institut de recherche en biologie appliquee de...

Thèse de Doctorat : Etude de la qualité physico-chimique et bactériologique des sources d’approvisionnement

en eaux dans la ville de Conakry

IRBAG/ UGANC/ Ecole doctorale / Taliby CAMARA/ 2017

REPUBLIQUE DE GUINEE Travail-Justice-Solidarité

----------------

MINISTERE DE L’ENSEIGNEMENT SUPERIEUR ET DE LA RECHERCHE SCIENTIFGIQUE -------------

INSTITUT DE RECHERCHE EN BIOLOGIE

APPLIQUEE DE GUINEE ---------

ECOLE DOCTORALE DE BIOLOGIE MEDICALE -------

THÈSE EN VUE DE L’OBTENTION DU Ph.D

---

Etude de la qualité physico-chimique et bactériologique des sources d’approvisionnement

en eau dans la ville de Conakry. CANDIDAT : Taliby CAMARA, né le 17/07/1971

SPECIALITE : Microbiologie

Encadrement: Prof. Mamadou Yéro BOIRO,

Prof. Abdoulaye M’Bemba CAMARA.

MEMBRES DU JURY

Président: Prof. Kaba SIDIBE, Université Julius Nyéréré de Kankan;

Rapporteur: Dr. Boubacar Sidy Sily BAH, MC, Chef du Département Biologie, U.K;

Membres: Prof. Sanaba BOUMBALY, Directeur Ecole Doctorale, IRBAG;

Prof. Mamadou Yéro BOIRO, Directeur de l’IRBAG, Directeur de thèse ;

Prof. Abdoulaye M’Bemba CAMARA, MES/RS, Co-directeur de thèse.

Présentée et soutenue publiquement, le 07/09/ 2017

Université Gamal

Abdel Nasser de

Conakry

Institut de Recherche

en Biologie Appliquée

de Guinée




RESUME

Titre : Etude de la qualité physico-chimique et bactériologique des sources d’approvisionnement en

eaux dans la ville de Conakry

Prénom et Nom : Taliby CAMARA

Spécialité : Microbiologie

Le manque d’eau à l’échelle nationale en République de Guinée depuis plusieurs décennies a engendré

ces derniers temps la prolifération des eaux de puits, de forages et des sociétés productrices d’eaux

minérales dans la ville de Conakry pour répondre à un besoin indispensable en eaux. Cependant, l’eau

de ces sources répond-t-elle aux critères de qualités d’eaux potables ? C’est dans le but de résoudre à

cette problématique, que cette étude a été envisagée dans la ville de Conakry. Pour cela, les eaux de 30

puits traditionnels, de 30 forages, de 30 foyers disposant chacun d’un réseau de distribution d’eau

courante de la Société des Eaux de Guinée (SEG) et de 24 sociétés productrices d’eaux minérales ont

été prélevées et analysées chimiquement et bactériologiquement à l’aide de méthodes standards avec

confirmation par la PCR des germes microbiens identifiés. Selon les normes sanitaires admises pour la

construction des puits, l’état sanitaire de chaque puits traditionnel doit correspondre à un certain

nombre de paramètres. C’est pourquoi, avant d’analyser l’eau des puits, nous avons apprécié leur état

sanitaire. Cette analyse des paramètres sanitaires a montré que la majorité des puits traditionnels ne

correspondent pas aux normes de l’OMS: 27% des puits sont considérés comme de bons puits contre

50% des puits en sont moins bons et 33% de mauvais puits. 3 % des puits seulement sont tubés et 50%

des puits sont situés en aval des latrines d’où la contamination permanente de la nappe phréatique qui

les alimente en eau. L’étude des paramètres physico-chimiques et bactériologiques montre que les

eaux de puits traditionnels, de forages et des robinets sont non conformes aux critères de qualité

définis avec certains dépassements de normes au point de vues physico-chimique, chimique et

bactériologique : mention spéciale pour arsenic dépassant les 50% pour les trois sources, ainsi que les

paramètres pH, turbidité, potentiel redox, dureté, TDS. Ces paramètres dépassent les normes

également dans la plupart des eaux minérales en sachet analysées. Par ailleurs, la présence des

indicateurs de pollutions fécales dépassent largement les normes pour les sources d’eau de puits,

forages, robinets (100%) et aussi la présence des Salmonelles dans certains échantillons de ces trois

sources laisse croire que les eaux de ces sources sont en contamination permanente par les germes

d’origine fécale, ainsi que la plupart des eaux minérales (75%) prouve l’insuffisance de traitement de

cette dernière. Pour la confirmation, 60 échantillons d’eau (15 puits, 15 forages, 15 robinets et 15

sociétés productrices d’eaux minérales) ont été analysés par la méthode moléculaire (RT-PCR) pour la

recherche de trois bactéries pathogènes : Salmonella spp., Shigella spp. et Vibrio cholerae. Les

résultats donnent 30% des puits contiennent des Salmonella spp. et Vibrio cholerae, 20% des eaux de

Forages et des eaux de robinet contiennent des Salmonelles. Par contre, les germes Salmonella spp.,

Shigella spp. et Vibrio cholerae sont absents dans les eaux minérales analysées et aucun échantillon

des trois sources (puits, forages et robinet) ne contient de Shigelles. Il existe une corrélation

significative entre l’état sanitaire des puits et leur pollution par les coliformes. Les eaux pour qu’elles

soient potables ne doivent contenir ni de substances chimiques toxiques au delà de la norme comme

l’arsenic et le fluor, ni de microorganismes indicateurs de pollutions d’origine fécale (Coliformes,

Entérocoques, spores de bactéries ASR), ni de FMAT au-delà de la norme (-100 bactéries dans 1 ml)

et ni les germes pathogènes comme Salmonella spp., Shigella spp. et Vibrio cholerae. Leur présence

dans l‘eau de consommation constitue un réel danger pour la santé des consommateurs. C’est

pourquoi, les autorités à tous les niveaux doivent s’impliquer activement pour le respect de la

réglementation liée à la gestion et au traitement des eaux de toutes les sources d’approvisionnement

pour avoir une eau de bonne qualité afin de préserver la santé des populations de Conakry.

Mots clés : Eau potable, Puits, Forage, Robinet, minérale, Pollution bactérienne, Physico-

chimique, FMAT, Coliformes totaux, Fécaux, Entérocoque, ASR, Salmonelles, Shigelles,

Vibrions, état sanitaire.

i




ABSTRACT

Title: Study of the physico-chemical and bacteriological quality of water sources in the city of

Conakry

Name and Surname: Taliby CAMARA

Specialty: Microbiology

The national water shortage in the Republic of Guinea for several decades has recently led to the

proliferation of well water, boreholes and mineral water companies in the city of Conakry to meet an

essential need In water. However, does the water from these sources meet the quality criteria for

drinking water? It is with the aim of satisfying this problem that this study was envisaged in the city of

Conakry. To this end, the waters of 30 traditional wells, 30 boreholes, 30 households, each with a

water supply network of the Company of Water of Guinea (SEG) and 24 mineral water companies

Taken and analyzed chemically and bacteriologically by the standard methods with confirmation by

the PCR of the microbial germs identified. According to sanitary standards accepted for the

construction of wells, the health status of each traditional well must correspond to a certain number of

parameters. That is why, before analyzing the water in the wells, we appreciated their health status.

This analysis of sanitary parameters showed that the majority of traditional wells do not meet the

standards: good wells occupy 27% against 50% of poorer wells and 33% of bad wells. Only 3% of the

wells are cased and 50% of the wells are located downstream of the latrines, resulting in permanent

contamination of the water table which supplies them with water. The study of physicochemical and

bacteriological parameters shows that traditional well water, boreholes and taps do not comply with

the quality criteria defined with certain physico-chemical, chemical and bacteriological exceedances of

standards: special mention for arsenic exceeding 50% for all three sources, as well as pH, turbidity,

redox potential, hardness, TDS parameters. These parameters also exceed standards in most analyzed

bag mineral waters. Moreover, the presence of faecal pollution indicators far exceeds the standards for

well water sources, boreholes, taps (100%) and also the presence of Salmonella in some samples of

these three sources suggests that the waters of these wells Sources are permanently contaminated by

germs of fecal origin, as well as most mineral waters (75%) proves the inadequate treatment of the

latter. For confirmation, 40 water samples (15 wells, 15 boreholes, 15 taps and 15 mineral water

companies) were analyzed by RT-PCR for three pathogenic bacteria: Salmonella spp., Shigella spp.

and Vibrio cholerae. The results show that 26, 67% of the wells contain Salmonella spp. and Vibrio

cholerae, 20% of the well water contains Salmonella and 20% of the tap water contains Salmonella

spp. Salmonella spp., Shigella spp. and Vibrio cholerae germs are absent in the mineral waters

analyzed and no sample of the three sources (wells, boreholes, and faucets) contains Shigella spp.

There is a significant correlation between the health status of the wells and their pollution by

coliforms. Drinking water must not contain toxic chemicals beyond the norm such as arsenic and

fluorine, nor microorganisms indicative of fecal pollution (Coliforms, Enterococci, ASR bacteria), or

FMAT above the standard (-100 bacteria in 1 ml) and neither pathogens such as Salmonella spp.,

Shigella spp. and Vibrio cholerae. Their presence in drinking water constitutes a real danger to the

health of the populations. Therefore, authorities at all levels must be actively involved in compliance

with regulations related to the treatment and management of water from all sources of supply in order

to have good quality water in order to preserve Health of Conakry populations.

