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phytothérapie clinique individualisée Rôle du foie et importance de la détoxication hépatique Références bibliographiques 20 rue Emeriau 75015 Paris www.iesv.org Association loi 1901, enregistrée auprès de la préfecture du PUY-DE-DOME sous le n° 0632021374 Siège social : 283 La Chaussade – 63270 VIC-LE-COMTE. DRVIESVDETOX01 - 12/2011 - Document réservé à l’usage des professionnels de la santé - Imprimé sur du papier issu de forêts gérées durablement. Crédits photos : Shutterstock, Fotolia 1. Viala A, Botta A. Toxicologie. Paris: Éd. Tec & Doc Lavoisier, 2005. 2. Médart J. Manuel pratique de nutrition. L’alimentation préventive et curative. de boeck, 2005. 3. Pascussi JM, Vilarem MJ. [Molecular mechanisms linking xenobiotic metabolism and inflammation] - Inflammation et métabolisme des médicaments. Med Sci (Paris) 2008;24:301-5. 4. Beaune P. Cytochromes P450 humains : applications en toxicologie. Médecine Thérapeutique 1998;4:493-9. 5. Festy D. Mes secrets de pharmacienne. Marabout, 2002. ARTICHAUT 6. SAENZ RODRIGUEZ T et al. Choleretic activity and biliary elimination of lipids and bile acids induced by an artichoke leaf extract in rats. Phytomedicine. 2002 ; 9 (8) : 687-93 7. GEBHARDT R. Anticholestatic activity of flavonoids from artichoke (Cynara scolymus L.) and of their metabolites. Med Sci Monit. 2001; 7 Suppl 1 : 316-20. CURCUMA 9. Chainani-Wu N., Safety and anti-inflammatory activity of curcumin: a component of tumeric (Curcuma longa). J Altern Complement Med 2003, 9(1): 161-8. 10. Srivastava K.C. et al., Curcumin, a major component of food spice turmeric (Curcuma longa) inhibits aggregation and alters eicosanoid metabolism in human blood platelets. Prostaglandins Leukot Essent Fatty Acids 1995, 52(4): 223-7. 11. Abe Y. et al., Curcumin inhibition of inflammatory cytokine production by human peripheral blood monocytes and alveolar macrophages. Pharmacol Res 1999, 39(1): 41-7. 12. Kang B.Y. et al., Inhibition of interleukin-12 production in lipopolysaccharide-activated macrophages by curcumin. Eur J Pharmacol 1999, 384(2-3): 191-5. 13. Yasni S. et al., Dietary Curcuma xanthorrhiza Roxb. increases mitogenic responses of splenic lymphocytes in rats, and alters populations of the lymphocytes in mice. J Nutr Sci Vitaminol (Tokyo) 1993, 39(4): 345-54. 14. Ram A. et al., Curcumin attenuates allergen-induced airway hyperresponsiveness in sensitized guinea pigs. Biol Pharm Bull 2003, 26(7): 1021-4.4 CHRYSANTHELLUM 8. C. DURAFFOURD et J.C. LAPRAZ, Traité de phytothérapie clinique, Médecine et Endobiogénie ; Ed. Masson, 2002, 363. RÉGLISSE 25. WICHTL M. et ANTON R. - Plantes thérapeutiques : tradition, pratique officinale, science et thérapeutique. 3ème édition ; Tec&Doc ; 1999 26. BRUNETON J. - Pharmacognosie. Phytochimie. Plantes médicinales. 3ème édition ; Tec&Doc ; 1999 27. CHERNG J.M. et al. - Inhibition of nuclear factor k B is associated with neuroprotective effects of glycyrrhizic acid on glutamateinduced excitotoxicityin primary in primary neurons. European Journal of Pharmacology ; 2006; 547: 10-21 28. WANG Z.Y. et al. - Licorice and cancer. Nutrition and Cancer ; 2001; 39(1): 1-11 29. RAM A. et al. - Glycyrrhizin alleviates allergic asthma in mice. Int.Immunopharmacol. ; 2006; 6(9): 1468-77 ROMARIN 30. Wijeratne, S. S. & Cuppett, S. L. (2007) Potential of rosemary (Rosemarinus officinalis L.) diterpenes in preventing lipid hydroperoxidemediated oxidative stress in Caco-2 cells. J. Agric. Food Chem. 55: 1193-1199. 