This article was downloaded by: [Case Western Reserve University]On: 30 October 2014, At: 12:50Publisher: Taylor & FrancisInforma Ltd Registered in England and Wales Registered Number: 1072954 Registeredoffice: Mortimer House, 37-41 Mortimer Street, London W1T 3JH, UK

Acta Botanica Gallica: Botany LettersPublication details, including instructions for authors andsubscription information:http://www.tandfonline.com/loi/tabg20

Valeur nutrition/santé de quelquesespèces de Légumineusesalimentaires mineures au TogoSeêmihinva Akpavi a , Abalo Chango b , Koffi Tozo c , Kou'santaAmouzou d , Komlan Batawila a , Kpéikouma Wala a , Koffi ApetiGbogbo a , Majouma Kanda a , Komi Kossi-Titrikou e , HadyatouDantsey-Barry f , Lydia Talleux b , Innocent Butaré g , PhilippeBouchet h & Koffi Akpagana aa Laboratoire de botanique et écologie végétale , Université deLomé , BP 1515, Lomé , Togob Institut polytechnique Lasalle de Beauvais , BP 30313,F-60026 , Beauvais Cedexc Laboratoire de physiologie et biotechnologie végétales ,Université de Lomé , BP 1515, Lomé , Togod Laboratoire de biochimie et nutrition , Université de Lomé ,BP 1515, Lomé , Togoe Département d'anthropologie , Université de Lomé , BP 1515,Lomé , Togof Institut togolais de la recherche agronomique (ITRA) , Lomé ,Togog CRDI , BP 11007, Peytavin, Dakar , Sénégalh Laboratoire de biologie végétale et mycologie , UFRPharmacie , 51 rue Cognacq-Jay, F-51100 , ReimsPublished online: 26 Apr 2013.

To cite this article: Seêmihinva Akpavi , Abalo Chango , Koffi Tozo , Kou'santa Amouzou ,Komlan Batawila , Kpéikouma Wala , Koffi Apeti Gbogbo , Majouma Kanda , Komi Kossi-Titrikou , Hadyatou Dantsey-Barry , Lydia Talleux , Innocent Butaré , Philippe Bouchet& Koffi Akpagana (2008) Valeur nutrition/santé de quelques espèces de Légumineusesalimentaires mineures au Togo, Acta Botanica Gallica: Botany Letters, 155:3, 403-414, DOI:10.1080/12538078.2008.10516120

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Acta Bot. Gallica, 2008, 155 (3), 403-414.

Valeur nutrition/santé de quelques espèces de Légumineuses alimen-taires mineures au Togo

par Sêmihinva Akpavi(1), Abalo Chango(2), Koffi Tozo(3), Kou’santa Amouzou(4), KomlanBatawila(1), Kpérkouma Wala(1), Koffi Apeti Gbogbo(1), Majouma Kanda(1), Komi Kossi-Titrikou(5),Hadyatou Dantsey-Barry(6), Lydia Talleux(2), Innocent Butaré(7), Philippe Bouchet(8) et KoffiAkpagana(1)

(1) Laboratoire de botanique et écologie végétale, Université de Lomé, BP 1515, Lomé, Togo

(2) Institut polytechnique Lasalle de Beauvais, BP 30313, F-60026 Beauvais Cedex

(3) Laboratoire de physiologie et biotechnologie végétales, Université de Lomé, BP 1515, Lomé, Togo

(4) Laboratoire de biochimie et nutrition, Université de Lomé, BP 1515, Lomé, Togo

(5) Département d’anthropologie, Université de Lomé, BP 1515, Lomé, Togo

(6) Institut togolais de la recherche agronomique (ITRA), Lomé, Togo

(7) CRDI, BP 11007 Peytavin, Dakar, Sénégal

(8) Laboratoire de biologie végétale et mycologie, UFR Pharmacie, 51 rue Cognacq-Jay, F-51100 Reims

Résumé.- Cette étude sur les plantes alimentaires mineures du Togo a montré quedes « variétés locales » sont riches en substances d’intérêt nutritionnel et sanitaire.Sur la base d’une méthodologie précise, il a été montré que :