Keywords: Drinking water, Well, Drilling, Tap, mineral, Bacterial pollution, Physical-chemical,

FMAT, Total Coliforms, Fecal, Enterococcus, ASR bacteria, Salmonella spp., Shigella spp.,

Vibrio cholerae.

ia




PUBLICATIONS (Revue Grand journal SOACHIM)

2- Camara1* Taliby, Kolié

1 Lipoli-Pé, Sangaré

2 Moustapha, Diallo

1 Ahmadou Sadio,

Boumbaly3 Sanaba- Efficacité de traitement des eaux de Robinet dans la ville de Conakry.

j.soachim.2016 E59

1-Camara1* Taliby, Kolié


2 Moustapha, Diallo

1 Ahmadou Sadio,

Boumbaly3 Sanaba : Qualité physico-chimique et bactériologique des eaux de puits et de

forages utilisées par les populations de la ville de Conakry. j.soachim.2016 E58

Diallo1* Abdouramane, Camara

1 Taliby, Sangaré

3 Moustapha, Guissé

2Ahmed, Diallo

2

Ahmadou Sadio, Bah2

Mamadou Kabirou : Relation entre la nappe phréatique et le fleuve

Milo dans la ville de Kankan. j.soachim.2016 E56

COMMUNICATIONS AFFICHEES (POSTERS)

Les 17èmes

journées scientifiques annuelles de la SOACHIM tenues à l’Université

d’Abomey Calavi, République du Benin du 2 au 5 août 2016.

1-Camara1* Taliby, Kolié


2 Moustapha, Diallo

1 Ahmadou Sadio,

Boumbaly3 Sanaba. : Qualité physico-chimique et bactériologique des eaux de puits et de

forages utilisées par les populations de la ville de Conakry.

2- Camara1* Taliby, Kolié


2 Moustapha, Diallo

1 Ahmadou Sadio,

Boumbaly3 Sanaba- Efficacité de traitement des eaux de Robinet dans la ville de Conakry.

3- Diallo1* Abdouramane, Sangaré

3 Moustapha, Camara

1 Taliby, Guissé

2Ahmed, Diallo

2

Ahmadou Sadio, Bah2

Mamadou Kabirou : Relation entre la nappe phréatique et le fleuve

Milo dans la ville de Kankan.

ib




DEDICACE

Louange à ALLAH le Tout Puissant, le Clément et le Miséricordieux, pour m’avoir permis

d’atteindre ce niveau de formation.

Une pensée particulière est adressée à mes parents : feu Alsény CAMARA et feue Hadja Bintou

SYLLA, à ma grand-mère feue Ibn Mariama Issao CAMARA, puisse cette thèse être comme des

bouquets de fleurs posés sur vos tombes en guise d’hommage respectueux à vos mémoires.

A mon épouse Djénabou CAMARA, pour son soutien constant ;

A mes adorables enfants, Fatoumata Taliby, Mariame Taliby, Mohamed Taliby et Bintou Taliby,

pour les immenses joies que vous m’apportez chaque jour depuis votre naissance ;

A mes neveux et nièces Souleymane Kéita, Mabéty Camara, Aicha Camara, Alsény Camara,

Aminata Camara, Abou Camara, Soriba Camara, Aiba Camara,… pour votre présence !

A mes frères et sœurs Mamadou CAMARA, Aminata CAMARA, M’Mah CAMARA, Hadja

Fatoumata Bintou CAMARA, Fatou CAMARA, Mamaye CAMARA, Nènè CAMARA, Bintou

CAMARA, Kadé CAMARA, Kalifatou SYLLA, Bouna SYLLA, Ibrahima Kalil SYLLA, Souleymane

SYLLA, Oumar CISSE, Mady CISSE, Lamine SYLLA, Dr Balla TOURE, N’Gamet TOURE,

Elhadj Oumar BAH, Zénab FOFANA-MARTIN, Mohamed SYLLA, Mamady CHERIF, Aboubacar

Foté CAMARA, qu’ils trouvent ici l’expression de mon profond estime ;

A Monsieur le Recteur de l’Université Gamal Abdel Nasser de Conakry, Dr Doussou Lancinè

TRAORE qui a permis le financement de cette thèse. Qu’il trouve ici l’expression de ma plus

haute reconnaissance ;

Aux sieurs Dr Sidiki POGBA, feu Dr Boubacar Bappa SOW, Ahmadou Sadio DIALLO, Lipoli-Pé

KOLIE, Demba Magassouba, Manguè SYLLA, Prof. Amadou Youssouf BAH, Prof. Alpha

Mamadou DIALLO, Dr Boubacar SYLLA et M. Mamadou Kaba SALL pour leur constant soutien.

A mes amis Issa SYLLA, Dr Sékou DIAKITE, Madany THIAM, Mohamed MAGASSOUBA,

Aminata FOFANA, Lucien Beindou GUILAO, Dr Ignace DRAMOU et Dr Mamady Balla

CAMARA pour leur soutien constant.

Qu’il me soit permis de remercier Messieurs Boubacar DIALLO, Dr Mohamed Kerfalla

CAMARA, Souleymane KEITA, Seydouba CAMARA, Salifou TRAORE, Elhadj Maadiou DIALLO,

Amadou M’Bonet DIALLO et tous les autres non cités pour leur encouragement.

A Tous les miens, vous m’avez toujours entouré de votre sympathie et témoigné de votre estime. Je

vous adresse mes sentiments de réelle affection.

ic




REMERCIEMENTS

Les travaux présentés dans cette thèse ont été réalisés dans le Laboratoire National du Ministère de

l’Elevage et de la Production Animale, le Laboratoire de microbiologie de l’Université Gamal Abdel

Nasser de Conakry, le Laboratoire de l’Institut de Recherche en Biologie Appliquée de Guinée et le

Laboratoire du Service National des Points d’Eau (SNAPE).

Je tiens tout d’abord à exprimer mes remerciements les plus sincères à Monsieur le Prof. Mamadou Yéro

BOIRO, Directeur Général de l’IRBAG, Directeur de Thèse, et le Prof. Abdoulaye M’Bemba CAMARA,

Directeur National Adjoint de l’Enseignement Supérieur Public, Co-directeur de thèse pour avoir dirigé ce

travail avec rigueur, compétence, patience afin lui apporter toutes les qualités requises. Qu’ils trouvent ici

l’expression de ma profonde gratitude.

Je tiens aussi à remercier Dr. Vincent Kawé NIAMY, chef du laboratoire, Monsieur Timothé HABA,

assistant, tous du Laboratoire du ministère de l’élevage, Monsieur Mamadou Cellou Diallo, chef du

Laboratoire du SNAPE et Prof. Sanaba BOUMBALY, Directeur de l’école doctorale de l’IRBAG pour

m’avoir accueilli dans leurs laboratoires et avoir mis à ma disposition tous les matériels nécessaires pour

la réalisation des travaux d’analyses;

Je tiens à remercier Monsieur Abdoulaye Yéro BALDE, le ministre de l’enseignement supérieur et de la

recherche scientifique pour son soutien à ce travail ;

Je remercie aussi monsieur le Recteur de l’UGANC, Dr Doussou Lancinè TRAORE pour avoir accepté de

financer cette thèse.

Je remercie également Monsieur le Prof. Sanaba BOUMBALY, Directeur de l’Ecole Doctorale de

l’IRBAG, pour qui j’éprouve une admiration particulière pour ses attachantes qualités humaines et pour

m’avoir accepté parmi ses étudiants.

Mes remerciements vont aussi à l’endroit de Monsieur le Prof. Mamadou Yéro BOIRO, Directeur Général

de l’IRBAG pour ses qualités exceptionnelles d’éducateur avisé et ses compétences qui font de lui un

administrateur admiré et respecté.

Mes remerciements vont également à l’endroit de la dizaine d’Eminents Professeurs et Chercheurs Russes

de Moscou, de Saint Petersburg, de Saratov et de Novossibirsk pour la qualité des formations dispensées

lors des séminaires de 2015 et de 2016. Qu’ils trouvent ici l’expression de ma profonde reconnaissance.

Messieurs les Professeurs d’Universités et Directeurs de recherches, pour lesquels je resterai

reconnaissant pour m’avoir apporté leurs concours dans la réalisation de ce travail.

Monsieur le Dr. Ahmadou Sadio DIALLO, Professeur à l’UGANC pour sa brillante participation dans

l’élaboration de ce travail.

Monsieur le Prof. Kaba SIDIBE pour avoir accepté de présider le jury de soutenance de cette thèse ;

Messieurs les membres du jury pour avoir accepté de juger ce travail à sa juste valeur. Qu’ils trouvent ici

l’expression de ma sincère gratitude.

Enfin, mes remerciements vont vers toutes les personnes qui ont contribué, de près ou de loin, à la

réalisation de ce travail.

id




GLOSSAIRE

ABN= Autorité du Bassin du Niger

AEP= Adduction d’eau potable

AEP= Alimentation en eau potable

AOF= Afrique occidentale française

ARSPEE= Agence de régulation des services publics d’eau et d’électricité

ASR= Aérobies sulfito-réductrices (spores de bactéries)

BF= Borne fontaine

BIT= Bureau International du Travail

BP= Branchement particulier

CBG= Compagnie des bauxites de Guinée

CERE= Centre d’Etude et de Recherche en Environnement

CERESCOR= Centre de Recherche en Sciences Océanographiques de Conakry Rogbanè

CF-CTT= Coliformes fécaux –Coliformes thermotolérants

CNOSE= Centre National d’Observation et de Suivi Environnemental

CNSHB= Centre National des Sciences Halieutiques de Boussoura

CPD= Comité Préfectoral de Développement

CR= Commune rurale

CREPA-Guinée= Centre Régional pour l’Eau Potable et l’Assainissement-Guinée

CT= Coliformes totaux

CU= Commune urbaine

DCO = Demande chimique en oxygène

DGMG= Direction Générale des Mines et de la Géologie

DNA= Direction Nationale de l’Agriculture

DNE= Direction Nationale de l’Elevage

DNEF= Direction Nationale des Eaux et Forêts

DNH= Direction Nationale de l’Hydraulique

DNPCA= Direction Nationale de la Pêche Continentale et de l’Aquaculture

DNSP= Direction Nationale de la Santé Publique

E.S.M = Etat sanitaire moyen

EAEC = Entero- Agrégatifs Escherichia coli

EDG= Electricité De Guinée

ie




EDSIII= Enquête démographique et de Santé III

EHEC= Entero-Haemorragic Escherichia coli

EIBC= Enquête Intégrale Budget Consommation

EIEC = Entero-Invasive Escherichia coli

EIM= Enquête à Indicateurs Multiples

EM = Eau Minérale

ENT= Entérocoque

EPEC = Entero-Pathogenic Escherichia coli

ETEC= Entero-Toxinogenic Escherichia coli

Fe = Fer

F.M.A.T.= Flore mésophile aérobie totale

FM= Technique de filtration sur membrane

FTM = Technique de fermentation en tubes multiples

IRBAG= Institut de Recherche en Biologie Appliquée de Guinée

Kg = Kilogramme

L = Litre

m = Mètre

MATD= Ministère de l’Administration du Territoire et de la Décentralisation

MC= Maitre de conférence

MES/RS= Ministère de l’Enseignement Supérieur et de la Recherche Scientifique

mg = Milligramme

MHE=Ministère de l’Hydraulique et de l’Energie

mL = Millilitre

MILDA= Moustiquaires imprégnées d’insecticides à longue durée d’action

Milieu m-T7= Gélose lactosée au chlorure de triphényltétrazolium «TTC» et au Tergitol 7