31. Debersac, P., Vernevaut, M. F., Amiot, M. J., Suschetet, M. & Siess, M. H. (2001) Effects of a watersoluble extract of rosemary and its purifi ed component rosmarinic acid on xenobiotic- metabolizing enzymes in rat liver. Food Chem. Toxicol 39: 109-117. 32. Chan, M. M., Ho, C. T. & Huang, H. I. (1995) Effects of three dietary phytochemicals from tea, rosemary and turmeric on inflammation- induced nitrite production. Cancer Lett. 96: 23-29. 33. Tsai, P. J., Tsai, T. H., Yu, C. H. & Ho, S. C. (2007) Evaluation of NO-suppressing activity of several Mediterranean culinary spices. Food Chem. Toxicol 45: 440-447. 34. Poeckel, D., Greiner, C., Verhoff, M., Rau, O., Tausch, L., Hornig, C. Steinhilber, D., Schubert- Zsilavecz, M. & Werz, O. (2008) Carnosic acid and carnosol potently inhibit human 5-lipoxygenase and suppress pro-inflammatory responses of stimulated human olymorphonuclear leukocytes. Biochem. Pharmacol. 76: 91-97. DESMODIUM 15. MIYAO H. et al., Kaikasaponin III and soyasaponin I, major triterpene saponins of, act on GOT and GPT: influence on transaminase elevation of Abrus cantoniensis rat liver cells concomitantly exposed to CCl4 for one hour. Planta Med, 1998, 64(1): 5-7. 16. ATTIVI ASSIONGBONVI D., Contribution à l’autorisation de mise sur le marché du Desmodium adscendens. Thèse de doctorat en pharmacie, Poitiers, 1999. 17. LO ROSCIO E., Desmodium adscendens (Sw.) D.C. : botanique, chimie et intérêts thérapeutiques. Thèse de doctorat en pharmacie, Lyon, 2002. RADIS NOIR 18. SONGSAK T. et al., Glucosinolates of seven medicinal plants from Thailand. Fitoterapia, 2002, 73: 209-16. 19. LUGASI et al., Antioxydant and Free Radical Scavenging Properties of Squeezed Juice from Black Radish (Raphanus sativus L. var niger) Root Phytotherapy research, 1998, 12 : 502-506. 20. MUNDAY R. et al., Induction of phase II detoxification enzymes in rats by plant-derived isothiocyanates : comparison of allyl isothiocyanate sulforaphane and related compounds. J Agric Food Chem. 2004, 52 (7) : 1867-71. 21. NHO C. W. et al., The synergistic upregulation of phase II detoxifi cation enzymes glucosinolate breakdown products in cruciferous vegetables. Toxicol. Appl. Pharmacol., 2001, 174 : 146-52. 22. TEEL et al., Modulation by phytochemicals of cytochrome P450-linked enzyme activity. Cancer Lett., 1998, 133(2) : 135-41. 23. ZHANG J. et al., Synergy between sulphoraphane and selenium in the induction of thioredoxin reductase 1 requires both transcriptional and translational modulation. Carcinogenesis, 2003, 24 (3) : 497-503. 24. 7. ZHANG Y. et al., High cellular accumulation of sulphoraphane, a dietary anticarcinogen, is followed by rapid transporter- mediated export as a glutathione conjugate. Biochem. J., 2002, 364 :301-07. Ces données, non exhaustives, sont issues de la littérature scientifique. Elles peuvent être amenées à évoluer en fonction de données nouvelles et ne sauraient engager la responsabilité de l’IESV. Il est de la responsabilité des professionnels de la santé de vérifier les contre-indications des plantes dans leur pratique quotidienne.