- les graines de variétés locales de Cajanus cajan sont les plus riches en protéines(206,55 ± 0,03 à 220,17 ± 0,09 mg/g) alors que les plus faibles valeurs ont été trou-vées pour Macrotyloma geocarpum (155,7 ± 0,07 à 172,9 ± 0,18 mg/g) ; lesmasses moléculaires des sous-unités sont comprises entre 1,7 et 83 kDa ;- la variété locale à graine rouge de Vigna unguiculata est plus riche en phaséoli-ne (28,46 ± 0,65 mg/g) et celles de Sphenostylis stenocarpa en sont moins pour-vues (4,91 ± 0,21 mg/g) ;- la teneur des graines des variétés locales étudiées en polyphénols varie de 0,79 ±0,06 à 2,21 ± 0,03 mg/g.

Ces nouvelles données sont à prendre en compte pour une meilleure valorisation desplantes alimentaires dites mineures.

Mots clés : Togo - plantes alimentaires mineures - valeur nutritionnelle - santé.

Abstract.- A study on some minor Togolese food plants shows that some « localvarieties » are potentially rich in some nutritious and healthy substances. Based on aprecise methodology, we point out that:

- beans of Cajanus cajan local varieties are richer in proteins (206.55 ± 0.03 to220.17 ± 0.09 mg.g-1) than those of Macrotyloma geocarpum (155.7 ± 0.07 to172.9 ± 0.18 mg.g-1); the subunits molecular masses are between 1,7 and 83 kDa;- Vigna unguiculata local varieties beans contains more phaseolin (28.46 ± 0.65mg.g-1) than those of Sphenostylis stenocarpa (4.91 ± 0.21 mg.g-1);- all studied beans concentration in polyphenols varies from 0.79 ± 0,06 to 2.21 ±0,03 mg.g-1.

These new data are useful for a better valorisation of the studied food minor plants.

Key words : Togo - minor food plants - nutritional values- health value.

arrivé le 10 avril 2007, accepté le 15 avril 2008

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I. INTRODUCTION

Selon la FAO (2002), plus de 850 millions de personnes souffrent de sous-alimentationdans le monde. En Afrique subsaharienne, le problème de l’alimentation se pose en termede quantité et de qualité pour plus du tiers de la population (Kennedy et al., 2003). Face àcette situation, il a été suggéré que la diversité des plantes alimentaires dont regorgent lespays africains soit une source de solutions (Chauvet, 2003 ; OCDE, 2005).Malheureusement, on remarque qu’une grande part de cette ressource est sous-exploitée,voire négligée (Padulosi & Hoeschle-Zeledon, 2004). C’est le cas au Togo où beaucoup deplantes alimentaires sont progressivement abandonnées sans que leur potentialité nutritivesoit évaluée (Batawila et al., 2005 ; Akpagana, 2006). Ces ressources phytogénétiques uti-lisées dans l’alimentation humaine sont ainsi menacées de disparition (Padulosi, 2006).

Les études de Bilabina (1991) et de Amouzou et al. (2006) ont montré que le potentielnutritionnel des plantes négligées peut permettre de résoudre les carences alimentaires etla malnutrition. Elles peuvent ainsi servir de ressources inestimables pour l’industrieagroalimentaire et pharmaceutique.

Pour contribuer à une meilleure valorisation des plantes alimentaires mineures, lepotentiel nutrition/santé de quelques espèces de légumineuses a été évalué sur la base deleur composition protéique et de leur teneur en polyphénols totaux. L’intérêt porté à cesdeux composants trouve sa place dans un contexte actuel marqué par l’émergence et la per-sistance de maladies difficiles à soigner. Carbonaro (2006), travaillant sur Phaseolus vul-garis L., a prouvé que les sous-unités protéiques globulines sont très riches en acidesaminés essentiels. Certains de ces acides aminés essentiels, notamment la phaséoline, sontutilisés comme compléments alimentaires qui bloquent certains glucides tout en étant com-plètement absorbés par l’organisme (Bo-Linn et al., 1982 ; Moreno & Chrispeels, 2006).Les polyphénols sont aussi reconnus pour leur pouvoir anti-oxydant nécessaire pour luttercontre la destruction prématurée des cellules de l’organisme humain.

