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EXPERTISE, PRESTATIONS DE SERVICE ET RELATIONS CLIENTS

QUALITE DES LABORATOIRES

COMMISSION D’ANATOMIE PATHOLOGIQUE

COMITE DES EXPERTS/ GROUPE DE TRAVAIL EEQ

EVALUATION EXTERNE DE LA QUALITE

DES ANALYSES D’ANATOMIE PATHOLOGIQUE

Sciensano/Cytologie gynécologique/1-FR

Expertise, prestations de service et relations clients Qualité des laboratoires Rue J. Wytsman, 14 1050 Bruxelles | Belgique www.sciensano.be

RAPPORT GLOBAL DEFINITIF

CYTOLOGIE GYNECOLOGIQUE

ENQUETE 2018/1

Cytologie gynécologique, rapport global définitif 2018/1. Date de publication : 25/01/2019. FORM 43/124/F V11 2/20

ISSN: 2294-3390

GROUPE DE TRAVAIL EEQ

Sciensano

Carlier D. Secrétariat TEL: 02/642.55.21 FAX: 02/642.56.45

Anne Marie Dierick Coordinateur d’enquête

TEL: 02/642.53.95

e-mail: [email protected]

Vanessa Gislain Coordinateur d’enquête remplaçant

TEL: 02/642.52.08

e-mail: [email protected]

Membres groupe de

travail EEQ Institution

Gabriela Beniuga IPG (Gosselies)

Bart De Wiest OLV Aalst

Vanessa Ghislain Sciensano

Marie-Paule Van Craynest

New labpatho (Braine L’Alleud)

Wim Waelput UZ Brussel

Une version provisoire de ce rapport a été transmise aux membres du groupe de travail EEQ le : 03/12/2018 Ce rapport a été discuté lors de la réunion du groupe de travail EEQ du : 03/12/2018. Tous les rapports sont également consultables sur notre site web: https://www.wiv-isp.be/QML/activities/external_quality/rapports/_fr/rapports_annee.htm

Autorisation de diffusion de rapport:

Par Anne Marie Dierick, coordinateur d’enquête, le 25/01/2019.


TABLE DES MATIERES

................................................................................................................................................................ 3

1. INTRODUCTION ............................................................................................................................ 4

1.1. OBJECTIF DE CETTE EEQ ......................................................................................................... 4 1.2. ACTIVITÉS SOUS-TRAITÉES ....................................................................................................... 4 1.3. DEMANDE ................................................................................................................................ 4 1.4. FORMULAIRE DE RÉPONSE ........................................................................................................ 4 1.5. TECHNIQUES UTILISÉES POUR LA CYTOLOGIE EN COUCHE MINCE ................................................ 5

2. REPONSES AU QUESTIONNAIRE .............................................................................................. 5

2.1. PARTICIPATION A L’EEQ ........................................................................................................... 5 2.2. TAUX D’ACTIVITE ...................................................................................................................... 5 2.3. CONTRÔLE QUALITÉ ................................................................................................................. 5

3. EVALUATION ................................................................................................................................ 6

3.1. QUALITE DE LA COLORATION PAPANICOLAOU (HARRIS SHORR) .................................................. 6 3.2. QUALITE DU SPOT CELLULAIRE ET DU MONTAGE ......................................................................... 8 3.3. EVALUATION FINALE ................................................................................................................. 8

4. RESULTATS .................................................................................................................................. 8

4.3. RESUME DES RESULTATS ......................................................................................................... 8 4.4. RESULTATS PAR RAPPORT A LA TECHNIQUE DE LA COUCHE MINCE ET AUX DIFFERENTS

PROTOCOLES/PRODUITS POUR LA COLORATION NUCLEAIRE. .................................................................. 11

5. DISCUSSION DES RESULTATS ................................................................................................ 11

5.1. NOTES FINALES ...................................................................................................................... 11 5.2. QUALITE DES LAMES ET DU MONTAGE ...................................................................................... 12 5.3. COLORATION NUCLEAIRE DES CELLULES MALPIGHIENNES (FIGURE 3) ....................................... 12

6. CONCLUSION GENERALE ........................................................................................................ 13

7. FORMULAIRE .............................................................................................................................. 14

8. NOTES PAR PARTICIPANT ....................................................................................................... 15


1. Introduction

Ce document comprend un résumé ainsi qu’une discussion des résultats de l’évaluation externe de la qualité (EEQ) en cytologie gynécologique 2018/1 et un aperçu des résultats individuels et des recommandations.

1.1. Objectif de cette EEQ

Cette EEQ avait pour objectif d’évaluer la qualité technique de la coloration standard des frottis cervico-utérin (FCU) en milieu liquide, ainsi que la préparation des monocouches. Cette coloration était de préférence un Papanicolaou, mais le Harris Shorr était accepté.