N = Azote

N-NO2 = Nitrites

N-NO3 = Nitrates

NPP= Nombre le plus probable

OMD= Objectifs du Millénaire pour le Développement

OMS= Organisation mondiale de la santé

OMVG= Organisation pour la mise en valeur du fleuve Gambie

if




OMVS= Organisation pour la mise en valeur du fleuve Sénégal

ONG= Organisation non gouvernementale

P-A= Méthode présence-absence

PCB= Polychlorobiphényles

PCR = Polymerase Chain Reaction (Réaction de polymérase en chaîne)

P.M.E. = Petites et moyennes entreprises

SEG= Société des Eaux de Guinée

SENASOL= Service National des Sols

S.P.S = Somme des paramètres sanitaires

SNAPE= Service National des Points d’Eau

TBS= Taux brut de scolarisation

TNS= Taux net de scolarisation

UGANC= Université Gamal Abdel Nasser de Conakry

UK= Université de Kindia

µ/s = micro siemens

LISTE DES TABLEAUX

TABLEAU 1 = Flux de pollution industrielle

TABLEAU 2 = Rapport entre la conductibilité et a minéralisation

TABLEAU 3 = Caractéristiques physiques des bassins fluviaux guinéens

TABLEAU4=Populations desservies et Estimation du taux de desserte par Direction

Régionale en 2011

TABLEAU 5 = Evolution des prélèvements de l’eau par la SEG 2010-2014

TABLEAU6 = Evolution des abonnements et la production annuelle de l’eau par la SEG

TABLEAU7= Problèmes liés aux produits chimiques rejetés par les industries et leur

description

TABLEAU 8 = Répartition des ménages selon la source d’approvisionnement en eau

TABLEAU9= Superficie et Population des cinq communes de Conakry où les prélèvements

ont été effectués

TABLEAU 10 = Paramètres et méthodes d’analyses physico-chimiques et chimiques de l’eau

TABLEAU 11 = Répartition des puits selon les paramètres sanitaires

TABLEAU 12 = Conformité des paramètres physico-chimiques des eaux de puits

ig




TABLEAU 13 = Conformité des paramètres chimiques des eaux de puits

TABLEAU 14 = Conformité des paramètres physico-chimiques des eaux de forages

TABLEAU 15 = Conformité des paramètres chimiques des eaux de forages

TABLEAU 16 = Conformité des paramètres physico-chimiques des eaux de Robinets

TABLEAU 17 = Conformité des paramètres chimiques des eaux de Robinets

TABLEAU 18 = Conformité des paramètres physico-chimiques des eaux minérales

TABLEAU 19 = Conformité des paramètres chimiques des eaux minérales

TABLEAU 20 = Pourcentage de contamination des eaux de Puits par les germes

TABLEAU 21 = Qualité bactériologique des eaux de Puits

TABLEAU 22 = Pourcentage de contamination des eaux de Forages par les germes

TABLEAU 23 = Qualité bactériologique des eaux de Forages

TABLEAU 24 = Pourcentage de contamination des eaux de Robinets par les germes

TABLEAU 25 = Qualité bactériologique des eaux de Robinets

TABLEAU 26 = Pourcentage de contamination des sachets d’eaux minérales par les germes

TABLEAU 27 = Qualité bactériologique des eaux minérales

TABLEAU28= Contamination des eaux de Puits par Salmonella spp., Shigella spp. et Vibrio

cholerae

TABLEAU 29= Qualité pour Salmonella spp., Shigella spp. et Vibrio cholerae des eaux de Puits

TABLEAU30= Contamination des eaux de Forages par Salmonella spp., Shigella spp. et

Vibrio cholerae

TABLEAU31= Contamination des eaux de Robinets par Salmonella spp., Shigella spp. et

Vibrio cholerae

TABLEAU 32 = Contamination des sachets d’eaux minérales par Salmonella spp., Shigella

spp. et Vibrio cholerae

TABLEAU 33= Qualité des eaux minérales en sachets par rapport aux Salmonella spp.,

Shigella spp. et Vibrio cholerae

TABLEAU 34 = Comparaison des paramètres physico-chimiques des sources

TABLEAU35= Comparaison des paramètres chimiques des sources

TABLEAU 36 = Comparaison des paramètres bactériologiques des sources

TABLEAU37= Qualité des sources d’eaux à Conakry

TABLEAU 38 = Corrélation entre des variables

TABLEAU 39 = Paramètres microbiologiques d’une eau potable

ih




TABLEAU 40= Classification des entérobactéries coliformes en hygiène et en santé publique

TABLEAU 41= Paramètres de mesure de risque de pollution bactériologique de la nappe

phréatique à partir des latrines

TABLEAU 42= Récapitulation des résultats des paramètres sanitaires des puits

TABLEAU 43 = Résultats d’analyses physico-chimiques des eaux de puits

TABLEAU 44 = Résultats d’analyses chimiques des eaux de puits

TABLEAU 45 = Résultats d’analyses physico-chimiques des eaux de Forage

TABLEAU 46 = Résultats d’analyses chimiques des eaux de Forage

TABLEAU 47 = Résultats d’analyses physico-chimiques des eaux de Robinet

TABLEAU 48 = Résultats d’analyses chimiques des eaux de Robinet

TABLEAU 49 = Résultats d’analyses physico-chimiques des eaux minérales en sachets

TABLEAU 50 = Résultats d’analyses chimiques des eaux minérales en sachets

TABLEAU 51 = Dénombrement des bactéries dans les eaux de Puits

TABLEAU 52 = Dénombrement des bactéries dans les eaux de Robinet

TABLEAU 53 = Dénombrement des bactéries dans les eaux de Forage

TABLEAU 54 = Dénombrement des bactéries dans les eaux minérales

TABLEAU 55= Recherche de Salmonella spp., Shigella spp. et Vibrio cholerae dans les eaux

de Puits

TABLEAU 56= Recherche de Salmonella spp., Shigella spp. et Vibrio cholerae dans les eaux

de Forage

TABLEAU 57=Recherche de Salmonella spp., Shigella spp. et Vibrio cholerae dans les eaux

de Robinet

TABLEAU 58=Recherche de Salmonella spp., Shigella spp. et Vibrio cholerae dans les eaux

minérales

TABLEAU 59= Présentation des colonies sur les milieux de culture

LISTE DES SCHEMAS

SCHEMA 1 = Cycle du phosphore

SCHEMA 2 = Cycle de l’Azote

SCHEMA 3 = Vis d’Archimède en mouvement

SCHEMA 4 = Filtre à bicouche

SCHEMA 5 = Différentes fonctions de filtration

ii




SCHEMA 6 = Organisation d’un puits moderne

SCHEMA 7 = Organisation d’un puits traditionnel

SCHEMAS 8 et 9= Mouvement de la pollution dans un sol sec

SCHEMAS 10 et 11= Distribution de pollutions bactérienne et chimique dans le sol

SCHEMA 12= Recherche de la FMAT

SCHEMA 13= Recherche des Coliformes

LISTE DES CARTES

CARTE N° 1 = Bassins versants

CARTE N° 2 = Situation du sol

CARTE N° 3 = Situation administrative de la ville de Conakry

LISTE DES GRAPHIQUES

GRAPHIQUE 1 = Plage de conductibilité de solutions aqueuses

GRAPHIQUE 2 = Accès à l’eau potable

GRAPHIQUE 3 = Précipitation moyenne et la température de 2001-2012

GRAPHIQUE 4 = Répartition des puits selon les paramètres sanitaires

GRAPHIQUE 5 = Répartition des puits selon leur état sanitaire

GRAPHIQUE 6= Qualité des eaux de Forage par rapport aux Salmonelles, Shigelles et

Vibrions

GRAPHIQUE 7 = Qualité des eaux de Robinets par rapport aux Salmonelles, Shigelles et

Vibrions

LISTE DES IMAGES

IMAGE 1 = Générateur d’Azote pour l’eau pure

IMAGE 2 = Système de microfiltration

IMAGE 3 = Appareil servant à l’ultrafiltration

IMAGE 4 = Appareil servant à l’unité de nanofiltration

IMAGE 5 = Principe d’osmose inverse

IMAGE 6 = Conakry en 1912

IMAGE 7 = Conakry en 2016

IMAGE 8 = Borne fontaine de la SEG à Kissosso Plateau

IMAGE 9 = Forage à Lambanyi

IMAGE 10 = Puits à Wanindara

ij




IMAGE 11 = Puits à Kobayah

IMAGE 12 = Forage à Kissosso Plateau

IMAGE 13 = Puits tubé à pompe électrique à Lambanyi

IMAGES 14 et 15= Conduits de la SEG passant dans les caniveaux à Yattayah

IMAGES 16 et 17 = Conduits non enterrés de la SEG avec des fuites à Yattayah

IMAGES 18 et 19 = Echantillons d’eaux prêts à l’analyse et des boites de Pétri contenant des

milieux de culture stériles

IMAGES 20 et 21 = Echantillons d’eaux prêts à l’analyse et dosages dans des tubes

Eppendorf pour la PCR

IMAGES 22 et 23 = Dosages des échantillons dans des tubes Eppendorf pour la PCR

IMAGES 24 et 25 = Comptage manuel des colonies après 24H des indicateurs de pollution

IMAGES 26 et 27 = Milieux pré-enrichis pour Salmonelles et Hotte à flux laminaire

IMAGES 28 et 29 = Cultures avec des colonies dans des boites de Pétri et des tubes à culture

