Faculté des Sciences

Département de biologie

Mémoire de fin d’étude en vue de l’obtention du diplôme de Master en biologie

Domaine : SNV

Filière : Science biologique

Spécialité : Biochimie Appliquée

Thème

Caractérisation phytochimique de la partie aérienne de la

plante médicinale Inula viscosa L. (Asteraceae) de la région

de Djinnet (Boumerdes)

Présenté par

Melle CHAOU Selma

Soutenu le 18/06/2017

Devant le jury :

Mme. MAAMRI S. MAA UMBB Présidente

Mme BENDIFALLAH L. MCA UMBB Promotrice

Mme RAZKALLAH N. MAA UMBB Examinatrice

Année Universitaire : 2016/2017

Avant toute chose, Je remercie Dieu, le tout puissant, pour m’avoir donnée la

santé et la force pour achever ce travail.

J’exprime une vive reconnaissance à ma promotrice Madame le docteur

BENDIFALLAH Leila, Maitre de Conférences au département de Biologie

(UMBB), qui m'a conseillée, encouragée, et pour sa patience

et le temps qu'elle a consacrée à finaliser ce travail.

Je remercie vivement Madame MAAMERI Sara, Maître assistante au

département de Biologie (UMBB), d’avoir accepté de présider le jury de ce

mémoire.

Je tiens également à exprimer mes plus vifs et sincères remerciements à

Madame RAZKALLAH Nabila, Maître assistante au département de Biologie

(UMBB) pour avoir accepté d’examiner ce travail.

Je remercie également Madame FAZOUANE Fethia, responsable de la

spécialité Biochimie appliquées, qui a bien voulu apporter ses orientations

durant les années d’étude universitaire.

A tous les enseignants.

Je remercie tous ceux qui m’ont aidée de prés ou de loin à réaliser ce travail.

Un grand merci à mes amies et camarades pour les moments agréables.

Je tiens tout d’abords à remercier ALLAH le tout

puissant

de m’avoir donné la santé , la force et le courage afin

d’achever ce travail.

A mes Parents

A mes frères Fouad et Youcef

A mes sœurs Assmaa Samra et Amina

A tous ceux qui m’aiment

Selma

Résumé :

L’objectif de ce travail est d’étudier la composition chimique des feuilles d’inula viscosa

provenant de djinnet(Boumerdes).

L’analyse phytochimique a prouvée la richesse de notre plante en substances bioactives, telle

que les flavonoïdes, tanins et glucosides

La teneur en eau des feuilles d’Inula viscosa a démontré un taux important d’humidité

83,33%, ce qui nous permet de trouvé un faible rendement en huile après l’extraction 0,21%

Mots clés : Inula viscosa, huile essentielle, hydrodistillation, screening phytochimique

Abstract :

The objective of this work is to study chemical composition of I.viscosa L. leaves from the

region of Djinnet.

The phytochemical analysis proved the richness of our plant with bioactive substances, such

as flavonoids,tanins and gluosids

The tenor of water of leaves of I.viscosa L. was demonstrate a important rate of humidity

83, 33%, what to permit to find a weak yield of oil after the extraction 0,21%

Keywords : inula viscosa, oil essential, extraction, screening phytochimique

, ,

%83,33 %0,21

, , ,

Liste des figures

Fig. 01: La plante médicinale Inula Viscosa (Original)…………………………...……..03

Fig. 02: lieu de collecte de l’Inula viscosa Djinnet (boumerdes)………………………..11

Fig. 03: séchage de plante………………………………………………………………...12

Fig. 04: conservation de plante…………………………………………………………..12

Fig. 05: broyage de plante………………………………………………………………...13

Fig. 06 : les étapes de préparation de l’infusé…………………………………………...14

Fig. 07: montage d’hydrodistillation employé au laboratoire pour l’extraction de l’huile

essentielle (originale)………………………………………………………………………17

Fig. 08: Taux d’humidité des feuilles d’Inula viscosa………………………………………...19

Liste des tableaux

Tableau 01: Taxonomie de la plante…………………………………...…………………….02

Tableau 02: les cordonnées de lieu de récolte……………………………………………….11

Tableau 03: les tests de screening phytochimique…………………………………………...15

Tableau 04: Teneur en eau des feuilles d’Inula viscosa..........................................................19

Tableau 05: les résultats de screening phytochimique……………………………………....20

Tableau 06: rendement d’huile essentielle des feuilles d’Inula viscosa……………………... 23

Tableau 07: propriétés organoleptiques d’huile essentielle des feuilles d’inula viscosa …... 24

Abréviations

AFNOR : Association Française de Normalisation

CCM : Chromatographie sur Couche Mince

CPG : Chromatographie en Phase Gazeuse

Fig. : figure

g : gramme

HEs : Huiles Essentielles

ml : millilitre

I. : Inula

MS : Spectrométrie de Masse

SM-IE : Spectrométrie de Masse en mode impact électronique

% : pourcentage

Min : minute

M : molaire

RHE : Rendement en huiles essentielles

I.2.7.2 Caractéristiques chimiques …………………………………………………..09

I.2.8. Composition chimique des HEs…………………………………….………….09

I.2.9.Méthodes d’extraction des HEs………………………………………………...09

I.2.9.1.Technique d’hydro-distillation ……………………………………………….09

I.2.9.2.Méthodes d’analyse des huiles essentielles ………………………………10

I.2.9.2.1.La chromatographie en phase gazeuse CPG …………………………....10

I.2.9.2.2.Chromatographie en phase gazeuse et la spectrométrie de masse CPG-MS.10

Chapitre II : Matériels et Méthodes

But et objectifs ………………………………………………………………………11

II.1. Matériel……………………………………………………………………….....11

II.1.1. Matériel technique (voir annexe 01)…………………………………….…….11

II.1.2. Matériel biologique …………………………………………………………...11

II.2. Méthodes………………………………………………………………………..11

II.2.1. La récolte……………………………………………………………………...11

II.2.2. Caractérisation du lieu de récolte …………………………………………….11

II.2.3. Séchage …………………………………………………………………….....12

II.2.4. Conservation de plante ……………………………………………………….12

II.2.5. Détermination de la teneur en eau des feuilles fraiches………………………13

II.2.6. Pulvérisation ………………………………………………………………….13

II.2.7. Préparation de l’infusé à (5%) ………………………………………………..14

II.2.8. Analyse phytochimique de la plante (screening phytochimique) ………….. ..14

II.2.8.1. Réalisation de screening …………………………………………………....14

II.3. L’huile essentielle ………………………………………………………………16

II.3.1. Extraction de l’huile essentielle……………………………………………….16

II.3.2. Procédé d’extraction………………………………………………………..…17

II.3.3. Calcul du rendement…………………………………………………………..18

II.3.4. Analyse de l’huile essentielle extraite ………………………………………18

II.3.4.1. caractéristiques organoleptiques…………………………………………….19

Chapitre III : résultats et discussion

III.1. Détermination de la teneur en eau ……………………………………………..19

III.2. Screening phytochimique …………………………………………………..…20

III.3. Les huiles essentielles………………………………………………………….23

III.3.1. Calcul du rendement en huile essentielle……………………………………………. 23

III.3.2. Caractéristiques organoleptiques de l’huile essentielle d’inula viscosa……..23

Conclusion……………………………………………………………...……………25

Annexe

Références

Introduction générale

L’usage des plantes est une composante naturelle de la culture humaine.

Depuis l’antiquité, l’homme utilise les plantes comme une source principale de nourriture.

L’homme a toujours tiré profit de son environnement végétal pour satisfaire ses besoins

quotidiens tel de destiner les plantes à la santé, c’est la phytothérapie.

De fait, plusieurs phytothérapeutes à travers le monde s’intéressent à la recherche des

nouvelles substances d’origine végétale.

La croissance démographique dans le monde en développement et l’intérêt croissant

manifesté au niveau des nations industrialisées ont considérablement augmenté la demande

spécifique aux plantes médicinales et à leurs produits dérivés.

Dans le secteur agroindustriel et principalement des extractions, il existe différentes méthodes

d’exploitation des plantes aromatiques, notamment la diversification de la production

d’Huiles Essentielles. Elle est envisagée en réalisant la caractérisation de ses substances

naturelles, passant par la connaissance de leurs compositions chimiques.

Aujourd’hui, la connaissance de la composition chimique des plantes a connu de

nombreuses techniques analytiques.

