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Mémoire de Recherche pour l’obtention du Certificat d’Aptitude Pédagogique de l’Ecole Normale « C.A.P.EN » Filière PHYSIQUE –CHIMIE Contribution à l’étude phytochimique de Datura stramonium Linné (Solanaceae) Présenté par Henintsoa RAKOTOARIVELO Soutenu le 08 Décembre 2011 devant la Commission d’Examen Président : Monsieur Dimby RALAMBOMANANA Maître de Conférences Examinateur : Monsieur Vokatsoa Christian RAKOTONDRAMASY Maître de Conférences Rapporteur : Monsieur Richard RASAMOELISENDRA Maître de Conférences

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Mémoire de Recherche

pour l’obtention du

Certificat d’Aptitude Pédagogique de l’Ecole Normale

« C.A.P.EN »

Filière PHYSIQUE –CHIMIE

Contribution à l’étude phytochimique de

Datura stramonium Linné

(Solanaceae)

Présenté par

Henintsoa RAKOTOARIVELO

Soutenu le 08 Décembre 2011 devant la Commission d’Examen

Président : Monsieur Dimby RALAMBOMANANA Maître de Conférences Examinateur : Monsieur Vokatsoa Christian RAKOTONDRAMASY

Maître de Conférences Rapporteur : Monsieur Richard RASAMOELISENDRA Maître de Conférences

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Mémoire de Recherche

pour l’obtention du

Certificat d’Aptitude Pédagogique de l’Ecole Normale

« C.A.P.EN »

Filière PHYSIQUE –CHIMIE

Contribution à l’étude phytochimique de

Datura stramonium Linné

(Solanaceae)

Présenté par

Henintsoa RAKOTOARIVELO

Soutenu le 08 Décembre 2011 devant la Commission d’Examen

Président : Monsieur Dimby RALAMBOMANANA Maître de Conférences Examinateur : Monsieur Vokatsoa Christian RAKOTONDRAMASY

Maître de Conférences Rapporteur : Monsieur Richard RASAMOELISENDRA Maître de Conférences

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Je remercie une nouvelle fois le Dieu tout puissant de m’avoir

donné la force et la patience durant mes études mais surtout à

l’accomplissement de ce travail.

Je dédie ce mémoire

A mes parents et à ma tante

Pour tous les sacrifices que vous avez consentis pour me permettre de

suivre mes études dans les meilleures conditions possibles et n'avoir

jamais cessé de m'encourager tout au long de ces années.

Que l’a réalisation de cette œuvre constitue à votre égard un

témoignage de toute ma gratitude.

A mes frères et sœurs

Vous n’avez pas manqué de m’encourager avec vos moyens et prières.

A mon époux

Qui est toujours présent pour m’aider et m’encourager.

Que vous trouverez à travers ce travail ma sincère reconnaissance.

Ma sincère gratitude à toute ma famille et à mes proches pour

leurs soutiens sous diverses formes et leurs encouragements au cours

de la réalisation de ce mémoire.

Recevez en retour ces quelques mots qui ne peuvent traduire

tout l’Amour que je vous porte.

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Nous adressons nos vifs remerciements à :

Notre Président de Jury :

Monsieur Dimby RALAMBOMANANA

Maître de Conférences à la Faculté des Sciences de l’Université d’Antananarivo

Nous tenons à vous remercier vivement de nous faire l’honneur de présider le Jury de

ce mémoire. Malgré vos multiples obligations, vous avez consenti à nous accorder une partie

de votre temps si précieux. Vous n’avez pas ménagé vos efforts pour que ce mémoire puisse

être présenté aujourd’hui.

Veuillez trouver ici un gage de notre profonde reconnaissance.

Notre Rapporteur :

Monsieur Richard RASAMOELISENDRA

Maître de Conférences à la Faculté des Sciences de l’Université d’Antananarivo

Nous vous remercions pour votre générosité et votre patience tout au long de la

réalisation de ce mémoire, ainsi que pour l'inspiration, l'aide et le temps que vous avez bien

voulu nous consacrer et sans vous ce mémoire n'aurait jamais vu le jour. Votre rigueur

scientifique et votre abnégation ont été exemplaires à nos yeux.

Soyez assuré de notre gratitude et notre plus profond respect.

Notre examinateur :

Monsieur Vokatsoa Christian RAKOTONDRAMASY

Maître de Conférencesà la Faculté des Sciences de l’Université de Fianarantsoa

Nous vous remercions également d’avoir accepté de siéger parmi le Jury de ce

mémoire malgré vos nombreuses responsabilités. Vos suggestions et vos remarques seraient

appréciées pour compléter nos connaissances. Nous vous sommes reconnaissant également

pour nous avoir partagé vos expériences sur l’étude chimique d’une plante.

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Introduction

Au cours des temps l’homme a dû faire face à une impérieuse nécessité de distinguer les

plantes utiles de celles qui tuent.

L’usage des plantes à des fins thérapeutiques ou narcotiques et leur ingestion

accidentelle ou par confusion avec d’autres plantes comestibles, déterminent des accidents

fréquents dans le monde.

La famille des solanacées présente environ 2000 espèces comprenant de nombreuse

plantes toxiques et renferment des drogues importantes.

Un très grand nombre de genre de la famille des solanacées sont des sources riches en

alcaloïdes, substances aux propriétés sédatives ou au contraire provoquent des

hallucinations et des délires. Les circonstances de l’accident sont diverses: confusion de

baies toxiques avec les baies comestibles, utilisation peu raisonnée des plantes à des fins

hallucinatoires ou médicales.

Le Datura stramonium L. est parmi les solanacées qui poussent à l’état sauvage, et qu’on

peut rencontrer dans les jardins publics.

L’effet toxique de Datura stramonium est attribué à 3 alcaloides tropaniques : l’atropine

et son isomère optique l’hyoscyamine, et la scopolamine, ces esters organiques ont des

propriétés parasympatholytiques.

Ces propriétés atropaniques ont été utilisées dans différentes spécialités notamment

pour le traitement de l’asthme. Actuellement la plante est utilisée à des fins de toxicomanie.

L’objectif de ce travail est de contribuer à l’étude phytochimique de Datura stramonium

(Solanacées) connu sous le nom de Ramiary à Madagascar.

Il est divisé en quatre parties selon le plan IMRD :

La première partie donne la synthèse bibliographique des Solanacées et des familles

chimiques rencontrées dans une plante.

La deuxième partie montre les matériels et méthodes utilisés au cours de ce travail

La troisième partie expose nos résultats et nos discussions.

En tant qu’éducateur de formation, nous avons consacrée, dans ce travail, une partie sur

l’éducation à l’environnement.

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Chapitre 1 Généralités sur les solanacées

I Définition

Les solanacées sont une famille des plantes appartenant à l'ordre des solanales.

Ce sont des plantes herbacées, des arbustes, des arbres ou des lianes des régions tempérées

à tropicales.

C'est une famille des plantes qui a une grande importance économique. En sont issues

bon nombre des légumes et des fruits :

pommes de terre (solanum tuberosum),

tomates (lycoperscicon esculentum),

aubergines (solanum melogena),

piments (capscium frutescens),

poivrons ( capscicum annuum).

Sont aussi issues de cette famille des cultures industrielles comme le tabac (nicotiana

tabacum) ou ornementales comme les pétunias ou les morelles faux jasmin.

Photo 1 : Pomme de terre, solanum tuberosum (solanacées)

Photo 2 : Aubergine, solanum melogena (solanacées)

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II Classification botanique

La classification botanique des solanacées est donnée dans le tableau 1.

Tableau 1 : Classification botanique

Règne Plantes Plantae

Sous-règne plantes vasculaires Tracheobionta

Division plantes à graines Spermatophyta

Classe Plantes à fleur Magnoliopsid (angiospermae)

Sous-classe Dicotylédones Dicotyledonae

Super ordre Astéridés Astéridae

Famille Solanacées Solanaceae

III Caractéristiques

Les solanacées sont caractérisées par une grande homogénéité de caractères,

notamment anatomiques et biochimiques.

Un grand nombre de cette famille produisant des alcaloïdes, est répandue dans les

régions chaudes et tempérées.

Bien que les espèces alimentaires contiennent aussi des alcaloïdes dans les feuilles, les

tiges et les racines, les parties comestibles (tubercule de la pomme de terre, fruits des

tomates, aubergines et piments) en sont dépourvues.

Photo 3: Tabac, nicotiana tabacum (solanacées)

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IV Description

Les feuilles des solanacées, simples ou composées,

sont alternes, entières à profondément lobées et

sans stipules. Les fleurs hermaphrodites sont dites

parfaites (elles contiennent étamines et pistil). Les

fleurs sont soit solitaires soit rassemblées en de

petites grappes (cymes) qui sont situées

généralement à l'angle des divisions de la tige ou

directement sur la tige entre les nœuds.

L'épiderme est velu ou glanduleux.

Les fleurs des solanacées sont actinomorphes.

Les pétales sont soudés (gamopétales) à des

hauteurs variables. Lorsque la soudure se situe à

la base, cela donne à la fleur la forme d'une

étoile. Lorsque les pétales sont entièrement

soudés cela forme une fleur longue en trompette

comme pour le datura stramoine ou le

Brugmansia. D'ailleurs on retrouve souvent le

terme "trompette" dans le surnom de nombre de

solanacées : "trompette du jugement",

"trompette des anges" "trompette de la mort".

Tout comme les pétales, les sépales des solanacées sont également soudés

(gamosépales) à des hauteurs variables ce qui forme un tube qui présente cinq lobes au

sommet. Le calice des solanacées persiste après la fécondation. Dans certains cas il grandit

en même temps que le fruit et l'enveloppe à maturité soit partiellement (on dit qu'il est

marcescent) soit totalement (on dit qu'il est accrescent).

Photo 5 : Vigne de Judée ou douce-amère (Solanum dulcamara)

Photo 4 : Jusquiame noire (Hyoscyamus niger)

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Le fruit des solanacées peut être charnu, c'est

alors une baie (morelles, tomate, pomme de

terre..) soit sec et c'est alors une capsule (datura

stramoine) qui dans le cas de la jusquiame prend

la forme d'une pyxide.

V Solanacées vireuses

Les Solanacées vireuses (jusquiame, belladone, datura, mandragore), mais aussi le

tabac, ont été utilisées depuis des siècles pour leurs propriétés psychotropes. Elles les

doivent à leur contenu en alcaloïdes, atropine, hyoscyamine et scopolamine chez les

Solanacées vireuses, nicotine chez le tabac. Comme solanacées vireuses, on peut citer la

belladone, la jusquiame et le datura.

Belladone

La belladone, Atropa belladona, est une plante herbacée à souche vivace des régions

tempérées. Ses fleurs sont jaunes ou brun pourpre, en forme de clochette. Ses fruits, très

toxiques, sont des baies, de couleur noire violacée, de un à deux centimètres de

diamètre.

Comme les deux autres Solanacées vireuses la Belladone contient de l’atropine, de

l'hyoscyamine et de la scopolamine, alcaloïdes abondants dans les feuilles et les racines,

mais elle est particulièrement riche en atropine et lui doit son nom et ses propriétés

parasympatholytiques (c'est à dire qui s'opposent à l'action du système nerveux

parasympathique).