Les graines des « variétés locales » (l’appellation variété locale est fondée sur les nomsde ces plantes en langues locales et sur leurs caractéristiques morphologiques) de légumi-neuses alimentaires mineures du Togo contiendraient-elles ces substances ? C’est à cettequestion que tente de répondre la présente étude. Ainsi, dans un contexte global où très peud’études existent sur l’approche biochimique et nutritionnel de ces genres d’espèces, onpourra ainsi essayer de combler cette lacune et permettre une meilleure connaissance deces espèces qualifiées de mineures, rares ou menacées de disparition.

II. MATÉRIEL ET MÉTHODES

A. MatérielTreize variétés locales de graines de légumineuses alimentaires mineures ont été utili-

sées dans cette étude (Tableau I). Elles ont été récoltées dans les zones écologiques I, II,III et V du pays (Ern, 1979). La zone I est celle des plaines du Nord ; elle est essentielle-ment couverte de savanes à Acacia spp. et Combretaceae ; son climat est de type souda-nien à deux saisons avec 800 à 1 000 mm de pluie par an sur six mois ; les Moba y formentle groupe ethnique dominant ; on y cultive surtout le mil et le niébé. La zone II des mon-tagnes du Nord est influencée par un climat soudanien de montagne plus humide ; elle estpeuplée de Kabyè et de Kotokoli et est caractérisée par des savanes et des forêts sèches àIsoberlinia spp. ; l’agriculture dans cette zone reste semblable à celle de la zone I avec

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cependant la dominance de la production du fonio et des sésames ; la zone III des plainesde l’Est représente le sanctuaire d’une agriculture fondée essentiellement sur le maïs etl’igname ; c’est une zone de savanes guinéennes traversée par des galeries forestières etpeuplée essentiellement par les Ifè et les Adja ; dans cette zone comme dans les autres, oncultive encore dans les champs quelques pieds de Cajanus cajan. La zone V des plainescôtières du sud Togo correspond à une mosaïque de cultures, de jachères, de savanes danslaquelle sont parsemées des reliques de forêts qui sont en majorité des bois sacrés ; le cli-mat est de type guinéen à quatre saisons ; les Ewé y sont dominants, population essentiel-lement rurale ayant un taux de croissance d’environ 3%.

Deux autres variétés de niébé (Vigna unguiculata L.), l’une achetée sur le marché localet l’autre sur le marché occidental, ont été retenues comme témoin.

B. MéthodesLes graines ont été réduites en farine à l’aide d’un vibro-broyeur MM301 (Tissulyser

Retsch QiagenTM) à raison de 30 vibrations/seconde pendant 2 x 1 min.

Dosage des protéines de réserve- Protéines totales

La teneur en azote total des échantillons a été dosée avec un analyseur d’azote (Leco F-528™ analyseur d’azote). Une gamme de calibration a été faite avec le dl-dithiothreitolelectrophoresis (DDT) et le saccharose. Des quantités de farine d’échantillon sont pesées àl’aide d’une balance ultrasensible (Sartorius AG Göttingen CP 64™) avec transmission despoids sur un ordinateur. La farine pesée est ensuite introduite dans l’analyseur d’azote.Après combustion, les teneurs en protéines totales sont données sous forme de pourcenta-ge de protéines et d’azote. Toutes les valeurs sont données par rapport au facteur protéique5.7 des céréales. Ces valeurs de protéines sont ensuite corrigées par le facteur 6.25 par rap-port aux légumineuses. À partir de ces valeurs, le calcul des quantités de protéines de réser-ve des différents échantillons a été fait selon la formule suivante : Qp = 10 x Q0 où

Qp = quantité totale de protéines pour 1 g de farine sèche de l’échantillon ;

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Tableau I.- Matériel végétal utilisé.Table I.- Plant materials.