Dans la perspective de valorisation des ressources végétales, nous nous sommes

intéressés plus particulièrement aux plantes aromatiques et médicinales de terroir. L’objectif

de notre étude consiste, en premier lieu, à la recherche des composés chimiques de la partie

aérienne de la plante Inula viscosa à partir de la poudre et de l’infusé. En second lieu, la

détermination des composés chimiques de l’huile essentielle de l’inule.

Le présent travail comporte deux parties : la partie bibliographique comporte un

aperçu sur l’étude éthnobotanique de la plante inule et les méthodes d’extraction de son huile

essentielle. La partie expérimentale est réservée à la présentation du milieu d’étude, ………

Notre travail est achevé par une conclusion générale et des perspectives.

Chapitre I- Synthèse bibliographique

I. 1. Généralité sur les plantes médicinales

La nature est la source des agents médicinaux (Afaf et al., 2014) ; dont les plantes

constituent un patrimoine précieux pour l’humanité. Une croyance bien répandue est que

toute plante soigne (Salhi et al., 2010). L’homme a utilisé les plantes à d’autres fins que de

la nourriture (Tabuti et al., 2003, Bouayyadi et al., 2015) ; c’est l’usage des plantes

comme des médicaments (Dibong et al., 2011).

Les plantes médicinales sont connues pour produire certaines molécules bioactives qui

possèdent différentes propriétés cosmétiques chimiques, diététiques, pharmaceutiques,

agro-alimentaires et industriels (El Ouariachi et al., 2014).

grâce aux études scientifiques basées sur des méthodes analytiques et les expérimentations

nouvelles, que le monde médical découvre de plus en plus, le bien fondé des prescriptions

empiriques des plantes médicinales (Lahsissene et al., 2009) .

Les plantes médicinales inscrites à la pharmacopée sont considérées comme des

médicaments, leur vente est réservée aux pharmaciens et aux herboristes.

I.1.1. La phytothérapie

La phytothérapie est l’une des plus anciennes médecines du monde (Mekkiou, 2005). En

Algérie elle est existe depuis un millier d’années (Benhouhou, 2005)

Elle est définie comme étant le traitement par les plantes, c’est la consommation ou

l’utilisation par voie externe, de produits préparés à partir de plantes, sans passer par une

étape de sélection des molécules, on ne consomme donc pas que le principe actif, mais

tout ce que contient la plante.

I.1.2. Présentation de la plante Inula viscosa L.

La flore Algérienne est caractérisée par sa diversité florale, estimée à plus de 3000

espèces appartenant à plusieurs familles botaniques [Gaussen et al., 1982, Anonyme,

2014), parmi lesquelles la famille des Astéracées représentée par le genre Inula (Bai et al.,

2005). Le nom Inula est très ancien et vient du nom de l’espèce Inula Helenium. L’inule

visqueuse est l’un des rares représentants du genre Inula (Chiarlo, 1968)

Inula : viendrait du grec : Inéo qui signifié je purge (Allusion à une propriété

thérapeutique de la plante (Fauron et al., 1983).

Viscosa : veut dire visqueuse (Fournier, 1947).

Inula viscosa (L.) Ail Ou Dittrichia viscosa (L.)

I.1.3. Taxonomie

La taxonomie de la plante Inula viscosa est présentée dans le tableau 1.

Tableau 1: Taxonomie de la plante (Fournier, 1947)

Embranchement Spermaphytes

Sous-embranchement Angiospermes

Classe Dicotyledones

Sous-classe Gamopetales

Ordre Campunulales

Famille Compositae

Genre Inula

Espèce Inula Viscosa - L – Ait

Synonymie Dittrichia viscosa L.

Nom commun Inule, aunee visqueuse

Noms vernaculaires en arabe ou

tamazight

MAGRAMANE ou AMAGRAMANE.

I.1.4. Description de la plante

Inula viscosa est une espèce très mellifère (Franco et al., 2008, Warlop, 2006). C’est un

arbuste vivace (Quezel et Santa, 1963 ; Bezanger et al., 1986), atteint de 50cm à 1m de

hauteur (Quezel et Santa 1962 ; 1963), qui fleurit en été en automne (Fournier, 1947, Ait

youcef, 2006, Warlop et al., 2009), sa croissance est rapide.

Les feuilles sont visqueuses, sinuées (Ait youcef, 2006, Chiarlo, 1968), sessiles, ondulées,

dentées, aigües, rudes (Quezel et Santa 1962 ; 1963) simples, caduques, opposées, entières,

ovales, acuminées de 2 à 3cm de long sur 1 à 1,5cm de large (Bezanger, 1986).

Les fleurs sont de couleur jaune (Jacques, 2010) parfumées à odeur forte (Bezanger, 1986)

et sont toute fertiles (Ait youcef, 2006) (Fig. 1).

Les fruits sont des akènes à aigrette grisâtre (Quezel et Santa 1962), cylindriques (Ait

youcef, 2006), sont étranglés puis élargi au sommet (Grande, 1992).

La plante couverte de poils glanduleux qui libèrent une résine odoriférante et collante

(Reeb, 2010).

A/Plante B/ Fleurs

Figure 1 : La plante médicinale Inula Viscosa (Original).

I.1.5. Répartition géographique d’ Inula viscosa

Elle est largement répandue dans le Nord d’Algérie (Quezel et Santa 1962), dans les

rocailles et autant sur les terrains argileux que sableux (Benayache et al., 1991, Ciccarelli,

2007, Anonyme, 2010). Elle pousse dans les champs sauvages et dans les alentours du

bassin méditerranéen (Brullo, 2000, Parolin et al., 2013). Elle se retrouve dans les collines,

les zones humides et les bords des routes, et apprécie les sols secs et calcaires (Baytop,

1984, Wenqiao et al., 2004).

I.1.6. Aspects photochimiques d’I. viscosa

Les parties aériennes d’I. viscosa contiennent des flavonoïdes, des acides sesquiterpéniques

et des triterpènes esters (Benayache et al., 1991).

I.1.7. les activités biologiques d’Inula viscosa selon des travaux antérieurs

La médecine traditionnelle a attribué de nombreuses propriétés thérapeutiques aux espèces

du genre Inula (Susplugas et al., 1980).

L’Inule visqueuse est considérée comme la reine des plantes médicinales, elle est utilisée

pour traiter divers maux grâce à ses différentes activités qui étaient faites à partir des

travaux antérieures dont :

Activité anti-inflammatoire (Manez et al., 2007, Al-Dissi et al., 2001, Barbetti et

al., 1985).

Activité antidiabétique (Zeggwagh et al., 2006).

Activité antipyrétique et antiseptique (Lauro et Rolih, 1990).

Activité antifongique contre les cératophytes (Cafarchia et al., 2002, ; Bssaibis et

al., 2009) et contre les moisissures (Franco et al., 2008).

Activité antimicrobienne (Adam et al., 1989, Bssaibiss et al., 2009).

Activité curative de blessure (Enam et al., 2007, Susplugas et al., 1980).

Activité hypolipidemiante (Zeggwagh et al., 2006).

Activité anti-ulcérogénique (Alkofahi, 1999).

Activité antioxydant (Schinella et al., 2002, Benseguini, 2001, Remli, 2013).

Activité antivirale (Sassi et al., 2008).

Activité anti tumoral (Rozenblat et al., 2008).