Jusquiame

Photo 6 : Morelle, Solanum ducamara

Photo 7 : belladone, Atropa

belladona

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Jusquiame

La jusquiame, Hyoscyamus niger, est une plante rudérale herbacée commune en

Europe. Les fleurs regroupées à l'extrémité de la tige sont de couleur jaune pâle veiné

de pourpre.

Le fruit est une capsule s'ouvrant à maturité par une sorte d'opercule circulaire.

Comme les deux autres solanacées vireuses la jusquiame est riche en atropine,

hyoscyamine et scopolamine. Elle est connue et utilisée depuis la plus haute antiquité

comme un poison violent. Elle était utilisée au même titre que les autres Solanacées

vireuses par les sorcières du Moyen Âge pour préparer les breuvages et les pommades

qui les emmenaient au sabbat.

VI Exemples des alcaloïdes dans les solanacées

Figure 1 : Exemples des alcaloïdes dans les solanacées

Photo 8 : Fleurs de jusquiame, Hyoscyamus niger

Hyoscyamine

Scopolamine

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VII Espèces

La famille des Solanacées comprend environ 2000 espèces réparties en près de 95

genres.

Aujourd'hui, la famille est plus étendue. L’Angiosperm Phylogeny Website [1er mai 2007]

accepte 102 genres, en incluant les Duckeodendracées et Nolanacées.

L'espèce Duckeodendron cestroides est un grand arbre originaire des régions tropicales

d'Amérique du Sud (Brésil).

Les genres Coeloneurum, Espadaea, Goetzea, Henoonia sont des petits arbres ou des

arbustes des grandes Antilles et d'Amérique du Sud. Les familles des Duckéodendracées et

des Goetzéacées ne sont plus valides.

VIII Genre datura

Le genre datura comprend une vingtaine d’espèces dont la plus répondue est le Datura

stramonium L., également connue sous les noms des stramoines.

On peut citer entre autres : Datura ferox, Datura innoxia, Datura leichhardtii, Datura metel,

Datura quercifolia, Datura stramonium , Datura wrightii.

Photo 9 : datura innoxia Photo 10 : datura metel

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Chapitre 2 Généralités sur les familles chimiques

Un métabolite secondaire est une molécule qui, par exclusion, n'appartient pas au

métabolisme primaire. Ce dernier est indispensable à la nutrition, il assure la croissance, le

développement d'un organisme. Les métabolites primaires rassemblent les acides aminés, les

lipides, les sucres ou les acides nucléiques, par exemple.

Les métabolites secondaires sont plus spécifiques aux plantes, bactéries et champignons.

Contrairement aux métabolites primaires, ils ne participent pas directement à l’assimilation des

nutriments et donc, au développement de la plante. Les métabolites secondaires participent à

la vie de relation de la plante, ils ont des rôles très variés. Ils peuvent servir de défense

(sécrétions amères ou toxiques pour les prédateurs) ou au contraire, attirer certaines espèces

ayant des rôles bénéfiques (pollinisateurs).

Ces composés sont en général toxiques mais ils peuvent aussi présenter un intérêt

économique, voire une haute valeur ajoutée (médicale).

I Les types de métabolites

Les métabolites secondaires se classent en trois grands groupes :

Phénols : tanins, lignine, mélanine, flavonoïdes

Azotés : alcaloïdes, bétalaïne, hétérosides cyanogènes et glucosinolates

Terpènes : hémiterpènes (C5), monoterpènes (C10), sésquiterpènes (C15),

Diterpènes (C20), triterpènes (C30), tétraterpènes (C40) et polyterpènes (+ que C40).

II Les alcaloïdes

II.1 Définition Les alcaloïdes sont des molécules organiques hétérocycliques azotées basiques pouvant

avoir une activité pharmacologique.

On trouve des alcaloïdes, en tant que métabolites secondaires, principalement chez les

végétaux, les champignons et quelques groupes animaux peu nombreux. Habituellement les

alcaloïdes sont des dérivés des acides aminés.

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II.2 Types d’alcaloïdes

On distingue généralement :

les alcaloïdes vrais, qui sont d’un point de vue de la biosynthèse dérivés d’acides

aminés, et qui présentent au moins un hétérocycle : exemple la strychnine dérivée du

tryptophane.

les proto-alcaloïdes, qui dérivent d’acides aminés mais pour lesquels l’azote est en

dehors des structures cycliques (exemple : la colchicine)

Les pseudo-alcaloïdes, qui ne dérivent pas d’acides aminés (exemple : la caféine)

Figure2 : tryptophane

Figure3 : colchicine

Figure4 : caféine

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II.3 Classification structurale

Ils ont longtemps été catégorisés et nommés en fonction du végétal ou de l'animal dont

ils étaient isolés.

À partir du XXIe siècle, ils sont catégorisés en fonction de leur structure chimique :

Pouvant être :

Acyclique :

Mono ou polycyclique : ils sont alors classés selon la structure du noyau

hétérocyclique comme :

Les azines : pipéridine, nicotine

Les Tropanes : atropine, hyosciamine, scopolamine, cocaïne

Figure6 : nicotine

Figure7 : cocaïne

Figure5 : galégine

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Les quinoléines : quinoléine, quinine

Les isoquinolines : morphine, codéine

Les indoles : ergine, ergotamine

Figure10 :

II.4 Utilisations

Bien que beaucoup d'alcaloïdes soient toxiques (comme la strychnine ou l'aconitine),

certains sont employés dans la médecine pour, par exemple, leurs propriétés analgésiques

(comme la morphine, la codéine), dans le cadre de protocoles de sédation (anesthésie)

souvent accompagnés d'hypnotiques, ou comme agent antipaludéen (quinine,

chloroquinine) ou agent anticancéreux (taxol, vinblastine, vincristine).

D’autres alcaloïdes ont des usages plus courants comme la nicotine employée dans la

Figure8 : quinine

Figure9 : morphine

Figure10 : ergotamine

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fabrication d’insecticides et de cigarettes, ou encore la caféine (propriétés stimulantes ou

sédatives). La cocaïne est une drogue ayant une action stimulante.

La scopolamine est utile au traitement de certaines douleurs et pour la prévention du

mal des transports ; l’atropine dilate les pupilles, ce qui facilite les examens

ophtalmologiques.

III Les Flavonoïdes et Leuchoanthocyanes

III.1 Définition

Les flavonoïdes (ou bioflavonoïdes) sont des métabolites secondaires des plantes

partageant tous une même structure de base formée par deux cycles aromatiques reliés par

trois carbones : C6-C3-C6, chaîne souvent fermée en un hétérocycle oxygéné hexa- ou

pentagonal.

Les flavonoïdes sont responsables de la couleur variée des fleurs et des fruits et

représentent une source importante d'antioxydants dans notre alimentation

Les flavonoïdes sont largement distribués dans le règne végétal où ils sont présents le

plus souvent sous la forme soluble d'hétérosides.

III.2 Structure chimique

Les flavonoïdes présentent un squelette de base à 15 atomes de carbone, fait de

deux cycles benzéniques C6 reliés par une chaîne en C3.

La famille des flavonoïdes peut se diviser en six classe qui diffèrent par leurs

structures chimiques les : flavones, flavanones, flavonols, flavanols, isoflavones et

anthocyanidines.

La distinction se fait sur la conformation de la structure centrale.

FLAVONE

FLAVANONE

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III.3 Utilisations

Les flavonoïdes sont des produits largement distribués dans le règne végétal et sont

couramment consommés quotidiennement sous forme de fruits, légumes et boissons telles

que le vin et le thé.

Ils sont capables de moduler l’activité de certaines enzymes et de modifier le

comportement de plusieurs systèmes cellulaires, suggérant qu’ils pourraient exercer une

multitude d’activités biologiques, notamment des propriétés antioxydantes,

vasculoprotectrices, antiallergiques, anti-inflammatoires, antiulcéreuses et même

antitumorales significatives.

Comme les flavonoïdes, les leucoanthocyanes sont des pigments qui contiennent des

principes actifs permettant de maintenir les vaisseaux sanguins en bon état.

IV Les Tanins

IV.1 Définition

Les tanins sont des substances naturelles phénoliques. Ce sont des métabolites

secondaires des plantes supérieures que l'on trouve dans pratiquement toutes les parties

des végétaux (écorces, racines, feuilles, fruits etc.) où ils jouent le rôle d'armes chimiques

défensives contre certains parasites.

FLAVONOL

FLAVANOL

ISOFLAVONE

Figure11 : Exemples des Flavonoïdes

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IV.2 Structure chimique

Les deux catégories de tanins distinguées sont les tanins hydrolysables (gallotanins et

ellagitanins) et les tanins condensés, sont d'origines biosynthétiques différentes.

On les trouve dans les plantes supérieures mais on n'en trouve pas chez les algues ou les

animaux.

Les tanins condensés ou tanins vrais sont des oligomères ou polymères de flavanols.

Ils sont constitués d'unités de flavan-3-ols liées entre elles par des liaisons carbone-

carbone. Ils sont non hydrolysables mais traités à chaud par un acide, ils se dégradent

en pigments colorés formés d'anthocyanidols.

OHO

OH

OH

OH

OH

R

4

OHO

OH

OH

OH

OH

R

4

OHO

OH

OH

OH

OH

R

4

8

8

n

Figure12 : Exemple de structure de tanins vrais

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Les tanins hydrolysables ou tannoïdes

Ce sont des esters de sucre, généralement du glycose ou de polyol apparenté et d’un

nombre variable de molécule d’acides phénoliques tels que l’acide gallique ou l’acide.

HO

HO

HO

C

O

O

HO

HO

C

O

O

HO

HO OH

C

O

O

O

O

O C

O OH

OH

OH

C O

HO

HO

OH

C

O OH

OH

OHC

O O

OH

OHC

O O

OH

OH

CH2O

Figure13 : Exemple de structure de tanins hydrolysable

IV.3 Utilisations

On emploie les tanins pour protéger le cuir, car ils transforment les protéines contenues

dans le cuir en produits insolubles résistant à la décomposition organique. La principale

utilisation du tanin est le tannage (comme son nom l'indique) des peaux.

Certains tanins auraient des propriétés antioxydantes, expliquant certains effets

bénéfiques du jus de raisin et du vin sur la santé (protection cardio-vasculaire à doses

modérées). Ils stopperaient également le développement des microbes.

Les tanins du thé ont des effets sur l'assimilation du fer, la rendant moins efficace.

L'acide tannique est utilisé en médecine externe comme astringent antidiarrhéique.

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V Les Polyphénols

V.1 Définition

Les polyphénols constituent un ensemble de molécules très largement répandues dans

le règne végétal. On les trouve dans les plantes, depuis les racines jusqu'aux fruits.

Les polyphénols naturels sont des métabolites secondaires, ce qui signifie qu'ils

n'exercent pas de fonction directe au niveau des activités fondamentales de l'organisme

végétal, comme la croissance ou la reproduction.

V.2 Structure chimique

Les polyphénols sont communément subdivisés en phénols simples, acides-phénols

(dérivés de l'acide benzoïque ou cinnamique) et coumarines, en naphtoquinones, en

stilbénoïdes (deux cycles C6 liés par 2C), en flavonoïdes (comme le kaempférol dans les

fraises) et en formes polymérisées : lignanes, lignines, tanins condensés.