IMAGES 30 et 31 = Milieux de culture avec des colonies après 24H

IMAGES 32 et 33 = Boites de Pétri avec des colonies après 24H

TABLE DES MATIERES

INTRODUCTION ................................................................................................................1

CHAPITRE I : APERÇU LITTERAIRE

I-Eau de consommation et les sources de pollution................................................................11

I -1- Différents types d’eau pour la consommation humaine..................................................11

I -1-1 Les eaux naturelles ......................................................................................................11

I -1-1 -1 Les eaux souterraines ...............................................................................................12

I -1 -1-2 Sources de pollution des eaux souterraines...............................................................13

I -1-1 -2-1 Source de contamination naturelle.........................................................................14

I -1-1 -2-2 Contamination des eaux souterraines par l’agriculture ………………………….15

I -1-1 -2-3 Contamination des eaux souterraines par les industries …………………………15

I-1-1-2-4 Contamination des eaux souterraines par les déchets domestiques ………………17

I-1-1-2-5 Contamination des eaux souterraines par les eaux de surface ……………………18

I-1-1-2-6 Contamination des eaux souterraines par les eaux de mer ……………………….18

II Chimie de l’environnement

II-1 – Répartition de l’azote et du phosphore dans l’environnement.....................................19

ik




II-2 -1- Le phosphore dans l’environnement ........................................................................19

II-2-1-1- Cycle global du phosphore .....................................................................................20

II-2-1-2- Le phosphore dans les milieux aquatiques .............................................................21

II-2-2- L’azote dans l’environnement ...................................................................................22

II-2-2-1- Formes d’azote dans l’eau ......................................................................................24

II-2-3- L’eutrophisation .........................................................................................................25

III - Pollution chimique de l’eau de consommation

III-1 - Pollution des eaux ......................................................................................................25

III-1-1 Substances polluantes de l’eau ..................................................................................26

III-1-2- Pollution des eaux par l’utilisation des engrais et des pesticides ............................ 26

III-2- Généralités sur les polluants métalliques .................................................................... 27

III-2-1- Les métaux dans l’environnement ............................................................................28

III-2-2-Transfert des métaux lourds dans l’eau .....................................................................29

III-2-3- Remobilisation des métaux lourds à partir des sédiments ........................................30

III-2-4 Pollution par des métaux lourds.................................................................................30

III-3- Etude de la conductivité électrique de l’eau.................................................................38

III-3-1- Identification de quelques anions indicateurs de la composition minérale.............. 41

III-3-1-1- Chlorures............................................................................................................... 41

III-3-1-2- Sulfates.................................................................................................................. 42

III-3-1-3- Nitrates ................................................................................................................. 42

III-3-1-4- Hydrogénocarbonates ...........................................................................................50

IV : Etude de quelques germes indicateurs de pollution de l’eau de consommation

IV-1- Les Salmonelles….. .....................................................................................................51

IV-2 –Les Vibrions cholériques..............................................................................................51

IV-3 – Les Shigelles................................................................................................................52

IV-4- Escherichia coli............................................................................................................53

IV-5-Indicateurs de pollution fécale des eaux .......................................................................56

IV-6 Mode de transmission des infections et infestation intestinales.....................................62

V - Présentation du potentiel hydraulique de la République de Guinée

V-1- Politique de gestion et de développement ……………………………………………63

V-2 Gestion institutionnelle de l’eau potable………………………………………………65

V-3 Etude géographique de la Guinée..................................................................................68

il




V-4 Bassins fluviaux de la Guinée ……………………………………………………….69

V-5 La part de l’agriculture ……………………………………………………………….72

V-6 Problèmes de l’eau potable en Guinée ……………………………………………….74

V-7 Accès à l’eau potable et distribution …………………………………………………75

V-8 Crise d’eau ……………………………………………………………………………79

V-9 Problèmes d’hygiène et d’assainissement en Guinée …………………………..…….83

V-10 Cadre institutionnel du secteur de l’eau…………………………………………….85

V-11 Situation environnementale de la Guinée…………………………………………93

V-12 Statistiques environnemental………………………………………………………94

VI- Conakry, capitale de la République de Guinée

VI.1 Renseignements généraux de la ville de Conakry……………....................................98

VI -1-1- Situation géographique et population………………….........................................98

VI -1-2- Géologie et hydrogéologie ……………………………………..………………..100

VI -1-3- Météorologie……………………………………………………..…………….…101

VI -2- Les sources de déchets dans la ville de Conakry ……………………..……..…..…101

VI -2-1 Le volume des ordures produites dans la ville de Conakry…………..……….…..103

VI -2-2 Gestion des Eaux usées et excrétas …………………………………..……..….…103

VI -2-3 Collecte et évacuation des ordures ménagères ………………………….………...104

VI -2-4 Drainage des eaux pluviales ………………………………………………..…......105

VI -3 Problèmes d’approvisionnement en eau par la SEG dans la ville de Conakry…..…..105

VI -4 Production et consommation de l’eau à Conakry………………………..…………..107

VII : Traitement de l’eau destinée à l’alimentation de l’homme ………………………….110

VII-1 –Potabilisation de l’eau.......................................................................................……110

VII-2- Le Pompage - le Stockage et le Tamisage......................................... ……….……..112

VII-3- Le Prétraitement : Coagulation, Floculation, Décantation........................................112

VII-4- La Filtration sur Sable et Anthracite.........................................................................114

VII-5- La Désinfection - l'Ozonation………………………………………..………...…....….115

VII-6- La Microfiltration et l'Ultrafiltration………………………………………..……………116

VII-7- La Nanofiltration et l'Osmose Inverse……………………………………………..…....118

VII-8- Le Dégazage et le Post-Traitement : La Chloration…………………..……….……...121

im




CHAPITRE II : MATERIEL ET METHODES DE TRAVAIL

II-1- Milieu d’études …………………………………………………………………….123

II-2- Cadre de travail…………… .....................................................................................123

II-3- Type et période de l’étude……………………………..…….……………………...125

II-4- Population d’étude ……..…………………………………..…….……………..…..126

II-5- Echantillonnage…………………….………………………..……………………....126

II-6-Critères de Sélection……………..…………………………….................................127

II-7- Plan de collecte des données…………………………….……………………….…...127

II-7-Etudes des variables...……………………………..…………………….………….....128

II-8-1 Méthodes de dosage des constituants physico-chimiques et chimiques l’eau.…... 128

II-8-2 Les variables bactériologiques …………………………………………..……...…128

II-8-3Méthodes de dénombrement et recherche des germes dans l’eau….……..……...…130

II-8-4 Méthode d’analyses moléculaires par la PCR ……….……..……….….………....130

II-9- Appréciation de l’état sanitaire des puits………..………………….…….……….....135

II.10- Détermination de la corrélation ……………………………………….………..……136

II-11- Analyse des résultats………………………………………………………………….137

CHAPITRE III : RESULTATS, ANALYSE ET INTERPRETATION

III-1- Résultats des paramètres sanitaires des puits………………………………….........138

III-2 Résultats des paramètres physico-chimique et chimique des eaux de puits…….……139

III Résultats des paramètres physico-chimiques et chimiques des eaux de Forages….……142

III-4 Résultats des paramètres physico-chimiques et chimiques des eaux de Robinets …..145

III-5 Résultats des paramètres physico-chimiques et chimiques des

eaux minérales vendues en sachets dans la ville de Conakry………………………..….....148

III-7 Résultats d’analyses bactériologiques des eaux de puits ……………………….…...150

III-8 Résultats d’analyses bactériologiques des eaux de Forages ………………………...152

III-9 Résultats d’analyses bactériologiques des eaux de Robinets ……………………….154

III-10 Résultats d’analyses bactériologiques des eaux minérales

vendues en sachets dans la ville de Conakry…………………………………….……..…156

III-11 à 14- Résultats de recherche par la PCR des Salmonelles, Shigelles et

in




Vibrio dans les sources d’eaux de la ville de Conakry…………………………..………..158

III-15- Comparaison de la qualité des sources d’eaux à Conakry……………………….....162

III-16- Détermination de la corrélation entre l’état sanitaire des puits et certaines

variables bactériologiques..…..............................................................................................165

CHAPITRE IV : DISCUSSION

IV-1- Discussion ………………..…………………………………………………………166

IV-2- Conclusion …………………………………………………………………………..202

IV-3- Recommandations .......................................................................................................205

REFERENCES BIBLIOGRAPHIQUES .............................................................................208

ANNEXES..............................................................................................................................228

im




INTRODUCTION




L’eau constitue un élément indispensable à la vie des êtres

vivants, surtout à celle de l’homme et des animaux; l’avoir à

disposition en quantité suffisante et de bonne qualité, contribue

au maintien de la santé [1].

A l’heure actuelle et à l’échelle mondiale, on assiste à une

intensification des activités industrielles et agricoles ainsi qu’à

une augmentation rapide de la population et la croissance du

niveau de vie. Ces activités ont introduit dans les hydro-

systèmes (estuaires, nappes souterraines, cours d’eau, lacs,

lagunes, océans…) des substances polluantes qui ont des

répercussions néfastes sur l’environnement et par suite sur la

santé humaine. En effet, quelques produits chimiques peuvent

être à l’origine de la disparition de certaines espèces animales

et/ou végétales et par conséquent, entraînent le

dysfonctionnement de la chaîne trophique [2].

L’eau recouvre 70% de la superficie du globe, mais

malheureusement 97 % de cette eau est salée et non potable et

ne convient pas à l’irrigation. L’eau douce représente 3% de

l’eau totale de notre planète. Dans ce faible pourcentage, les

rivières et les lacs représentent 0,3%, alors que tout le reste est

stocké dans les calottes polaires glacières [3].

Selon le rapport de l’OMS (2013), en 2011, 11 % de la

population mondiale, soit 768 millions d’individus, n’avaient

pas accès à l’eau potable selon le rapport, sur les progrès en

matière d’assainissement et d’alimentation en eau. Cependant de

réels progrès ont été réalisés : depuis 1990, la proportion de

personnes n’ayant pas accès à ce bien de première nécessité a

baissé de 12 points, permettant ainsi à près de 6 milliards

d’individus de bénéficier d’un accès à l’eau potable en 2011,

contre 4 milliards en 1990. On estimait cette proportion à 23 %

il y a près de vingt ans [4].

http://www.who.int/water_sanitation_health/publications/2013/jmp_report/en/index.html

http://www.who.int/water_sanitation_health/publications/2013/jmp_report/en/index.html




Entre 1990 et 2015, la proportion de la population mondiale

utilisant une source d’eau potable améliorée est passée de 76 %

à 91 %, dépassant la cible des OMD, qui a été atteinte dès 2010.