Ainsi Inula viscosa est utilisée dans plusieurs applications telles :

o Application de feuilles fraîches ou poudre de feuilles sèches sur les plaies ouvertes

et pour l’arrêt de l’hémorragie et sert comme antiseptique.

o Application d’une pâte à partir de poudre des feuilles mélangées avec de l’huile

d’olives comme une pommade au corps.

o L’extrait de la plante est ajouté à l’eau bouillante et la tonique consommée au cas

des infections respiratoires et bronchites (Krisspil, 1982).

o Elle intervient dans le traitement des troubles gastroduodénaux (Alarcon et al.,

1993, Lastra et al., 1993, Hernandez et al., 2007).

o Elle possède une activité biologique pour prolonger la durée de conservation de

nourriture (Franco et al., 2008).

o Ses huiles essentielles exploitées dans l’industrie agro-alimentaire à fin

d’augmenter la durée de vie d’un grand nombre de produits alimentaires en

particulier les corps gras (Boumaza, 2011, Manez et al., 1999).

o Elle agit comme un insecticide végétal qui combat la mouche de l’olive (Warlop,

2005).

o En Maroc, les feuilles sont utilisées en cataplasme pour traiter les abcès, la gale,

dermatoses, furoncles, des ulcères, des gerçures et comme cicatrisant des plaies

cutanées ( Hmamouchi, 2001).

o La racine crue écrasée est ingérée dans le traitement de l’hypertension, de la

tuberculose, des affections poitrinaires, des infections respiratoires et bronchiques

(BellaKhdar, 1997).

o La partie aérienne de cette plante est utilisée pour le traitement de la pression

artérielle et diabète et des pathologies rénales (Eddouks et al., 2002).

o Ainsi, elle est utilisable comme anthelminthique, expectorant, et pour traitement

de l’anémie et le cataplasme pour les douleurs de rhumatisme et aussi prescrite

comme un agent dans l’induction de l’avortement et la stérilité des femelles

(Karim, 1986, Karim et al., 1990, Al-Khalil et al., 1992).

o Au niveau de l’appareil respiratoire, elle agit comme sédatif de la toux et des

spasmes bronchiques (Benayache et al., 1991).

o Elle corrige l’atonie de l’estomac et de l’intestin, elle améliore l’appétit et elle est

antiémétique (Roulier, 1990).

o Elle intervient dans le traitement des leucorrhées et sa propriété antiseptique au

niveau de l’appareil génital et des voies urinaires (Fournier, 1947).

o Elle a des propriétés anthelminthiques donc vermifuge (Benayache et al., 1991).

o La poudre d’Inula viscosa est utilisé dans le traitement des mycoses cutanées

(Ulubelen, 1986, Taillade et al., 1980).

o Elle joue un rôle hypoglycémiant chez l’homme diabétique (Yaniv et al., 1987).

o Elle est utilisable pour soulager les entorses, contre le ballonnement et le mal de

ventre (Tahri et al., 2012).

o Leur extrait révèle une activité cytotoxique vis-à-vis des cellules cancéreuses du

col de l’utérus (Merghoub, 2011), et une action spasmolytique sur les fibres lisses

intestinales et bronchiques en pouvant l’inhibition de l’action de l’Acétylcholine

(Abdalla et al., 1988).

o Elle a un pouvoir cicatrisant (Chari, 1999).

I.2. Les huiles essentielles

I.2.1. Historique

On constate de nos jours une augmentation significative de l’utilisation des huiles

essentielles dans le domaine de l'aromathérapie (Franchomme et al., 1990).

L’étude des huiles essentielles est toujours d’une brûlante actualité malgré son ancienneté

et les développements exponentiels des biotechnologies végétales (Bruneton, 1990).

I.2.2. Définition des huiles essentielles

Une huile essentielle est un liquide odoriférant d’aspect fluide à épais et de couleur variable.

Elle est secrétée par des cellules spécialisées. Elle est le produit obtenu à partir d’une matière

première d’origine végétale soit par des procédés mécaniques soit par distillation (AFNOR,

2000).

Souligne que les huiles essentielles sont des produits volatiles liquides ou semi-liquides

composés de molécules aromatiques secrétées par certaines plantes (Telphon, 2005).Ce sont

des mélanges de composés lipophiles extraits de la plante grâce à des procédés physiques

(Anonyme, 2005).

I.2.3. Localisation des HEs dans la plante

Les huiles essentielles n’existent quasiment que chez les végétaux supérieurs (Lawrence,

1995). Elles peuvent être stockées dans tous les organes végétaux : fleurs, feuilles,

écorces, rhizomes, bois, racines, fruits et graines (Svoboda, 2000). Si tous les organes

d’une même espèce peuvent renfermer de l'huile essentielle, la composition de cette

dernière peut varier selon sa localisation (Svoboda, 2003).

I.2.4. Le rôle des huiles essentielles

Leur rôle exact dans les processus de la vie de plante est mal inconnu (Rai et al., 2003), on

distingue divers fonctions des HEs dont :

Un moyen de défense contre les prédateurs (microorganismes, insectes, champignons

etc...) (Verschaffelt, 1915).

Les constituants des HEs protégeant la plante contre les agents atmosphériques (Lutz,

1940).

Certains de ses composés jouent un rôle dans la relation des plantes avec leur

environnement (Nicholas, 1973).

La volatilité et l’odeur marquée de ces essences en font des éléments de la

communication chimique (Bruneton, 1999).

Ont un rôle de mobilisateur d’énergie lumineuse et de régulateur thermique au profit

de la plante (Croteau, 1986).

Elles interviennent dans les interactions végétaux-animaux en constituant un langage

chimique (Salle, 1991).

Elles inhibent la croissance des plantes voisines ayant une implication anti-

germinative et une protection face aux maladies et aux parasites (Guignard, 2000 et

Telphon, 2005).

I.2.5 Facteurs de variabilité des huiles essentielles

La teneur et la composition chimique des huiles essentielles varient en fonction d’un grand

nombre de facteurs d’ordre naturel (génétique, localisation, maturité, sol, climat, etc…) ou

technologiques (mode de culture ou d’extraction d’huile essentielle de la plante). (Regnault et

al., 2005).

I.2.6 Conservation des huiles essentielles

Les huiles essentielles sont très volatiles et très fragiles, pour cela, elles doivent être :

Conservées dans des flacons propres secs en aluminium, en acier inoxydable ou en

verre teinté actinique ;

Fermées à bouchon scellé pour qu’elles ne s’oxydent pas à l’air libre ;

Elles sont stockées à l’abri de la lumière et de la chaleur à fin d’éviter leur

polymérisation ;

Délai de leurs conservations de 6 mois à 3ans (A.F.N.O.R., 2000).

I.2.7. Propriétés physico-chimiques des HEs

I.2.7.1 Caractéristiques physiques

Les huiles essentielles sont liquides à la température ambiante. Leur densité est

généralement inférieure à 1. Elles ont indice de réfraction souvent élevé. Elle sont

douées d'un pouvoir rotatoire.

Elles sont peu solubles dans l'eau et solubles dans la plupart des solvants organiques.

Elles peuvent être incolores ou colorées et sont sensibles à l'altération. Aussi, elles ont

tendance à se polymériser pour former des produits résineux (Bruneton , 1993,

Erman, 1985).

I.2.7.2 Caractéristiques chimiques

Les huiles essentielles s’oxydent à la lumière et absorbent de grandes quantités d’O2 de l’air,

en se résinifiant, ce qui modifie leurs odeurs (Padrini, 2003).

I.2.8. Composition chimique des HEs

Les huiles essentielles sont des mélanges variables et complexes de différents composés

chimiques, elles possèdent des structures et des fonctions chimiques très diverses (Garnero,

2003).

Ces composés sont divisés en deux grands groupes : les terpénoïdes et les composés

aromatiques (El abed, 2003).

I.2.9. Méthodes d’extraction des HEs

Différentes méthodes sont mises en œuvre pour l’extraction des huiles essentielles. En

général, le choix de la méthode d’extraction dépendra : de la nature du matériel végétal à

traiter, de la nature des composés et du rendement en huiles.

L’hydro-distillation est la technique la plus ancienne et également la plus utilisable.

I.2.9.1. Technique d’hydro-distillation

C’est une technique qui consiste à immerger directement le matériel végétal à traiter dans un

alambic rempli d’eau et porter à ébullition. Les vapeurs d’eau formées au sein de l’eau

bouillante entrainent l’huile essentielle qui est recueillie après condensation et décantation

(Anonyme, 2008 ; Paris, 1965).

I.2.9.2. Méthodes d’analyse des huiles essentielles

La détermination de la composition chimique des HEs est une étape importante qui sert à

un développement des méthodes de séparation et d’identification.

I.2.9.2.1. La chromatographie en phase gazeuse CPG

La chromatographie en phase gazeuse est une technique très répandue extrêmement sensible,

la séparation sur la colonne se faisant sur des composés qui doivent être à l’état gazeux.

L’analyse des composés solides ou liquides impose de les porter à l’état de vapeur par

chauffage.

I.2.9.2.2. Chromatographie en phase gazeuse et la spectrométrie de masse CPG-MS

La chromatographie en phase gazeuse et la spectrométrie de masse possèdent des limites de

sensibilité voisines. Leur association permet de disposer d’un outil analytique très performant.

Le couplage de la chromatographie en phase gazeuse à la spectrométrie de masse CPG-MS

est une technique d’analyse qui possède plusieurs atouts : le chromatogramme en phase

gazeuse permet de séparer les constituants d’un mélange. Le spectromètre de masse associé

permet d’obtenir le spectre de masse de chacun des constituants et bien souvent de les

identifier.