1.2. Activités sous-traitées

La Commission d’Anatomie Pathologique a choisi de collaborer avec un panel d’experts indépendants de l’AFAQAP (Association Française d’Assurance Qualité en Anatomie Pathologique) pour le soutien à l’évaluation des lames colorées.

1.3. Demande

Aux laboratoires il était demandé de sélectionner 2 FCU normaux, trophiques (suffisamment cellulaires) (NILM), non/peu inflammatoires et contenant des cellules glandulaires endocervicales. Les laboratoires devaient préparer les lames à partir de matériel résiduel d’échantillons en milieu liquide, provenant de 2 patientes différentes et de les colorer en routine.

1.4. Formulaire de réponse

Il était demandé de remplir un formulaire de réponse précisant les données techniques concernant la technique et la coloration. Ce formulaire de réponse a été établi sur la base du formulaire de réponse utilisé par AFAQAP et ajusté conjointement par Sciensano.


1.5. Techniques utilisées pour la cytologie en couche mince

Une répartition du nombre de participants par technique utilisée est présentée graphiquement dans le tableau ci-dessous. Figure 1: Techniques cytologie couche mince

Douze laboratoires utilisent la technique de Becton en Dickinson (SurePath) pour réaliser les couches minces. Deux de ces laboratoires font l’interprétation avec une aide à la lecture par le Focal Point. Quarante-deux laboratoires utilisent la technique Hologic (ThinPrep) pour réaliser les monocouches. Vingt de ces laboratoires font l’interprétation avec l’aide à la lecture par le ThinPrep Imager. Les huit autres laboratoires utilisent une autre technique pour les couches minces. Ils les réalisent à l’aide du Turbitec (n=3), du Shandon PapSpin (n=4) ou de la technique Cytofast (n=1).

2. Réponses au questionnaire

2.1. Participation à l’EEQ

Le pourcentage de participation était de 62/62 (100 %). Onze laboratoires sous-traitent la technique et ont par conséquent pas participé à l’EEQ.

2.2. Taux d’activité

Sur les 62 participants, 55 ont répondu à la question sur le nombre hebdomadaire moyen d'échantillons traités. Pour les laboratoires utilisant la technique de SurePath (BD) cette moyenne est de 282 (75 à 480), contre 395 (50 à 2200) avec la technique ThinPrep et de 50 à 275 maximum pour les autres participants.

2.3. Contrôle qualité

Sur les 62 participants, 10 n'ont pas répondu à la question concernant le contrôle de qualité externe. Douze laboratoires ne participent à aucune forme de contrôle de qualité externe. 24 laboratoires sur 40 ont déjà participé à un contrôle de qualité externe non diagnostique organisé par Hologic aux États-

Surepath; 10

Surepath +

focal point; 2

Thinprep; 22

Thinprep +

imager; 20

Autres, 8


Unis (n = 21) ou par AFAQAP (n = 3). La participation aux contrôles de qualité diagnostique et/ou aux comparaisons interlaboratoires n’a lieu que sur l’initiative des laboratoires eux-mêmes. L'EKE COS-Y (n = 15) en Flandre en est un exemple.

3. Evaluation

L’évaluation de la qualité des lames et de la coloration a eu lieu le 28 et le 29 juin à l’Hôpital Cochin à Paris et a été effectué par 5 pathologistes, dont 1 interne (Anne Marie Dierick, coordinateur d’enquête de Sciensano) et 4 externes à Sciensano, ainsi que par 1 cytotechnicien externe en présence de Vanessa Ghislain (coordinateur d’enquête adjointe de Sciensano) et Caroline Egele (AFAQAP). Cette structure administrative et scientifique garantit la qualité et l’anonymat des résultats Cette évaluation a été effectuée sur une feuille de résultats préparée par AFAQAP et ajoutée à la fin du présent rapport. Pour plus d’anonymat, les lames des laboratoires n’étaient pas identifiées par leur numéro de participant (QMLxxx), mais par un numéro aléatoire uniquement connu du coordinateur EEQ.

3.1. Qualité de la coloration Papanicolaou (Harris Shorr)

Pour l’évaluation de la qualité de la coloration cytologique et de la qualité du spot cellulaire le panel des évaluateurs a observé la coloration nucléaire et cytoplasmique des cellules Malpighiennes, des cellules glandulaires endocervicales et métaplasiques si présentes.

Coloration nucléaire des cellules Malpighiennes

Pour l’évaluation de la qualité de la coloration nucléaire des cellules Malpighiennes on a tenu compte du détail de la chromatine, de la couleur des noyaux et de la différentiation de la coloration du noyau par rapport à la coloration du cytoplasme.

