travaux pratiques de biologie animale

Première Partie (Module Prep15)

Adresse : Madinat Al Irfane, B.P. 6202. Rabat – Maroc Tél : (00 212) 0537 77 17 58/59

Fax : (00 212) 0537 77 58 45 - Site web : http://www.iav.ac.ma

Travaux Pratiques de Biologie Animale

Chlyeh G.

Kadiri A.

Année Universitaire 2021 – 2022

http://www.iav.ac.ma/

Unité de Biologie Animale Zoologie 1 « Des Protozoaires aux Métazoaires -Triblastiques - Pseudocoelomates »

1

TP1 Zoologie 1: Le Règne Animal :

« Des Protozoaires aux Métazoaires - Pseudocoelomates »

Plan du diaporama :

Exposé sur :

Les objectifs des TP de Biologie Animale ainsi que des recommandations générales à

suivre au cours de l’ensemble des TP (cf.p.3) ;

L’utilisation du microscope (cf. p.4) ;

Un complément de cours et explication du travail à réaliser ;

Comment réaliser un dessin scientifique.(cf.p.5).

Plan du 1erTP

I. Sous Règne des Protozoaires

I.1. E/ Ciliés

a. Protozoaire cilié libre

Paramécie : Paramecium caudatum

• Observer les différents organites, dessiner une Paramécie ;

• Repérer les vacuoles digestives, les noyaux, le cytoplasme et les cils

b- Protozoaires Ciliés fixés

Vorticelle :

• Observer les différents organites (cytoplasme, vacuoles digestives, noyaux, frange

adorale) • Dispositifs de fixation (Pédoncule)

Stentor

• Observer sur posters et diapos les différents organites:

* Dispositifs de fixation (Pédoncule)

* Cytoplasme avec vacuoles digestives

* Appareil nucléaire

* Péristome et cils (frange adorale)

I-2 E/ Flagellés

Trichonymphe

• Observer et repérer:

* Les flagelles,

* le rostre,

* le noyau,

* le cytoplasme


2

II. Sous Règne des Métazoaires

II.1. Diblastiques

E/ Spongiaires

E/ Cnidaires

E/ Cténaires

• Observer:

* Maquettes ;

* Posters ;

* Collections ;

• Corriger le tableau comparatif des 3embranchements.

II.2. Triblastiques

a. Acoelomates

E/ Plathelminthes (vers plats)

Cl / Trématodes :

La Petite Douve « in toto » : Prostogonimus macrorchis

• Observer les différents organes par appareil.

b. Pseudocoelomates

E/Némathelminthes

Cl/ Nématodes : Ascaris

• Observer la coupe transversale et repérer:

* le pseudocoelome ;

* les cordons nerveux ;

* le tube digestif ;

* l’appareil génital ;

* les cellules myoépithéliales.

Une évaluation est faite à la fin de la séance sur tout le contenu du TP.


3

TRAVAUX PRATIQUES DE BIOLOGIE ANIMALE

RECOMMANDATIONS GENERALES

I. ORGANISATION DE LA SEANCE DE TRAVAUX PRATIQUES

1. Matériel à apporter

Cahier de cours et polycopiés obligatoires

Crayon HB (N°2) Gomme, Règle, Taille crayon

Feuilles doubles de papier blanc, format 21 x 29,7 (non quadrillés pour les dessins

2. Travail à réaliser

Observation individuelle ou en groupe ;

Compte-rendu à rendre en fin de séance (cf. III).

REMARQUES IMPORTANTES

Objectifs des TP et participation des étudiants : les TP et TD de BA ont pour but

d’illustrer et de compléter le cours, d’apprendre à observer, à analyser, à analyser, à

tirer des conclusions mais aussi à s’organiser et à gérer son temps. Un travail

profitable nécessite dialogue avec l’enseignant, parfois avec les membres d’un

trinôme.

Chaque étudiant a une place fixe en TP. et numérotée. Il est responsable du matériel

qui lui est confié et doit le restituer en bon état ou signaler toute défaillance.

La place choisie au 1er TP. est définitive (à indiquer sur la copie).

La durée d’une séance est de 3 heures ou de 4 heures selon le type de TP. (voir

affichage).

L’exactitude en début, en cours de séance et en fin de T.P. est impérative.

Les travaux pratiques correspondent à un travail personnel et sont notés. En

conséquence, tout copiage entre élèves et sur documents, est interdit et sanctionné.

Une interrogation écrite peut avoir lieu à la fin de certaines séances de TP.

La note obtenue correspond à une partie de la note de ce TP.

Toute absence non justifiée entraine un Zéro comme note de la séance concernée.

Aucun changement de groupe n’est accepté.