V.3 Utilisations

Les polyphénols prennent une importance croissante, notamment grâce à leurs effets

bénéfiques sur la santé.

En effet, leur rôle d’antioxydants naturels suscite de plus en plus d'intérêt pour la

prévention et le traitement du cancer, des maladies inflammatoires, cardiovasculaires et

neurodégénératives. Ils sont également utilisés comme additifs pour l’industrie

agroalimentaire, pharmaceutique et cosmétique.

Kaempférol

Cinnamique

Figure14 : Exemples de polyphénols

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VI Les Quinones

VI.1 Définition

Les quinones constituent une série de diènes plutôt que des composés aromatiques

comportant un noyau de benzène sur lequel deux atomes d'hydrogène sont remplacés par

deux oxygènes formant deux liaisons carbonyles (dicétones éthylèniques conjuguées

cycliques).

VI.2 Structure chimique

Les principales quinones sont :

la benzoquinone ou quinone (C6H4O2), on utilise les propriétés rédox dans la

technique de développement photographique.

l'anthraquinone (C14H8O2). Les anthraquinones font partie du groupe des

quinones naturelles : substances oxygénées engendrées par l'oxydation des

composés aromatiques et caractérisées par un motif 1,4-dicétocyclohexa 2,5-

diène.

Figure16 : Anthraquinone

1,4-Benzoquinone (Quinone)

1,2-Benzoquinone

naphtoquinone (C10H6O2)

Figure15 : Exemples de Quinones

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VI.3 Utilisations

- Activité biologique

Ces composés ont une action spasmolytique, antibactérienne (ils empêchent la

croissance bactérienne), ils ont aussi une activité fongicide parfois vermifuge et cytotoxique.

Des réactions d'allergies sont aussi rapportées du fait de réactions entre des

benzoquinones et des protéines de l'homme.

- Activité laxative

Ils stimulent les récepteurs de la muqueuse intestinale ce qui augmente le péristaltisme,

diminue le temps du transit intestinal ainsi que la résorption d'eau et d'électrolytes.

VII Les Terpénoïdes VII.1 Définition

Les terpènes sont des hydrocarbones naturels, de structure soit cyclique soit à chaîne

ouverte.

La molécule de base est l’isoprène de formule C5H8.

Les terpénoïdes, qu'on appelle parfois isoprénoïdes, forment un ensemble de substances

présentant le squelette des terpènes avec une ou plusieurs fonctions chimiques (alcool,

aldéhyde, cétone, acide, lactone, ect …)

VII.2 Structure chimique

Dans le règne végétal, les tetrpénoïdes sont classés dans la catégorie des métabolites

secondaires (avec les flavonoïdes et les alcaloïdes).

Leur classification est basée sur le nombre de répétitions de l’unité de base isoprène :

hémiterpènes (C5), monoterpènes (C10), sesquiterpènes (C15), diterpènes (C20),

sesterpènes (C25), triterpènes (C30), tetraterpènes (C40) et polyterpène peut atteindre plus

de 100(le caoutchouc).

Figure17 : isoprène

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Les terpénoïdes peuvent être considérés comme des terpènes modifiés, avec des

groupes méthyles ajoutés ou enlevés, ou des atomes d'oxygène ajoutés).

Tout comme les terpènes, les terpénoïdes peuvent être classés selon leur nombre

d'unités isoprène :

Monoterpénoïdes, 2 unités isoprène,

Sesquiterpénoïdes, 3 unités isoprène,

Diterpénoïdes, 4 unités isoprène,

Sesterterpénoïdes, 5 unités isoprène,

Triterpénoïdes, 6 unités isoprène,

Tetraterpénoïdes, 8 unités isoprène,

Polyterpénoïdes avec un nombre plus important d'unités isoprène

VII.3 Utilisations

Les terpénoïdes constituent le principal odoriférant des végétaux. Cette odeur est due à

la libération des molécules très volatiles contenant 10, 15, 20 atomes de carbones.

Extraites ces molécules sont employées comme condiment (girofle) ou comme parfum

(rose, lavande).

Menthol (Monoterpène)

Vitamine A (Diterpène)

Squalène

Figure 18 : Exemple de triterpène

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Nombreux d'entre eux possèdent de propriétés antiseptiques, d'où divers emplois dont

l'embaument qui est resté dans le terme balsamique donné aux plantes et aux huiles qui en

sont tirées.

VIII Les Stéroïdes

VIII.1 Définition

Les stéroïdes, abondant dans les végétaux et les animaux, constituent un groupe de lipides

dérivant de triterpénoïdes (lipides à 30 atomes de carbones), majoritairement le squalène.

Ils se caractérisent par un noyau cyclopentanophénanthrénique (stérane) hydrophobe

partiellement ou totalement hydrogéné.

VIII.2 Structure chimique :

On distingue 5 sous classes de stéroïdes :

sous-classe des stérols et dérivés : cholestérol, phytostérol et stérides ;

les stéroïdes : œstrogènes, testostérones, androgènes, progestérones… (hormones

stéroïdiques)

les sécostéroïdes : vitamine D ;

les acides biliaires ;

les stéroïdes conjugués.

Figure19 : Noyau de stérane

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VIII.3 Utilisations

En médecine le terme de « stéroïde » fait référence aux hormones stéroïdiennes. Dans

un contexte sportif, « stéroïde » est habituellement employé pour désigner les stéroïdes

anabolisants.

Les stéroïdes anabolisants, également connus sous le nom de stéroïdes androgéniques

anabolisants ou SAA, sont une classe d'hormones stéroïdiennes liées à une hormone

naturelle humaine : la testostérone.

Ils augmentent la synthèse des protéines dans les cellules, entraînant une

augmentation de tissus cellulaires (anabolisme), en particulier dans les muscles.

Les stéroïdes anabolisants ont également des propriétés virilisantes notamment le

développement et l'entretien des caractéristiques masculines telles que la croissance des

cordes vocales et la pilosité.

Cholestérol

Testostérone

Figure20 : Exemples de stéroïdes

Progestérone

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IX Les Coumarines

IX.1 Définition

Les coumarines sont des substances naturelles organiques aromatiques. Plus d’un millier

de coumarines naturelles ont été décrites. Elles sont très largement distribuées dans le

règne végétal comme le céleri, le persil, les agrumes.

IX.2 Structure chimique

Il y a deux types de coumarines : simple et complexe

Coumarine simple : ces usages marquèrent un tournant dans l’histoire des parfums

et arômes de synthèse.

Coumarine complexe

IX.3 Utilisations

La coumarine reste utilisée en phytothérapie, mais à des doses beaucoup plus faibles.

Elle peut être présente dans les aliments et les boissons seulement sous la forme de

préparations aromatisants naturelles.

L'odeur de foin fraîchement coupé de la coumarine est très utilisée en parfumerie. Elle

s'associe bien à la vanilline. Elle est aussi utilisée dans les produits cosmétiques (déodorants,

eaux de toilette, crèmes, shampoings, savons de toilette, dentifrice, etc.).

Pour neutraliser ou masquer les mauvaises odeurs, la coumarine est aussi ajoutée aux

peintures, insecticides, encres, aux aérosols, au caoutchouc ou aux matières plastiques.

Les coumarines ont des propriétés anti-oxydantes.

Figure21 : Coumarine

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X Les Polysaccharides X.1 Définition

Les polysaccharides (parfois appelés glycanes, polyosides ou polyholosides) sont des

polymères constitué de plusieurs oses liés entre eux par des liaisons O-osidiques.

Les polysaccharides de formule (C6H10O5)n comme l'amidon, la cellulose, l'inuline sont

des substances de réserves exclusivement végétales.

On rencontre l'amidon dans les tubercules (pomme de terre, manioc) et dans les

céréales, la cellulose dans les légumes, les herbes, et l'inuline dans les bulbes (d'ail, d'oignon

etc) et les racines de radis, de dahlia, etc.

On distingue deux catégories de polysaccharides :

les homopolysaccharides (ou homoglycanes) constitués du même monosaccharide :

fructanes, glucanes, galactanes, mannanes ;

les hétéropolysaccharides (ou hétéroglycanes) formés de différents

monosaccharides : hémicelluloses comme le xylane.

Figure23: Xylane

Figure22 : Structure de base d’un

Galactane

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X.2 Structure chimique

Ce sont des polymères formés d'un certain nombre d'oses (ou monosaccharides) ayant

pour formule générale :

-[Cx(H2O)y)] n- (où y est généralement x - 1)

On peut aussi les classer sous deux autres catégories selon leur fonction biologique :

polysaccharides de réserve : c’est une molécule source d'énergie pour les êtres

vivants principalement le glucose.

polysaccharides structuraux : ces carbohydrates participent à la formation des

structures organiques, comme la cellulose qui participe à la structure des tissus de

soutien chez les végétaux.

Certains polysaccharides entrent dans la composition de la capsule entourant

certaines bactéries.

X.3 Utilisations

Ils constituent la capsule d'une souche d'Escherichia coli uropathogène qui empêchent

la formation de biofilms.

Figure25 : Formule chimique

développée de la cellulose

Figure24 : Chaine linéaire de glucose

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En présence de ces polysaccharides, des bactéries tel le staphylocoque doré,

deviennent incapables de s'organiser en biofilm. Ils jouent le rôle d'antiadhésif et empêchent

les contacts entre les micro-organismes.

Les polysaccharides constituent une ressource renouvelable pouvant se substituer aux

dérivés pétroliers pour créer des polymères biologiques.

XI Les Saponines

XI.1 Définition

Une saponine est un hétéroside complexe, appartenant aux terpènes cycliques (nom

générique donné aux hydrocarbures saturés cycliques ou acycliques ayant pour motif de

base le terpène) ou aux stéroïdes.

Les saponines ou les saponosides ont reçu leur nom du fait qu’elles produisent une

mousse semblable à celle du savon quand on les agite dans l’eau (lat. sapo = savon).

Les saponines sont très fréquentes dans les végétaux supérieurs, surtout dans les tissus

riches en substance nutritive, comme les racines, les tubercules, les feuilles, les fleurs et les

graines.

On les trouve dans les légumes, comme le soja, les petits pois, les épinards, les tomates,

les pommes de terre, l'ail et le quinoa. On trouve aussi des saponines dans les concombres

de mer, les étoiles de mer, les éponges et le plancton.

XI.2 Structure chimique

Un glycoside de saponine ou simplement saponine est issu de la combinaison chimique

d’un sucre et d’un stéroïde, d’un stéroïde alcaloïde (il s’agit d’un stéroïde comportant une

fonction azotée) ou d’un triterpène. C’est pourquoi on parle aussi de saponine stéroïde, de

saponine alcaloïde stéroïde et de saponine triterpène.

En raison de la multiplicité des structures possibles de glucide et de la grande variabilité

structurale des algycones, ce groupe de corps présente une grande variété structurelle et

par là une grande variabilité dans ses caractères biologiques.

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XI.3 Utilisations

Les saponines ont des propriétés tensioactives. Leurs solutions moussent et servent de

détergent.

Par ailleurs, les saponines peuvent également faciliter l'absorption des éléments

nutritifs par l'organisme.