- Clarté chromatinienne :

Une note de 4 points a été attribuée quand la structure de la chromatine était colorée de manière très nette et distincte. Une note de 3 points était octroyée si la chromatine était visiblement colorée mais présentait un manque de définition dans une minorité des noyaux. Si c’était le cas dans une majorité de noyaux, 2 points ont été accordé. Si c’était le cas dans tous les noyaux un seul point a été donné

- Couleur des noyaux

Une note de 4 points a été attribuée si pratiquement tous les noyaux montraient une couleur allant du bleu à bleu/violet. Si c’était le cas dans la majorité des noyaux 3 points ont été octroyés. Si plus de la moitié des noyaux présentaient une teinte rose, rouge ou verte, seuls 2 points ont été concédés. Si tous les noyaux étaient concernés, seul un point a été donné.

- Différentiation

Une note de 4 points a été attribuée en cas d’intensité optimale dans pratiquement tous les noyaux, une note de 3 points en cas d’intensité acceptable sans effet néfaste sur la coloration cytoplasmique. En cas de la présence de noyaux sur-colorés et affectant la coloration cytoplasmique, une note de 2 points a été octroyé. Dans le cas de sur-coloration dans l’ensemble des noyaux seul un point a été donné.

Coloration cytoplasmique des cellules Malpighiennes

La qualité de la coloration cytoplasmique des cellules Malpighiennes a été évaluée en tenant compte du spectre des couleurs des cellules Malpighiennes, la cyanophilie, l’éosinophilie et orangeophilie.


- Spectre des couleurs

Une note de 4 points a été attribuée si toutes les couleurs attendues étaient représentées là où elles étaient attendues, y compris les subtiles séquences d’orange, de jaune orangé, de rose saumon et de bleu-vert. Une note de 3 points a été octroyée quand toutes les couleurs étaient représentées, mais qu’une ou plusieurs étaient sous-représentées dans la minorité de cellules du spot cellulaire. Une note de 2 points a été accordée si toutes les couleurs étaient représentées mais une ou plusieurs étaient sous-représentées ou absente dans la majorité de cellules du spot cellulaire, tandis que seul un point a été donné si toutes les cellules étaient vertes, roses ou oranges, si seules deux couleurs étaient présentes ou dans le cas d’une amphophilie excessive.

- Cyanophilie

Quand la coloration cytoplasmique présentait une intensité optimale sur l’ensemble du spot cellulaire une note de 4 points a été accordé. Dans le cas d’une intensité acceptable de la coloration cytoplasmique sur l’ensemble du spot cellulaire une note de 3 points a été octroyée. Les lames avec une intensité inappropriée, (trop pâle ou trop sombre) recevaient une note de 2 points tandis que dans le cas d’une intensité manifestement inappropriée ou une cyanophilie virtuellement absente seul un point a été donné.

- Eosino/orangeophilie

Quand la coloration cytoplasmique présentait une intensité optimale sur l’ensemble du spot cellulaire une note de 4 points a été accordée. Une note de 3 points a été octroyée aux lames montrant une intensité acceptable de la coloration cytoplasmique sur l’ensemble du spot cellulaire. Dans le cas d’une intensité globale inappropriée, (présente, mais trop pâle ou trop sombre) 2 points ont été accordés. Et en cas d’intensité de la coloration cytoplasmique manifestement inappropriée ou une éosino/orangeophilie virtuellement absente ou dans le cas d’une fausse éosinophilie (dessiccation, mauvaise fixation ou coloration ou rinçage ou alcool souillé) seul 1 point a été donné.

Coloration nucléaire des cellules glandulaires endocervicales et métaplasiques si présentes

La qualité de la coloration nucléaire des cellules glandulaires endocervicales a été évaluée en tenant compte du détail de la chromatine, de la visibilité de la membrane nucléaire et de la couleur du nucléole. Aucun point n’a été attribué en l’absence de cellules endocervicales. Une note de 2 points a été octroyée si les cellules glandulaires présentaient un bon détail de la chromatine, une membrane nucléaire bien visible et un nucléole rouge violacé. En cas de noyaux trop dense sans détail chromatinienne et (en cas) de noyaux sur-colorés ou incolores un seul point a été accordé.

Coloration cytoplasmique des cellules glandulaires endocervicales et métaplasiques si

présentes

L’évaluation de la qualité de la coloration cytoplasmique des cellules glandulaires endocervicales teint compte de la transparence, de la visibilité des vacuoles et de l’intensité de la coloration. Aucun point n’a été attribué en l’absence de cellules endocervicales. Une note de 2 points a été octroyée si les cellules glandulaires endocervicales présentaient un cytoplasme voilé, mais transparent ou des vacuoles bien visibles (mucus bleu-violet le cas échéant) (cils rouge si présents). Dans le cas où le cytoplasme était trop sombre ou non coloré avec des vacuoles peu visibles ou en cas des cellules métaplasiques avec un cytoplasme non basophile un seul point a été accordé.