Nom scientifique Eléments descriptifs des graines Noms locaux (dialecte)

Variétés Macrotyloma geocarpum (Harms) Graine noire Sinpalpiak (Moba), Kandlalocales Maréchal & Baudetmineures M. geocarpum Graine blanche (Kabyè), Goumeyou (Adja)

Sphenostylis stenocarpa (Hochst. ex Grosse graine blanche Falfati (Moba), Koussourou A. Rich.) Harms Graine marron (marron 2) (Kotokoli), Tchangiliou (Kabyè)

S. stenocarpa Grosse graine marron (marron 1)S. stenocarpa

Cajanus cajan (L.) Millsp. Graine multicolore 1 Eklui (Adja, Ewé)C. cajan Graine multicolore 2C. cajan Graine multicolore 3C. cajan Graine multicolore 4C. cajan Graine multicolore 5C. cajan Graine multicolore 6C. cajan Graine multicolore 7Vigna unguiculata (L.) Walp. Graine rouge Ayidze (Ewé)

Variétés de V. unguiculata Graine blanc cornille -référence V. unguiculata Graine blanche

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Q0 = le pourcentage de protéine de l’échantillon.

- Extraction des protéines et dosages des sous-unités protéiques Une solution d’extraction constituée de 1 g de sodium n-dodecylsulfate et 0.5 g de dl-

dithiothreitol electrophoresis dans 50 ml de la solution tampon [H2NaO4P (0.2 M) +HNa2O4P ; pH 6.9] a été d’abord préparée. 500 µl de la solution ont été ajoutés à 20 mgde farine d’échantillon et le mélange placé au bain-marie à 60 °C pendant 1 heure, tout enassurant une homogénéisation au vortex, toutes les 15 min. La solubilisation des échan-tillons est achevée par des ultrasons pendant 15 s. Le contenu des tubes est alors centrifu-gé à 12 500 rpm pendant 15 mn à 25 °C et le surnageant qui contient les protéinessolubilisées est prélevé pour l’analyse des fractions protéiques.

Cette analyse a été réalisée sur un Bioanalyzer 2100 (Agilent Technologies™), à l’aidedu coffret Protein 80 Kit® suivant les instructions du fournisseur.

- Extraction et dosage de la phaséolineL’extraction de la phaséoline a été réalisée suivant le protocole décrit par Vargas et al.

(2000). À partir de 200 mg de farine dispersée dans 1 ml de la solution d’extraction consti-tuée de NaCl (0.5M) et d’acide ascorbique (0.25M), au pH 2,4. Le mélange est incubé àl’obscurité en agitation pendant 1 heure. Après centrifugation (20 mn à 17 000 rpm) dulysat, le surnageant est recueilli dans un tube de 10 ml et le culot soumis à une nouvelleextraction. Après la dernière centrifugation, un volume d’eau (5 x volume de l’extrait) à4 °C est ajouté au tube. Les tubes sont incubés à l’obscurité pendant 30 mn à 4 °C. Aprèscentrifugation (17 000 rpm, 20 mn), 100 µl de NaCl 0.5 M sont ajoutés au culot (phaséo-line).

La phaséoline ainsi extraite est alors solubilisée et une aliquote est prélevée pour ledosage colorimétrique à l’aide du coffret BC Essay Kit® (Interchim™). La longueur d’on-de de mesure est de 562 nm.

Dosage des polyphénols totaux La méthode de Folin Ciocalteu modifiée (Kleiber, 1990) a été mise à contribution.

- Délipidation des échantillons100 µg de farine ont été délipidés avec 350 µl de chloroforme et 350 µl de méthanol

80% (la méthode originale propose uniquement 700 µl de chloroforme comme solvant dedélipidation ; ce traitement ne laissant aucun culot pour nos échantillons, la méthode a dûêtre soumise à une modification). Le tube homogénéisé est conservé à 4 °C au frigo pen-dant 5 min. Après centrifugation à 25 °C pendant 3 mn à 13 000 rpm, le culot est utilisépour extraire les polyphénols.

- Extraction des polyphénols800 µl de méthanol à 80% et 200 µl de métabisulfite de sodium (5 g/l) sont ajoutés au

culot précédemment obtenu. Le tube est homogénéisé au Vortex®, refroidi pendant 15 minà 4 °C puis centrifugé pendant 3 mn à 13000 rpm à 25 °C. Le surnageant contenant lespolyphénols est recueilli pour le dosage.