Certains des saponosides ont de propriétés antimicrobiennes et antifongiques ainsi que

hémolytiques généralement attribués à leur interaction avec le cholestérol de la membrane

érythrocytaire, ils sont toxiques pour les animaux à sang froid comme les poissons.

XII Les Hétérosides cyanogénetiques

XII.1 Définition

Substance d'origine végétale qui par, hydrolyse, libère de l'acide cyanhydrique (très

toxique). Ils sont très fréquent chez les plantes inférieures (fougères, gymnospermes) et

dans certaines familles de plantes supérieures : rosaceae, fabaceae, poaceae, araceae,

euphorbiaceae, passifloraceae.

XII.2 Structure chimique

Il existe deux types de familles d’hétérosides cyanogénetiques :

Celles qui libèrent par hydrolyse de l'acétone (Graines de lin, haricot de java :

Linamaroside)

Figure26 : Formule chimique de la solanine, une saponine rencontrée chez les Solanacée

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celles qui libèrent par hydrolyse de l'aldéhyde benzoïque (Prulauraroside dans

le laurier cerise, durrhine du sorgho, amygdaloside des amandes amères,

viscianoside de la vesce...).

XII.3 Utilisations

Beaucoup d’hétérosides sont physiologiquement très actifs. Ils comptent des poisons

redoutables : cardiotoxiques, hétérosides, hétérosides cyanogénétiques.

Au point de vue thérapeutique, on y trouve des substances d’actions très divers : des

cardiotoniques, des purgatifs (hétérosides anthracéniques, gluco-résines des

Concolvulacées, hétérosides des Cucurbitacées), des diurétiques (arbutoside, saponosides,

flavonosides), des astringents (tannosides), des antimicrobiens (hétérosides des

Streptomyces, arbutoside), des antirhumatismaux (salicoside, monotropitoside), des

substances à propriétés vitaminiques P (esculoside, rutoside).

Figure27 : Exemple d’hétéroside de glucose (la salicyline)

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Chapitre1 MATERIELS

I Matériel végétal

Le matériel a été récolté à Andrainjato FIANARANTSOA, au mois d’Avril 2011.

L’identification a été faite au Parc Botanique et Zoologique Tsimbazaza (PBZT)

ANTANANARIVO.

La plante a été identifiée sous le nom de datura stramonium L. (SOLANACEAE).

I.1 Définition

Le datura stramoine ou stramoine officinal (datura stramonium L.) est une plante

herbacée de la famille des Solanacées (Roblot et al., 1994).

Elle comporte de nombreux noms communs : stramoine, pomme-épineuse, herbes-aux-

taupes, chasse-taupe, herbe du diable, endormeuse, pomme poison, trompette des anges,

herbe Jimson ou trompette de la mort, faisant référence à la forme de la fleur ou à la toxicité

de ses fruits.

I.2 Noms vernaculaires :

Kinananakoho (Betsil.); Ramiary (Mer.); Maimbobe (Sihan.), Kirary (Tuléar).

I.3 Variétés

Datura stramonium var. inermis, fruit inerme, Corse, Essonne

Datura stramonium var. stramonium

Datura stramonium var. tatula (L.) tiges violettes, fleur blanche ou lilas, à cœur

pourpre profond

Photo11 : datura stramonium L. (SOLANACEA)

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I.4 Description

C'est une plante annuelle de 30 cm à 2 m de haut, à odeur fétide, et à racine pivotante.

Les feuilles sont relativement grandes,

jusqu'à 20 cm, ovales, fortement sinuées,

portant des dents aiguës et à base

asymétrique.

Les fleurs, solitaires, généralement

blanches ou jaunes, de 7 à 12 cm de long à

corolle soudée en tube s'ouvrant en

entonnoir à cinq lobes peu marqués, et à

calice formant tube 5-angulaire vert pâle,

plus court que la corolle et terminé par

cinq petits lobes.

Une variété porte des fleurs violacées.

Photo12 : Feuilles de datura

stramonium

Photo13 : Fleur de datura

stramonium

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Le fruit de forme ovoïde de la taille

d'une noix, qui mûrit de juillet à octobre,

est dressé, couvert d'épines longues et

robustes mais peut aussi en être

parfaitement dépourvu (var. inermis et

tatula). C'est une capsule septicide

s'ouvrant à maturité par quatre grandes

valves qui découvrent une colonne

placentaire centrale portant les graines.

Les graines réniformes, à surface réticulée, longues de 3 à 4 mm, sont noires et contiennent

un embryon spiralé.

I.5 Position systématique

Le tableau ci-dessous montre la classification selon Cronquist

Tableau2 : Classification selon Cronquist de datura stramonium

Règne Plantes Plantae

Sous-règne plantes vasculaires Tracheobionta

Division plantes à graines Spermatophyta

Classe Plantes à fleur Magnoliopsid (angiospermae)

Sous-classe Dicotylédones Dicotyledonae

Super ordre Astéridés Astéridae

Famille Solanacées Solanaceae

Genre Datura Datura

Espèce Stramonium Stramonium

Photo14 : Fruit de datura

stramonium

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I.6 Écologie

Certains auteurs ont signalés que l’origine de Datura stramonium est incertaine, mais la

plupart ont convenu que cette plante est originaire de la zone tropicale de l’Amérique

centrale et du sud (Steenkamp et al., 2004).

Elle a colonisé l’Europe à travers l’Espagne, elle s’est propagé ensuite en Afrique du nord

et le long de la méditerranée. Aujourd’hui, on la trouve naturalisée dans toutes les régions

du monde, excepté les régions à climat dur.

Elle est communément trouvée le long des rives, aux bords des chemins et des routes,

dans les décombres, et aime les terres fraîchement retournées où elle est considérée

comme une mauvaise herbe très envahissante.

I.7 Composition

Le datura officinal (D. stramonium) est riche en substances minérales (15-18 %) et en

alcaloïdes tropaniques.

La teneur en alcaloïdes totaux varie entre 0,2 et 0,5 % dont un tiers de scopolamine et

les deux tiers restants de l'hyoscyamine et de l'atropine.

I.8 Utilisations

Il a été utilisé comme plante médicinale pour ses effets antispasmodiques et sédatifs

du système nerveux central, préconisé contre l'asthme et les névralgies.

A Madagascar et en Afrique tropicale, le datura stramonium est traditionnellement

utilisé pour traiter l'asthme, la toux, la tuberculose et la bronchite.

Les feuilles, les fleurs séchées sont fumées sous forme de cigarettes.

Ces cigarettes anti-asthme se sont avérées très efficaces dans certains cas, mais dans

d’autres elles n’ont eu que peu, voire aucun effet.

Des cigarettes fabriquées avec les feuilles sont également utilisées pour traiter la

maladie de Parkinson.

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Usage également répandu, la sédation de patients atteints de troubles mentaux, grâce à

diverses préparations à base de différentes parties de la plante.

En Afrique, au nombre des autres usages traditionnels des feuilles figurent le

traitement des hémorroïdes, des furoncles, des écorchures, des maladies de peau, des

rhumatismes, des maux de tête, des maux de dents, du choléra, des parasites comme la

teigne et le ver de Guinée, et l’emploi comme abortif et anesthésiant.

Au Sénégal, en Guinée, au Ghana et au Nigeria, les feuilles broyées sont appliquées en

cataplasme sur les œdèmes inflammatoires et les articulations rhumatisantes.

Au Ghana, la décoction de feuilles s’emploie en collyre pour soigner la conjonctivite et

d’autres problèmes oculaires.

Au Nigeria, les feuilles séchées sont mélangées à du sel et du poivre et brûlées pour

traiter l’asthme.

En Ethiopie, l’huile des graines sert à masser les parties douloureuses du corps.

Les usages du datura stramonium sont récapitulés dans le tableau suivant :

Tableau3 : Récapitulation de l’usage du datura stramonium

Maladies Partie de la plante

Utilisations

Asthme, toux, tuberculose, bronchite, maladie de Parkinson

Feuilles fumées sous forme de cigarettes

hémorroïdes, maladies de la peau, rhumatismes, maux de tête, maux de dents,

œdèmes inflammatoires

Feuilles broyées et appliquées en

cataplasme

conjonctivite Feuilles La décoction s’emploie en collyre

Douleurs du corps Graines L’huile sert à masser ces parties

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I.9 L’étiologie de l’intoxication par datura stramonium L.

Les intoxications par le Datura stramonium se déroulent généralement en période

estivale et au début de l’automne, sa facilité d’accès et ses propriétés anticholinergiques en

font un toxique pour les adolescents (à la recherche de sensation) ou les toxicomanes.

L’étiologie de l’intoxication par la stramoine est variée, elle peut être accidentelle ou

volontaire.

Intoxication accidentelle

Les intoxications accidentelles concernent les enfants. Les enfants sont attirés par les

grandes fleurs et s'empoisonnent en suçant le nectar à la base de celles-ci, ou en mangeant

les graines.

Des cas d’intoxications signalés dus à une contamination de farine par des graines, à du

miel des abeilles butinant des daturas, et à une confusion de la racine avec du raifort. Des

cas de confusion des feuilles avec des légumes sauvages ont été rapportés.

Les intoxications des animaux par cette plante sont beaucoup moins fréquentes, en

raison de la forte odeur de la plante et le goût désagréable. Elles surviennent surtout

pendant la saison sèche, quand les animaux sous alimentés recherchent un fourrage vert ou

consommant du foin ou d’ensilage contaminé par la plante de Datura.

Intoxication volontaire

Toutes les parties de la plante peuvent être utilisées, et son ingestion entraîne

l'apparition d'un syndrome anticholinergique.

L’intoxication touche l’adolescent ou l’adulte jeune avec une nette prédominance

masculine (Desachy et al., 1996).

Ce sont très souvent les graines qui sont ingérées (Bruneton, 2001). Les graines du

datura sont consommées directement, ou préparées; la plus commune de ces préparation

est l’infusion des graines seules ou avec d’autres parties de la plantes tel que les feuilles, les

autres parties de la plante (feuilles, tiges, racines et fleures) peuvent être mâchées ou

ingérées par des toxicomanes. Le papier de cigarettes peut être imbibé d’une décoction de

feuilles.

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Dose toxique de datura stramonium

Dose toxique chez l’enfant : 2 á 5g de feuilles

Dose létale chez l’adulte : 10 á 12g de feuilles

Symptômes observées

Le délai d’apparition des symptômes varie en fonction du type d’intoxication, de 15

minutes (infusion) à 6 heures (ingestion de graines).

L'intoxication se traduit par un syndrome anticholinergique à symptomatologie

essentiellement neuropsychique avec excitation psychomotrice, propos incohérents,

hallucinations visuelles, angoisse, désorientation, agressivité.

La présence d'une mydriase bilatérale est constante, alors que les autres signes

anticholinergiques sont inconstants : sécheresse buccale, tachycardie, hyperthermie,

rétention urinaire, vomissements. Dans les cas graves, on peut observer : convulsions,

détresse respiratoire et coma (Lapostolle et flesch, 2005).

Traitement de l’intoxication

Le traitement est avant tout symptomatique et comporte une surveillance clinique et

l’administration de benzodiazépines (Lapostolle et flesch, 2005), et de la décontamination

gastro-intestinale avec du charbon activé.