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phytothérapie clinique individualisée

Rôle du foie et importance de la

détoxication hépatique

Référencesbibliographiques

20 rue Emeriau75015 Paris

www.iesv.orgAssociation loi 1901, enregistrée auprès de la préfecture du PUY-DE-DOME sous le n° 0632021374

Siège social : 283 La Chaussade – 63270 VIC-LE-COMTE. DRV

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1. Viala A, Botta A. Toxicologie. Paris: Éd. Tec & Doc Lavoisier, 2005.2. Médart J. Manuel pratique de nutrition. L’alimentation préventive et curative. de boeck, 2005.3. Pascussi JM, Vilarem MJ. [Molecular mechanisms linking xenobiotic metabolism and infl ammation] -

Infl ammation et métabolisme des médicaments. Med Sci (Paris) 2008;24:301-5.4. Beaune P. Cytochromes P450 humains : applications en toxicologie. Médecine Thérapeutique 1998;4:493-9.5. Festy D. Mes secrets de pharmacienne. Marabout, 2002.

ARTICHAUT6. SAENZ RODRIGUEZ T et al. Choleretic activity and biliary elimination of lipids and bile acids

induced by an artichoke leaf extract in rats. Phytomedicine. 2002 ; 9 (8) : 687-937. GEBHARDT R. Anticholestatic activity of fl avonoids from artichoke (Cynara scolymus L.) and

of their metabolites. Med Sci Monit. 2001; 7 Suppl 1 : 316-20.

CURCUMA9. Chainani-Wu N., Safety and anti-infl ammatory activity of curcumin: a component of

tumeric (Curcuma longa). J Altern Complement Med 2003, 9(1): 161-8.10. Srivastava K.C. et al., Curcumin, a major component of food spice turmeric (Curcuma

longa) inhibits aggregation and alters eicosanoid metabolism in human blood platelets. Prostaglandins Leukot Essent Fatty Acids 1995, 52(4): 223-7.

11. Abe Y. et al., Curcumin inhibition of infl ammatory cytokine production by human peripheral blood monocytes and alveolar macrophages. Pharmacol Res 1999, 39(1): 41-7.

12. Kang B.Y. et al., Inhibition of interleukin-12 production in lipopolysaccharide-activated macrophages by curcumin. Eur J Pharmacol 1999, 384(2-3): 191-5.

13. Yasni S. et al., Dietary Curcuma xanthorrhiza Roxb. increases mitogenic responses of splenic lymphocytes in rats, and alters populations of the lymphocytes in mice. J Nutr Sci Vitaminol (Tokyo) 1993, 39(4): 345-54.

14. Ram A. et al., Curcumin attenuates allergen-induced airway hyperresponsiveness in sensitized guinea pigs. Biol Pharm Bull 2003, 26(7): 1021-4.4

CHRYSANTHELLUM8. C. DURAFFOURD et J.C. LAPRAZ, Traité de phytothérapie clinique, Médecine et

Endobiogénie ; Ed. Masson, 2002, 363.

RÉGLISSE25. WICHTL M. et ANTON R. - Plantes thérapeutiques : tradition, pratique offi cinale, science et

thérapeutique. 3ème édition ; Tec&Doc ; 199926. BRUNETON J. - Pharmacognosie. Phytochimie. Plantes médicinales. 3ème édition ; Tec&Doc ; 199927. CHERNG J.M. et al. - Inhibition of nuclear factor k B is associated with neuroprotective

effects of glycyrrhizic acid on glutamateinduced excitotoxicityin primary in primary neurons. European Journal of Pharmacology ; 2006; 547: 10-21

28. WANG Z.Y. et al. - Licorice and cancer. Nutrition and Cancer ; 2001; 39(1): 1-1129. RAM A. et al. - Glycyrrhizin alleviates allergic asthma in mice. Int.Immunopharmacol. ; 2006;

6(9): 1468-77

ROMARIN30. Wijeratne, S. S. & Cuppett, S. L. (2007) Potential of rosemary (Rosemarinus offi cinalis L.)

diterpenes in preventing lipid hydroperoxidemediated oxidative stress in Caco-2 cells. J. Agric. Food Chem. 55: 1193-1199.

31. Debersac, P., Vernevaut, M. F., Amiot, M. J., Suschetet, M. & Siess, M. H. (2001) Effects of a watersoluble extract of rosemary and its purifi ed component rosmarinic acid on xenobiotic-metabolizing enzymes in rat liver. Food Chem. Toxicol 39: 109-117.

32. Chan, M. M., Ho, C. T. & Huang, H. I. (1995) Effects of three dietary phytochemicals from tea, rosemary and turmeric on infl ammation- induced nitrite production. Cancer Lett. 96: 23-29.

33. Tsai, P. J., Tsai, T. H., Yu, C. H. & Ho, S. C. (2007) Evaluation of NO-suppressing activity of several Mediterranean culinary spices. Food Chem. Toxicol 45: 440-447.

34. Poeckel, D., Greiner, C., Verhoff, M., Rau, O., Tausch, L., Hornig, C. Steinhilber, D., Schubert-Zsilavecz, M. & Werz, O. (2008) Carnosic acid and carnosol potently inhibit human 5-lipoxygenase and suppress pro-infl ammatory responses of stimulated human olymorphonuclear leukocytes. Biochem. Pharmacol. 76: 91-97.

DESMODIUM15. MIYAO H. et al., Kaikasaponin III and soyasaponin I, major triterpene saponins of, act on

GOT and GPT: infl uence on transaminase elevation of Abrus cantoniensis rat liver cells concomitantly exposed to CCl4 for one hour. Planta Med, 1998, 64(1): 5-7.

16. ATTIVI ASSIONGBONVI D., Contribution à l’autorisation de mise sur le marché du Desmodium adscendens. Thèse de doctorat en pharmacie, Poitiers, 1999.