4

II. UTILISATION DUMICROSCOPE

1. Allumer l’éclairage et placer la préparation:

Ouvrir le diaphragme de champ dans le socle du microscope.

Mettre l’objectif le plus faible (=le plus court).

Poser et fixer la préparation sur la platine : la lamelle doit se trouver vers le haut.

2. Mettre au point la préparation:

Rapprocher au maximum la platine, donc la préparation, de l’objectif à l’aide de la

vis macrométrique.

Tourner la vis macrométrique lentement dans l’autre sens jusqu’à ce que les

contours de l’image apparaissent.

Parfaire la mise au point à l’aide de la vis micrométrique.

3. Améliorer la qualité de l’éclairage:

Régler la luminosité de l’image avec la tension des lampes.

Régler (si nécessaire) le contraste avec le (ou les) diaphragmes(s).

4. Pour passer à un objectif plus fort:

Ne pas abaisser la platine.

Centrer le champ à examiner en détail.

Tourner le révolver pour passer à l’objectif immédiatement supérieur.

Corriger la mise au point (vis micrométrique).

5. Après usage du microscope, vous devez successivement

Passer à l’objectif faible

Enlever la préparation

Éteindre l’éclairage

Débrancher le microscope et le couvrir de sa housse en fin de séance.

Schémas légendés du microscope optique


5

G= Grossissement de l’oculaire Grossissement de l’objectif

III. PRESENTATION DUCOMPTE-RENDU

1. Un compte-rendu doit être écrit uniquement au crayon, sauf indication contraire.

2. Inscrivez vos Nom, Prénom, n° de place de TP. et le titre du TP.

3. Indiquez le plan de travail de la séance en y insérant les dessins ou les réponses

demandées.

Pour les dessins : on vous demande des dessins de ce que vous observez. Les schémas du

tableau et du polycopié ne sont là que pour vous aider à comprendre.

CONSEIL A SUIVRE POUR REALISER UN DESSIN D’OBSERVATION

a. Technique du dessin d’observation

Utiliser uniquement le crayon de papier.

Le crayon doit être bien taillé : tous les traits seront fins et nets (pas de traces de

gomme sur le dessin).

Penser à la mise en page du dessin et des légendes dans la feuille, avant de dessiner :

le dessin est à placer au centre de la page et doit être ni trop grand, ni trop petit (sur

environ une demi page en hauteur tout en respectant les proportions).

Les légendes dont écrites au crayon et horizontalement.

Les flèches sont tracées à la règle et ne se croisent pas.

Le titre du dessin est indiqué.

L’échelle de reproduction ou le grossissement du microscope sont indiqués (voir d/).

b. Justesse et précision des légendes et du titre

Les légendes doivent être disposées logiquement.

Le titre doit être complet et situé sous le dessin.

Les dessins doivent être si possible, orientés (avant=antérieur, arrière=postérieur,

partie dorsale ; partir ventrale etc….).

c. Qualité de la représentation

Respectez les proportions de l’animal ou de la structure.

Les ombres sont inutiles.

d. Grossissement et échelle : A indiquer

On doit distinguer:

Le grossissement de l’appareil optique (loupe, microscope):


6

E= taille du dessin taille réelle de l’animal = dD (d et D : même unités)

Le grandissement ou échelle du dessin:

L’échelle peut s’exprimer de manière numérique

Ex : E = 50x (si d=5cm et D =1mm)

L’échelle peut s’exprimer de manière graphique par un segment gradué en taille réelle.

E = 25 x peut être remplacé par I

7

Unité de Biologie Animale Zoologie 2 : Les principaux groupes d’Hyponeuriens

TP 2 : Zoologie 2 - Les principaux groupes d’Hyponeuriens

Métazoaires -Triblastiques -Coelomates

I - Objectif du TP:

Ce TP a pour objectif de:

Apprendre à observer les Arthropodes;

Connaitre les caractères généraux de leur classification;

Se familiariser avec le monde des Arthropodes;

Apprendre à utiliser la clé de détermination des principaux groupes d’Hyponeuriens.

II - Classification

E/ Annélides :

Cl/ Achètes : ex sangsue Cl/ Oligochètes : ex : Vers de terre ou Lombric

Cl/ Polychètes : ex : Néréis

E/ Mollusques :

Cl / Gastéropodes : Escargot, Patelle,

Cl/ Lamellibranches : Moule, Sèche ;

CL/Céphalopodes : Pieuvre, Calmar.

E/ Arthropodes :

SE/ Chélicérates

Cl/ Arachnides : Araignée, Scorpion, Acarien SE/Antennates

Cl/ Myriapodes : Ex Scolopendre, Iule

Cl/ Crustacés : ex : Crevette, Homard, Branchippe, Apus, Choncostracé….

Cl/ Insectes : ex Blatte, Criquet, Mante religieuse, Libellule, Papillon…..