Sur les 2,6 milliards de personnes qui y ont accédé depuis 1990,

1,9 milliard ont l’eau courante. Plus de la moitié de la

population mondiale (soit 58 %) bénéficie maintenant de cette

qualité de service. Au cours de la même période, le nombre de

personnes utilisant une eau de surface a diminué de plus de la

moitié, passant de 346 millions à 159 millions [5].

Les eaux souterraines représentent au total environ 97 % des

eaux douces continentales liquides (Bosca, 2002) et la présence

de l’Homme ainsi que ses possibilités de survie dépendent un

peu partout sur le globe de l’existence et de la qualité de cette

ressource pourtant limitée et fragile (Boutin, 1987) puisque 75 à

90 % de la population mondiale utilisent une eau d’origine

souterraine. C’est dire l’importance de l’étude des nappes sou-

terraines exploitables dans toutes leurs composantes, en vue

d’une meilleure connaissance de ces écosystèmes et si possible

d’introduire des concepts scientifiques nouveaux pouvant avoir

leur utilité en matière d’aménagement, de surveillance, de

gestion, de protection et de conservation de cette ressource

(Danielopol et al .,2004) [6-9].

La proportion de ressources en eau qu’un pays utilise est

affectée par les politiques nationales concernant l’eau et les

problèmes de pénurie. La pénurie peut être matérielle (manque

d’eau de bonne qualité), économique (manque d’infrastructure

adéquate, à cause de contraintes financières, techniques ou

autres), ou institutionnelle (manque d’institutions assurant un

approvisionnement en eau fiable, sécurisé et équitable) [5].

Les principaux secteurs qui prélèvent de l’eau sont l’agriculture

(irrigation, bétail et aquaculture), les industries et les

municipalités. Aujourd’hui, les municipalités représentent 12 %

de la consommation totale d’eau douce dans le monde et les




industries 19 %, alors que l’agriculture représente les 69 %

restants, principalement à cause de l’irrigation [5].

La démographie et la consommation croissante induite par

l’augmentation des revenus par habitant sont les moteurs, ou

pressions, ayant l’impact le plus important sur l’eau.

L’augmentation de la production de bioénergie a des impacts

potentiellement importants sur la qualité et la disponibilité de

l’eau. L’agriculture est de loin le plus grand consommateur

d’eau douce, environ 70% de l’ensemble des prélèvements d’eau

douce sont destinés à l’irrigation pour l’agriculture [10].

La population mondiale augmente d’environ 80 millions de

personnes par an, ce qui entraîne une augmentation de la

demande en eau douce d’environ 64 milliards de mètres cube

par an. On estime que 90% des 3 milliards de personnes qui

devraient s’ajouter à la population d’ici 2050 seront dans les

pays en voie de développement, beaucoup dans des régions où la

population actuelle ne dispose pas d’un accès durable à l’eau

potable et à des sanitaires adéquats. La plupart de la croissance

démographique arrivera dans des pays en voie de

développement, principalement dans les régions qui sont déjà en

stress hydrique et dans des secteurs ne disposant que d’un accès

limité à une eau potable saine et des équipements

d’assainissement adéquats. Plus de 60% de la croissance

démographique mondiale entre 2008 et 2100 aura lieu en

Afrique sub-saharienne (32%) et en Asie du Sud (30%).

Ensemble, on estime que ces régions compteront pour la moitié

de la population mondiale en 2100 [10].

Au plan mondial, seulement 9 % des ressources renouvelables

en eau douce sont prélevées pour l’agriculture, les municipalités

et les industries. Cela se situe au-dessous du seuil de 25 % qui

détermine le début du stress hydrique, mais ce chiffre mondial

masque de grandes différences entre les régions et à l’intérieur

des pays. En 2011, 41 pays ont connu un stress hydrique, contre




36 en 1998. Parmi eux, 10 pays de la péninsule arabique,

d’Afrique du Nord et d’Asie centrale ont prélevé plus de 100 %

des ressources renouvelables en eau douce. Lorsqu’un pays

atteint un niveau de prélèvement supérieur à 100 %, il

commence à épuiser ses ressources en eaux souterraines

renouvelables, et à dépendre de sources d’eau souterraines

fossiles non renouvelables ou de sources d’eaux non

conventionnelles, comme l’eau dessalée, les eaux usées et l’eau

de drainage de l’agriculture [5].

Actuellement, la pénurie d’eau affecte plus de 40 % des

personnes dans le monde, chiffre qui devrait augmenter. La

pénurie d’eau se manifeste déjà sur tous les continents et entrave

la durabilité des ressources naturelles ainsi que le

développement économique et social [5].

Depuis 1990, la proportion de la population sans accès à une eau

potable améliorée a été réduite de moitié en Amérique latine et

Caraïbes, en Asie de l’Est, en Asie de l’Ouest, en Asie du Sud et

en Asie du Sud-Est [5].

L’Afrique subsaharienne est restée en deçà de la cible des OMD

mais a quand même augmenté de 20 points de pourcentage

l’utilisation de sources d’eau potable améliorées. En 2015, on

estime que 663 millions de personnes dans le monde utilisent

encore des sources d’eau potable non améliorées, y compris des

puits non protégés, des sources et des eaux de surface. Près de la

moitié de toutes les personnes utilisant des sources d’eau non

améliorées vit en Afrique subsaharienne, un cinquième vit en

Asie du Sud [5].

La pénurie d’eau douce peut limiter la production alimentaire et

son approvisionnement, exerçant des pressions sur les prix des

aliments et la dépendance croissante des pays aux produits

alimentaires importés. Une demande croissante d’aliments due à

la hausse de la démographie ainsi que le changement des

régimes alimentaires, la baisse de la production dans certains




pays, les coûts accrus des intrants agricoles comme les

fertilisants (provoqués par les coûts de l’énergie), des mesures

incitatives liées à la bioénergie dans d’autres pays et

d’éventuelles spéculations financières, ont tous contribué à une

hausse excessive des prix des aliments [10].

La commande et la surveillance des installations de production

d'eau potable deviennent de plus en plus importantes et ce quel

que soit l’endroit dans le monde [11].

Egalement, l’eau a toujours joué un rôle important dans la

transmission des graves maladies chez les êtres humains. La

fièvre typhoïde, le choléra, l’hépatite infectieuse, les

helminthiases et de nombreux autres types d’affections gastro-

intestinales sont autant de maladies que l’eau peut transmettre

[1].

L’éclosion occasionnelle de maladies d’origine hydrique montre

bien toutefois qu’il faut continuer de surveiller et de contrôler

rigoureusement la qualité des réseaux publics, semi-publics et

privés d’approvisionnement en eau. Parmi toutes les sources de

contamination de l’eau potable, les matières fécales humaines ou

animales à sang chaud posent le plus grand danger à la santé

publique [1].

Les analyses bactériologiques et physico-chimiques de l’eau

sont un moyen sûr de détecter cette pollution et de la contrôler.

En effet, au cours d’éclosions des maladies d’origine hydrique,

le nombre des micro-organismes pathogènes présents dans l’eau

est très inférieur à celui des bactéries intestinales normales, qui

sont plus faciles à isoler et à reconnaître. La présence

d’indicateurs fécaux non pathogènes comme Escherichia coli

indique la présence possible d’entérobactéries pathogènes.

L’absence d’indicateurs fécaux indique l’absence probable aussi

d’entérobactéries pathogènes [1].

Le transfert des métaux dans le sous-sol dépend non seulement

de leurs caractéristiques physico-chimiques, mais également des




propriétés du milieu souterrain (SiPOS et al., 2005). En effet, le

sol est une matrice complexe, dans lequel l'activité de l'ion

métallique dépend de sa spéciation chimique, des

caractéristiques du sol telles que la capacité d'échange

cationique, la teneur en matière organique, les teneurs en oxydes

et le pH. Ces paramètres ont été démontrés et peuvent être

déterminants dans les processus chimiques de précipitation, de

sorption et de complexassions (COvELO et al., 2004; SiPOS

et al., 2005) [in12,13].

Par ailleurs, le développement de l’agriculture a été pénalisé par

une dégradation de la qualité de l’eau suite à l’utilisation intense

des engrais chimiques et des fertilisants. Ainsi, la dégradation de

la qualité des eaux de surface et souterraines par les éléments

azotés, phosphorés et métalliques, induite par l’activité agricole,

a été largement vérifiée dans le monde (COSTA et al., 2002;

HADAS et al., 1999; PATNi et al., 1998; TRABELSI et al.,

2007). L’élevage participe, lui aussi, d’une manière remarquable

à la pollution des eaux (KRAPAC et al., 2002) [in14-19].

Il est important de faire l’étude physico-chimique de l’eau de

l‘eau afin de connaître sa qualité puisqu’elle est fréquemment

consommée par les populations [20].

Une analyse physico-chimique et bactériologique de l’eau peut

tout au plus démontrer qu’au moment de l’examen, des bactéries

indicatrices d’une pollution fécale (Escherichia coli,

Streptococus fecalis, Coliformes totaux,...) se sont reproduites

ou non dans les conditions de laboratoire à partir de

l’échantillon d’eau analysé. Par conséquent, si une inspection

sanitaire révèle qu’une source non traitée est contaminée par des

matières fécales, que l’eau traitée est vulnérable à la

contamination par des matières fécales durant l’entreposage

(stockage) ou la distribution, ou que l’eau n’est pas

suffisamment traitée, il faut considérer que l’eau est impropre à




la consommation, quels que soient les résultats de l’analyse

bactériologique [1].

Même si l’on considère que l’absence de coliformes, et en

particulier d’E. coli, satisfait aux exigences bactériologiques

relatives à l’eau potable, l’eau peut contenir de nombreux types

de bactéries environnementales comme celles des genres

Alcaligenes, Acinetobacter, Flavobacterium, Pseudomonas etc.