- Dosage des polyphénols totauxÀ 100 µl du surnageant, sont ajoutés dans l’ordre 100 µl de méthanol 80%, 100 µl de

Folin Ciocalteu et 500 µl de Na2CO3 (20%). On agite légèrement le tube puis on ajoute

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200 µl de Na2CO3 (20%). La solution obtenue est centrifugée pendant 3 mn à 13 000 rpmà 25 °C. Le surnageant est recueilli et lu à 730 nm. Les densités optiques ont été lues surNicolet Evolution 100™ qui transmet les résultats sur un ordinateur grâce au logicielThermo Electron Viosionpro™, version 3.00. Une dilution au 1/2, 1/4 et 1/10 a été parfoisnécessaire, suivant l’intensité de la coloration de l’extrait. La courbe de calibration a étéétablie avec l’acide gallique. Les résultats ont été exprimés en tenant compte, le caséchéant, des coefficients de dilution.

Analyse des résultatsLes différents résultats obtenus ont été traités manuellement et par Microsoft Excel™.

Les valeurs présentées représentent les moyennes des mesures réalisées en triplicata ±écart type. Les analyses statistiques ont été réalisées à l’aide du logiciel JMP™.

III. RÉSULTATS

A. Protéines totalesLe tableau II montre que la teneur en

protéines des échantillons varie selonles espèces. Les graines de C. cajansont les plus riches en protéines(206,55 ± 0,03 à 220,17 ± 0,09 mg/g).Elles sont suivies de celles de V. ungui-culata (199,50 ± 0,04 à 204,40 ±0,01 mg/g), de S. stenocarpa (167 ±0,23 à 182,7 ± 0,04 mg/g) et de M. geo-carpum (155,7 ± 0,07 à 172,9 ±0,18 mg/g).

B. Les sous-unités protéiquesLes profils protéiques sont donnés

sous formes d’électrophorégrammes.Ceux-ci traduisent la fluorescence dessous-unités protéiques en fonction deleurs temps de migration ; le temps demigration reste lui-même lié aux poidsmoléculaires des sous-unités. Plus unesous-unité est lourde, plus lente est samigration et son temps d’apparition est plus long. La figure 1 met en évidence trois sous-unités majeures respectivement à 13 s, 26 s et 37 s pour M. geocarpum.

En ce qui concerne les trois variétés locales de S. stenocarpa (Fig. 2), quatre sous-uni-tés à 16 s, 30 s, 36 s, et 42 s ont été mises en évidence.Les masses moléculaires sont com-prises entre 1,7 et 83 kDa. Le tableau III montre que les échantillons étudiés contiennentdes sous-unités protéiques légères, moyennes et lourdes.

Les deux variétés locales de M. geocarpum utilisées contiennent les mêmes sous-unitésprotéiques (légères et lourdes) ; cependant, suivant les analyses, la variété à graine blanchecontient plus de sous-unités légères (< 8 kDa). De la même manière, les trois variétéslocales de S. geocarpa présentent les mêmes sous-unités protéiques (moyennes et lourdes

Tableau II.- Composition en protéines totales desvariétés locales étudiées. * pour 1 g de poidssec de farine ; les lettres a, b, c, d sont com-parables uniquement par espèces ; la différen-ce est significative au seuil de p ≥ 0.05

Table II.- Studied local varieties total proteinscomposition.

Espèces Protéines totales (mg.g-1)*

Macrotyloma geocarpum graine noire 155,70 ± 0,07 bM. geocarpum graine blanche 172,90 ± 0,18 aSphenostylis stenocarpa graine blanche 177,00 ± 0,29 aS. stenocarpa graine marron 2 182,7 ± 0,04 aS. stenocarpa graine marron 1 167,00 ± 0,23 bCajanus cajan graine multicolore 7 220,17 ± 0,09 aC. cajan graine multicolore 3 218,30 ± 0,06 aC. cajan graine multicolore 6 215,48 ± 0,02 bC. cajan graine multicolore 5 213,70 ± 0,08 bcC. cajan graine multicolore 4 212,09 ± 0,1 cC. cajan graine multicolore 1 208,25 ± 0,01 dC. cajan graine multicolore 2 206,55 ± 0,03 dVigna unguiculata graine blanche 204,40 ± 0,01 aV. unguiculata graine blanc cornille 200,00 ± 0,06 aV. unguiculata graine rouge 199,50 ± 0,04 a

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entre 30 et 60 kDa), avec cependant moins de sous-unités lourdes pour la variété à grainemarron (Fig. 3).