III- Organisation de la séance

Une cuvette d’exercice contenant 15 échantillons d’Hyponeuriens est distribuée aux étudiants,

les étudiants utilisent la clé de détermination jointe à ce document.

Les étudiants travaillent par binôme. Chaque binôme a :

Une loupe binoculaire ;

Une pince ;

Un verre de montre ou une boite de Pétri.

L’enseignant responsable de la séance explique la méthode d’utilisation de la clé de

détermination (cf .p. 9) en faisant des exercices avec les étudiants sur un exemple de chaque

Classe d’hyponeuriens.

Les étudiants ensuite appliquent la méthode sur les échantillons restants. Une correction

collective est faite par les étudiants supervisés par l’enseignant.

8


Les étudiants sont évalués au début de la séance de TP3. L’évaluation se fait de la manière

suivante : c’est des exercices de détermination de 7 différents échantillons d’Hyponeuriens

avec utilisation de la clé de détermination des principaux groupes d’Hyponeuriens.

Des cuvettes individuelles sont distribuées. L’exercice dure 45 mn.

Évaluation 1 du TP Hyponeuriens :

Nom et Prénom : N° de la cuvette : Date :

N° de groupe : N° de l’étudiant : N° de place :

Interrogation sur les Hyponeuriens Cuvette N°:

N°

l’échantillon

Embranchement Ss/Embranchement Classe Ss/Classe Ordre Ss/

Ordre

ou

Famille

ou Groupe

1

2

3

4

5

6

7

NB : L’Ordre est comptabilisé 4 points, les autres taxons à 1 point.

Évaluation 2 :

Il s’agit de préparer une collection d’Arthropodes d’au moins 10 échantillons bien

conservés, bien étalés et bien déterminés. La date de la remise de la collection sera affichée.

Les techniques de collecte et de conservation figurent à la fin de ce document (cf .p 15).

9


CLE DE DETERMINATION POUR LES PRINCIPAUX GROUPES

D’HYPONEURIENS

Caractères distinctifs EMBRANCHEMENTS

Pas d’appendices a) Corps non segmenté et mou, souvent protégé par

une coquille calcaire externe ou interne ; corps

comprenant la tête, le pied et la masse viscérale.

MOLLUSQUES

articulés b) Corps segmenté et mou formé d’anneaux

semblables

ANNELIDES

Appendices

articulés

Corps segmenté mais des segments successifs pouvant

être fusionnés, corps couvert d’une cuticule de chitine.

ARTHROPODES

EMBRANCHEMENT DES MOLLUSQUES

Caractères distinctifs CLASSES

Coquille généralement interne rarement externe.

Pied situé au-dessus de la tête et divisé en tentacules pourvus

de ventouses.

Tête bien développé

Symétrie bilatérale nette

10 tentacules 8 tentacules

CÉPHALOPODES

Ordre des Décapodes

Ordre des Octopodes

Coquille formée d'une seule valve spiralée ou conique.

Pied ventral servant à la reptation.

Tête bien développée avec organes des sens.

Symétrie bilatérale disparue à la suite de l'enroulement du corps

GASTEROPODES

Coquille à 2valves.

Branchies disposées en lamelles.

Absence de tête

Symétrie bilatérale nette.

LAMELLIBRANCHES

ou

BIVALVES

EMRANCHEMENT DES ANNELIDES

Caractères distinctifs CLASSES

Anneaux pourvus

d’expansions latérales, les parapodes.

Vers marins

Nombreuses soies sur les parapodes

POLYCHÈTES

Anneaux sans Vers d’eau douce ou terrestres

Soies peu nombreuses

OLIGOCHÈTES

Parapodes Vers d’eau douce parasites

Pas de soies

Présence de ventouses de fixation

ACHÈTES

N.B. Cheminement à suivre pour la détermination d’une espèce :

Embranchement Sous-Embranchement Classe SousClasse Ordre

SousOrdre Famille……

10


EMBRANCHEMENT DES ARTHROPODES

Ss/Embranchement Caractères Milieu de vie Caractères distinctifs CLASSES

CHELICERATES

Pas

d’antennes

Présence de

chélicères

Animaux

terrestres

respiration

trachéenne

2 yeux simples sessiles

6 paires d’appendices

- 1 paire de chélicères

- 1 paire de pédipalpes

- 4 paires de pattes locomotrices

ARACHNIDES

ANTENNATES

Une ou deux

paires

d’antennes

Corps allongé formé de très nombreux

segments semblables

Plus de 8 paires de pattes

Une paire d’antennes

MYRIAPODES

Corps divisé en 3 parties : tête, thorax et abdomen

3 paires de pattes thoraciques

Généralement 2 paires d’ailes


INSECTES

Animaux

généralement

aquatiques

respiration

branchiale

Deux paires d’antennes

Avec ou sans carapace chitineuse

souvent imprégné de calcaire

Nombre de segments variable

CRUSTACES

SOUS-EMBRANCHEMENT DES CHELICERATES CLASSE

DES ARACHNIDES

Caractères distinctifs ORDRES

Corps divisé en 2 ou 3 régions

distinctes

Pédipalpes transformés en

pince

Abdomen transformé en pré-

abdomen large et post-abdomen étroit

terminé par un aiguillon.