La rétention urinaire nécessite la pose d’une sonde. Dans les intoxications sévères certains

auteurs ont préconisé l’administration de physostigmine (Lapostolle et flesch, 2005).

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II Matériels laboratoire Les verreries utilisées lors de nos expériences sont représentées ci-dessous.

Erlenmeyer Ballon Bécher

Tube à essai Entonnoir Ampoule à décanter

Photo15 : Exemple de verreries utilisées lors de nos

expériences

Eprouvette graduée Burette

Filtre à Büchner

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Chapitre2 METHODES

L’étude chimique d’une plante consiste à :

Réaliser le test préliminaire ou screening phytochimique sur des extraits. Cette

opération permet de connaitre les familles chimiques qui y sont présentes.

Vérifier les constituants trouvés lors du screening par la chromatographie.

Identifier leurs constituants et trouver une corrélation entre la structure de ces

derniers et l’usage de la plante.

I Screening phytochimique

Pour identifier les différentes substances chimiques présentes dans la plante, un

screening phytochimique est fait. La colorimétrie et la gravimétrie ont été les deux

principales voies d'identification de ces groupes de substances en solution.

Il s'agit principalement des alcaloïdes, des flavonoïdes, des hétérosides

cyanogénétiques, des quinones, des saponines, des stéroïdes, des tanins et des terpénoïdes.

Les tests chimiques de colorations ou de précipitations sont effectués sur des extraits

hydroalcooliques (Méthode de FONG H. et al.), ou sur des extraits bruts.

Pour notre travail, le screening s'est effectué uniquement sur les feuilles.

I.1 Préparation de l’extrait hydroalcoolique

On place 25g de plantes séchées, broyées dans un ballon rodé de 250ml. On additionne

100ml d’éthanol à 80%.

On adapte un réfrigérant à boule et on porte le ballon dans un bain-marie bouillant

pendant 30mn.

Après on laisse le contenu du ballon se refroidir sous courant d’eau et on filtre sur

Büchner.

Il faut laver le ballon avec un volume nécessaire d’éthanol 80% pour avoir toutes les

solutions alcooliques.

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Une solution éthanolique de 140ml est obtenue ; c’est ce qui nous servira à la

réalisation des divers tests phytochimiques.

I.2 Screening des Alcaloïdes

Tous les alcaloïdes présentent des propriétés alcalines plus ou moins marquées et

forment des sels avec les acides (sulfates, chlorhydrates…). Ils peuvent aussi précipiter les

hydrates de métaux lourds tels que le bismuth, le mercure, le tungstène, l'iode, leur

permettant ainsi d'adopter une structure d'ammonium quaternaire :

Les alcaloïdes peuvent être caractérisés par les réactifs généraux suivants :

réactif au mercuri-iodure de potassium (Valser Mayer): précipité blanc jaunâtre

réactif à l'iodobismuthite de potassium (Dragendorff): précipité orange

réactif à l'iodo-ioduré (Wagner): précipité rouge orangé

Le screening des alcaloïdes est effectué en 3 étapes :

- Macération

- Test préliminaire

- Test de confirmation

Figure28 : Réaction de Valser Mayer

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I.2.1 Macération chlorhydrique

Environ 2,5g de poudre de plante sèche sont macérées dans l’acide chlorhydrique 12%

pendant 15mn puis filtrée sur coton.

Il faut ajouter un peu de solution acide si nécessaire pour avoir une solution limpide et

claire.

Le filtrat est divisé dans 4 tubes à essais.

Tests :

Tube n°1 : témoin

Tube n°2 : + 5 gouttes de Réactif de Wagner

Tube n°3 : + 5 gouttes de Réactif de Mayer

Tube n°4 : + 5 gouttes de Réactif de Dragendorff

Résultat attendu :

L’apparition de précipité indique que le test est positif.

I.2.2 Test préliminaire

A partir de la solution hydroalcoolique précédemment préparée.

On prend un volume équivalent à 13g de plante dans un cristallisoir.

Et on laisse évaporer l’alcool jusqu’à obtention d’un résidu de consistance sirupeuse.

Puis on ajoute 5ml de solution HCl 2N.

Le mélange est porté au bain marie bouillant, sous agitation, pendant cinq minutes.

La solution acide est ensuite refroidie jusqu’à température ambiante.

On additionne 0,25g de NaCl, après on agite et filtre le mélange.

Le précipité est lavé avec un volume suffisant de HCl 2N.

Ainsi, le filtrat obtenu est divisé en quatre et testé par les réactifs généraux des alcaloïdes.

Résultat attendu :

L’apparition d’un précipité dans chaque tube marque la présence d’alcaloïde.

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I.2.3 Test de confirmation

Si le test préliminaire s’avère positif, on procède au test de confirmation selon le

protocole expérimental suivant :

(1) Prendre l’équivalent de 2,5g de plantes.

(2) Evaporer l’alcool jusqu’à obtention d’un résidu de consistance sirupeuse.

(3) Ajouter 5ml de solution HCl 2N et agiter à l’aide d’une baguette de verre tout en

chauffant dans un bain marie bouillant pendant 3 à 5 mn.

(4) Refroidir la solution acide jusqu’à température ambiante.

(5) Additionner 0,25 g de NaCl. Agiter et filtrer. Laver le précipiter avec un volume

suffisant de HCl 2N.

(6) Alcaliniser la solution acide avec une solution de NH4OH à 50% jusqu’ pH = 9 ; les

alcaloïdes repassent sous sa forme libres.

(7) Extraire 3 fois au chloroforme.

(8) Laver à l’eau les solutions chloroformiques regroupées.

(9) Sécher sur Na2SO4 anhydre.

(10) Filtrer. Evaporer à sec.

(11) On obtient ainsi l’extrait brut d’alcaloïdes totaux (AT).

Le résidu obtenu est repris avec une solution acide HCl 2N que l’on teste avec les trois

réactifs généraux.

Test des ammoniums quaternaires et des N-Oxydes

On prend un certain volume de la phase aqueuse alcaline précédente. Elle sera acidifiée

par HCl 2N puis filtrée pour avoir une solution limpide.

La solution ainsi obtenue est testée avec les réactifs généraux.

Résultat attendu :

Apparition de précipitation ou trouble.

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40

I.3 Screening des Flavonoïdes et des Leucoanthocyanes

I.3.1 Test de Wilstater ou à la cyanidine

Les composés flavoniques sont réduits en présence d'un acide concentré et de

magnésium. Après élimination d'une molécule d'eau, le produit de réduction conduit à des

anthocyanidines de couleur rouge.

O

O

OH

HO

OH

OH

O

OH

HCl / Mg

OH

HO

OH OH

O

OH

OH

HO

OH O+

H H

- H2O

O

OH

HO

OH

OH

+

HCl (H+)

I.3.2 Test de Bath-Smith

Les leucoanthocyanes ou proanthocyanidols monomères qui sont des dérivés des

flavan-3,4-diols se transforment en anthocyanidols correspondants par traitement acide.

Figure29 : Mécanisme de la réaction de Wilstater

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41

HCl /

OHO

OH OH

OH

OH

OHO

OH

OH

OH

OHO

OH

OH

OH

O

HH

H

+

OHO

OH

OH

OH

OHO

OH

OH

OH

OHO

OH

OH

O

H H

+

- H+

Mode opératoire :

Evaporer la solution hydroalcoolique équivalente à 1,5 g de plantes dans un cristallisoir

au bain-marie.

On élimine les pigments à l’éther de pétrole après refroidissement.

On dissout le résidu avec 30ml d’éthanol 80% puis on filtre.

Répartir le filtrat dans 5 tubes à essais.

Tube n°1 Témoin

Test de Wilstater

Tube n°2 Additionner 0,5 ml de HCl concentré et quelques tournures de Mg

Résultat attendu :

Si après 10 mn la coloration est :

Rouge : présence de flavones

Rouge à pourpre : présence de flavonols

Rouge violacée : présence de flavanones et flavanols

Figure30: Mécanisme de la réaction de Bath-Smith

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42

Test de Wilstater modifié

Tube n°3 Additionner 0,5 ml de HCl concentré et quelques tournures de Mg

Et après dissolution de Mg, ajouter 1ml d’eau et 1 ml d’alcool isoamylique.

Il se forme deux phases.

Résultat attendu :

Après 10 mn, si la coloration de la phase supérieure est :

Rouge : présence de flavone

Pourpre : présence de flavonols

(Pourpre = rouge foncé tirant sur le violet)

Test de Bath-Smith

Tube n°4 Additionner 0,5ml de HCl concentré

Chauffer pendant 30mn au bain-marie

Laisser refroidir

Résultat attendu :

Si la coloration est rouge violacée : présence de leucoanthocyanes

Tube n°5 Additionner 0,5ml de HCl concentré à froid

Résultat attendu :

Si la coloration est rouge : présence d’anthocyanes

I.4 Screening des Tanins et des Polyphénols

Le chlorure ferrique (FeCl3) en solution diluée forme avec les phénols des colorations

variant du bleu au violet qui sont dues à la formation de complexes d'oxydation.

Mode opératoire :

Evaporer la solution équivalente à 2,5g de plantes dans un cristallisoir, ajoute 7,5ml

d’ED.

Après évaporation au bain marie et agitation, on additionne 1g de NaCl et 100ml d’ED.

On filtre le mélange.

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43

Repartir le filtrat dans 4 tubes à essai

Tube n°1 Témoin

Tube n°2 + 5 gouttes de gélatine à 1%

Résultat attendu

Si on observe un précipité : présence de polyphénols

Tube n°3 + 5 gouttes de gélatine salée

Résultat attendu

Si on observe un précipité : présence de tanins

Tube n°4 + 5 gouttes de FeCl3 10% dans le MeOH

Résultat attendu

Si la coloration est :

Bleu-vert : présence de tanins condensés (catéchiques ou flavan-3ols

condensés et leucoanthocyanes flavan-3,4-diols

Noir bleuâtre : présence de tanins hydrolysables (galliques ou ellagiques)

Incolore : absence de tanins

Remarque :

La réaction négative à la gélatine salée accompagnée d’une coloration verte ou bleu noir

avec FeCl3 signifie qu’on est en présence d’autres types de composés phénoliques.

I.5 Screening des Quinones

Une solution alcoolique équivalente à 2,5g de plantes est évaporée à sec, dans un

cristallisoir, au bain marie.

Dissoudre le résidu dans 7,5ml d’ED puis filtrer.

Le filtrat est ensuite placé dans une petite ampoule à décanter puis extraire au

benzène.

On verse 2,5ml de NH4OH à 50% dans le mélange et on agite.

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44

Résultat attendu

On observe le changement de la coloration de la phase alcaline (phase inférieure)

Si la coloration est rouge violacée : présence de quinone

I.6 Screening des Stéroïdes et des Terpénoïdes

Les stéroïdes diffèrent des triterpènes par des tests de coloration et de fluorescence.

I.6.1 Test de Salkowski :

Dans ce test on met en évidence les stérols insaturés par une réaction qui provoque

l'apparition de coloration rouge: l'addition d'acide sulfurique concentrée entraîne

l'élimination d'une molécule d'eau et conduit à la formation d'insaturation supplémentai re.