Le couplage CPG-MS en mode impact électronique (SM-IE) est la technique la plus utilisée

dans le domaine des HEs (Cavalli, 2002).

Notre étude au début est un screening phytochimique qui a été réalisée au niveau

de laboratoire 16 d’agronomie, en suite l’hydro distillation a été réalisée au niveau de

laboratoire 20 de BPO de la faculté des sciences « UMBB ».

But et objectifs :

Le premier objectif du présent travail concerne un test phytochimique à fin de rechercher les

métabolites secondaires contenus dans la partie aérienne des feuilles de la plante Inula

Viscosa.

Notre deuxième objectif est de pouvoir montrer par une analyse les composées chimiques des

huiles essentielles communément par l'étude qualitative et quantitative de la composition de

l’HE.

II.1. Matériel

II.1.1. Matériel technique (voir annexe 01)

II.1.2. Matériel biologique

Le matériel biologique utilisé dans cette étude est les feuilles de la plante Inula Viscosa.

II.2. Méthodes

II.2.1. La récolte

La récolte de la plante Inula viscosa a été effectuée durant le mois de février 2017 en région

de Djinnet (boumerdes).

II.2.2. Caractérisation du lieu de récolte

Les coordonnées et la situation géographique du site de récolte de la plante Inula viscosa sont

notées dans le tableau 2 et la figure 2.

Tableau 2 : les coordonnées du lieu de récolte

Région Djinnet

Wilaya Boumerdes

Situation géographique Nord-Est d’Alger

Altitude 32m.

Les coordonnées géographiques en DMS

(Degrés, minutes, secondes)

36° 52’ 37’’ Nord

3° 43’ 23’’

Climat Climat méditerranéen à été chaud

Figure 2: Situation géographique du site de collecte d’Inula viscosa Djinnet

(Boumerdes)

II.2.3. Séchage

La plante a été séchée à l’air libre, à l’abri de la lumière et de l’humidité pendant quelques

jours (Fig. 3).

L’étape de séchage a pour but d’abaisser la teneur en eau des feuilles récoltées à fin d’éviter

toute réaction d’altération et la prolifération des microorganismes.

Figure 3 : Séchage de plante (original)

II.2.4. Conservation de plante

Afin d’éviter des contaminations, la poudre résultante est conservées à l’abri de la lumière

dans des flacons en verre hermétiquement fermés (Fig. 4).

Figure 4 : Conservation de la plante (original)

II.2.5. Détermination de la teneur en eau des feuilles fraiches

Une quantité de 300g de feuilles fraiches d’Inula viscosa sont prises puis séchées à l’air libre

pendant 15 jours (mois de février). On pèse à chaque fois l’échantillon jusqu’à ce que le poids

devient pratiquement constant (Boudhioua et al., 2008).

Le calcul des résultats se fait selon la formule suivante :

H % = (M1 – M2) / M1 *100

Où : H%: Taux d’humidité exprimé en pourcentage.

M1 : Poids de l’échantillon en gramme après la récolte (plante fraiche).

M2 : Poids de l’échantillon en gramme après le séchage (plante sèche).

II.2.6. Pulvérisation

Après séchage, les feuilles sont broyées à l’aide d’un broyeur électrique. On obtient alors une

poudre qu’on conserve jusqu’au moment de leur utilisation dans des bouteilles en verre.

Figure 5 : Broyage de la plante Inula viscosa (original)

II.2.7. Préparation de l’infusé à (5%)

Peser 5g de poudre végétale puis l’additionner à 100ml d’eau distillée bouillante, après

15min le mélange est filtré. Le filtrat est ajusté à 100ml avec de l’eau distillée (Bellakhdar,

2003)

L’extrait aqueux d’Inula viscosa est d’une couleur marron.

A) Pesée de la poudre B) Mélange eau chaude poudre C) Filtration de mélange D) Filtrat obtenu

Figure 6 : les étapes de préparation de l’infusé (original)

II.2.8. Analyse phytochimique de la plante (screening phytochimique)

Afin de savoir plus sur les principes actifs présents ou absents dans l’espèce choisie dans cette

étude « Inula viscosa », on a procédé à différents tests chimiques pour déterminer chaque

groupe de substances.

Pour identifier la composition en métabolites secondaires présents dans la plante Inula

viscosa, un screening phytochimique est effectué sur les feuilles d’Inula Viscosa.

Précisément soit sur la poudre du broyat de la plante sèche soit sur son extrait (infusé à 5%).

II.2.8.1. Réalisation de screening

L’identification des molécules phytochimiques dans une plante est une méthode qualitative

qui permet de mettre en évidence la présence ou l’absence des métabolites primaires et

secondaires. La méthode utilisée dans cette étude est celle adoptée par Tona et al., (2001) et

Longaga et al. (2000).

Les composés recherchés sont : Glucosides Tanins totaux, Tanins catéchiques, Tanins

galliques, Quinones libres, anthocyanes, iridoïdes, mucilages, coumarines, amidon,

flavonoides, saponosides, leucocyanes, proteines, alcaloides et proanthocyanidols. La tableau

3 résume et montre certaines réactions faites pour identifier les molécules recherchées.

Tableau 3 : les tests phytochimiques (Tona et al., (2001) et Longaga et al. (2000))

La molécule identifiée Le mélange réalisé Le résultant recherché

Glucosides 2 g de poudre végétale+

quelques gouttes de

H2SO4.

Coloration rouge

brique.

Tanins totaux 5 ml de l’infusé +

quelques gouttes de FeCl3

(à 5%).

Coloration bleu noir

intense.

Tanins catéchiques 5 ml de l’infusé + 2,3 ml

de réactif de Stiansy.

Coloration rouge.

Tanins galliques 5ml d’infusé +2g d’acétate

de sodium+quelques

gouttes de FeCl3.

Coloration bleu foncé.

Quinones libres 2g de poudre végétale +

2ml de HCl + 20ml de

chloroforme. après 3h

filtré le mélange puis

l’agité avec 5ml

d’ammoniaque.

Coloration rouge

Anthocyanes 5ml de l’infusé + quelque

gouttes de HCl.

Coloration rouge

Mucilages 1ml de l’infusé +5ml

d’éthanol absolu. Pendant

10min.

Apparition d’un

précipité floconneux.

Iridoïdes 2ml de l’infusé + quelques

gouttes de HCl. Puis

chauffé le mélange.

Coloration bleu

coumarines 2g de poudre + 20ml

d’alcool éthylique.

Bouillés à reflex pendant

Formation de trouble

15min puis filtrés. Prend

5ml du filtrat mélangé

avec 5gouttes de KOH à

10% et quelques gouttes

de HCl à 10%.

Amidon 2g de poudre + quelques

gouttes d’I2.

Coloration bleu

violette

Flavonoïdes 5ml de l’infusé + 5ml de

HCl + 1ml d’alcool iso

amylique + un coupon de

Mg.

Coloration rouge

orangée

Saponosides 2ml de l’infusé +quelques

gouttes d’acétate de plomb

Un précipité blanc

Leucocyanes 2g de poudre + 20ml de

mélange (Propanol+HCl

¼) .laissé le mélange

15min dans un bain marie.

Coloration rouge

Protéines 1ml de l’infusé + 1ml de

NaOH à 2M +quelques

gouttes de sulfate de

cuivre.

Coloration violette

Alcaloïdes 5ml de l’infusé + quelques

gouttes de dragen Droff.

Coloration rouge ou

précipitation rouge

orangée

Proanthocyanidols 2ml de l’infusé + 2ml de

HCl. laissé 5min au bain

marie

Coloration rouge

II.3. L’huile essentielle

II.3.1. Extraction de l’huile essentielle

Dans cette étude, l’extraction de l’huile essentielle a été effectuée au niveau du laboratoire de

BPO de la faculté des sciences.

II.3.2. Procédé d’extraction

Un appareillage a été utilisé pour extraire l’huile essentielle d’Inula Viscosa. C’est la méthode

d’Hydrodistillation (Fig. 7).

Figure 7 : Montage de l’hydrodistillateur employé au laboratoire pour l’extraction de

l’huile essentielle (originale).

A cet effet, on résume les étapes d’extraction d’HE d’Inula viscosa:

Introduction de 100g des feuilles sèches dans un ballon de 2 litres imprégnés

d’eau distillée.

L’ensemble est porté à l’ébullition pendant 2 à 3 heures.

La vapeur condensée obtenue conduit à une phase organique (huile essentielle)

qui est séparée de l’hydrolat par différence de densité, on utilisant éther di

éthylique.