SCORPIONIDES

Pas de post-abdomen PSEUDOSCORPIONIDES

Pédipalpe tactiles ou en

Chélicères grands

Abdomen segmenté

Pas de constriction entre thorax et

abdomen

Corps couvert de poils

SOLIFUGES

forme de pattes ou réduits Chélicères petits

Abdomen non segmenté

Constriction profonde entre

thorax et abdomen

ARANEIDES

Céphalothorax et

abdomen

Pédipalpes en forme de Pattes logues

Segmentation de l’abdomen non

visible dorsalement

OPILIONIDES

Fusionnés pattes Pattes courtes

Corps non segmenté

ACARIENS

CLASSE DES MYRIAPODES

Caractères distinctifs

ORDRES

Principaux Groupes

Corps cylindrique s’enroulant souvent

en spirale ; deux paires par

anneau ; pas d’appareil venimeux.

DIPLOPODES

Iules

Corps aplati dorso-ventralement

CHILOPODES

15 paires de pattes

Alternance de segments longs et courts :

LITHOBIES

1 paire de pattes par segment Crochets venimeux

21 à 23 paires de pattes :

SCOLOPENDRES

35 à 171 paires de pattes :

GEOPHILES


11

CLASSE DES CRUSTACES Caractères généraux

Caractères Distinctifs

SOUS-

CLASSES

ORDRES

SOUS-

ORDRE ou FAMILLE

Taille

Carapace

1 à 5

mm

Sans carapace Longues antennules

Mer, eau douce ;

uniramées natatoires. nombreux parasites

COPEPODES

CYCLOPOIDES

Carapace bivalve

transparente

laissant la tête libre

Longues

antennules Eau douce biramées

natatoires

BRANCHIOPODES

CLADOCERES

Carapace bivalve

calcifiée

enfermant tout l’animal

Antennes et antennules

Mer et eau douce

OSTRACODES

Sans carapace

Yeux

pédonculés

Appendices nombreux et foliacés

BRANCHIOPODES

PHYLLOPODES

S/O:Anostracés

Yeux sessiles


visible, les

antennules sont

parfois réduites.

Corps aplati dorso-

ventralement. Mer, eau douce, terre.

MALACOSTRACES

ISOPODES

Antennes et

antennules

développées. Corps

aplati latéralement. Eau douce.

AMPHIPODES

Avec carapace

Carapace

formée de

plusieurs

plaques

calcaires

enfermant les

appendices articulés.

Pas de pédoncule de

fixation : organismes

sessiles.

CIRRIPEDES

F/ Balanidae

Forme fixée. Long pédoncules de fixation.

F/ Lepadidae

Sup à

Carapace peu

calcifiée

bivalve. Forme libre.

Pattes thoraciques foliacées

BRANCHIOPODES

PHYLLOPODES

S/O

Conchostracés

5

mm

Grande carapace en bouclier, peu calcifiée, bord postérieur libre.

Pattes thoraciques

foliacées S/O

Notostracés

Carapace

calcifiée ne

5 paires de pattes

mâchoires dont la

première : une patte

ravisseuse

MALACOSTRACES

STOMATOPODES

couvre pas la

face ventrale,

son bord

postérieur

soudé au thorax.

Céphalothorax et

DECAPODES

Abdomen grand à tégument

calcifié:

S/OMacroures

Corps formé de

20 segments, 19

paires

d’appendices.

Yeux

abdomen bien

distincts,

5 paires de pattes

locomotrices.

Abdomen grand

à tégument

mou

S/O Anomoures

Pédonculés Mer et eau douce Abdomen petit replié sous le corps tégument calcifié : S/O

Brachyoures


1.