17. LO ROSCIO E., Desmodium adscendens (Sw.) D.C. : botanique, chimie et intérêts thérapeutiques. Thèse de doctorat en pharmacie, Lyon, 2002.

RADIS NOIR18. SONGSAK T. et al., Glucosinolates of seven medicinal plants from Thailand. Fitoterapia, 2002, 73: 209-16.19. LUGASI et al., Antioxydant and Free Radical Scavenging Properties of Squeezed Juice from

Black Radish (Raphanus sativus L. var niger) Root Phytotherapy research, 1998, 12 : 502-506.20. MUNDAY R. et al., Induction of phase II detoxifi cation enzymes in rats by plant-derived

isothiocyanates : comparison of allyl isothiocyanate sulforaphane and related compounds. J Agric Food Chem. 2004, 52 (7) : 1867-71.

21. NHO C. W. et al., The synergistic upregulation of phase II detoxifi cation enzymes glucosinolate breakdown products in cruciferous vegetables. Toxicol. Appl. Pharmacol., 2001, 174 : 146-52.

22. TEEL et al., Modulation by phytochemicals of cytochrome P450-linked enzyme activity. Cancer Lett., 1998, 133(2) : 135-41.

23. ZHANG J. et al., Synergy between sulphoraphane and selenium in the induction of thioredoxin reductase 1 requires both transcriptional and translational modulation. Carcinogenesis, 2003, 24 (3) : 497-503.

24. 7. ZHANG Y. et al., High cellular accumulation of sulphoraphane, a dietary anticarcinogen, is followed by rapid transporter- mediated export as a glutathione conjugate. Biochem. J., 2002, 364 :301-07.

Ces données, non exhaustives, sont issues de la littérature scientifi que. Elles peuvent être amenées à évoluer en fonction de données nouvelles et ne sauraient engager la responsabilité de l’IESV. Il est de la responsabilité des

professionnels de la santé de vérifi er les contre-indications des plantes dans leur pratique quotidienne.

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Rôle du foie et importance de la détoxication hépatique

Les 3 phases de la détoxication des xénobiotiques1

Les plantes de la détoxication

Les plantes de l’hépatoprotection

Le terme de détoxication fait référence à la transformation, par une réaction enzymatique de métabolite endogène ou exogène notamment les xénobiotiques (médicaments, toutes substances étrangères à notre organisme) en un ou plusieurs composés éliminables dans les urines ou la bile.

De nombreux tissus peuvent réaliser cette transformation (peau, poumon, rein, intestin…).

Néanmoins, le principal site de biotransformation est situé au niveau hépatique.

Cette détoxication se déroule en 3 phases :

Phase I, le xénobiotique est hydroxylé par les membres d’une classe d’enzymes, les cytochromes p450 (CYP) en un métabolite intermédiaire.Dans certains cas, lors de cette phase des xénobiotiques inactifs sont convertis en métabolites intermédiaires biologiquement actifs. En fonction de leur type d’activité, les xénobiotiques d’origine sont appelés prodrogues ou procancérogènes.

Dans la phase II, les composés hydroxylés sont convertis par conjugaison ou par méthylation en métabolites hydrosolubles.L’objectif fi nal de ces 2 phases est d’augmenter la solubilité des xénobiotiques et ainsi faciliter leur élimination dans la bile et les urines.

Dans la phase III, les métabolites hydrosolubles sont éliminés dans la bile ou les urines.

DétoxicationDrainage saisonnier ou début de toute

prise en chargePrise

de médicamentsPhénomène inflammatoire

Chronique ou modéré Aigü ou fort

Artichaut 6-7

Curcuma 9-14

Radis noir 18-24

Artichaut 6-7

Radis noir 18-24

Réglisse 25-29

Curcuma 9-14

Curcuma 9-14

Poivre noir

Romarin 30-34

HépatoprotectionPrévention

Prise de médicaments toxiques pour le foie

Si lithiase vésiculaire ou si triglycérides

augmentésSi excès de fer

Desmodium 15-17

Radis noir 18-24

Chrysanthellum 8

Desmodium 15-17

Curcuma 9-14

Romarin 30-34

Xénobiotiques

> Non agressifs mais mal détoxiqués

(causes : infl ammation de toutes origines,

vieillissement, polymédication…) 2-5

Détoxication Hépatroprotection + détoxication

> Agressifs pour le foie

Attaque

Hépatite virale ou auto-immune Stéatose

Réglisse 25-29

Desmodium 15-17

Chrysanthellum 8

Desmodium 15-17