[1].

En République de Guinée, la déserte en eau potable est devenue

de plus en plus un grand problème pour les pouvoirs publics ces

dernières années. Plusieurs sont aujourd’hui des villes et des

villages qui manquent de façon criarde d’eau. Certaines

communes urbaines n’ont même pas encore les installations des

réseaux de distribution de la Société de l’Eau de Guinée (SEG).

Conakry, la capitale de la République de Guinée manque d’eau

de robinet dans plusieurs quartiers depuis plusieurs années.

Pourtant, ils disposent des réseaux de distribution d’eau courante

(Eau de la SEG). Les quartiers qui en gagnent certains

connaissent aussi des délestages chroniques (trois fois par

semaines). Les populations comblent le déficit par les eaux de

puits. Ces derniers temps, plusieurs nantis réalisent des forages

et fournissent gratuitement de l’eau aux voisins. Mieux, nous

assistons aussi à la prolifération des sociétés productrices d’eaux

minérales. Selon le ministère de l’industrie, en moins de cinq

ans, le pays compte plus de quatre cent sociétés productrices

d’eaux minérales sur toute l’étendue du territoire national.

L’essentiel de ces sociétés commercialisent cette eau dans des

sachets en plastique dont la quantité varie entre 30 cl et 50 cl.

Cependant, la qualité de cette eau ajoutée aux autres sources

d’approvisionnement en eaux reste méconnue faute d’enquêtes

et d’analyses physico-chimiques et microbiologiques

approfondies.




Quelle est la qualité des eaux des sources d’approvisionnement

des populations de Conakry ?

C’est pour connaitre le degré de potabilité des sources d’eaux

(eaux de forages, robinet, puits traditionnels et minérales) que

nous avons choisi de traiter le thème intitulé : Etude de la

qualité physico-chimique et bactériologique des sources

d’approvisionnement en eaux dans la ville de Conakry.

Pour la réalisation du travail, nous nous sommes fixés les

objectifs suivants :

OJECTIF GENERAL

Etudier la qualité physico-chimique et bactériologique des

sources d’approvisionnement en eaux dans la ville de Conakry

en vue de préserver la santé des populations.

LES OBJECTIFS SPECIFIQUES:

• Déterminer l’état sanitaire et environnemental des puits

traditionnels par une enquête active;

• Etudier le niveau de pollution physico-chimique, chimique et

bactérienne des eaux de puits, de forages, de canalisations

centralisées et minérales dans la ville de Conakry ;

• Déterminer la corrélation entre l’état sanitaire des puits et leur

degré de pollution par la FMAT et les Coliformes;

• Formuler des recommandations pour des mesures de protection

de la santé des populations.

HYPOTHESES

• Les eaux sont des sources de contaminations de maladies

d’origine hydrique.

• Les eaux de puits, de forages, de canalisations centralisées et

minérales peuvent être polluées par des microorganismes

pathogènes et des substances chimiques toxiques.

PLAN




Pour la mise en ouevre de ces objectifs, le plan ci-dessous a été

adopté. Notre étude est subdivisée en quatre chapitres:

Le chapitre I basé sur la révision littéraire. Il porte sur les

généralités sur les eaux destinées à la consommation humaine

et de leurs origines. Il parle des polluants chimiques de l’eau

destinée à l’alimentation humaine ; de la composition

chimique de l’environnement ainsi que le cycle de quelques

éléments chimiques. Il étudie quelques germes indicateurs de

pollution dont certains sont responsables de maladies graves.

Il fait aussi la présentation de la République de Guinée dans

ses aspects démographiques et administratifs. Il parle aussi de

la ville de Conakry qui constitue le cadre de la recherche. Il

également les procédés de potabilisation de l’eau destinée à

l’alimentation de l’homme.

Le chapitre II est consacré aux matériel et méthodes utilisés

pour les différentes analyses physico-chimiques et

bactériologiques des échantillons prélevés dans les différentes

sources d’eaux à Conakry ; le cadre de travail,

l’échantillonnage, les analyses moléculaires par la PCR ainsi

que les résultats de cette méthode.

Le chapitre III présente les résultats des analyses physico-

chimiques, chimiques, bactériologiques et moléculaires par la

PCR: analyses et interprétations de ces résultats en forme de

tableaux et de graphiques.

Le chapitre IV est essentiellement basé sur la discussion des

résultats, les conclusions et les recommandations.

La Bibliographie

Les Annexes




CHAPITRE I : REVUE DE LA LITTERATURE




Cette partie est consacrée à la révision bibliographique où nous

présentons tout d’abord, les différents types d’eaux destinées à

l’alimentation humaine, ainsi que les secteurs responsables de la

pollution qui modifie la qualité de ces eaux. Cette qualité est en

relation non seulement avec la teneur des éléments nutritifs et

les métaux lourds qui représentent les principaux éléments

utilisés surtout dans les pratiques agricoles (utilisation des

engrais, pesticides...) et par les industries par la pollution de

l’air, de l’eau et du sol. En deuxième position, quelques

généralités sur les paramètres physico-chimiques, chimiques et

bactériologiques des eaux destinées à l’alimentation de

l’homme.

I : EAUX DE CONSOMMATION ET LES SOURCES DE

POLLUTIONS

I-1 - Différents types d’eau pour la consommation humaine

I-1 -1 - Les eaux naturelles

Les eaux destinées à la consommation humaine sont les eaux de

distribution publique (eau du robinet), eaux conditionnées (les

eaux de source, les eaux minérales naturelles et les eaux rendues

potables par traitement), et les eaux de puits privés utilisées pour

la boisson [21].

L'eau prélevée des milieux naturels n'est généralement pas

utilisable directement pour la consommation humaine. Elle doit

subir des traitements selon les exigences réglementaires de

qualité en tous points du réseau, pour pouvoir être consommée

sans danger par l'ensemble de la population [21].

Toutes les eaux de consommation n’ont pas la même

composition chimique, puisqu’elles ne contiennent pas toutes les

mêmes substances minérales considérées comme des paramètres

spatio-temporels [21].

Avec l’accroissement de la population mondiale et le

développement économique de la planète, la consommation




d'eau a presque doublé au cours de ces cinquante dernières

années [21].

Généralement, les réserves des eaux naturelles sont constituées

des eaux de surfaces qui comprennent les eaux courantes des

fleuves, des rivières et des canaux, des eaux de surfaces

stagnantes ou plan d’eau (lacs, retenues de barrages, étangs …),

des eaux des mers et des océans, et des eaux souterraines

provenant de l’infiltration des eaux de pluie dans le sol qui

constituent les nappes phréatiques [21].

I -1 -1-1- Les eaux souterraines

Les eaux souterraines sont les eaux de sous-sol qui constituent

une provision d'eau potable inestimable pour l'humanité. Les

eaux souterraines sont en interaction avec les autres types de

masses d'eau, d'une part, les eaux douces continentales (cours

d'eau, zones humides, lacs,…) et d'autre part, avec les eaux

marines en bordure littorale. Le sens de ces transferts peut varier

au cours de l’année ainsi qu'en fonction des conditions

hydrologiques. Elles assurent souvent le débit de base des

systèmes d'eaux continentales superficielles et de ce fait

influencent leur qualité. En d'autres termes, les effets de

l'activité humaine sur la qualité des eaux souterraines et les

débits des nappes phréatiques peuvent se répercuter sur la

pérennité et la qualité écologique des écosystèmes aquatiques

associés et des écosystèmes terrestres directement dépendants

[22].

Les sources et les eaux souterraines sont traditionnellement les

ressources en eau privilégiées pour l’eau potable car, plus à

l’abri des pollutions que les eaux de surface [23].

La protection des eaux souterraines est devenue un objectif

majeur dès les années 1970 [24].

En outre, les eaux souterraines assurent le débit de base des

réseaux hydrographiques de surface, en alimentant ces réseaux

tout au long de l'année [25].




La composition et la qualité des eaux souterraines sont à

l’origine liées à la nature géologique du terrain. Ils ont un

impact direct sur celle des eaux de surface, ainsi que sur les

écosystèmes aquatiques et terrestres associés. Les eaux

souterraines sont moins sensibles aux pollutions accidentelles,

mais la croissance démographique et la modernisation de

l’agriculture ainsi que le développement industriel entraînent un

grand problème de détérioration de la qualité de cette source

souterraine, déjà en quantité limitée. Les eaux usées

domestiques et industrielles souvent déversées directement dans

les sols participent fortement au changement de la qualité des

eaux souterraines [26, 27].

En République de Guinée, le potentiel en eau est estimé très

approximativement à 13 milliards de mètres cubes. Les études

hydrogéologiques faites par le service géologique de l’AOF

entre 1933 et 1960, et qui ont nécessité la réalisation de 56

forages profonds à Conakry pour un métré total de 2.634,97 m,

ont permis la mise en évidence de 7 dépressions favorables à

l’accumulation des eaux souterraines [28].

I -1 -1-2 Sources de pollution des eaux souterraines

L'infiltration d'eau de mer associée à la surexploitation des

couches aquifères ou à la lixiviation naturelle, sont des sources

normales de pollution des eaux souterraines. La plupart des

contaminations des eaux souterraines est due à l'activité

humaine. La contamination humaine des eaux souterraines peut

être liée à l'évacuation des déchets d'une manière directe

(systèmes privés d'évacuation d'eaux d'égouts, élimination des

déchets solides, eaux usées municipales, retenues d'eaux

usagées, propagation du cambouis dans la terre, formation de

saumure due à certaines industries de pétrole, élimination des

eaux usées, les déchets radioactifs) ou de manière indirecte




(accidents, certaines activités agricoles, exploitation minières,

routes dégivrées, pluies acides, mauvais entretien des puits, …).

De grandes quantités de composés organiques sont

manufacturées et utilisées par les industries, l'agriculture et les

municipalités. Les composés organiques se trouvent dans la

nature mais peuvent venir aussi bien de source naturelle que de

l'activité des hommes. Dans beaucoup d'endroits, les eaux

souterraines ont été souillées par des produits chimiques pendant

des décennies. Malheureusement, cette forme de pollution n'a

été identifiée en tant que problème écologique sérieux qu'à partir

des années 80 [29].