3.2. Qualité du spot cellulaire et du montage

Pour l’évaluation de la qualité globale des lames on a tenu compte :

- du degré de transparence ;

- de la présence de bulles ;

- de l’aspect noirâtre ou marron dans les cytoplasmes ou les noyaux ;

- des dépôts obscurcissant le cytoplasme ou le noyau ou noyaux « popcorn » ;

- de la surépaisseur du spot cellulaire.

Une note de 2 points a été attribuée aux lames bien transparentes sans bulles, sans aspect noirâtre ou marron dans les cytoplasmes ou dans les noyaux. En cas de lames mal montées avec présence de bulles, en cas de dépôts obscurcissant le cytoplasme ou les noyaux ou en cas de spot cellulaire trop épais un seul point a été octroyé.

3.3. Evaluation finale

Toutes les notes ont été énumérées sur un total de 30 et ramené à 20. Aucune valeur seuil pour passer ce contrôle de qualité n'a été prédéfinie.

4. Résultats

4.1. Résumé des résultats

La dispersion des notes finales pour les lames évaluées est représentée dans l’histogramme (figure 2) et le tableau 1 ci-dessous. Figure 2: Dispersion des notes finales

05

1015

note/20

Nom

bre

de la

bora

toire

s

11 12 13 14 15 16 17 18 19 20


Tableau: 1

Coloration cytologique sur FCU - 2018

Nombre de participants

62*

Paramètres de centrage

Moyenne 16,7

Médiane 17,1

Paramètres de dispersion

Ecart-type 1,88

Note minimal 11,6

Note maximale 19.5

Etendu 7.9

*Un laboratoire a utilisé la coloration Harris Shorr.

- La médiane est la valeur centrale des notes, ç-est à dire la note minimum atteint par 50% des

laboratoires. La moyenne est inférieure à la médiane car la distribution n'est pas symétrique

et il y a des valeurs aberrantes par le bas.

- La moyenne est inférieure à la médiane car la dispersion n'est pas symétrique et il y a des

valeurs aberrantes vers le bas.

- L'écart-type mesure la dispersion des notes autour de leur moyenne.

- L’étendu est la différence entre le score le plus élevé et le plus bas.

La dispersion des notes pour les différents critères de l’évaluation est représentée dans les histogrammes ci-dessous (figure 3). La préparation du spot cellulaire et le montage influencent la note finale (figure 4).


Figure 3: Dispersion des notes des différents critères

Figure 4: dispersion des notes pour le spot cellulaire et le montage

05

1015

20

note/2

Nom

bre

de la

bora

toire

s

0.0 0.2 0.4 0.6 0.8 1.0 1.2 1.4 1.6 1.8 2.0


4.2. Résultats par rapport à la technique de la couche mince et aux différents

protocoles/produits pour la coloration nucléaire.

En analysant les réponses au questionnaire il a été constaté que pour la coloration nucléaire différents protocoles sont utilisés. Le tableau 2 ci-dessous résume ces différents protocoles et produits utilisés pour la coloration nucléaire par rapport aux résultats obtenus.

Technique

milieu liquide

N Coloration

nucléaire

16 – 20 13 - 16 < 13

BD SurePath

9 Hématoxyline 0.75

7 2 0

3 Hématoxyline 0.5

2 1 0

Hologic 20 Nuclear Stain Hologic 7’

19 1 0

10 Nuclear Stain Hologic 3 à 5’

8 2 0

4 Nuclear Stain Hologic < 3’

3 1 0

1 Nuclear Stain temps non

connu

0 1 0

1 Gill I manuel 1 0 0

3 Gill II Merck 1 2 0

2 Harris Merck 0 1 1

1 Mayer 0 0 1

Shandon PapSpin

2 Harris 1A 0 1 1

2 Gill II 0 2 0

Turbitec 1 Harris 1A 1 0 0

2 Carazzi 0 2 0

Cytofast 1

Hématoxyline I (TF)

0 1 0

5. Discussion des résultats

5.1. Notes finales

La note finale (sur 20 points) est la somme de de toutes les sous-parties évaluées sur 30, ramenée sur 20. Sur les 62 participants, 42 ont obtenu un score de 16/20 ou plus (soit 68 %), 15 un score entre 13 et 16/20 (24 %) et 5 un score inférieur à 13/20 (voir Figure 2 et Tableau 1). Des différences s’observent en fonction de la technique utilisée pour préparer les couches minces. (Tableau 2). Parmi les laboratoires qui utilisent la technique BD, 9 sur 12 (75 %) ont obtenu un score d’au moins 16/20 et 3 (25 %) ont reçu un score entre 13 et 16/20. Aucun ne s’est donc vu attribuer un score inférieur à 13/20.