On ajoute du sulfate de magnésium (MgSO4) pour éliminer les traces d’eau.

Les huiles essentielles sont placées par la suite dans un flacon en verre opaque,

elles sont conservées à température voisinant 6°C. Le flacon est fermé

hermétiquement pour le préserver de l’air, de la lumière et de la température,

évitant ainsi son altération par ces principaux agents de dégradation.

II.3.3. Calcul du rendement

Le rendement en huile essentielle est le rapport entre le poids de l’huile extraite et le poids de

la plante à traiter (Mrabet et al. 1999).

Loi de calcul est le suivant :

RHE = MHE / Ms. 100

Où :

RHE : rendement de l’extrait en pourcentage.

MHE : quantité d’essence obtenue exprimée en g.

Ms : quantité de la matière végétale sèche utilisée pour l’extraction exprimée en g.

II.3.4. Analyse de l’huile essentielle extraite

Les propriétés organoleptiques et physico-chimiques constituent un moyen de vérification et

de contrôle de la qualité de l’huile essentielle. Nos essais ont été effectués selon un protocole

précis édicté par AFNOR et par la pharmacopée européenne sur l’huile essentielle d’Inula

viscosa (AFNOR, 2000).

II.3.4.1. caractéristiques organoleptiques

Après l’extraction, on a déterminé les caractères organoleptiques de notre huile essentielle et

on les a comparés avec ceux de la norme AFNOR.

Dans cette partie, seront présentés les résultats et leur discussion de deux aspects :

-La teneur en eau dans la plante d’Inula viscosa ;

-Tests phytochimiques pour la recherche des métabolites secondaires de la plante.

La caractérisation chimique de l’huile essentielle n’a pas pu se faire, après extraction, faute

de moyen matériel CG/MS d’une part, et la disponibilité de l’huile essentielle insuffisante

dans la plante. Plusieurs extractions ont été faites, mais on a pu obtenir qu’une infime

quantité.

Des chercheurs ont soulignés que la plante inula viscosa est pauvre en huiles essentielles,

parmi ces chercheurs (Remli, 2013), (Benhammou, 2014), (Djedioui, 2011) et (Zouache et

al. 2007)

III.1. Détermination de la teneur en eau

La teneur en eau des feuilles d‘Inula viscosa est notée dans le tableau 04 et figure 08

Tableau 4 : Teneur en eau des feuilles d’Inula viscosa

La plante Poids des feuilles

fraîches

Pois des feuilles

sèches

Taux de l’humidité

Inula viscosa 300 g 50 g 83,33 %

Les analyses des feuilles d’Inula viscosa on révélé un taux important d’humidité 83,33%, ce

qui signifie que plus de la moitié du poids des feuilles fraiches d’I.viscosa sont constituées par

l’eau, le reste représente la matière sèche.

Figure 08 : Taux d’humidité des feuilles d’Inula viscosa(original)

83,33%

16,87%taux d'humidité

teneur en matière

sèche

Selon Paris et Moyse (1965), les plantes fraiches renferment une teneur en eau allant de 60%

à 80%. D’autre part, la richesse en eau peut être attribué au facteur variétal, à l‘époque de

maturation et de récolte et aux caractéristiques pédoclimatiques (Abdessamed, 2010).

Alors que (Remli, 2013) à Oran a trouvée un pourcentage important d’eau dans les feuilles de

la plante inula viscosa qui est de 85%.

Également (Al-Dissi, 2001) et (Benayache, 1991) ont trouvés un pourcentage environ 80%.

Touts ces résultats sont comparables à ce qu’on a trouvé.

III.2. Screening phytochimique

L’analyse phytochimique a permis d’identifier les différents groupes chimiques présents dans

l’extrait des feuilles de l’espèce Inula viscosa est notée dans le tableau récapitulatif 05.

Tableau 5: les résultats de screening phytochimique

Molécules

recherchées

L’image Résultant trouvé Degré de présence

A partir de poudre

Coumarines

formation de trouble

+

Amidon

pas d’effet

_

Leucocyanes

noir

_

Glucosides

Rouge brique

+++

Quinones libres

noir

-

A partir de l’infusé

Tanins totaux

Bleu noir

+++

Tanins catéchiques

rouge

+

Protéines

Vert militaire

_ Alcaloïdes

Précipité marron

_

Saponosides

Précipité blanc

+

Irridoides

orange

_

Mucilages

Précipité floconneux

+

Anthocyanes

marron

_

Tanins galliques

Couleur bleu foncé

+++

Proanthocyanidols

rouge

+

Flavonoïdes

Rouge orange

+++

NB : +++ : très abondant

+ : présence

- : absence

Discussion :

Selon les résultats obtenus, on remarque que les feuilles d’Inule visqueuse sont très riches en

flavonoïdes, tanins galliques, tanins totaux et glucosides par contre elles renferment des

différentes proportions de coumarines, tanins catéchiques, saponosides, mucilages et

proanthocyanidols. En revanche remarquant une absence totale de l’amidon, leucocyanes,

quinones libres, protéines, alcaloïdes, irridoides et anthocyanes.

A tire comparative avec les résultats de certaines études antérieures, menées sur cette plante,

les résultats obtenus sont en accord avec ceux de Djedioui (2010) au Est Algérien a noté une

présence des flavonoïdes, saponosides et les tanins et absence d’alcaloïdes dans les feuilles

d’Inula viscosa.

Également Boumaza (2011) à Oran a aussi aperçue une abondance importante des

flavonoïdes et saponosides et absence des quinones et leucocyanes dans la plante battue.

Aussi Remli (2013) à Oran a marquée une existence importante en flavonoïdes et une

présence faible des certains métabolites tels que coumarines les tanins dans la partie aérienne

d’Inula viscosa.

Identiquement à ce qu’on a trouvé, (Cafarchia et al., 2002) ont marqués une richesse des

feuilles d’inula en flavonoïdes ,tanins et glucosides par contre une manque totale de l’amidon.

NB :

Concernant ces résultats la présence ou l’absence de ces éléments varie d’une espèce à une

autre selon la localisation et les différentes parties de la plante.

III.3. Les huiles essentielles

III.3.1. Calcul du rendement en huile essentielle

Tableau 06 : rendement d’huile essentielle des feuilles d’Inula viscosa

Ms MHE RHE

Les feuilles 100 g 0 ,21 g 0,21%

Discussion :

Le rendement en huile essentielle pour 100g de matière végétale sèche est de 0,21 %. Nos

résultats sont proches de ceux obtenus par Boumaza (2011) à Oran qui a indiquée un

rendement compris entre 0,24% et 0,32% de plante fraiche et sèche ordonnément.

Aussi (Benhammou, 2014) à Annaba qui a récolté les feuilles et les fleurs au moi d’avril puis

séché pendant 20 jours .il a noté un faible rendement en HE d’inula viscosa qui est de 0,19%.

Le rendement qu’on trouvé et ces rendements sont alors variés entre 0,19% et 0,32%, donc

sont très faible, ils semblent dépendre du matériel employé, la méthode d’extraction, l’âge de

la plante, l’origine de la plante et la période de récolte.

III.3.2. Caractéristiques organoleptiques de l’huile essentielle d’inula viscosa

Les différentes caractéristiques organoleptiques (aspect, couleur, odeur) de l’essence d’inula

viscosa sont présentées dans le tableau 7.

Tableau 7: propriétés organoleptiques d’huile essentielle des feuilles d’inula viscosa

La plante aspect couleur odeur

Inula viscosa Limpide, claire et

visqueux

Jaune-brune Désagréable, attirant

et persistant

Les paramètres organoleptiques de nos HE sont en accord avec ceux répertoriés dans les

normes AFNOR (2000 ; pharmacopée européenne, 2008).

Conclusion

Les plantes médicinales constituent un groupe numériquement vaste de plantes

économiquement importantes. Elles contiennent des composants actifs utilisés dans le

traitement de diverses maladies. Outre leur utilisation comme remèdes directs, on les emploie

aussi dans les industries pharmaceutique, alimentaire, les cosmétiques etc.….

En ce qui concerne particulièrement les huiles essentielles, elles peuvent être

commercialisées et employées pour leurs multiples activités biologiques.

Le but du présent travail, a été l'étude phytochimique des feuilles et des huiles essentielles

de la plante aromatique et médicinale Inula viscosa L.

Le screening phytochimique a révélé la richesse des feuilles d’Inula viscosa en composants

actifs (flavonoïdes, tanins et glucosides).