CLASSE DES INSECTES

SOUS-CLASSE :APTERYGOTES

Ailes Structure des

ailes antérieures

Caractères distinctifs Type de

Pièces Buccales

ORDRES

Insectes

dépigmentés

Abdomen portant 3 cerques

Antenneslongues

Taille 3 à 30 mm

Broyeur

THYSANOURES

Sans ailes Abdomen sans cerques et portant

ventralement sur le 4ème segment un appendice

de saut : Furca

Taille < 5 mm

COLLEMBOLES

CLASSE DES INSECTES SOUS-CLASSE : PTERYGOTES

Ailes

Structure des

ailes antérieures

Caractères distinctifs Typede

Pièces Buccales

ORDRES

Insectes sans

ailes


Tête moins large que le thorax

Ectoparasite de l’Homme

Taille < 5 mm

Piqueur-

suceur

ANOPLOURES


Tête aussi large que lethorax

Ectoparasite des Oiseaux

Taille < 5 mm

Broyeur

MALLOPHAGES

Corps aplati latéralement

P3 sauteuse

Ectoparasite de Mammifères et des Oiseaux

Taille < 5 mm

Piqueur-

suceur

APHANIPTERES

Insectes sociaux

Insectes dépigmentés

Antennes courtes

Tarse à articles

Xylophages et vivant souvent dans le sol et dans

le bois

Broyeur

ISOPTERES

Insectes dépigmentés, grosse tête

Antennes longues filiformes

Tarse de 2 à 3 articles

Taille < 5 mm

PSCOPTERES

Étranglement bien marqué entre thorax et

abdomen Aspect de fourmis

HYMENOPTERES

Antennes longues formés de 4 à 5 articles

Caractère constant

Grande diversité de formes

Piqueur- suceur

(Rostre)

HOMOPTERES

P3 sauteuse

Tarse à moins de 5 articles

Broyeur

ORTHOPTERES

P3 marcheuse

Tarse à 5 articles

Cerques courts

DICTYOPTERES

P3 marcheuse

Grand mimétisme, aspect de brindilles

PHASMOPTERES

Insectes à une

paire

Membraneuse Ailes postérieures très réduites sous forme

de balanciers

Piqueur-

suceur ou suceur

DIPTERES

d’ailes

visibles

Dures et

opaques =

Elytres

Pas de cerques

Grande diversité de couleurs, caractères

constant : les élytres

Nervures non visibles sur les élytres

Broyeur

COLEOPTERES

12


1.

CLASSE DES INSECTES

SOUS-CLASSE : PTERYGOTES

Ailes

Structure des ailes

antérieures

Caractères distinctifs

Type de

Pièces Buccales

ORDRES

Membraneuses et plus dures que les postérieures

Tarse à 5articles

Cerques courts

Broyeur

DICTYOPTERES

Légèrement clérifiées

Nervures visibles

P3 sauteuse à cuisse renflée

Tarse à moins de 5articles

ORTHOPTERES

Extrémité des ailes

plus souple ou plus transparente (Hémi- élytres)


Ecusson au niveau dorsal

Se reconnaissent au type de pièces buccales et àl a forme des ailes

Piqueur-

suceur

(Rostre)

HEMIPTERES

ou

HETEROPTERES

Dures et opaques

Cerques en formes de pinces :Forceps

Élytres de taille réduite

Ailes postérieures membraneuses très grandes, semi- circulaire, repliées sous les élytres

Broyeur

DERMAPTERES

(Élytres) Pas de cerques

Ailes post membraneuses repliées sous les élytres

COLEOPTERES

Recouvertes d’écailles Antennes en massue, couleurs vives : Papillons diurnes

Antennes de forme variées, couleurs ternes : Papillons nocturnes

Suceur

LEPIDOPTERES

Ailes frangées ou

plumeuses

Taille < 6 mm

Se rencontrent dans les fleurs et sur les feuilles

Piqueur- suceur

THYSANOPTERES

Insectes

à deux

Étranglement marqué entre le thorax et l’abdomen

Broyeur-

lécheur

HYMENOPTERES

paires d’ailes

visibles Membraneuses

Ailes poilues repliées en toit au repos

Antennes filiformes et très longues

Broyeur (atrophié)

TRICHOPTERES

Plus grandes en

surfaces que les

postérieures

Abdomen portant 3 cerques longs

Ailes verticales au repos

Adulte à vie courte

Atrophié

EPHEMEROPTERE

Grosse tête

Longues antennes

Forme en boule

Taille < 6 mm

Broyeur

PSOCOPTERES

Caractère constant : Rostre

Ailes repliées en toit au repos

Piqueur- suceur

(Rostre)

HOMOPTERES

Membraneuses

Égales en surface aux

ailes postérieures ou

plus étroites

Ailes étroites à nombreuses nervures et à

l’horizontale au repos

Abdomen se terminant par un aiguillon chez le mâle

Broyeur

(allongé)

MECOPTERES

Corps allongé et aplati dorso-ventralement

Antennes longues et fines

Ailes repliées sur le corps au repos

2 cerques courts

Broyeur

PLECOPTERES

Abdomen très long plus étroit ou de même largeur que

la tête

Yeux composés très grands

Antennes filiformes et très courtes

Nervation des ailes très complexe

Ailes à l’horizontale ou à la verticale au repos

Pas de cerques

ODONATES

Abdomen long

Antennes en massue ou filiformes et longues

Ailes repliées en toit au repos

2 cerques dans certains cas

NEVROPTERES

Insectes sociaux

Insectes dépigmentés

Antennes courtes

Tarses à 4articles

Xylophages et vivant souvent dans le sol et dans le bois

ISOPTERES

13

1.