La différence entre les laboratoires qui utilisent une méthode automatisée pour la préparation des lames et ceux qui n’en utilisent pas est donc très significative (p = 0.007443) *. Parmi les laboratoires qui utilisent la technique ThinPrep de Hologic, 33 sur 42 (79 %) ont obtenu un score d’au moins 16/20, 6 sur 42 (14 %) un score entre 13 et 16/20 et 2 sur 42 (7 %) un score inférieur à 13/20. Sur les 20 laboratoires qui ont appliqué le Nuclear Stain pendant 7 minutes, 17 effectuent l’évaluation à l’aide du ThinPrep Imager. Deux laboratoires qui pratiquent l’évaluation avec le ThinPrep

Imager ont appliqué une coloration plus courte de 3 et 5 minutes, bien que cette manière de procéder ne soit pas validée par le fabricant. Néanmoins, ils ont obtenu un score de 17,1 et 19,1/20 respectivement. Dans quatre laboratoires utilisant la technique THINPREP sans imageur, mentionnent dans leur formulaire de réponse qu’ils appliquent une période encore plus courte de temps (< 3' dont 1 avec 30 secondes (note 17,1)) pour la coloration nucléaire. Les différences relatives à la durée de la coloration nucléaire ne sont toutefois pas significatives (p= 0.3691) *. Ce qui l’est en revanche, c’est la distinction entre le recours au Nuclear Stain par rapport à d’autres colorations à l’hématoxyline (p=0.004887) *. Pour ce qui est des laboratoires qui emploient d’autres techniques pour la préparation des monocouches, seul un a atteint un résultat de 18,9/20. Les sept autres ont reçu des scores inférieurs à 16/20 (88 %). *Le Fisher exact test a été utilisé en raison du petit nombre de données. La préparation manuelle de l’hématoxyline n’est plus réalisée que par deux laboratoires (Gill I, Carazzi). Un des laboratoires qui appliquent la méthode Harris Shorr sur des lames préparées avec la méthode Turbitec utilise la solution d’origine commerciale de Carazzi (Diapath).

5.2. Qualité des lames et du montage

Une note supérieur ou égal à 1,6/2 a été atteinte par 39 des 62 participants (soit 63%), alors que les autres (37 % restants) ont obtenu un score entre 1 et 1,5/2 (Figure 3). Ces scores inférieurs étaient imputables à la présence de bulles d’air (1 cas), à une moins bonne délimitation du spot cellulaire ou à la présence de multiples trous ou amas cellulaires dans le spot, problème plus fréquent avec la technique ThinPrep de Hologic et surtout avec les autres techniques (exempté la technique BD de surepath). Il est possible d’obtenir une meilleure distribution du spot cellulaire avec la technique ThinPrep en huilant régulièrement l'anneau en caoutchouc.

5.2. Coloration nucléaire des cellules Malpighiennes (figure 3)

- La coloration nucléaire des cellules Malpighiennes a été évaluée sur la base de trois critères, notés

sur quatre points chacun : la clarté et la couleur de la chromatine, et la différentiation des noyaux

par rapport au cytoplasme. Ce dernier critère est celui qui pose le plus souvent problème, avec des

noyaux surcolorés gênant la coloration du cytoplasme.

- La coloration cytoplasmique des cellules Malpighiennes a été évaluée sur la base trois critères, notés

sur quatre points chacun : le spectre des couleurs, la cyanophilie et l’éosino/orangeophilie. L’analyse

montre que le spectre des couleurs est le problème le plus fréquent, avec surtout une représentation

insuffisante de la couleur orange.

- La coloration nucléaire des cellules glandulaires endocervicales a été évaluée en tenant compte des

critères suivants : détail chromatinien, une membrane nucléaire clairement visible et nucléole de

couleur rouge violacé. Le défaut le plus fréquent était la surcoloration des noyaux et l’insuffisance

du détail de la chromatine.


- La coloration cytoplasmique des cellules glandulaires endocervicales a été évaluée sur l’aspect

transparent, voilé, du cytoplasme ou la présence de vacuoles clairement visibles. Les problèmes les

plus souvent rencontrés étaient la présence d’un cytoplasme trop sombre et/ou de vacuoles peu

visibles et/ou d’un cytoplasme trop peu basophile des cellules métaplasiques.