H

H

HO

H

H

O

HH

+

H

H

H

H+

- H3O+

Figure31 : Exemple de réaction de Salkowski

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45

I.6.2 Test de Liebermann-Burschard

Le groupement OH en 3 est protégé par addition d'anhydride acétique. Cette réaction est

suivie soit d'une isomérisation soit d'une transposition moléculaire, ce qui provoque le

changement de coloration.

une coloration bleu-vert indique la présence de stéroïdes

une coloration rouge violet à rose dénote la présence de triterpènes

I.6.3 Test de Badjet-Ked

L'addition d'acide picrique entraîne l'ouverture du cycle lactonique insaturé puis

formation de complexe entre l'hydrocarbure et l'acide picrique.

L'apparition d'une coloration orange est due aux stéroïdes lactoniques

Mode opératoire :

Evaporer complètement la solution hydroalcoolique équivalente à 2,5g de plante dans

un cristallisoir au bain marie.

Eliminer les pigments à l’éther de pétrole après refroidissement

Répéter l’opération jusqu’à élimination des pigments

Additionner 5ml de chloroforme et agiter pendant 10mn.

Filtrer et répartir le filtrat dans 6 tubes à essais après décantation et séchage avec

Na2SO4 anhydre.

Tuben°1 Témoin

Tube n°2 + 3 gouttes de solution saturée d’antimoine

Résultat attendu

S’il y a apparition d’une fluorescence

Bleue : présence de tripterpène

Jaune : présence de stéroïdes

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46

Test de Liebermann Burchard

Tube n°3 Additionner 3 à 4 gouttes d’anhydride acétique

3 à 4 gouttes de H2SO4 concentré

Résultat attendu

Si la coloration est :

Pourpre : présence de tripterpénoïdes

Violet ou bleu vert : présence de stéroïdes

Test de Salkowski

Tube n°4 Incliner le tube à 45°

Ajouter 1ml de H2SO4 concentré

Résultat attendu

Si l’anneau est rouge : présence de stérols insaturés

Test de Badjet Kedde

Tube n° 5 Additionner quelques grains d’acide picrique

Résultat attendu

Si la coloration est rouge : présence de stéroïdes lactoniques

Test de Keller - Killiani

Tube n°6 Additionner quelques gouttes de FeCl3 10%

Quelques gouttes d’acide acétique glacial

Incliner le tube à 45°

Résultat attendu

Si l’anneau de séparation est rouge pourpre : présence desoxy-2-sucre

I.7 Screening des Saponines

Mode opératoire

Mettre 1g de poudre dans un tube à essai

Additionner 10ml d’eau distillée et agiter vigoureusement pendant 30 s.

Placer le tube verticalement pendant 30mn.

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47

Résultat attendu

Si la hauteur de la mousse est supérieure ou égale à 3 cm la plante contient des

saponines.

Noter l’abaissement de la hauteur de la mousse.

I.8 Screening des Polysaccharides

Mode opératoire

Avec 5g de poudre, préparer un décocté.

Filtrer

Prendre 1ml, ajouter 3ml d’EtOH

Résultat attendu

La formation de précipité indique la présence de polysaccharides .

I.9 Screening des coumarines

Mode opératoire

Préparer un papier imbibé de NH4OH.

Plonger dans une cuve chromatographique préalablement saturée par ce solvant.

Un dépôt de l’extrait hydroalcoolique est fait sur ce papier.

Examiner ensuite sous lumière UV de longueur d’onde λ = 365nm

Résultat attendu

L’apparition de fluorescence jaune autour du dépôt signifie la présence des coumarines

dans la plante.

I.10 Screening des hétérosides cyanogénétiques

Mode opératoire

Humecter dans un erlen 1,5g de poudre végétale avec une quantité suffisante d'eau.

Ajouter 0,5ml de chloroforme.

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Tremper une bande de papier filtre Whatman n°1 dans une solution fraîchement

préparée de picrate de sodium (2,5g de Na2CO3 ; 0,25g d'acide picrique et 50ml d'eau

distillée) puis égoutter.

Introduire un morceau de la bande de papier ainsi préparée dans l'erlen juste au-dessus

de la drogue et plier sur le bord du récipient.

Fermer l'erlen et laisser à la température ambiante pendant trois heures.

Résultat attendu

Les hétérosides cyanogénétiques provoquent un virage de la couleur de ce dernier du jaune au rouge.

II Extraction

Les méthodes d’extraction sont parmi les plus utilisées en analyse immédiate. Elles

permettent de réaliser le transfert d’un soluté initialement contenu dans une phase, solide

ou liquide, vers un solvant non miscible au premier milieu. Un certain nombre de méthodes

sont citées ci-dessous.

II.1Extraction par macération

La poudre de la plante est macérée dans un récipient contenant le solvant, bien fermé.

Dans ce cas, l’extraction demande beaucoup de temps.

II.2 Extraction liquide-liquide

L'extraction liquide-liquide est une mise en œuvre de l'extraction par transfert entre

deux phases liquides non ou partiellement miscibles.

Soit un composé, appelé soluté, dissout dans un liquide, l'éluant, l'ensemble formant un

brut, et un tiers produit le solvant.

Le solvant dissout le soluté mais non l'éluant, avec ce dernier il forme deux phases

liquides non miscibles (comme l'huile et l'eau).

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En mélangeant au brut du solvant, on obtient un système instable qui se sépare en deux

phases, dans lesquelles le soluté se répartit en fonction de son affinité propre pour l'une ou

pour l'autre. (Phénomène du PARTAGE).

Après équilibration de l'ensemble, on peut, par une décantation, séparer les deux

phases : l'extrait (riche en solvant) et le raffinat (riche en éluant).

Si le solvant a judicieusement été choisi, on peut le séparer facilement du soluté, et

obtenir ce dernier pur.

Généralement il reste dans le raffinat une quantité notable de soluté, c'es t pourquoi on

recommence plusieurs fois l'opération. Ces procédés nécessitent l’utilisation d’une ampoule

à décanter.

Photo16 : Utilisation d’une ampoule à décanter

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II.3 Extraction à chaud

Le chauffage est souvent utilisé pour

l’extraction. Il est alors indispensable

d’utiliser un réfrigérant pour éviter la

perte du solvant. Il permet la condensation

des vapeurs émises par le milieu

réactionnel qui retombent ainsi goutte à

goutte dans le ballon auquel est adopté le

réfrigérant.

Nous avons utilisé le réfrigérant à boule

pour le chauffage à reflux est utilisé

verticalement.

II.4 Evaporation

Un évaporateur rotatif est un appareil de laboratoire utilisé généralement en chimie

organique pour évaporer rapidement des solvants après avoir été utilisés dans une

extraction ou dans un milieu réactionnel.

Le plus souvent, l'évaporation du solvant est menée sous pression réduite (afin

d'accélérer l'étape) que l'on obtient au moyen d'une trompe à eau ou d'une pompe à vide.

L'évaporateur rotatif est souvent appelé, par abus de langage, Rotavapor ou "Büchi"

(noms de deux marques très courantes).

Photo17 : Utilisation du chauffage à reflux

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51

Il est composé de plusieurs parties :

un réfrigérant en spirale, équipé d'une prise

de vide et d'un robinet pour casser le vide,

un ballon de recette pour le distillat, situé

dans la partie basse du réfrigérant,

un moteur, qui assure la rotation du ballon

évaporateur (en forme de poire), par

l'intermédiaire d'un tube rotatif d'admission

des vapeurs. Le ballon évaporateur contient la

solution dont on doit chasser le/les solvant(s),

un bain marie, chargé de chauffer le ballon

évaporateur (car l'évaporation est un

processus endothermique).

III Chromatographie

III.1 Définition

La chromatographie est une méthode physique de séparation basée sur les différences

d'affinités des substances à analyser à l'égard de deux phases, l'une stationnaire ou fixe,

l'autre mobile.

On peut classer les méthodes chromatographiques d'après la nature des phases utilisées ou celle des phénomènes mis en œuvre dans la séparation.

Phase fixe: peut-être solide ou liquide.

Les solides, silice ou alumine traitées, permettent la séparation des composants des

mélanges grâce à leurs propriétés adsorbants.

Phase mobile est :

soit un gaz (ex: chromatographie en phase gazeuse): la phase mobile est appelée

gaz vecteur ou gaz porteur.

soit un liquide (ex: chromatographie sur papier, couche mince ou colonne): la

phase mobile est appelée éluant.

Photo18 : Utilisation du Rotavapor

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Les quatre types de chromatographie les plus utilisés :

chromatographie sur couche mince (CCM)

chromatographie sur papier (CP)

chromatographie sur colonne (CC)

chromatographie en phase gazeuse (CPG)

III.2 Chromatographie sur couche mince (CCM)

III.2.1 Définition et appareillage

La chromatographie sur couche mince, ou sur plaque (CCM), est effectuée surtout en

vue d’une analyse d’un mélange.

La phase stationnaire solide est fixée sur une plaque, et la phase mobile liquide,

nommée éluant, est un solvant ou un mélange de solvants.

On dépose sur la phase fixe une petite quantité du mélange à séparer et on met cette

phase au contact de la phase mobile.

La phase mobile migre de bas en haut, par capillarité, le long de la phase fixe en

entraînant les constituants du mélange. C’est le phénomène d’élution, qui permet la

séparation des constituants du mélange à analyser.

Les principaux éléments d'une séparation chromatographique sur couche mince sont:

la cuve chromatographique : un récipient habituellement en verre, de forme

variable, fermé par un couvercle étanche.

la phase stationnaire : une couche d'environ 0,25 mm de gel de silice (ou l'alumine,

le kieselguhr et la cellulose)

l'échantillon : environ un microlitre (µl) de solution diluée du mélange à analyser,

déposé en un point repère situé au-dessus de la surface de l'éluant.

l'éluant : un solvant pur ou un mélange : il migre lentement le long de la plaque en

entraînant les composants de l'échantillon.

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53

III.2.2 Principe de la technique

Lorsque la plaque sur laquelle on a déposé l'échantillon est placée dans la cuve, l'éluant

monte à travers la phase stationnaire, essentiellement par capillarité.

En outre, chaque composant de l'échantillon se déplace à sa propre vitesse derrière le

front du solvant. Cette vitesse dépend d'une part, des forces électrostatiques retenant le

composant sur la plaque stationnaire et, d'autre part, de sa solubilité dans la phase mobile.

Les composés se déplacent donc alternativement de la phase stationnaire à la phase

mobile, l'action de rétention de la phase stationnaire étant principalement contrôlée par des

phénomènes d'adsorption. Généralement, en chromatographie sur couche mince, les

substances de faible polarité migrent plus rapidement que les composants polaires.

Chaque constituant migre d’une certaine hauteur, caractéristique de la substance, que

l’on appelle rapport frontal, Rf (ou rétention frontale,coefficient de migration), le rapport

suivant :

La figure ci-dessous montre comment calculer le Rf dans le cas d'une chromatographie

liquide-liquide ascendante :

Figure32 : Calcul de Rf

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54

Le rapport frontal est donc égal à :

(Rf < 1)

Un soluté très soluble dans la phase fixe aura un R f faible ; très soluble dans la phase mobile, son Rf sera élevé et proche de 1.