La teneur en eau de cette plante a révélé un taux élevé d’humidité 83,33%, ce qui nous

permet de trouvé un faible rendement en huile à 0,21% après l’extraction.

A l’issue de ce travail, un certain nombre de point mériteraient un approfondissement

Il est intéressant de continuer le travail notamment l’étude phytochimique des huiles

essentielles de la plante battue, afin de déterminer les composes chimiques de l’huile.

A

Abdalla S., Abu-zerga M., Afidif 1988 .Effects of hispidulin, a flavone isolated from Inula

viscosa, on isolated. Gem. Pharmacol n°4 pp 63.

Adam K., Sivropoulou A, Kokkini S., Laranas T, Arsenakis M. 1989. J.Agric, Food Chem,

Vol 46 :1739-1745,

Benhouda A., Yahia M., Benhouda D., Bousnane N.E., Benbia S., Hannachi N.E., Ghecham A. 2014 .les

plantes médicinales. Algerian J. Nat. Products, 2:1 4-17

A.F.N.O.R., 2000. Association française de Normalisation. Norme Française : les huiles

essentielles, monographie relatives aux huiles essentielles, Ed. Afnor, Paris, 663 p.

Ait Youcef M., 2006. Plantes médicinales de Kabylie. Edition Ibis Press, Paris. 349p.

Alarcon C., De La Lastra, A.Lopez, and V.Motilva, Planta Medica. 59: 497, (1993).

Al-Dissi N.M., Salhab A.S., Al-hajj H.A., 2001. Effects of Inula viscosa leaf extracts on

abortion and implantation in rats. J Ethnopharmaol 77, 117-121.

Ali-Shtayeh M.S., Yaghmour R.M., Faidi Y.R., Salem K., Al-Nuri M.A., 1998. Antimicrobial

activity of 20 plants used in Flokloric medicine in the Palestinian area. J Ethnopharmacol 60,

265-271.

Al-Khalil.S, Al-Eisawi.D et Fischer.N, 1992. Phytochimical analysis of Jordanian medicinal

plants

Alkofahi A., Atta A.H., 1999. Pharmacological screening of the anti-ulcerogenic effects of

some Jordanian medicinal plants in rats. J Ethnopharmacol 67, 341-345.

Anonyme, 2005. Plantes aromatiques, épices, aromates, condiments et huiles essentielles,

Ed.TEC et DOC, Lavoisier, Paris, 336p.

Anonyme, 2008. Pharmacopée Européenne, tome 1, Ed conseil de l’Europe, Strasbourg, 1170

p.

Alomar, O., Goula M., Albajes, R. 2002. Colonization of tomato fields by predatory mired

bugs (Hemiptera: Heteroptera) in northern Spain. Agriculture, Ecosystems and Environment

89: 105–115.

B

Bai N., Zhou Z., Zhu N., Zhang L., Quan Z., He K., 2005 .Antioxidative flavonoids from the

flower of Inula britannica. Journal of Food Lipids, 12, 141–149.

Barbetti P., Chiappini L., Fardella G., Menghini A., 1985.A new eudesmane acid From

Dittrichia (Inula) viscosa. Planta Medica 51, 471.

Baydar H., Fehmi G., 1998 – Antalya Dogal Florasında BAL Arısı (Apis mellifera)’ nın Polen

Toplama Aktivitesi, Polen Tercihi ve Farklı Polen Tiplerinin Morfolojik ve Kalite Özellikleri.

Tr. J. of Agriculture and Forestry22 (1998) 475-482.

Baytop T., 1984.Therapy with Medicinal Plants in Turkey. Anal Press, Istambul. P: 167

Chiarlo Sui B. 1968. constituenti dell’ inula viscosa .Ait. Contenuto in azuleni dell’ olio

essenziale . Boll. Chim. Farm, 107(6) : 370 – 382.

Bellakhdar J., 1997. La pharmacopée marocaine traditionnelle. Edition Techniques Nord-

Africaine, Rabat, 764 p.

BellaKhdar J., 1997. La pharmacopée marocaine Traditionnelle. Médecine Arabe ancienne et

savoirs populaires. Ed Ibis press.

Benhammou D., 2014. Caractérisation phytochimiques des huiles essentielles et activités

antioxydants de la plante Inula Viscosa de la région d’Annaba. Mémoire de magistère en

chimie .89p.

Benayache S., Banayache F., Dendoughi.H., Jay M.1991. Les Flavonoïdes de Inula Viscosa

L. Plantes médicinales et phytothérapie. Tome 25, n° 4 .p 170-176.

Benseguini-Tounsi L., 2001. Etude in vitro de l’effet antibactérien et antifongiques de : Inula

Viscosa, Lawsonia inermis, Asphodelus microcarpus, Aloe vera et Juniperus oxycedrus.

Mémoire de magistère en médecine vétérinaire. Université de Constantine.110p.

Bezanger - Beau Quesne L., Pinkas M. 1986. Les plantes dans la thérapeutique moderne 2ème

édition MALOINE –Paris. Pp 68-262-268.

Bouayyadi 2015. Étude floristique et ethnobotanique de la flore médicinale dans la région du

Gharb, Maroc. J. Appl. Biosci.

Boumaza D., 2011. Séparation et caractérisation chimique de quelque biomolécules actives de

deux plantes médicinales : Inule Visqueuse, Rosmarinus officinalis de la région d’Oran, thèse

de Magister.

Brullo S., Marco G. D., 2000. – Taxonomical revision of the genus Dittrichia (Asteraceae).

Portugaliae Acta Biologica, 19: 341-354.

Bruneton J., 1993. Pharmacognosie, Phytochimie, Plantes Médicinales, Tec &Doc. Lavoisier,

Paris, 2ème édition, 915 p.

Bruneton J., 1999. Pharmacognosie, Photochimie, Plantes médicinales . Editions Tec & Doc,

Paris, éditions médicales internationales, pp: 483-560.

Bruneton J., 1999, Pharmacognosie, 3ème éd., Lassay les Châteaux, Europe Média

Duplication S.A., pp. 496-497.

Bssaibiss F., Gmira N., Meziane M. 2009. Les plantes médicinales et aromatiques. Rev.

Microbiol.Ind. San et Environn. Vol 3, N°1. Pp 44-55.

C

Cafarchia C., De Laurentis N., Milillo M.A., Losacco V., 2002. Antifungal activity of oils

leaves and flowers of Inula viscosa (Asteraceae) by Apulian region . Parassitologia 44, 153-

156.

Cavalli J.F., 2002 .Caractéristiques CPG-IK CPG-SM et RMN du carbone -13 d’huiles

essentielles de Madagascar .Thèse de Doctorat en Chimie Organique et Analytique,

Université de Corse, 267 p.

Chari Z. 1999. Effets cicatrisants d’Inula viscosa sur les brûlures expérimentales chez le lapin.

Thèse de Magister. Université de Constantine.

Ciccarelli D., Garbari F., Pagni A.-M., 2007. Glandular hairs of the ovary: a helpful character

for Asteroideae (Asteraceae) taxonomy? Ann. Bot. Fennici 44:17

Croteau F., 1986. Biochemistry of monoterpenes and sesquiterpenes of the essential herbs:

spices and medicinal plants, recent advances in botany, horticulture and pharmacology. Vol.,

1, Craken, Simon, Oryx Press, Phoenix.

D

Dibong, S. D., Mpondo, M. E., Nigoye, A., Kwin, M. F. & Betti, J. L. 2011. Ethnobotanique

ET phytomédecine des plantes médicinales de Douala, Cameroun. [Ethnobotany and

phytomédecine of medicinal plants sold in Douala markets] — Journal of Applied

Biosciences 37: 2496 – 2507.ISSN 1997–5902.Published online at

www.biosciences.elewa.org.

DJEDIOUI Abdallah, Evaluation de l’activité hypoglycémiante et anti- hyperglycémiante de

l’extrait aqueux d’ Inula viscosa ; une plante de l’Est Algérien chez le rat avec un diabète

induit.Master 2 .2010

E

Eddouks, M., Maghrani, M., Lemhadri, A., Ouahidi, M.L., Jouad, H., 2002.

Ethnopharmacological survey of medicinal plants used for the treatment of diabetes mellitus,

hypertension and cardiac diseases in the south-east region of Morocco (Tafilalet) .J

ethnopharmacol 82, 97-103.

http://www.biosciences.elewa.org/

El abed D., Kambouche N., 2003. Huiles Essentielles. Ed Dar el Gherb, Algérie, 2003.