6. Conclusion générale

Etant donné que les différences en matière de la durée de la coloration nucléaire et le choix des réactifs constatées, les notes finales ne sont pas tellement déviantes et ils résultent surtout d’une évaluation qualitative. Une durée de coloration nucléaire de 7’ est validée par Hologic pour aide à la lecture avec l’Imager. Il n’y a donc pas d’explication pourquoi cela n’est pas appliqué dans deux laboratoires D’autre part, la qualité du spot cellulaire avec une technique automatisée semble être nettement meilleur que celle par une technique automatisée qu’avec les cytocentrifugeuses pour la préparation des lames. En ce qui concerne les résultats des laboratoires belges, les résultats sont en général très bons et très semblables aux résultats 2016 en France (AFAQAP).


7. Formulaire

Coloration nucléaire des cellules malpighiennes/12 Score 1 1b 2 2b

Clarté chromatinienne/4

Structures nettes et distinctes dans tous les noyaux 4

Chromatine visible, mais manque de définition, dans une minorité de noyaux 3

Chromatine visible, mais manque de définition, dans la majorité des noyaux 2

Absence de définition de la chromatine dans tous les noyaux 1

Couleur/4

Bleue à bleue/violet dans pratiquement tous les noyaux 4

Bleue à bleue/violet dans la majorité des noyaux 3

Rose/rouge/vert dans plus de la moitié des noyaux 2

Rose/rouge/vert dans tous les noyaux 1

Différenciation/4

Intensité optimale de la coloration nucléaire dans pratiquement tous les noyaux 4

Intensité acceptable de la coloration nucléaire sans effet néfaste sur la coloration cytoplasmique

3

Noyaux sur-colorés et affectant la coloration cytoplasmique 2

Tous les noyaux sur-colorés et affectant la coloration cytoplasmique 1

Coloration cytoplasmique des cellules malpighiennes(tenir compte des variations hormonales) /12

Spectre (plusieurs tons) des couleurs/4

Les couleurs prévues sont représentées où elles sont attendues, comprenant les gammes subtiles d’orange, jaune orangé, saumon/rose, et bleu/vert

4

Toutes les couleurs sont représentées, mais une ou plusieurs sont sous-représentées dans une minorité de l’étalement ou du spot

3

Une ou plusieurs couleurs sont nettement sous-représentées ou absente(s) sur la majorité de l’étalement ou du spot

2

o Tous verts ; Tous roses ; Tous oranges ; Deux couleurs seulement/amphophilie excessive

1

Cyanophilie/4

Intensité optimale de la coloration cytoplasmique sur l’ensemble de l’étalement ou du spot 4

Intensité acceptable de la coloration cytoplasmique au travers de l’étalement ou du spot 3

Intensité globale inappropriée : Présente, mais trop pâle ; Présente, mais trop sombre 2

Intensité manifestement inappropriée : cyanophilie virtuellement absente 1

Eosino/orangeophilie/4

Intensité optimale de la coloration cytoplasmique sur l’ensemble de l’étalement ou du spot 4

Intensité acceptable de la coloration cytoplasmique sur l’ensemble de l’étalement ou du spot

3

Intensité globale inappropriée : Présente, mais trop pâle; Présente, mais trop sombre 2

Intensité manifestement inappropriée : Eosino/orangeophilie virtuellement absente 1

Fausse éosinophilie (dessiccation, mauvaise fixation ou coloration ou rinçage ou alcool souillé)

1

Coloration nucléaire des cellules glandulaires endocervicales et des cellules métaplasiques si présentes /2

Cellules glandulaires absentes 0

Cellule glandulaire avec bon détail chromatinien, membrane bien visible, nucléole (rouge violacé)

2

Noyau trop dense sans détail chromatinien ou surcoloré ou incolore 1

Coloration cytoplasmique des cellules endocervicales et des cellules métaplasiques si présentes/2

Cellules glandulaires absentes 0

Cellules glandulaires au cytoplasme nuageux/transparent ou vacuoles bien visibles (mucus bleu-violet si présent) (cils rouges si présent)

2

Cellules glandulaires au cytoplasme trop foncé ou pas coloré ou avec vacuoles peu visibles ou cellules métaplasiques au cytoplasme non basophile

1

Qualité de l’étalement ou spot, du montage /2

Lame bien transparente sans bulle, sans aspect noirâtre ou marron dans les cytoplasmes ou les noyaux

2

Lame mal montée avec bulles, dépôts obscurcissant le cytoplasme ou le noyau ou noyaux « pop-corn » ou surépaisseur

1


8. Notes par participant

note / 20

Note / 30

Coloration nucléaire des cellules Malpighiennes / 12 Coloration cytoplasmique des cellules Malpighiennes