III.3 Chromatographie sur papier

La technique ressemble à celle de la CCM mais le principe repose sur des phénomènes

de partage. La phase mobile est le plus souvent un solvant organique et l'eau; la phase

stationnaire est constituée par l'eau elle-même adsorbée sur la cellulose du papier ou liée

chimiquement à elle.

Comme en chromatographie sur couche mince, l'échantillon, mis en solution, est déposé

en un point repère du papier et le solvant, qui se déplace par capillarité, fait migrer les

composants de l'échantillon à des vitesses variables selon leur solubilité.

Généralement, les composés les plus solubles dans l'eau ou ceux qui forment facilement

des associations par liaisons hydrogène sont fortement retenus par la phase stationnaire et

migrent donc lentement.

On peut utiliser du papier filtre ordinaire, mais il est préférable de se procurer du papier

conçu pour cet usage, ayant un faible taux d'impuretés et dont les caractéristiques sont

uniformes. On utilise le plus souvent le papier Whatman n°3.

La description de l'analyse par chromatographie sur papier est identique à celle sur

couche mince. Mais on ne doit pas effectuer la révélation avec des agents corrosifs

attaquant le papier, on utilise la radiation UV.

III.4 Chromatographie sur colonne

Alors que les autres méthodes chromatographiques sont habituellement employées

pour l'analyse et la séparation de très faibles quantités de produits, la chromatographie sur

colonne peut être une méthode préparatrice ; elle permet en effet la séparation des

constituants d'un mélange et leur isolement, à partir d'échantillons dont la masse peut

atteindre plusieurs grammes.

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55

Elle présente cependant plusieurs inconvénients:

de grandes quantités de solvant sont nécessaires à l'élution

la durée de l'élution est généralement très grande

la détection des composés exige une attention constante.

Elle est adaptée à la purification de faibles quantités de produit, lorsque les conditions

opératoires sont au point. Cependant, la méthode étant très empirique, sa mise au point

nécessite souvent de nombreux essais.

III.5 Chromatographie en phase gazeuse (CPG)

Le principe de la séparation par C.P.G. consiste à partager l'échantillon à analyser entre

deux phases. L'une de ces phases est un liquide stationnaire uniformément réparti sous

forme d'une pellicule mince sur un solide inerte de grande surface spécifique, tandis que

l'autre phase est un gaz mobile qui s'écoule à travers l'ensemble stationnaire.

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56

I Résultats des Screening

I.1 Barèmes utilisés

Les barèmes utilisés pour l’appréciation des résultats durant les tests colorimétriques et

de précipitation sont inscrits dans le tableau ci-dessous :

Tableau4 : Barèmes utilisés pour l’appréciation

Notation Précipitation Coloration Indice de mousse

_ Négatif Pas de changement 0 à 2 cm

+ Faible Faible 2 à 4 cm

++ Abondante Franche 4 à 5cm

+++ Forte Intense Supérieur à 5cm

Les résultats des criblages sont rassemblés dans des tableaux suivis de discussion.

I.2 Criblage des alcaloïdes

I.2.1 Résultats du test des alcaloïdes

Tableau5: Résultats du test par macération chlorhydrique

Test Réactifs Résultat

attendu Observations Résultats

Macération chlorhydrique

et test préliminaire

Wagner Précipité rouge orangé

Précipité rouge orangé

++

Mayer Précipité blanc jaunâtre

Précipité blanc jaunâtre

+++

Dragendorff Précipité orange

Précipité orange +++

I.2.2 Discussion sur les résultats du test des alcaloïdes

Tous les réactifs utilisés ont donné des résultats positifs, les précipités obtenus étaient

très intenses. D’après la littérature les feuilles du Datura stramonium contiennent des

alcaloïdes, ce qui est prouvé par ces tests.

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57

I.3 Criblages des flavonoïdes

I.3.1 Résultats du test des flavonoïdes

Tableau6 : Résultats du test de Wilstater

Test Réactifs Résultats attendus

Observations Résultats

Wilstater HCl concentré

Tournure de Mg

Coloration rouge Absence de coloration

rouge

_

Wilstater

modifié

HCl concentré Tournure de Mg

Eau iodée Alcool

isoamylique

Coloration rouge Absence de coloration rouge

_

I.3.2 Discussion sur les résultats du test des flavonoïdes :

Aucun des réactifs utilisés n’a donné de résultat positif, alors on a conclu qu’il y a de

forte chance que la plante ne contienne pas de flavonoïdes.

I.4 Criblages des leucoanthocyanes et anthocyanes

I.4.1 Résultats du test des leucoanthocyanes et anthocyanes

Tableau7: Résultats du test leucoanthocyanes et anthocyanes

Test Réactifs Résultats attendus Observations Résultats Bath-Smith HCl concentré à

chaud

Coloration rouge

violacé

Coloration rouge

violacé

+

Bath-Smith HCl à froid Coloration rouge Coloration rouge +

I.4.2 Discussion sur les résultats du test des leucoanthocyanes et anthocyanes

Le test effectué avec l’acide chlorhydrique concentré, chauffé pendant 30mn et à froid a

donné une coloration rouge violacée assez nette.

On peut dire qu’il existe d’anthocyane et des leucoanthocyanes dans la plante.

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58

I.5 Criblages des tanins et des polyphénols

I.5.1 Résultats du test des tanins et des polyphénols

Tableau8: Résultats du test des tanins et des polyphénols

Test Réactifs Résultats attendus

Observations Résultats

Tanins Gélatine

salée

Précipité Pas de précipité,

coloration verte

_

Tanins condensés FeCl3 10% MeOH

Coloration bleue-verte

Absence de coloration bleue-verte

_

Tanins hydrolysables

FeCl3 10% MeOH

Coloration noire bleuâtre

Absence de coloration noire bleuâtre

_

Polyphénols Gélatine

1%

Précipité Pas de précipité _

I.5.2 Discussion sur les résultats du test des tanins et des polyphénols :

La réaction négative à la gélatine salée accompagnée d’une coloration verte signifie

qu’on est en présence d’autres types de composés phénoliques.

I.6 Criblages des Quinones I.6.1 Résultats du test des Quinones

Tableau 9 : Résultats du test des Quinones

Test Réactifs Résultats attendus Observations Résultats

Quinone Benzène

NH4OH 50%

Phase inférieur colorée en

rouge

Absence de coloration

rouge

_

I.6.2 Discussion sur les résultats du test des Quinones :

L’absence de la coloration rouge dans la phase inférieure montre que les feuilles du

Datura stramonium sont dépourvues de quinones.

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59

I.7 Criblages des Stéroïdes et Terpenoïde

I.7.1 Résultats du test des des Stéroïdes et Terpenoïdes

Tableau10: Résultats du test des Stéroïdes et Terpenoïdes

Test Réactifs Résultats attendus Observations Résultats

Stéroïde Solution saturée d’antimoine

Fluorescence jaune à UV=365nm

Fluorescence jaune à UV=365nm

++

Liebermann Burchard

Anhydre acétique + H2SO4

concentré

Coloration pourpre, violet ou bleu vert

Absence de coloration pourpre, violet ou bleu

vert

_

Salkowski H2SO4 concentré Anneau de séparation rouge

Pas d’anneau de séparation rouge

_

Badjet

Kedde

Grain d’acide

picrique

Coloration rouge Absence de coloration

rouge

_

Keller-Killiani

FeCl3 10% + Acide acétique

glacial

Anneau de séparation rouge

pourpre

Anneau de séparation rouge

pourpre

++

I.7.2 Discussion sur les résultats du test des Stéroïdes et Terpenoïdes

Comme l’anneau de séparation dans le test de Keller-Killiani est rouge pourpre ceci

marque la présence de desoxy-2-sucre.

Par ailleurs, la fluorescence jaune montre l’existence de stéroïdes dans la plante.

I.8 Criblages des Saponines I.8.1 Résultats du test des saponines

Tableau 11 : Résultats du test des Saponines

Test Réactifs Résultats attendus Observations Résultats

Saponine Eau distillé Hauteur de la mousse H = 3cm à t = 0s

Hauteur de la mousse H = 3cm à t =30mn

+++

I.8.2 Discussion sur les résultats du test des Saponines

La hauteur de la mousse H = 3cm indique la présence de saponines dans les feuilles du

Datura stramonium.

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I.9 Criblage des Polysaccharides

I.9.1 Résultat du test des Polysaccharides

Tableau 12 : Résultat du test des Polysaccharides

Test Réactifs Résultats attendus Observations Résultats

Polysaccharides Décoction Ethanol

Précipité Précipité ++

I.9.2 Discussion sur le résultat du test des Polysaccharides

Le résultat montre l’existence des polysaccharides dans les feuilles de la plante.

I.10 Criblage des Coumarines I.10.1 Résultat du test des Coumarines

Tableau 13: Résultat du test des Coumarines

Test Réactifs Résultats attendus Observations Résultats

Coumarines NH4OH Fluorescence jaune à UV=365nm

Fluorescence jaune à UV=365nm

+++

I.10.2 Discussion sur le résultat du test des Coumarines :

La présence d’une fluorescence jaune marque l’existence des coumarines dans les

feuilles du Datura stramonium.

I.11 Criblages des Hétérosides cyanogénétiques

I.11.1 Résultats du test des Hétérosides cyanogénétiques

Tableau 14 : Résultats du test des Hétérosides cyanogénétiques

Test Réactifs Résultats attendus Observations Résultats

Grignard Picrate de sodium Coloration rouge Pas de coloration rouge - I.11.2 Discussion sur les résultats du test des Hétérosides cyanogénétiques

L’absence de la coloration rouge lors du test de Grignard indique que les feuilles du

Datura stramonium sont dépourvues.

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II Récapitulation des résultats du screening phytochimique

Les résultats du screening phytochimique sont récapitulés dans le tableau suivant :

Tableau 15: Récapitulation des résultats du screening phytochimique

Famille chimique Résultats obtenus

Alcaloïdes +++ Flavonoïdes Flavones -

Flavonols -

Leucoanthocyanes +

Anthocyanes + Tanins Tanins hydrolysables -

Tanins non hydrolysables - Polyphénols +

Quinones - Triterpènes -

Stéroïdes Stéroïdes insaturés +

Stéroïdes lactoniques - Desoxy-2-sucre ++

Saponines + Hétérosides cyanogénétiques -

Polysaccharides ++ Coumarines ++

II.1 Conclusion sur le screening

Il apparaît que le Datura stramonium contient surtout des alcaloïdes, des

leucoanthocyanes, des polyphénols, des stéroïdes, des saponines, des polysaccharides et des

coumarines.

II.2 Corrélation entre les propriétés pharmacologiques et les familles chimiques

A la lueur de nos résultats, on peut en déduire une certaine corrélation entre l’usage

thérapeutiques et les familles chimiques présentes dans les feuilles de Datura stramonium.