El Ouariachi. 2014. Arabian Journal of Chemical and Environmental Research. Vol.1 N°1.

33–40 ISSN: 2458-6544 www.ajcer.com

Khalil E.A., Afifi F.U., Al-hussaini M.,2007.Essential oils. Journal of

Ethnopharmacology.109 104-112.

Erman W.F. 1985. Chemistry of monoterpernes, part B. Marcel Dekker, New York.

F

Fauron F., Moati R. Donadien Y.,1983. Guide pratique de phytothérapie. Éd. maloïne, p811

Fournier.P, 1999. Les plantes médicinales et vénéneuses de France. Connaissance et

mémoires européennes. PP : 49-53

Fournier P., 1947.Livre des plantes médicinales et vénéneuses de France .Ed.Le

chevalier.Tome1, p176-178.

Franchomme P., Jollois R., Penoel D., and Mars J., 1990. Aromathérapie exactement.

Encyclopédie de l'utilisation thérapeutique des huiles essentielles, R. JOLLOIS éd., Limoges,

France.

Franco-Mican S.X., Castro J., Campos M.. 2008. Observation du complexe parasitaire de

l’inule visqueuse en Espagne, et ses méthodes de propagation. Le Nouvel Olivier, n°66, nov-

déc. 2008.

G

Gamisans Jacques, 2010 – Le paysage végétal de la Corse. Albania.

Garnero J., Les huiles essentielles. Techniques de l’ingénieur, K 345, 2003.

Gaussen, H., Deuroy, J.F. and Ozenda, P. Précis de botanique II « les végétaux supérieurs ».

Ed : Masson ,1982 ; pp 215-408.

Gérard C. 2007. La santé par les plantes, Vidal-Sélection du reader’s digest, Phytothérapie. P

320.

Grande M., I.S. Bellido 9-Hydroxynerolidol esters and bicyclic sesquiterpenoids from

dittrichia viscosa. Journal of Natural Products. Vol.55, No8, pp. 1074-1079, August 1992.

http://www.ajcer.com/

Guedje N.M., Ntungwen Fokunang C., Tafokou Jiofack R.B., et Fogou Dongmo R., 2010.

Opportunités D’une exploitation soutenue des plantes Médicinales dans l'aménagement

forestier. Int. J. Biol. Chem. Sci. 4(4): 1346-1372.

Guignard J.L., 2000. Biochimie végétale, 2éme édition, Ed. Duond , Paris ,274 p.

H

Hernandez V., Recio M.C., Manez S.,Giner R.M., Rios J.L., 2007. Effects of naturally

occurring dihydroflavonols from Inula viscosa on inflammation and enzymes involved in the

arachidonic acid metabolism. Life Sci 81, 480-488.

Hmamouchi M., 2001. Les plantes Médicinales et aromatiques Marocaines.2ème ed.

J

SMADJA J. 2009. Laboratoire de Chimie des Substances Naturelles et des Sciences des

Aliments (LCSNSA).Université de La Réunion. Les huiles essentielles. Colloque GP3A -

Tananarive 2-3 juillet 2009.

Jiofack T., Fokunang C., Guedje N.M., Kemeuze V., Fongnzossie E., Nkongmeneck B.A,

Mapongmetsem P.M., et Tsabang, N. (2010) Ethnobotanical uses of medicinals plants of two

ethnoecological regions of Cameroon. International Journal of Medicine and Medical

Sciences 2 (3) : 60-79.

K

Karim F., Al Oklah A, Suleiman S, Quraan S. 1990. Poisonous Plants in Jordan. Jordan

Natural History Museum Irbid P: 47

Karim.F, Quraan.S, 1986. Medicinal Plants of Jordan.Jordan Natural History Museum, Irbid.

P: 65

L

Lahsissene H., Kahouadji A., Tijane M., Hseini S., 2009. Catalogue des plantes medicinales

utilisees dans la region de Zaër (Maroc occidental). Revue de botanique .Nouvelle série N°

186_2

Lamarti, A. Badoc A., Deffieux D.,Carde J.-P; (1994); biogenèse des monoterpènes: terpènes

et terpènoides, biosynthèse des terpènoides; bull. soc. Pharm. Bordeaux, 133.

Lastra C., Lopez A., Motiva V., 1993. Gastroprotection and prostaglandin E2 generation in

rats by flavenoids of Dittrichia viscosa. Planta Medica 59,497-501.

L.Lauro, C.Rolih 1990. Bollettino Societa Italiana Biological Sperimentable. 66: 829.

Lawrence B.M., 1995. Essential oils, Allured publishing corporation, Carol Stream.

Lutz 1940. Bull. Soc. Chim. Bio. 22, p. 497.

M

Manez S., V.Hernandez, R.M.Giner, J.Rios, R.Mariadel Carmen., 2007. Les plantes

aromatiques et les huiles essentielles Fitoterapia.78:329.

S.Manez, MC.Recio, I.Gil, C.Gomez, RM.Giner, PG.Waterman, JL.Rios, 1999. Un analogue

glycosyl de diacylglycérol et d’autres constituants anti-inflammatoires d’Inula viscosa , J Nat

prod. 62(4), 601-604, Avril.

Maoz M., Neeman I., 1998.Antimicrobial effects of aqueous plant extracts on the fungi

Microsporum canis and Trichophyton rubrum and on three bacterial species. Lett Appl

Microbiol 26, 61-63.

Maoz M., Neeman I., 2000. Effect of Inula viscosa extract on chitin synthesis in

dermatophytes and candida albicans .Journal of Ethnopharacology 71, 479-482.

Meftah Tewfik/ A.N.N ; 2003; Programme UICN - Cosmétologie au naturel : cosmétologie au

naturel ; Alger.

Mekkiou .R; phytochimie ; (2005) ; Université Constantine; Recherche et détermination

structurale des métabolites secondaires du genre Genista (fabaceae):G.Saharae, G.Ferax ; 1-2

Merghoub N., 2011.Recherche de substances naturelles issues des plantes médicinales

marocaines capables d’inhiber la prolifération des cellules cancéreuses du col de l’utérus et

étude de leur mécanisme d’action. Thèse de Doctorat en Biologie. Université Mohammed

V.AGDAL, Maroc.179p.

Mpondo M.E., Dibong D.S., Priso R.J., Ngoye A., et Ladoh Yemeda C.F., 2012 -État actuel

de la médecine traditionnelle dans le système de santé des populations rurales et urbaines de

Douala (Cameroun). Journal of Applied Biosciences 55 : 4036– 4045.

N

Nicholas h. J., (1973), Phytochemistry Organic Metabolites, Vol. 2, Yonkers, New York.

P

Padrini F., et Luccheroni N., 2003. Le grand livre des huiles essentielles : Médecine douce,

bien être .Ed De vecchi S.A, Paris, 206 p.

Paris R.R et Moyse H. ,1965.Précis de Matière médicale, tome II : pharmacognosie spéciale.

Ed .Masson et Cie, Tome I, 511 p.

Parolin P., Ion Scotta M. & Bresch C., 2013. Notes on the phonology of Dittrichia viscosa.

Journal of Mediterranean Ecology, 12: 27-35.

Parolin, P., Ion Scotta, M., Bresch, C. 2014. Biology of Dittrichia viscosa, a Mediterranean

ruderal plant. Phyton 83.

Perdikis, D., Favas, Ch., Lykouressis, D., Fantinou, A. 2007. Ecological relationships

between non-cultivated plants and insect predators in agroecosystems: the case of Dittrichia

viscosa (Asteraceae) and Macrolophus caliginosus (Hemiptera: Miridae). Acta Oecologica 31:

299-306.

Q

Qasem J.R., Al-Abed A.S., Abu-Blan M.A., 1995.Antifungal activity of clammy inula (Inula

viscosa) on helminthrosporium sativum and Fusarium oxysporum f. sp. Lycopersici.

Phytopathol Mediterr 34, 7-17.

Quezel P., Santa S. 1963. Nouvelle flore de l’Algérie et des régions désertiques Méridionales.

Centre national de la recherche scientifique. Tome 2 pp 218-940

Quezel P, S.Santa, Nouvelle flore de l’Algérie et des régions désertiques méridionales. Vol 1-

2, Ed. CNRS, Paris France, (1962-1963).

R

Rai M. K., Acharya D., Wadegaonkar P. 2003. Plant derivedantimycotics: Potential of

Asteraceous plants, in: Plant-derived antimycotics: Current Trends and Future prospects,

Haworth press, N-York, Londin, Oxford. P 165-185.