Les tableaux des profils protéiques fournissent la taille des différentes sous-unités enkilodalton (kDa), leurs temps de migration, leurs concentrations et leurs proportions rela-tives. L’analyse des électrophorégrammes et des tableaux permet de déterminer les diffé-rentes sous-unités protéiques qui composent chaque variété (Fig. 3, 4 et 5).Les variétéslocales 1 et 2 de C. cajan contiennent des sous-unités protéiques lourdes de poids compris

Fig. 1.- Profil électrophorétique illustrant les différences quantitatives des sous-unités demasse correspondant à M. geocarpum.

Fig. 1.- Electrophoretic profile with the major proteic sub-units of M. geocarpum beans.

Fig. 2.- Profil électrophorétique illustrant les différences quantitatives des sous-unités demasse correspondant à S. stenocarpa

Fig. 2.- Electrophoretic profile with the major proteic sub-units of S. stenocarpa beans.

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entre 30 et 71 kDa. Les cinq autres variétés sont plutôt riches en sous-unités légères(≤ 10 kDa), mise à part la variété à graine multicolore 7 qui contient plutôt des sous-uni-tés proches des moyennes (35 ≤ kDa ≤ 45) (Fig. 4).

Les variétés à graine blanc et blanc cornille de V. unguiculata présentent des sous-uni-tés de taille comprise entre 30 et 90 kDa, alors que la variété à graine rouge contient plusde sous-unités légères de taille inférieure ou égale à 15 kDa (Fig. 5).

Tableau III.- Importance des sous-unitésprotéiques dans les différentes varié-tés locales. La richesse est définiepour un taux de sous-unités supérieurou égal à 20%.

Table III.- Major proteic sub-units in thestudied local varieties.

Espèces Types de sous-unités protéiqueslégères moyennes lourdes

M. geocarpum graine noire x - xM. geocarpum graine blanche x - xS. stenocarpa graine marron 2 - x xS. stenocarpa graine marron 1 x x xS. stenocarpa graine blanche - x xC. cajan graine multicolore 2 - - xC. cajan graine multicolore 4 x - -C. cajan graine multicolore 6 x - -C. cajan graine multicolore 3 x - -C. cajan graine multicolore 7 x - -C. cajan graine multicolore 5 x - -C. cajan graine multicolore 1 - - xV. unguiculata graine blanc cornille - x -V. unguiculata graine rouge x - -V. unguiculata graine blanche - x -

Fig. 3.- Sous-unités protéiques des variétés locales de M. geocarpum, S. stenocarpa et deV. unguiculata.

Fig. 3.- M. geocarpum, S. stenocarpa and V. unguiculata local varieties proteic sub-units.

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C. Phaséoline

Les échantillons étudiés contiennent de la phaséoline (Tableau IV) dont la variationintraspécifique est significative. La variété à graine rouge de V. unguiculata est la plusriche en phaséoline (28,46 ± 0,65 mg/g) suivie par les variétés de M. geocarpum et deC. cajan. La teneur en phaséoline pour les variétés de S. stenocarpa est la plus faible(4,91 ± 0,21 mg/g).

D. Polyphénols

Les résultats (Tableau V) montrent une forte hétérogénéité de la teneur en polyphénolsavec des valeurs variant de 0,79 ± 0,06 à 2,21 ± 0,03 mg/g. Ces résultats concordent avec

Tableau IV.- Composition enphaséoline des variétéslocales étudiées. * pour 1 gde poids sec de farine ; leslettres a, b, c, d sont compa-rables uniquement parespèces ; la différence estsignificative au seuil de p ≥0.05.

Table IV.- Studied local varie-ties phaseolin composition.