Représentée par le tableau suivant :

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Tableau 16 : Corrélation entre l’usage thérapeutique et les familles chimiques

Familles chimiques Propriétés

pharmacologiques Usages thérapeutiques

Alcaloïdes Antispasmodique, sédatif

Asthme, toux, bronchite, tuberculose

Leucoanthocyanes vasculoprotectrice

Anthocyanes Anti-bactérienne

fongicides

Maladie de la peau

Polyphénols Anti- inflammatoire Maux de dents

Saponines Antimicrobienne Stéroïdes Anti-séptique

Polysaccharides Antiadhésif Coumarines Anti-oxydante

III Extraction des alcaloïdes

L’extraction et isolation des alcaloïdes totaux à partir des feuilles sont obtenues par une

extraction liquide-liquide, basée sur la différence de solubilité des alcaloïdes en milieu acide

et alcalin selon Bruneton (Bruneton, 1999).

10 g de feuilles de la plante, sont finement broyées.

La poudre obtenue est délipidée par 50 ml d’éther de pétrole par macération et sous

agitation mécanique, à température ambiante pendant 2heures.

Après filtration, le marc (graines moulues débarrassées de la matière grasse) est

alcalinisé par une solution 20 ml d’ammoniaque (0.5N) pendant au moins 4 heures à

température ambiante, permettant ainsi aux alcaloïdes, de passer de la forme sel en forme

organique.

Les alcaloïdes en première étape sont extraits à chaud sous reflux par 50 ml de

dichlorométhane pendant 2 heures.

A l’issue de cette opération, l’extrait brut est passé à la purification par une extraction

avec une solution de 20ml d’acide sulfurique (0.5N), la fraction est reprise dans une ampoule

à décantation, alcalinisées jusqu’à pH 9 par ajout de quelques ml d’ammoniaque (0.5N).

Nous épuisons ensuite la solution par 25ml de chloroforme, en agitant doucement

l’ampoule à chaque fois.

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Nous récupérons la fraction organique dans un erlen Mayer, qui sera déshydratée par

filtration sur papier filtre soutenant du sulfate de sodium anhydre.

L’extrait recueilli dans un bêcher taré est évaporé à sec sur plaque chauffante.

Après refroidissement. Le résidu sec représente les alcaloïdes totaux.

L’extraction des alcaloïdes est représentée par la figure ci-dessous :

Feuilles

Délapidation (Ether

de pétrole, 2heures)

Extraction par reflux (F1)

Ammoniac (NH4OH)

Solution extractive diclorométhane (F2)

Marc épuisé

Epuisement par l’acide sulfurique

(H2SO4)

Solvant dichlorométhane épuisé

Solution aqueuse d’alcaloïdes sous forme de

sel

(F3)

NH4OH

hH Epuisement par

chloroforme (CHCl3)

Solution aqueuse

épuisé

Solution organique

chloroformique

Alcaloïdes totaux

(F4)

Evaporation

Figure33 : Extraction des alcaloïdes

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IV ANALYSE DES ALCALOÏDES

IV.1 Résultats

La chromatographie analytique a été utilisée pour vérifier la présence des alcaloïdes

dans l’extrait.

Des plaques de CCM prêtes à l’emploi, de gel silice 60F - 254 sur support d’aluminium

de marque Mecker, d’épaisseur 0,2mm.

Les phases mobiles utilisées sont :

- S1 : CHCl3/MeOH, 90/10 (V/V)

- S2 : CHCl3/MeOH/H2O, 65/25/4 (V/V/V)

- S3 : CHCl3/MeOH/AcOH, 18/1,5/3 (V/V/V)

- S4 : MeOH / CHCl3/NH4OH, 79/20/1 (V/V/V)

- S5 : MeOH / CHCl3/vapeur de NH4OH, 79/20/1 (V/V)

Nous avons fait dissoudre l’extrait dans 1 ml de méthanol. Nous avons déposé quelques

gouttes de chaque solution (extrait) à l’aide d’une micropipette sur chaque plaque, à 1 cm

du bord inférieur sur la ligne de base.

Chaque dépôt est séché à l’air.

Les plaques sont ensuite mises dans les chambres de migration contenant les

différentes phases mobiles.

Quand le front du solvant arrive à 1cm du bord supérieur de la plaque, les

chromatogrammes sont retirés séchés et examinés en lumière UV λ = 254nm des spots

colorés apparaissent (la migration dépôts prend plus ou moins 30mn).

Les chromatogrammes sont pulvérisés avec le réactif de Dragendorff jusqu’à

l’apparition de ces spots colorés.

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Le tableau suivant montre la couleur et le Rf des taches détectées sous UV 254 nm

Tableau 17 : Couleur et Rf des alcaloïdes observés

Extrait N° des tâches Rf Couleur sous UV

F0 1 0,59 Rouge 2 0,66 Rouge

3 0,71 Rouge F1 1 0,58 Rouge

2 0,70 Rouge 3 0,95 Rouge

F2 1 0,59 Rouge 2 0,65 Rouge

F3 1 0,55 Rouge

2 0,58 Rouge

F4 1 0,56 Rouge

2 0,64 Rouge

IV.2 Interprétation

Parmi les cinq systèmes essayés, seul S4 semble efficace pour détecter les alcaloïdes.

Sur le chromatogramme, les taches qui ont la même couleur et des Rf voisins pourront

être les mêmes alcaloïdes.

Système S4 Support silice 60F 254 Eluant MeOH/CHCl3/NH4OH : 79/20/1 Révélation : Dragendorff

F0 : extrait hydroalcoolique F1 : extrait alcalinisé F2 : extrait dichlorométanique F3 : extrait saline F4 : alcaloïdes totaux

Figure 34 : Résultat du Chromatogramme de S4

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Compte tenu de ceci, les feuilles de datura stramonium semblent contenir au moins cinq

types d’alcaloïdes obtenus dans les divers extraits.

La comparaison des taches dans les divers extraits sont reportés dans le tableau ci-

dessous.

Tableau 18 : Comparaison des taches dans les divers extraits

Extraits F1 F2 F3 F4 Types d’alcaloïdes Structure d’alcaloïdes

N° des taches 1 1 NI

Rf 0,55 0,56

N° des taches 1 1 2 NI

Rf 0,58 0,59 0,58

N° des taches 2 2 NI

Rf 0,65 0,64

N° des taches 2 NI

Rf 0,70

N° des taches 3 Scopolamine

Rf 0,95

La comparaison de la couleur des taches et le Rf calculé avec ceux de la littérature [17]

suggère que la tache n° 3 de l’extrait F1 pourrait être la scopolamine ayant la structure

suivante :

Nous n’avons pas pu identifier les quatre autres types d’alcaloïdes.

Cet alcaloïde se trouve également dans les graines de Datura stramonium.

Apparemment donc, les feuilles et les graines de Datura stramonium contiennent la

scopolamine.

Figure 35 : Scopolamine Alcaloïde identifié dans les

feuilles de datura stramonium

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Les effets directs tels que la déforestation et les maladies provoquées par une eau

polluée affectent de manière tangible la vie quotidienne.

Ce ne sont pas les enfants qui pratiquent ni la déforestation ni la pollution des eaux.

Aussi, nous proposons dans ce travail une éducation environnementale des adultes.

Il s’agit d’un processus permanent grâce auquel les individus prennent conscience de

leur environnement et acquièrent les connaissances, les valeurs, les compétences, les

expériences ainsi que la détermination qui leur permettront d’agir individuellement et

collectivement pour résoudre les problèmes environnementaux présents et pour satisfaire

leurs besoins sans compromettre ceux des générations futures.

Elle a pour tâche :

de diffuser le savoir sur l’influence physique et sociale, directe et indirecte, de

l’environnement.

de transmettre les connaissances sur l’interaction entre les activités locales et

leurs conséquences, qui peuvent se manifester avec un certain décalage.

Des solutions à court terme peuvent y être apportées, à condition qu’il s’agisse de

mesures appropriées.

Parmi les conséquences indirectes sur l’environnement figurent l’érosion excessive du

sol, une charge de travail multipliée pour les femmes, un épuisement chronique des

ressources alimentaires des humains et des animaux ou des réserves d’eau, la réduction en

nombre et en diversité de la faune, et l’augmentation du risque de feux de brousse et

d’inondations.

Ces effets indirects sont plus longs à se manifester et touchent une zone géographique

plus vaste.

La gestion de ces conséquences néfastes requiert une planification et un engagement à

long terme, ainsi que des démarches au niveau national.

L’éducation des adultes inclut souvent une perspective politique et un projet de

transformation sociale.

Pour que cette éducation soit efficace, nous pensons qu’i l faut :

renforcer le travail sur l’alphabétisation

inciter les individus à observer leur environnement social et politique mais

aussi géographique.

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L’éducation environnementale des adultes doit utiliser différentes méthodes pour

provoquer une prise de conscience et stimuler l’action.

Au-delà du travail d’explication et de conscientisation, l’éducation environnementale

doit viser à développer des compétences, à forger une forme d’engagement et à encourager

l’action individuelle et collective.

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Conclusion générale

L’objet de ce travail est l’étude phytochimique de datura stramonium (L.) Linné de la

famille de Solanacées.

D’après l’étude bibliographique, cette plante fait partie des solanacées vireuses qui

contiennent des alcaloïdes toxiques.

Les screening phytochimiques effectués révèlent l’existence des alcaloïdes. Ceci est

confirmé par l’analyse chromatographique.

Apparemment, les feuilles contiennent entre autres la scopolamine, un alcaloïde

identifié chez les graines.

A part les alcaloïdes, les feuilles de cette plante contiennent également :

des anthocyanes,

des composés phénoliques,

des stéroïdes,

des saponines,

des polysaccharides

et des coumarines.

Ce travail nous a permis de nous familiariser aux différents techniques et méthodes

d’extraction ainsi que l’analyse chromatographique et les screening phytochimiques.

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Résumé

Nom : RAKOTOARIVELO Prénom : Henintsoa (261) 0337147349 Adresse email : [email protected] Nombre de pages : 69 Nombre de photos : 18 Nombre des figures :35

Nombre de tableaux : 18

Titre du mémoire : Contribution à l’étude phytochimique de Datura stramonium Linné (Solanaceae)

Résumé

Les screening phytochimiques de datura stramonium nous a permis de déceler la présence de certaines grandes familles chimiques telles que les Alcaloïdes, les Leucoanthocyanes, les Anthocyanes, les Stéroïdes, les Saponines, les Polysaccharides et les Coumarines.

L’existence des alcaloïdes suggérés dans la littérature est confirmée par l’analyse chromatographique.

Apparemment, les feuilles contiennent la scopolamine, un alcaloïde identifié chez les graines. Mots clés : datura stramonium (solanaceae), screening phytochimique,chromatographie sur couche mince, scopolamine, alcaloïdes.

Abstracts

The phytochimic screening of datura stramoniumenabled us to detect the presence of

certain great chemical families such as Alkaloids, Leucoanthocyanes, Anthocyanes, Steroids, Saponines, Polysaccharides and Coumarins. The existence of alkaloids suggested in the literature is confirmed by the chromatographic analysis. Apparently, the sheets contain scopolamine, an alkaloid identified at seeds. Key words: datura stramonium (solanaceae), phytochimic screening, thin layer

chromatography, scopolamine, alkaloids.

Encadreur : Monsieur Richard RASAMOELISENDRA

Maître de Conférences Directeur du Laboratoire de Chimie Organique –Spectrométrie de Masse Faculté des Sciences

Université d’Antananarivo