOY2 12,9563962 2 6,47819809 2,71 0,0933 Residual 42,9628621 18 2,38682567
Total 55,9192583 20 2,79596291
- 29 -
R-squared = 0,0739
Number of obs = 21 Adj R-squared = -0,0895 Root MSE 1,74533
Source Partial SS df MS F Prob > F Model 4,13400604 3 1,37800201 0,45 0,719
PH_MOY2 4,13400604 3 1,37800201 0,45 0,719 Residual 51,7852522 17 3,04619131
Total 55,9192583 20 2,79596291
R-squared = 0,0591 Number of obs = 21 Adj R-squared = -0,0455
Root MSE 1,70973
Source Partial SS df MS F Prob > F Model 3,30210289 2 1,65105144 0,56 0,5782
SALMOY2 3,30210289 2 1,65105144 0,56 0,5782 Residual 52,6171554 18 2,9231753
Total 55,9192583 20 2,79596291
R-squared = 0,0473 Number of obs = 21 Adj R-squared = -0,1209
Root MSE 1,77029
Source Partial SS df MS F Prob > F Model 2,64230537 3 0,880768456 0,28 0,8383
OX_MOY2 2,64230537 3 0,880768456 0,28 0,8383 Residual 53,2769529 17 3,13393841
Total 55,9192583 20 2,79596291 R-squared = 0,2551
Number of obs = 21 Adj R-squared = 0,1236 Root MSE 1,56537
Source Partial SS df MS F Prob > F Model 14,2629786 3 4,7543262 1,94 0,1614
TMOY2 14,2629786 3 4,7543262 1,94 0,1614 Residual 41,6562797 17 2,45036939
Total 55,9192583 20 2,79596291
- 30 -
R-squared = 0,1395
Number of obs = 21 Adj R-squared = 0,0439 Root MSE 0,075775
Source Partial SS df MS F Prob > F Model 0,016757688 2 0,008378844 1,46 0,2586
ARTMP2 0,016757688 2 0,008378844 1,46 0,2586 Residual 0,10335355 18 0,005741864
Total 0,120111238 20 0,006005562 R-squared = 0,3529
Number of obs = 21 Adj R-squared = 0,1912 Root MSE 0,069696
Source Partial SS df MS F Prob > F Model 0,042390505 4 0,010597626 2,18 0,1175
DUR_EL2 0,042390505 4 0,010597626 2,18 0,1175 Residual 0,077720733 16 0,004857546
Total 0,120111238 20 0,006005562 R-squared = 0,0652
Number of obs = 21 Adj R-squared = -0,0386 Root MSE 0,078978
Source Partial SS df MS F Prob > F Model 0,007836805 2 0,003918402 0,63 0,5448
AMNI_MOY2 0,007836805 2 0,003918402 0,63 0,5448 Residual 0,112274433 18 0,006237469
Total 0,120111238 20 0,006005562
R-squared = 0,0148
Number of obs = 21 Adj R-squared = -
0,1591 Root MSE 0,083433
Source Partial SS df MS F Prob > F Model 0,001772613 3 0,000590871 0,08 0,9674
PH_MOY2 0,001772613 3 0,000590871 0,08 0,9674 Residual 0,118338625 17 0,006961096
Total 0,120111238 20 0,006005562
- 31 -
R-squared = 0,0584
Number of obs = 21 Adj R-squared = -
0,0462 Root MSE 0,079266
Source Partial SS df MS F Prob > F Model 0,007016016 2 0,003508008 0,56 0,5818
SALMOY2 0,007016016 2 0,003508008 0,56 0,5818 Residual 0,113095222 18 0,006283068
Total 0,120111238 20 0,006005562
R-squared = 0,379
Number of obs = 21 Adj R-squared = 0,2694 Root MSE 0,066239
Source Partial SS df MS F Prob > F Model 0,4552178 3 0,15173927 1,46 0,398
OX_MOY2 0,4552178 3 0,15173927 1,46 0,398 Residual 0,74589458 17 0,04387615
Total 1,20111238 20 0,19561542
R-squared = 0,4397 Number of obs = 21 Adj R-squared = 0,3409
Root MSE 0,062916
Source Partial SS df MS F Prob > F Model 0,052817288 3 0,017605763 4,45 0,0176
TMOY2 0,052817288 3 0,017605763 4,45 0,0176 Residual 0,06729395 17 0,003958468
Total 0,120111238 20 0,006005562
Source : Auteur, 2007
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Annexe VI : Corrélation entre les DTE_INI et les paramètres physicochimiques
DTE INI
AMNI_MOY Corrélation de
Pearson -0,522 Sig. 0,015 N 21
PH_MOY Corrélation de
Pearson 0,132 Sig. 0,570 N 21
SAL_MOY Corrélation de
Pearson 0,078 Sig. 0,738 N 21
OX_MOY Corrélation de
Pearson 0,110 Sig. 0,635 N 21
T_MOY Corrélation de
Pearson -0,352 Sig. 0,117 N 21
Source : Auteur, 2007
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Annexe VII : Données brutes des paramètres d'expédition
CYCLECOMPLET CHG PORT DUR ACL DUR PORT RW1 1 P06003 12,59 1:52:1 9 AM 3:00:00 AM RW15P06007 11,83 2 :05 :17AM 5:49:55 AM RW14P06011 10,2 2:03:50 AM 5:49:55 AM RW04 P06015 10,9 1:32:1 0 AM 2:19:41 AM RW06 P06016 10,7 1:23:31 AM 2:19:41 AM RW11 P06018 12 1:30:43AM 2:25:26 AM RW13P06017 14,1 1:42:14 AM 2:25:26 AM RW04 P06029 10,51 1:33:36AM 1:39:22 AM RW05 P06034 10,51 1:07:41 AM 3:30:14 AM RW06 P06030 9,59 1:19:12AM 1:39:22 AM RW10P06031 12,1 1:46:34AM 3:54:43 AM RW14 P06035 11,34 1:42:14 AM 6:00:00 AM RW15 P06036 9,65 1:29:1 7 AM 5:1 5:22 AM RW02 P06039 15,9 1:33:36AM 5:25:26 AM RW06 P06044 13,4 12:53:17 AM 3:1 0:05 AM RW11 P06050 11,7 1. -19:12 AM 6:50:24 AM RW14 P06051 11,7 1:16:19AM 6:37:26 AM RW15 P06052 14,5 1:1 3:26 AM 8:09:36 AM RW07 P06053 13 1:36:29AM 7:30:43 AM RW05 P06054 11,25 1:01:55 AM 7:00:29 AM RW02 P06058 14,62 1:1 0:34 AM 6:47:31 AM