Espèces Phaséoline (mg.g-1)* Phaséoline (%)

Sphenostylis stenocarpa graine marron 1 8,19 ± 0,09 a 4,90S. stenocarpa graine blanche 7,26 ± 0,12 ab 4,10S. stenocarpa graine marron 2 4,91 ± 0,21 b 2,69Macrotyloma geocarpum graine blanche 22,97 ± 0,70 a 13,29M. geocarpum graine noire 18,00 ± 0,31 b 11,56Cajanus cajan graine multicolore 1 20,44 ± 0,69 a 9,81C. cajan graine multicolore 5 16,00 ± 0,87 b 7,49C. cajan graine multicolore 2 12,02 ± 0,63 c 5,82C. cajan graine multicolore 6 8,90 ± 0,12 d 4,13C. cajan graine multicolore 4 9,17 ± 0,20 d 4,33C. cajan graine multicolore 3 8,49 ± 0,14 d 3,89C. cajan graine multicolore 7 7,23 ± 0,13 d 3,28Vigna unguiculata graine rouge 28,46 ± 0,65 a 14,27V. unguiculata graine blanc cornille 19,81 ± 2,84 b 9,91V. unguiculata graine blanche 19,72 ± 1,00 b 9,65

Fig. 4.- Sous-unités protéiques des variétés locales de C. cajan.Fig. 4.- C. cajan local varieties proteic sub-units.

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ceux de Kleiber (1990). En effet, celui-ci a montré que la teneur en polyphénols varie selonle taxon et selon la méthode employée, parois du simple à vingt fois.

IV. DISCUSSION

Outre les études antérieures qui ont montré la richesse de certaines plantes alimentairesmineures du Togo en oligoéléments, en sels minéraux et en vitamines (Amouzou et al.,2006), la présente montre que certaines autres sont riches en phaséoline et en polyphénols.Ces composés sont utiles non seulement sur le plan alimentaire, mais aussi pour prévenircertaines maladies. Certes, les teneurs de ces composés sont hétérogènes, particulièrement

Fig. 5.- Sous-unités protéiques des variétés locales de V. unguiculata.Fig. 5.- V. unguiculata local varieties proteic sub-units.

Tableau V.- Composition en polyphénolstotaux des variétés locales étudiées. *pour 1 g de poids sec de farine ; leslettres a, b, c, d sont comparables uni-quement par espèces ; la différence estsignificative au seuil de p ≥ 0.05.

Table V.- Studied local varieties polyphe-nols composition.

Espèces Polyphénols (mg.g-1)*

Macrotyloma geocarpum graine noire 2,21 ± 0,03 aM. geocarpum graine blanche 0,94 ± 0,03 bSphenostylis stenocarpa graine marron 1 2,12 ± 0,06 a S. stenocarpa graine marron 2 1,49 ± 0,04 bS. stenocarpa graine blanche 0,79 ± 0,06 cCajanus cajan graine multicolore 6 1,36 ± 0,06 aC. cajan graine multicolore 7 0,98 ± 0,04 bC. cajan graine multicolore 3 0,91 ± 0,05 bC. cajan graine multicolore 2 0,89 ± 0,03 bC. cajan graine multicolore 1 0,88 ± 0,03 bC. cajan graine multicolore 4 0,86 ± 0,09 bC. cajan graine multicolore 5 0,83 ± 0,02 bV. unguiculata graine rouge 1,44 ± 0,04 aV. unguiculata graine blanc cornille 1,15 ± 0,06 bV. unguiculata graine blanche 0,90 ± 0,01 c

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en ce qui est de la phaséoline. Ces observations confirment ainsi celles de Vargas et al.(2000) et de Baudoin et al. (2004) qui ont montré que la teneur en phaséoline des échan-tillons varie suivant les espèces, voire les zones de récoltes.

La détermination de protéines (notamment la phaséoline) et de polyphénols est un argu-ment en faveur de la préservation de ces espèces alimentaires locales mineures. Gepts(1990) a montré que les globulines constituent l’essentiel des protéines de réserves chezles légumes secs. Or, la phaséoline est la composante principale des globulines (Staswicket al., 1986 ; Pusztai & Watt, 1970 ; Gepts et al., 1992 ; Alli et al., 1993). Toutes les varié-tés locales étudiées sont riches en protéines diverses. À cet égard, on peut donc s’interro-ger sur l’abandon de ces espèces par les consommateurs et les producteurs (Akpavi, 2006).Les variétés riches en sous-unités lourdes (protéines collantes) donnent des pâtes difficilesà digérer, alors que celles qui sont riches en sous-unités légères (protéines gonflantes don-nant des pâtes floconneuses) sont très appréciées pour la consommation. Les deux varié-tés de M. geocarpa, les trois variétés de S. stenocarpa et les variétés 1 et 2 de C. cajancontiennent une fraction importante de sous-unités lourdes, ce qui explique le fait que laconsommation des galettes faites à base de M. geocarpa ou de S. stenocarpa permette auxpopulations consommatrices de supporter les périodes de soudure (Akpagana, 2006).Cependant, au regard de leur composition en sous-unités lourdes, ces galettes sont moinsdigestes réduisant ainsi l’appréciation des populations. Leur consommation est de moinsen moins appréciée surtout en milieu urbain et par les jeunes ruraux. Des techniques culi-naires améliorées pourraient permettre de lever cet obstacle.