Méthodes de conservation et de présentation d’une collection

d’Arthropodes

Pourquoi faire une collection ?

La collection d'insectes est un outil de recherche important pour les entomologistes, amateurs et

professionnels.

Pour avoir une valeur scientifique, elle doit contenir des spécimens :

en bon état ;

bien montés ;

accompagnés d'étiquettes portant des renseignements justes.

Matériel indispensable

Alcool à bruler ;

Formol commercial ;

Pinces ;

Épingles fines ;

Bocaux ;

Boite de présentation.

Comment manipuler les Arthropodes

Avec les doigts ;

Avec les pinces.

Comment tuer les insectes ?

Différentes méthodes:

Par congélation

Pour tuer les insectes par le froid, il faut les déposer au congélateur, accompagné des renseignements

qui le concernent.

Laisser les spécimens au moins 3 jours dans le congélateur. Il vaut mieux les garder au froid plus longtemps que d'avoir la désagréable surprise de

se retrouver avec un insecte qui remue sur une épingle entomologique...

Sortir le spécimen du congélateur et attendre que son corps se réchauffe pour qu’il ne se brise

pas.

Dans l'alcool ou dans le formol

Les insectes mis en collection dans l'alcool sont tués directement.

Comment conserver les Arthropodes collectés et morts

Les Animaux fragiles et/ou sclérifiés (ex : O/Lépidoptères, O/Odonates…) sont conservés à sec.

Les animaux mous (ex :O/ Anostracés,….) sont conservés dans l’alcool.

Les Arthropodes coriaces (ex : O/ Coléoptères) restés vivant après leur collecte peuvent être tués avant

la mise en collection en les plaçant dans du formol.

14


16

Comment piquer les arthropodes coriaces et fragiles

On pique les insectes en vue de les placer dans une boite de collection. Les spécialistes utilisent des

épingles entomologiques et les amateurs peuvent se servir d’épingles de couturier.

Comment étaler les arthropodes piqués ?

L’étalage des insectes concerne : les pattes, les antennes et les ailes.

Pour les insectes coriaces, l’insecte est placé sur un carton ensuite les antennes et les tarses

sont aplatis et maintenus par des épingles (voir Photo).

Pour les insectes fragiles, il faudrait utiliser un étaloir soit en bois ou en polystyrène qui

renferme une rainure au milieu qui permet de contenir l’abdomen de l’insecte. Les ailes sont

ensuite étalées et manipulées délicatement.

Comment présenter la collection ?

Les Arthropodes mous sont présentés dans des bocaux contenant de l’alcool.

Les autres Arthropodes sont piqués directement dans la boite de collection.

Tous les échantillons doivent être :

déterminés avec précision en utilisant la clé de détermination ;

présentés de manière logique et synthétique.

Unité de Biologie Animale Zoologie 3 : Les Vertébrés

17

TP 3 LES VERTEBRES

Les Coelomates - Deutérostomiens - Epineuriens

Objectifs du TP :

Apprendre à observer des animaux tout en appliquant le cours théorique

Illustration du cours par l’observation d’échantillons

Préparation des étudiants à l’examen de Zoologie.

Organisation de la séance:

Interrogation sur les Hyponeuriens : L’interrogation comporte 7 échantillons

d’Arthropodes à déterminer et à rendre sous forme de tableau (cf. TP2) ;

Diaporama avec des illustrations de Vertébrés avec un complément de cours en suivant le guide d'observation et de réflexions (cf. p. 19) ;

Présentation classe par classe les Vertébrés en suivant l’ordre évolutif des animaux ;

Participation des étudiants à ressortir les principales caractéristiques de chaque animal

étudié en suivant le guide d’observation et de réflexions ;

Observations : des échantillons d’animaux exposés sur les paillasses ; ils sont réparties par

classe ;

les posters d’Oiseaux ;

Échantillons formolés (Poissons, Amphibiens,…) ;

les maquettes de poissons et de Mammifères ;

les crânes et les membres d’animaux (crânes de chien, de porc, de Dromadaire,

Dauphin, membre d’un Bovidés,…) ;

le squelette de l’Oiseau ;

…etc

Évaluation : Interrogation sur diapositives :

Il s’agit de comparer deux vertébrés qui sont projetées par l’enseignant responsable. Les étudiants devront répondre d’une manière synthétique et comparative aux

questions figurant dans le tableau ci-dessous.