/ 12

Coloration nucléaire des

cellules glandulaires et métaplasiques

/ 2

Coloration cytoplasmique

des cellules glandulaires et métaplasiques

/ 2

Qualité du spot

cellulaire et du

montage / 2

Clarté chromatinienne

/4

couleur / 4

différenciation / 4

Total / 12

Spectre des couleurs / 4

Cyanophilie / 4

Eosino / orangeophilie

/ 4

Total / 12

15,3 23,0 3,0 3,6 2,8 9,4 2,8 3,2 2,8 8,8 1,6 1,2 2,0

16,3 24,4 3,2 3,4 3,4 10,0 3,2 3,4 3,2 9,8 1,2 1,2 2,0

15,3 23,0 3,4 2,6 3,2 9,2 3,0 3,6 3,0 9,6 1,6 1,6 1,0

14,3 21,4 2,6 3,2 2,8 8,6 3,4 2,4 3,0 8,8 1,4 1,4 1,0

18,1 27,2 3,8 3,6 3,6 11,0 3,2 3,8 3,6 10,6 1,6 2,0 2,0

18,9 28,4 3,8 3,6 3,8 11,2 3,4 4,0 3,8 11,2 2,0 2,0 2,0

18,9 28,4 4,0 3,6 3,8 11,4 3,6 4,0 3,6 11,2 2,0 1,8 2,0

17,5 26,2 3,6 3,2 3,4 10,2 3,4 3,8 3,6 10,8 2,0 2,0 1,8

17,1 25,6 4,0 3,2 3,6 10,8 3,0 3,8 3,4 10,2 1,8 1,6 1,2

18,7 28,0 4,0 3,2 3,8 11,0 3,2 4,0 3,8 11,0 2,0 2,0 2,0

17,6 26,4 3,6 3,4 3,4 10,4 3,2 4,0 3,8 11,0 2,0 2,0 1,0

17,3 26,0 3,8 3,6 3,6 11,0 3,2 3,4 3,4 10,0 1,4 1,6 2,0

14,8 22,2 3,4 3,6 3,0 10,0 3,0 2,8 3,0 8,8 1,2 1,2 1,0

13,3 20,0 3,4 3,6 2,8 9,8 3,0 3,2 3,0 9,2 0,0 0,0 1,0

18,3 27,4 3,8 3,8 3,2 10,8 3,6 3,6 3,6 10,8 2,0 1,6 1,6


Note /20

Note /30


/ 12



/ 2



/ 2

Qualité du spot

cellulaire et du

montage / 2


/4

couleur / 4


Total / 12


Cyanophilie / 4


/ 4

Total / 12

15,6 23,4 3,6 3,6 3,2 10,4 3,4 3,4 3,0 9,8 1,0 1,2 1,0

15,1 22,6 3,4 3,4 3,0 9,8 3,0 3,2 3,0 9,2 1,0 1,0 1,8

11,6 17,4 2,6 2,8 2,2 7,6 2,0 2,4 2,2 6,6 1,0 1,0 1,0

16,5 24,8 3,6 3,4 3,0 10,0 3,2 3,2 3,2 9,6 1,4 1,6 2,0

16,5 24,8 3,6 3,6 3,2 10,4 3,8 3,6 3,6 11,0 1,0 1,2 1,2

16,9 25,4 4,0 3,8 3,2 11,0 3,0 3,4 3,6 10,0 1,2 1,2 2,0

15,7 23,6 3,6 3,6 3,0 10,2 3,0 3,6 3,0 9,6 1,4 1,4 1,0

18,9 28,4 4,0 3,8 3,8 11,6 3,6 3,8 3,6 11,0 1,8 2,0 2,0

16,8 25,2 3,6 3,8 3,4 10,8 3,0 3,4 3,4 9,8 1,4 1,6 1,6

16,7 25,0 3,8 3,8 3,6 11,2 3,2 3,6 3,0 9,8 1,4 1,6 1,0

17,1 25,6 3,8 3,6 3,6 11,0 2,8 3,2 3,0 9,0 1,8 2,0 1,8

15,1 22,6 2,6 2,8 3,0 8,4 2,8 3,2 2,8 8,8 1,6 1,6 1,8

16,9 25,4 3,8 3,6 3,4 10,8 3,0 3,6 3,4 10,0 1,4 1,4 2,0

17,1 25,6 3,6 3,6 3,6 10,8 3,0 3,6 3,2 9,8 2,0 1,8 1,2

18,0 27,0 3,6 3,8 3,6 11,0 3,6 3,6 3,2 10,4 2,0 1,6 2,0

18,7 28,0 3,6 4,0 4,0 11,6 3,0 4,0 3,6 10,6 1,6 1,8 2,0

16,7 25,0 3,8 3,4 3,2 10,4 3,0 3,8 3,4 10,2 1,6 1,8 1,0

14,4 21,6 3,0 2,8 3,4 9,2 2,6 3,0 2,6 8,2 1,6 1,6 1,0

12,0 18,0 3,0 2,2 2,8 8,0 2,0 2,4 2,6 7,0 1,0 1,0 1,0