Voici, une brève description de différentes sources de

contamination de l’eau:

I -1 -1-2-1 Source de contamination naturelle:

Les eaux souterraines contiennent quelques impuretés, même si

elles ne sont pas causées par les activités humaines. Les types et

les concentrations d'impuretés naturelles dépendent de la nature

du matériel géologique dans lequel les eaux souterraines se

déplacent, et de la qualité de l'eau de recharge. Les eaux

souterraines se déplaçant à travers les roches et les sols

sédimentaires, peuvent absorber un éventail de composés tels

que le magnésium, le calcium, et les chlorures. Certaines

couches aquifères ont des concentrations naturelles élevées en

constituants dissous tels que l'arsenic, le bore, et le sélénium.

L'effet de ces sources normales de contamination sur la qualité

d'eaux souterraines dépend du type du contaminant et de ses

concentrations [29].

I -1 -1-2-2 Contamination des eaux souterraines par

l’agriculture




Les pesticides, les engrais, les herbicides et les déchets

animaliers sont des sources agricoles de contamination des eaux

souterraines. Les sources agricoles de contamination sont

nombreuses et variées: débordement des engrais et des

pesticides pendant la manipulation, écoulement du chargement

et lavage des pulvérisateurs de pesticide ou de tout autre

équipement d'application, utilisation de produit chimique... Une

région agricole qui manque de drainage est considérée par

beaucoup de fermiers comme étant terre perdue du point de vue

du revenu. Ainsi, ils peuvent installer des tuiles de drain ou des

puits de drainage pour rendre la terre plus productive. Les puits

de drainage servent alors de conduit direct aux eaux souterraines

pour les déchets agricoles [29].

Le stockage de produits chimiques agricoles près de conduits

d'eaux souterraines, telles que les puits, les trous d'évier, est

susceptible de s'accumuler et de provoquer une contamination.

La contamination peut également se produire quand des produits

chimiques sont stockés dans des secteurs découverts, non

protégés du vent et de la pluie [29].

I -1 -1-2-3 Contamination des eaux souterraines par les

industries

Les industries de fabrication et de secteur tertiaire ont des

demandes élevées en eau pour les procédés de refroidissement,

de traitement ou de nettoyage. La pollution des eaux

souterraines se produit quand l'eau utilisée est retournée au cycle

hydrologique [29].

L'activité économique moderne exige le transport et le stockage

de la matière employée dans la fabrication, le traitement, et la

construction. De cette manière, une partie de ce matériel peut

être perdue par débordement, par fuite, ou par mauvaise




manipulation. L'élimination des pertes, associée aux activités ci-

dessus, est une autre source de contamination des eaux

souterraines. Certaines entreprises, habituellement sans accès

aux réseaux d'égouts, se servent dans les eaux souterraines peu

profondes. Elles emploient des fosses ou des puisards secs, ou

envoient l'eau usagée dans les réservoirs septiques. Tout ceci

peut provoquer la contamination des sources souterraines d'eau

potable. Les fosses et les puisards secs provoquent l'infiltration

des déchets directement dans le sol. Les systèmes septiques ne

peuvent pas traiter les pertes industrielles. Les pratiques en

matière de disposition d'eau usagée de certains types

d'entreprises, telles que des stations service d'automobile,

fabricants de composant électrique ou de machine, processeurs

de photo, sont particulièrement concernés parce que les déchets

qu'ils génèrent sont susceptibles de contenir des produits

chimiques toxiques [29].

Les autres sources industrielles de contamination incluent: le

nettoyage des réservoirs ou la pulvérisation d'équipement sur la

terre, l'évacuation de déchets dans les systèmes septiques ou les

puits secs, et le stockage de matériaux dangereux dans des

secteurs découverts ou dans les secteurs qui n'ont pas des

garnitures avec des drains ou des bassins de captation. D'autre

part, les souterrains et les réservoirs de stockage contenant des

produits pétroliers, des acides, des dissolvants ou des produits

chimiques peuvent avoir des fuites dus à la corrosion, à des

défauts, à des problèmes dans les installations,... L'exploitation

du carburant et des minerais non-combustibles peut créer une

contamination des eaux souterraines. Les problèmes proviennent

du processus d'extraction lui-même, de l'élimination des déchets,

et du traitement des minerais et des déchets qu'il crée [29].

I -1 -1-2-4 Contamination des eaux souterraines par les

déchets domestiques




Les systèmes résidentiels d'eaux usagées peuvent être une

source de différents types de contaminants, y compris des

bactéries, des virus, des nitrates, et des composés organiques.

Les puits utilisés pour l'évacuation des eaux domestiques

usagées (systèmes septiques, puisards, puits de drainage pour

l'écoulement de précipitations exceptionnelles, puits de recharge

d'eaux souterraines) sont particulièrement concernés par la

qualité des eaux souterraines s'ils sont placés près des puits d'eau

potable. Le stockage incorrect ou l'évacuation de produits

chimiques ménagers tels que les peintures, les détergents

synthétiques, les dissolvants, les huiles, les médicaments, les

désinfectants, les produits chimiques de piscine, les pesticides,

les batteries, l'essence et le carburant diesel peut mener à la

contamination des eaux souterraines. Lorsqu'ils sont entreposés

dans les garages ou les sous-sols, le nettoyage des planchers, les

flaques et les inondations peuvent introduire de tels

contaminants dans les eaux souterraines. Lorsqu'ils sont jetés

dans les poubelles des particuliers, ces produits seront

éventuellement introduits dans les eaux souterraines si les

déchetteries ne sont pas équipées pour traiter les matériaux

dangereux. De même, les déchets vidés ou enterrés dans la terre

peuvent souiller les sols et s'écouler dans les eaux souterraines

[29].

I -1-1 -2 Contamination des eaux souterraines par les eaux

de surface

Les eaux de surface (douces) sont celles qui coulent ou qui

stagnent à la surface du sol (fleuves, rivières, lacs, étangs,

barrages,…). Elles ont pour origine, soit des nappes souterraines

dont l’émergence constitue une source, soit les eaux de

ruissellement. Leur composition chimique dépend de la nature

des terrains rencontrés durant leur parcours [24].




Ces eaux sont le siège, dans la plus part des cas, d’un

développement d’une vie microbienne à cause des déchets

rejetés dedans et de l’importante surface de contact avec

l’extérieur. Les ressources en eau douce sont essentielles pour

l’homme qui les sollicite fortement, notamment dans le cadre de

ses activités agricoles [30].

Les estuaires sont des milieux de grande importance écologique

et économique [31].

La République de Guinée a un potentiel hydrologique riche et

diversifié qui, bien géré, peut largement servir de support pour

son développement et ses échanges à long terme avec les autres

nations [32].

Selon le Ministère de l’Hydraulique et de l’Energie (MHE),

82% des 245 857 km² qui forment le territoire guinéen, sont

drainés par 1161 cours d’eau dont l’ensemble constitue 23

bassins fluviaux avec 14 bassins internationaux. (Barry, 2005)

[32].

I -1-1 -3- Contamination des eaux souterraines par les eaux

de mer

Les mers sont les grandes masses d'eau salée qui recouvrent les

deux-tiers de la surface du globe terrestre, et elles représentent

près de 97,4 % de la capacité des grands réservoirs d'eau à la

surface de la terre [33].

La teneur moyenne en sel varie en fonction de l’arrivée d’eaux

douces (pluies et fleuves) : plus il y a d’eaux douces, moins il y

a de sel.

Le dessalement de l'eau de mer et celui des eaux saumâtres

constitue ces dernières années, la solution à la pénurie d'eau

dans de nombreuses parties du monde. Cependant, le coût de

dessalement demeure encore trop élevé [34].




II : CHIMIE DE L’ENVIRONNEMENT

II-1-Répartition de l’azote et du phosphore dans

l’environnement

La variation des teneurs en phosphore et en azote dans les eaux

naturelles provient principalement du drainage des terres

agricoles, de l’utilisation des détergents ainsi que des eaux usées

provenant des déchets humains ou domestiques. Toutefois, un

excès de phosphore et d’azote peut provoquer des résultats

indésirables, comme la prolifération des plantes dans les milieux

aquatiques, une telle surabondance peut entraîner

l’eutrophisation du milieu [35].

II-1-1- Le phosphore dans l’environnement

La lithosphère est la source ultime de tout le phosphore de la

biosphère. Bien que l’apatite soit l’un des minéraux primaires

les plus facilement altérés, le phosphore est parmi les minéraux

les moins biodisponibles. Ceci est du au fait que les formes du

phosphore dans la biosphère (différentes formes ioniques selon

le pH : H2PO41-

, HPO42-

, PO43-

; complexes minéraux, dits

occlus : Al-P, Fe-P, Ca-P, Si-P, et le phosphore organique) sont

faiblement solubles, immobiles ou rendues inaccessibles pour

d’autres raisons [35].

II-1-1-1- Cycle global du phosphore

Le cycle du phosphore (Schéma 1) ne possède pas de

composante gazeuse en quantité significative. Par conséquent,

seul le phosphure d’hydrogène PH3 n’affecte pratiquement pas

l’atmosphère. Ce cycle est appelé cycle sédimentaire puisqu’il

s’effectue principalement entre les océans et les continents. Le

phosphore est transformé dans les écosystèmes terrestres et

aquatiques, en phosphore organique par le métabolisme des êtres

vivants est ainsi absorbé par les plantes et transféré aux animaux

par leur alimentation [36].

Une autre partie est transportée vers les océans où une fraction

est utilisée par les organismes marins pour fabriquer leur




squelette. Une partie retourne aux sols à partir des excréments

des animaux et de la matière organique morte [36].

Une autre fraction du phosphore se dépose au font de l’océan

sous forme d’organismes morts ou de particules et est intégrée

aux sédiments. Ces derniers sont transformés progressivement

en roches sédimentaires par l’enfouissement ; et plus tard, ces

roches sont ramenées à la surface par les mouvements

tectoniques et le cycle recommence [36].

Schéma 1 : Cycle simplifié du phosphore sur la terre et la mer respectivement en 109t et 109 t/a [36].