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Nom et prénom : Date :

N° de groupe : N° de l’étudiant N° de place :

TP3 : Tableau de comparaison entre 2 espèces de Vertébrés

Animal 1 Animal 2 Nom commun : Nom commun :

Mode de vie

Organes locomoteurs

Mode de locomotion

Appareil respiratoire

Mode de respiration

Prise de nourriture

Régime alimentaire

Caractère du tégument

Type de phanère

Régulation de la T° interne

Type de reproduction

Lieu de reproduction

Développement embryonnaire

Annexes embryonnaires

Mode de vie

Éléments d’organisation

Classification

NB : Il sera tenu compte des réponses synthétiques (caractères communs ou non chez les 2 espèces)


19

GUIDE D'OBSERVATION ET DE REFLEXIONS

A. Observation : Morphologie externe et rappel sur l’anatomie générale de l’animal.

B. Questions de réflexions sur les adaptations des Vertébrés à leur milieu de vie.

1) Cet animal se déplace : où (= milieu de vie)? Grâce à quoi (=les organes locomoteurs)?

Comment (= mode de déplacement ou de locomotion) ?

Ne pas oublier de parler des adaptations des pattes, des ailes, etc. au milieu de vie :

2) Il respire:

l'Oxygène de quel milieu? Où ?

avec quoi (= organes respiratoires) ?

comment (= Mode de respiration)?

3) Il se nourrit :

Avec quoi (= prise de nourriture)?

Quels aliments (= types d’aliments)?

Adaptations de la mâchoire (= de la dentition) ?

Conclusion: Quel est son régime alimentaire ?

4) Cet organisme est protégé par un tégument :

Régulation de la température interne :

Oui (= homéotherme) ou Non (=Poïkilotherme) ?

5) Reproduction et développement :

Où, comment et lieu de la fécondation (interne ou externe)

Le zygote se développe où ?

Comment? (Ovipare ou vivipare ou ovovivipare)

L'embryon est protégé et nourri comment ? et où?

Présence ou non d’annexes embryonnaires (Amniote ou Anamniote)?

Conclusion générale :

Mode de vie

Organisation et classification complète de l’animal.

Unité de Biologie Animale Reproduction

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TP 4- REPRODUCTION :

Étude de la gamétogenèse et de la fécondation.

Organisation et contenu de la séance

Objectifs du TP :

Illustrer et compléter le cours pour l’étude de la gamétogenèse (chez l’Ascaris et les

Mammifères) et de la fécondation (chez l’Ascaris) par des observations microscopiques, des

posters ;…

Le cours a été présenté de manière à faciliter la compréhension en TP ;

Les étudiants sont sensibilisés sur le fait qu’ils doivent avant tout comprendre et interpréter les

phénomènes observés ;

Faire réaliser des observations précises (comme appris au 1er TP) ;

Faire des tableaux comparatifs et synthétiques.

Pré-requis :

Cours de reproduction ;

Consignes de travail et « savoir-faire » acquis au 1er TP ;

NB. : Le travail en TP nécessite l’utilisation du polycopié.

Déroulement de la séance

I - La reproduction chez l’Ascaris.

Présentation d’un diaporama puis observations microscopiques et remplissage du

tableau GAMETOGENESE CHEZ L’ASCARIS : TABLEAU COMPARATIF DES

OBSERVATIONS

(1/2 et 2/2 des pages 23 et 24 du polycopié TP).

Spermatogenèse et ovogenèse (jusqu’à la fin de l’accroissement) :

Observation de 2 C.T d’Ascaris mâle et femelle.

Méiose femelle et fécondation :

Observation de 3 coupes (CL et/ou CT) d’utérus de femelle.

Il est demandé une étude et observations comparatives sous forme d’un tableau de la

spermatogenèse et de l’ovogenèse, à compléter (cf. GAMETOGENESE CHEZ L’ASCARIS :

TABLEAU COMPARATIF DES OBSERVATIONS (pages 1/2 et 2/2 = p 23 et p24 du

polycopié TP). Le tableau doit être complété en parallèle avec les observations par les phases de la gamétogenèse, stades

cellulaires, stocks chromosomiques, noms des organes contenant les cellules germinales, les légendes, les

phrases explicatives demandées et les n° des schémas des stades cellulaires figurant sur le polycopié (cf.

pages 13, 15, 16 du polycopié cours).

Pour la méiose femelle : compléter le tableau (partie III) après observation d’une « figure » sur une lame

(lame 4 ou 5) et le polycopié (page 34 du polycopié cours).

Ce tableau servira de synthèse après sa correction.


21

II - Étude de la gamétogenèse cher les Mammifères. .

Rappel des différences avec l’Ascaris et présentation du diaporama puis observations des

préparations microscopiques, posters et polycopié (pages 13, 18, 20, 21,23 du polycopié cours).