18,0 27,0 4,0 3,6 3,8 11,4 3,2 3,6 3,4 10,2 1,0 1,8 1,6

17,9 26,8 4,0 4,0 4,0 12,0 3,0 3,6 3,6 10,2 1,6 1,4 1,8


Note /20

Note /30


/ 12



/ 2



/ 2

Qualité du spot

cellulaire et du

montage / 2


/4

couleur / 4


Total / 12


Cyanophilie / 4


/ 4

Total / 12

17,3 26,0 3,8 3,8 3,8 11,4 3,2 3,6 3,4 10,2 1,0 1,6 2,0

14,3 21,4 3,4 3,0 3,0 9,4 2,6 2,8 2,8 8,2 1,0 1,0 2,0

17,7 26,6 3,8 3,8 3,8 11,4 3,4 4,0 3,6 11,0 1,2 1,4 1,6

17,1 25,6 4,0 4,0 3,4 11,4 3,0 3,6 3,2 9,8 1,2 1,4 2,0

17,7 26,6 4,0 4,0 3,8 11,8 3,2 3,6 3,6 10,4 1,6 1,2 1,8

17,6 26,4 4,0 4,0 3,8 11,8 3,0 3,6 3,2 9,8 1,2 1,8 2,0

18,5 27,8 4,0 4,0 4,0 12,0 3,6 4,0 3,6 11,2 1,4 1,4 1,8

17,1 25,6 4,0 3,6 3,4 11,0 3,2 3,4 3,2 9,8 1,4 1,6 1,8

17,5 26,2 4,0 4,0 3,6 11,6 3,0 3,6 3,4 10,0 1,4 1,2 1,8

17,3 26,0 4,0 3,8 3,6 11,4 3,0 3,4 3,4 9,8 1,4 1,4 2,0

17,2 25,8 3,8 4,0 3,6 11,4 3,2 3,4 3,4 10,0 1,2 1,4 1,8

19,1 28,6 4,0 3,8 3,8 11,6 3,6 4,0 3,8 11,4 1,8 1,8 2,0

16,1 24,2 3,4 4,0 3,0 10,4 3,0 3,4 3,2 9,6 1,0 1,2 2,0

18,9 28,4 3,8 3,6 3,6 11,0 3,8 4,0 3,8 11,6 2,0 1,8 2,0

19,5 29,2 4,0 4,0 4,0 12,0 4,0 4,0 3,8 11,8 2,0 1,6 1,8

19,2 28,8 4,0 4,0 4,0 12,0 3,8 4,0 3,8 11,6 1,4 1,6 1,8

19,2 28,8 4,0 4,0 4,0 12,0 3,8 4,0 4,0 11,8 2,0 2,0 1,0

19,3 29,0 4,0 4,0 4,0 12,0 3,8 4,0 4,0 11,8 2,0 2,0 1,2

13,2 19,8 2,8 2,8 3,0 8,6 2,6 3,0 2,6 8,2 1,0 1,0 1,0

18,9 28,4 4,0 4,0 4,0 12,0 3,6 3,8 4,0 11,4 2,0 2,0 1,0

14,9 22,4 3,4 2,8 3,2 9,4 2,6 2,8 2,6 8,0 2,0 2,0 1,0


Note /20

Note /30


/ 12



/ 2



/ 2

Qualité du spot

cellulaire et du

montage / 2

Clarté

chromatinienne/4

couleur / 4


Total / 12


Cyanophilie / 4


/ 4

Total / 12

14,5 21,8 3,2 3,2 3,0 9,4 2,8 2,6 2,6 8,0 2,0 1,6 1,0

15,2 22,8 3,2 3,0 3,0 9,2 2,4 3,0 2,8 8,2 2,0 2,0 1,0

13,1 19,6 3,0 3,2 2,4 8,6 2,6 2,6 2,6 7,8 2,0 1,2 1,0

15,7 23,6 3,2 3,4 3,0 9,6 3,2 3,0 2,8 9,0 1,6 1,6 1,8

15,2 22,8 3,2 3,2 2,8 9,2 2,0 3,2 2,8 8,0 1,8 1,8 2,0


Surepath : note 18,9

Surepath : note 14,3

ThinPrep : note 19,1

ThinPrep : note 11,6


Autre : note 18,9

Autre : note 13,2

FIN

© Sciensano, Bruxelles 2018. Ce rapport ne peut pas être reproduit, publié ou distribué sans l’accord de Sciensano. Les résultats individuels des laboratoires sont confidentiels. Ils ne sont transmis par Sciensano ni à des tiers, ni aux membres de la Commission, des comités des experts ou du groupe de travail EEQ.

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