La phaséoline est connue pour ses effets amaigrissants. En effet, elle inhibe l’α-amyla-se, minimisant ainsi le stockage d’énergie issue de l’hydrolyse de l’amidon (Marshall &Lauda, 1975 ; Layer et al., 1985 ; Layer et al., 1986 ; Boivin et al., 1987 ; Kotaru et al.,1987 ; Moreno et al., 1990 ; Grossi de Sa et al., 1997). Cette énergie supplémentaire seraità l’origine de prédispositions à l’obésité et au diabète (Boivin et al., 1987). Par ailleurs, lessous-unités protéiques globulines des légumes secs sont très riches en acides aminés essen-tiels (Carbonaro, 2006). Toutes les valeurs obtenues dans le cadre de cette étude, restentcertes inférieures à celles de Ma & Bliss (1978) (93,3 à 129,4 mg/g) ; mais elles sont signi-ficativement supérieures à celles de Vargas et al. (2000) (3.2 ± 0.9 mg/g pour P. lunatus).

L’exploitation des polyphénols contenus dans ces échantillons peut aussi assurer leurmaintien et leur promotion au niveau des consommateurs. En effet, les polyphénols sontdes anti-oxydants qui protègent les cellules humaines contre les oxydations en minimisantainsi leur destruction prématurée et les rides corporels (Oomah et al., 2006). L’implicationde ces plantes alimentaires dans les recettes alimentaires est à encourager. Toutefois destravaux complémentaires seraient nécessaires pour déterminer les constituants de ce grou-pe chimique ainsi que le pouvoir anti-oxydant de chaque variété locale ; certains moléculesde ce groupe (les tannins) réduiraient la digestion des protéines (Zanin, 1998 ; Duodu etal., 2003). L’étude de la relation entre teneur en polyphénols et autres substances d’intérêtnutritionnel et sanitaire à différents stades végétatifs de ces variétés locales pourrait per-mettre d’optimiser leur valorisation.

V. CONCLUSION

Cette étude a permis de montrer les implications en santé des valeurs biochimiques etnutritionnelles de variétés d’espèces de légumineuses à graines alimentaires. Les protéinestotales, et particulièrement les sous-unités protéiques (légères, moyennes et lourdes) qui

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leur confèrent leur digestibilité, ont été mises en évidence. La phaséoline (une composan-te principale des globulines) ainsi que les polyphénols ont été également identifiés dans lesgraines sèches de légumineuses. Les teneurs en ces composés biochimiques sont variablessuivant les variétés et les genres. Leurs implications dans certaines conditions dans la réso-lution de certains problèmes de santé ont été montrées.

Cette étude démontre les potentialités insoupçonnées de ces plantes alimentaires régu-lièrement et progressivement abandonnées pour des aliments « plus acceptés ». Celaconduit à leur sous-exploitation et, in fine, à leur abandon.

Ces nouvelles données sont à prendre en compte pour une meilleure valorisation desplantes alimentaires dites « mineures », dans le cadre de la Convention sur la diversité bio-logique, notamment en ce qui est de la prise en compte des savoirs locaux.

Remerciements - Cette étude a été réalisée dans le cadre du programme Biosciences Afrique et développement.Les auteurs remercient le Centre de recherche pour le développement international (CRDI) pour le soutien financierà travers le programme n° 101517. Le séjour de Monsieur S. Akpavi à l’Institut Lasalle Beauvais a été soutenu par leService de coopération et d’action culturelle de l’ambassade de France au Togo. Il remercie MM. Benoît Lerzy, LarbiRhazi et Sameh Selim (Institut Lasalle, Beauvais) pour les conseils techniques.

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