Reeb C., 2010. Plantes mellifères, l’Inule visqueuse, Abeilles et Fleurs.N°720.Université

Paris VI : 19-20.

Regnault- Roger C., Philogene B.J.R et Vincent C., 2005. Biopesticides of plant origin.

Ed.TEC et DOC, Lavoisier, Paris. 313 p.

Remli B., 2013.Extraction des Flavonoïdes de la plante Inula viscosa, de la région d’Oran et

mise en évidence de l’activité microbienne. Mémoire de magistère en chimie. Université

d’Oran .770p.

Roulier G. 1990. Traité pratique d’aromathérapie, propriétés et indications thérapeutiques des

Essences de plantes. Ed. Dangles. Pp 64-65.

Rozenblat S., Grossman S., Bergman M., Gottlieb H., Cohen Y., Dovrat S., 2008.Induction of

G2/M arrest and apoptosis by sesquiterpene lactones in humain melanoma cell lines.Biochem

Pharmacol 75, 369-382.

S

Salhi, S., Fadli, M., Zidane, L., Douira, A. 2010. Floristic and ethnobotanical study of

medicinal plants of Kénitra (Maroc). Lazaroa 31: 133-146.

Benhouhou S., 2005. Usage spécial : plantes médicinales en Afrique du nord Institue

agronomique national, Alger (Algérie).

Salle J.L., 1991. Les huiles essentielles, synthèse d’aromathérapie et introduction à la

sympathothérapie. Ed. Frison-Roche, Paris, 167 p.

Sassi A.B., Harzallah-Skhiri F., Bourgougnon N., Aouni M., 2008.Antiviral activity of some

Tunisian medicinal plants against Herpes simplex virus type 1. Nat Prod Res 22, 53-65.

Schinella G.R., Tournier H.A., Prieto J.M., Mordujovich de Buschiazzo P., Rios J.L., 2002.

Antioxidant activity of anti-inflammatory plant extracts. Life Sciences 70, 1023-1033.

Shtacher G. – Kashmam Y. 1970 . A Novel Sesquiterpenic Acid witches a Narrow antifungal

spectrum. Jou.Of medicinal chemistry. Vol 13 n°6 pp 1221-1224.

Sofowora, A. 1993.Medicinal plants and traditional medicine in Africa, 2 Spectrum Books

Limited, Ibadan, Nigeria, 289.

Susplugas C., G.Balansard, J.Julien, Herba Hung. 19:19, (1980).

Svoboda K. P., 2000. Secretory structures of Aromatic and medicinal plant. Microscopix

publications. Powys, UK.4.

Svoboda K. P., (2003), Investigation of valatile oil gland of satureja hortensis L.

(Summersavory) and phytochemical comparison of different varieties. Int. Jour. Arom., 13

(4), pp. 196-202.

T

Tabuti J.R.S., Lye K.A., Dhillion S.S. 2003.Traditional herbal drugs of Bulamogi, Uganda:

plants, use and administration. J. Ethnopharmacol. 88: 19-44.

Tahri N., El Basti A., Zidane L., Rochdi A., Douira A., 2012. Etude ethnobotanique des

plantes médicinales dans la province de Settat (Maroc). Université Ibn Tofail. Kastamonu

Univers., Journal of Forestry Faculty, 12(2) : 192-208.

Taillade C. , Susplugas P., Balansard G. 1980. Les Flavonoïdes d’Inula viscosa Ait. Plantes

médicinales et phytothérapie. Tome 14 n° pp 26-28.

Telphon T., 2005.ABC des huiles essentielles .Ed. Grancher, Canada, 398 p.

W

Warlop F., 2006. Limitation des ravageurs de l’olivier par le recours à la lutte biologique par

conservation. Cahiers Agriculture, vol. 15(5), pp. 449-455

http://www.john-libbey-eurotext.fr/fr/revues/agro_biotech/agr/e-

docs/00/04/1F/42/article.phtml

Warlop F., Spagnol E., Conand C., Lecomte J., Gimilio R., Delvare G. 2009. Pourquoi et

comment propager l’inule visqueuse dans les oliveraies? GRAB, Maison de la Bio, Agro parc,

Avigon. 4p.

Wenqiao Wang, B, H, Ben Daniel ET Yigal Cohen (2004) Control of Plant Diseases by

Extracts of Inula Viscosa, Phytopatholopy, PP: 1042-1047

U

Ulubelen A. Goun S. 1986. Sesquiterpene acids from Inula Viscosa. Phytochemistry.vol 26 n°

4 pp 1223-1224.

V

Valnet J., 1980 . Aromatherapie, traitement des maladies par les essences de plantes. Ed.

Maloïne, Paris, 115p.

Verschaffelt and Stahl, 1915. structures of Aromatic and medicinal plant. K. gl. Ak.

Amsterdam, Gertz, Jahr, Wis. Bot., 56, p. 536.

Y

Yaniv.Z, Dafni.A, Friedman.Jet Palvitch.D, (1987), Plants used for treatments of diabetes in

Israel. Journal of ethnopharmacology, 19.PP:145-151

Z

Zeggwagh N.A., Ouhidi M.L., Lemhadri A., Eddouks M., 2006. Journal of

Ethnopharmacology. p 108-223.

Les cordonnées électroniques :

www.poivrecayenne.com Liste des plantes médicinales 2005.

http://www.plantenonviolence.org

http://www.john-libbey-eurotext.fr/fr/revues/agro_biotech/agr/e-docs/00/04/1F/42/article.phtmlhttp://www.john-libbey-eurotext.fr/fr/revues/agro_biotech/agr/e-docs/00/04/1F/42/article.phtmlhttp://www.poivrecayenne.com/plantes_medicinales/index.htmlhttp://www.plantenonviolence.org/

PLINE ET TEOPHRASTE : A propos des plantes medicinales. Recherches sur les plantes,

VI, 2, 6.2008

http://coip.free.fr/coip/articles.php?lng=fr&pg=99

http://www.plantencyclo.com 02/02/2008

Abeilles & Fleurs N° 720 - October 2010.

Eupelmus urozonus, travaux du GRAB, François Warlop, 2005, Avignon

Les huiles essentielles .laboratoire HEVEA ,23 :47 :27 ,2015

Algerian Journal of Natural Products 2:1(2014)18-26

http://coip.free.fr/coip/articles.php?lng=fr&pg=99

Annexe 01 :

Matériel

Tableau I : Matériel non biologique

Verrerie et le petit matériel

Appareillage

Tubes à essais Broyeur électrique

Béchers Bain marie

Pipettes graduées Balance

Burette graduée Plaque chauffante

Spatule Appareil d’hydrodistillation (clevenger)

Papier filtre Chauffe ballon

Papier aluminium Appareil de CPG

Flacons Réfrigérateur

Fioles jaugées

Seringue

Les gans stériles

Annexe 02 :

Les réactifs

Tableau II : Réactifs utilisés

Réactifs et produits Formule chimique

Poudre d’Inula viscosa

infusé d’Inula viscosa

Eau distillé H2O2

Chlorure ferrique FeCl3

formol CH2O

Acide chlorhydrique HCl

Réactif de stiansy

Hydroxyde de sodium NaOH

Iode I2

Sulfate de cuivre Cu SO4

Hydroxyde de potassium KOH

Acide sulfurique H2SO4

chloroforme CHCl3

ammoniaque NH4 OH

Acétate de sodium CH3COONa

Ethanol absolue C2H5 OH

Alcool éthylique C4H10O

Alcool isoamylique C5H12O

Coupon de magnésium Mg

Acétate de plomb Pb

propanol C3H2O

Réactif de Dragen Droff

Sulfate de magnésium Mg SO4

Annexe 03 :

Préparation des réactifs

Tableau III : les fiches techniques des réactifs et solutions utilisées

Fiche technique 1 :l’Iode à 1%

Iode…………….1g

Eau distillé…...100ml

Fiche technique 2 :FeCl3 à 5%

FeCl3…………..5g

Eau distillé…..100ml

Fiche technique 3 : réactif de Stiansy

Formol……………...6ml

HCl (1N)………….…3ml

Fiche technique 4 : NaOH à 2M

NaOH…………….0 ,8g

Eau distillé……….10ml

Fiche technique 5 : sulfate de cuivre

Sulfate de cuivre………..1g

Eau distillé…………….10ml

Fiche technique 6 : KOH à 10%

KOH……………….10g

Eau distillé………..100ml