Source : Auteur, 2007
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Annexe VIII : Présentation du logiciel STATA
1) Présentation du logiciel STATA
STATA est un logiciel réputé pour ses multiples fonctions de traitement des données et
d’analyse statistique. Stata possède un jeu complet de fonctions statistiques, graphiques et de
gestion des données avec un langage de programmation .Son langage est simple et cohérent,
et ne requiert pas un long a rentissage.
1.1- Les types de fichiers sous STATA
Nous distinguons ici trois types de fichiers : ce sont les fichiers de données, les fichiers
programmes et les fichiers de résultats. L’extension des fichiers dépend du type. S’il s’agit
d’un fichier de données, il porte l’extension .dta ; les fichiers programmes2 ont l’extension
.do et les fichiers de résultat ont l’extension .log.
1.2- Les fenêtres de travail
Au démarrage, l’interface de STATA laisse a araître quatre fenêtres. A partir de ces fenêtres,
on peut exécuter les travaux désirés. Si on veut automatiser le travail par un programme, il
faut faire a el à la fenêtre d’édition des programmes encore a elée STATA do-file editor. Le
graphique 2 suivant présente l’interface de STATA et la fenêtre d’édition des programmes.
La fenêtre 1 (Variable) est celle dans laquelle s’affichent les noms des variables lorsqu’on
charge un fichier de données. La fenêtre 2 (Stata command) est celle dans laquelle on tape les
lignes de commandes que STATA doit exécuter. Si une commande est demandée, le résultat
de son exécution s’affiche dans la fenêtre 3 (Stata results). La fenêtre 4 (Review) garde en ra
el les dernières commandes exécutées.
En plus de certaines icônes existant déjà sous office, STATA possède d’autres icônes dont les
fonctionnalités sont présentées dans le tableau suivant :
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1.3- Quelques opérateurs logiques et arithmétiques sous STATA
Les paragraphes précédents ont présenté l’interface de STATA. Le tableau suivant rend
compte de quelques opérateurs logiques et arithmétiques qui peuvent être utilisés.
1.4- Les programmes STATA et la création d’un fichier de résultat
Pour écrire un programme STATA, il faut se placer dans la fenêtre d'édition de programme
(STATA do-file editor). L'enregistrement du programme créera un fichier avec une
extension.do.
Il est souhaitable de commencer chaque programme STATA par un commentaire de ce que
fait le programme. Sous STATA, les commentaires sont insérés entre les symboles /* et */.
Par exemple, ainsi :
/* Ceci est un commentaire */ ou /*--- Ceci est un commentaire ---*/
Tout ce qui a araît entre les symboles /* et */ n’est pas considéré comme une commande par
STATA, mais comme un commentaire.
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Il est possible, et souhaitable, de demander à STATA de sauvegarder les résultats d’exécution
d’un programme dans un fichier d’extension .log que l’on pourra ensuite lire avec les logiciels
Bloc note, Worpad ou Word. Pour cela, il faut insérer la ligne de commande suivante à
l’endroit à partir duquel on voudrait que les résultats soient sauvegardés (de préférence au tout
début du programme) :
log using C:\nomfichier3.log, replace
A la fin de la partie du programme dont on souhaite sauvegarder les résultats (généralement
en fin de programme), taper la ligne de commande suivante qui permet à STATA de créer le
fichier :
log close
Pour des raisons de cohérence et afin de faciliter la recherche ultérieure des fichiers, il est
recommandé de donner des noms similaires aux fichiers de données(.dta), de programme
(.do) et d'exécution de résultats (.log).
Source : Auteur, 2007
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Annexe IX : Tableau pour la note Aquastar
#PL Opacité muscle Muscle/TD Hépatopancréas Chromato Déformation Fouling
Fo
rmu
le
rost
rale
clair sombre >50% <50% Plein sombre
Petit pale
I II I II III I II III IV
1 -1 1 -1 1 -1 1 -1 1 0 -1 1 0 -1 -2 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 23 24 25
Source : Nurserie Besalampy, 2007