L’objectif étant de :

Illustrer le cours et savoir reconnaitre les organes, leur structure et les principaux stades

cellulaires (Interprétation en fonction des phases de la gamétogenèse) ;

Compléter et corriger le tableau comparatif de la gamétogenèse chez les Mammifères.

1) Ovogenèse : Étude sur coupes d’ovaires de diverses espèces.

Observations et identification de :

Nombreux follicules ovariens (primordiaux, I, II, cavitaires ou III, de De Graaf)

et des corps jaunes.

Corps jaunes volumineux

2) Spermatogenèse : Études sur coupes de testicules de diverses espèces.

Observations et Identification des :

spermatogonies,

spermatocytes I et II,

spermatides,

spermatozoïdes,

cellules de Sertoli,

cellules de Leydig.

Évaluation :

Autoévaluation :

-Tableau comparatif de la gamétogenèse et la fécondation chez l’Ascaris, à compléter à partir

du polycopié et des observations microscopiques et à corriger avec l’enseignant au cours

de la séance. -Tableau comparatif de la gamétogenèse chez les Mammifères, (cf. p. 25 du polycopié TP) à

faire et compléter à partir du polycopié cours et à corriger avec l’enseignant au cours de

la séance TP.

Contrôle : En fin de séance pour tester les capacités d’observation et les connaissances acquises sur la gamétogenèse et la fécondation chez l’Ascaris et chez les Mammifères. Les

questions portent sur l’identification des éléments indiqués (légendes, stock,…) et la

compréhension des phénomènes.

Barème : /20.

RAPPEL : Le compte-rendu du TP doit comporter le plan du travail (cf page suivante)

réalisé avec le type de préparations utilisées ainsi que les réponses à l’interrogation.


21

Plan du travail (A écrire sur le compte rendu)

TP 4 - REPRODUCTION :

Étude de la gamétogenèse et de la fécondation

I -Étude de la gamétogenèse et de la fécondation chez l’Ascaris:

A- Spermatogenèse chez l’Ascaris ♂ (Lame 1)

- Observez la lame (faible grossissement) - Repérez les diverses sections

- Identifiez les stades cellulaires (fort grossissement)

- Complétez le tableau

B- Ovogenèse chez l’Ascaris ♀ (Lame 2)

- Observez la lame (faible grossissement) - Repérez les diverses sections

- Identifiez les stades cellulaires (fort grossissement)

- Complétez le tableau

C- Fécondation chez l’Ascaris :

- Observez les lames 3, 4 &5

- Complétez le tableau en utilisant les lames 4 ou 5

II - Etude de la gamétogenèse chez les Mammifères:

- Observez la structure des gonades (Ovaires et testicules de diverses espèces) et

identifier les cellules germinales (différents stades…) ainsi que les cellules somatiques

impliquées dans la gamétogenèse (. de Leydig, . de Sertoli, .folliculeuses…).

A – Ovogenèse (Lame 6 : Nombreux follicules ovariens & lame 7 : Corps jaunes

volumineux)

B- Spermatogenèse (Lame 8)

Évaluation/contrôle

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GAMETOGENESE CHEZ L’ASCARIS : TABLEAU COMPARATIF DES OBSERVATIONS (SUITE)

(1) . (NB: voir les 3 stades théoriques de la page 34 du polycopié cours)

Résultat du (1)

Stade ?: Description (éléments observés, stock chr des noyaux,…) :

Stock Chr ? :

*Ce stade très fugace est

difficilement observable

Organe:

(2) : Interprétation ( phénomènes en cours)

Résultat du (2)

Stade ?:

Stock Chr ?:

Schéma N° : En quoi consiste cette phase ? A quel moment se déroule –t-elle ?

Où ? (Organe ?)

Stade qui subit le IV:

Stock Chr :

Organe:

Résultat de IV= Spermatozoïde à observer dans l’utérus de la ♀

* Constatez les principales différences (♂ / ♀) dans la réalisation de chaque phase p 2/2 24

III = ou

Lame N :°

IV =

♂ ♀

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Comparaison de la Gamétogenèse ♂/♀ chez les Mammifères

Critères de comparaison

Spermatogenèse Ovogenèse

organe (Lieu)

Phase de

Multiplication

Stade

Stock

Chronologie

Phase

d’accroissement

Stade

Stock

Importance

Chronologie

Phase de

Maturation

1. MR ou MI

Stade

Stock

Chronologie

2. ME ou MII

Stade

Stock

Chronologie

Phase de

cytodifférenciation

Stade

Stock

Chronologie

Implication de

Cellules

somatiques (rôle(s))

NB : Dessinez le tableau en fonction de vos synthèses

travaux pratiques de biologie animale

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