Généralement, le phosphate total des sédiments se trouve sous

forme de molécules qui se décomposent ou s’associent avec des

acides [37]. Par conséquent, l’adsorption des phosphates sur les

sédiments est influencée par la température, le pH, la nature de

sédiment et sa granulométrie [38,39].

Ainsi, le pH, le potentiel redox et la température sont les

facteurs les plus importants à affecter la mobilisation du

phosphore à partir des sédiments [40,41].

I-2-1-2- Le phosphore dans les milieux aquatiques

Le phosphore apporté aux milieux aquatiques peut, selon sa

concentration et les caractéristiques du milieu, s’accumuler en




quantité élevée dans les sédiments [42]. En général, le

phosphore dans l’eau est sous forme de phosphore inorganique

particulaire et soluble, et sous forme de phosphore organique.

Le phosphore inorganique soluble présent en solution sous

forme d’ortho-phosphate provenant de l’hydrolyse de l’acide

phosphorique selon les réactions ci-dessous :

H3PO4 + H2O H2PO4 - + H3O

+

H2PO4 - + H2O HPO4

2- + H3O

+

HPO4 2-

+ H2O PO4 3-

+ H3O+

Le phosphore inorganique particulaire est constitué par l’apatite,

la variscite, les oxydes de fer et d’aluminium et la calcite. Le

phosphore organique est représenté par la matière organique

animale et végétale (la faune et la flore) vivante dans le milieu

aquatique [31].

Plusieurs études ont montré que, le phosphore total des

sédiments se trouve lié sous forme de molécules phosphatées.

Ces dernières se décomposent ou s’associent avec des acides et

que leur adsorption sur les sédiments se fait par des liaisons de

type Van Der Waals par échange des ligands OH- des

hydroxydes métalliques (FeOOH)n et (AlOOH)

n, et elle est

influencée par la température, le pH ainsi que la nature du

sédiment et sa granulométrie [43- 46].

Par ailleurs, plusieurs recherches ont montré que le pH, la

température et le potentiel-redox sont les facteurs les plus

importants qui agissent sur la mobilisation du phosphore à partir

des sédiments [47- 49].

I-2-2-L’azote dans l’environnement

L’azote (N) est l’un des éléments essentiels à la vie. C’est aussi

l’élément le plus abondant dans l’atmosphère, l’hydrosphère et

la biosphère du système terrestre [39].

Le cycle biogéochimique de l’azote décrit la succession des

modifications subies par les différentes formes de l'azote qui

Phosphore total = phosphore inorganique (particulaire + soluble) + phosphore

organique




sont : azote gazeux, nitrate, nitrite, ammoniac, azote organique

dont le processus est formalisé comme suit :

la fixation d'azote gazeux (N2+

) : réduction enzymatique de N2+

en azote ammoniacal, NH3 par des bactéries libres ou

symbiotiques, selon la réaction :

2N2 (g) + 3(CH2O) + 3H2O 4NH3 + 3CO2

Dans les écosystèmes où le pH est élevé, l’ammonium se

transforme en ammoniac gazeux :

NH4+ + OH

- NH3 (g) + H2O

La nitrification : transformation d'ions ammonium/ammoniac

en nitrites puis en nitrates par des bactéries dites nitrifiantes. La

réaction en chaîne est de type:

NH4 + NO2 NO3

-

Soit:

2NH4+ + 3O2 2NO2

- + 2H2O + 4H

+

2NO2- + O2 2NO3

-

La dénitrification : le retour de l’azote à l’atmosphère sous sa

forme moléculaire N2, avec comme produit secondaire du

dioxyde de carbone CO2 et de l’oxyde d’azote N2O, un gaz à

effet de serre contribue à détruire la couche d’ozone dans la

stratosphère. Il s’agit d’une réaction de réduction de NO3- par

l’intermédiaire des bactéries transformant la matière organique.

La réaction est de type :

4NO3- + 5(CH2O) + 4H

+ 2N2(g) + 5CO2(g) + 7H2O

I-2-2-1- Formes d’azote dans l’eau

Le schéma ci-dessous présente le cycle global de l’azote dans

l’environnement :

Schéma 2 : le cycle de l’azote [31]

Industrie - Décharges

Chimique - électriques

- Fabriques d’engrais

NH3

Ammoniaque

NH4+

Azote atmosphérique

N2

NITRATE

N03-




Oxydation Oxydation

Réduction Réduction

La forme d’azote dans les eaux de surface dépend de plusieurs

facteurs qui sont : le pH, la concentration d’oxygène dissous et

les communautés biologiques présentes. Toutes les formes

d’azote libérées dans les eaux de surface peuvent se transformer

en nitrates sous l’action des bactéries.

Des nitrates peuvent également aboutir directement dans les

eaux de surface par les dépôts atmosphériques, le ruissellement

superficiel et l’infiltration d’eau souterraine dans les cours d’eau

et les lacs.

Une plus grande quantité d’azote (sous forme de nitrates)

pénètre dans les eaux de surface beaucoup plus par des sources

diffuses, comme les dépôts atmosphériques et le ruissellement

des eaux agricoles et domestiques, que par des sources

ponctuelles comme les effluents d’eaux usées municipales ou les

rejets industriels.

Dans les eaux naturelles, on distingue la forme réduite

correspondant à l’azote total de Kjeldahl (NTK) et la forme

réduite qui correspond à NO3- et NO2

- [31].

I-2-3- L’eutrophisation

Le phénomène d’eutrophisation est due à l’enrichissement du

milieu aquatique en éléments nutritifs (nitrates, phosphates)

[40].

La présence de ces deux composants chimiques (azote et

phosphore) dans les eaux naturelles, favorise la croissance des

végétaux aquatiques entraînant une prolifération d'algues

microscopiques, principalement dans la partie supérieure des

eaux [40].

Le processus d’eutrophisation peut résulter des épandages

agricoles (engrais riches en azote et phosphore), de

NO2-

Nitrites




l'accroissement des rejets industriels, urbains ou agricoles

excessivement riches en nutriments et en matière organique

[40].

Les algues se développent selon le processus de la

photosynthèse durant le jour, par absorption opérée par la

chlorophylle, de l'énergie lumineuse et solaire.

Les algues en se décomposant, consomment d'énormes quantités

d'oxygène dissous dans l'eau [40].

III- POLLUTION CHIMIQUE DE L’EAU DE

CONSOMMATION

III-1 - Pollution des eaux

III-1-1 Substances polluantes de l’eau

Les substances polluantes de l’eau sont celles qui la rendent

impropre à la consommation ou qui dégradent certaines de ses

propriétés [41]. Parmi ces composés, outre certains composés

biologiquement dégradables comme les substances nutritives, on

compte aussi de nombreux polluants difficilement dégradables,

par exemple ceux qui contiennent des huiles minérales, des

résidus de pesticides, des métaux ou des hydrocarbures

halogénés. Dans le cas idéal, les déchets organiques se

décomposent par autoépuration biologique jusqu'à

minéralisation complète pour finir sous forme de substances

inorganiques. D’autres polluants, introduits dans

l’environnement par l’industrie, sont pratiquement réfractaires à

toute forme de dégradation par voie biologique. Leur teneur

augmente dans les eaux, les sédiments et les organismes

aquatiques [42,43].

III-1-2- Pollution des eaux par l’utilisation des engrais et des

pesticides

Tableau 1 : Flux de pollution industrielle (en tonnes) [44]

1993 2020

Matières oxydables 72000 220000

Azote total 3300 9000




Phosphore total 200 600

Chrome 110 1200

De façon générale, l’agriculture est une grande consommatrice

d’eau. Dans les conditions arides et semi arides, les exploitants

agricoles sont amenés à utiliser différentes sources d’eaux pour

l’arrosage de leurs cultures [44].

D’après le Tableau 1, on estime qu’en 2020, la pollution

véhiculée par les rejets liquides industriels sera de l’ordre de

9000 tonnes d’azote et 600 tonnes de phosphore et 1200 tonnes

de chrome.

L’impact des rejets industriels sur la qualité de l’eau est fonction

de l’affinité de ces rejets pour l’oxygène, de la quantité de

solides en suspension, et de leurs teneurs en substances

organiques et inorganiques.

III-2- Généralités sur les polluants métalliques

La contamination des eaux de surface et des sols par les métaux

lourds croit de plus en plus avec le temps. Les métaux lourds ne

sont pas biodégradables et la pollution de ces milieux est

essentiellement liée à l'activité humaine. C’est un problème

environnemental majeur et le traitement de ces effluents s’avère

de plus en plus capitale et il est nécessaire de développer des

techniques pour décontaminer les sites pollués. Les sources de

pollution et les méthodes de traitement diffèrent selon la nature

et l’origine de l’eau à traiter [46].

De nos jours, les métaux lourds représentent un groupe

d’éléments qui a simultanément un poids économique

considérable, mais un potentiel polluant indéniable. Certains

métaux et plus particulièrement ceux que l'on regroupe parmi les

métaux lourds constituent une préoccupation majeure dans le

domaine de l'environnement. Ils sont toxiques même à faible

concentration et ont la capacité de s'accumuler tout au long de la

chaîne alimentaire. Parmi ces éléments, on peut distinguer les




éléments sous forme de traces comme le chrome (Cr), le plomb

(Pb), le cadmium (Cd) et le mercure (Hg). [46-48]

Ces éléments sont présents en faibles concentrations dans

l’environnement et l’augmentation de leur teneur résulte

généralement des activités humaines. La majorité de ces

éléments est toxique à forte concentration, mais certains d’entre

eux sont très toxiques même lorsqu’ils sont en traces comme les

ions Pb2+ et Cr6

+ [50-53]. Par conséquent, il est recommandé de

réduire ou d’éliminer totalement ces polluants des écosystèmes

[54].

Afin de protéger la population humaine des effets de la

contamination des milieux poreux et aquatiques par les métaux

lourds, des seuils critiques à partir desquels des effets dangereux

peuvent être observés ont été établis [55].

Cependant, la capacité des organismes à assimiler les métaux

sous forme de traces et la toxicité de ces derniers dépendent des

formes chimiques sous lesquelles se présentent ces métaux [56-

58].

Différents solides poreux sont actuellement utilisés ou en phase

de développement pour stabiliser des déchets provenant de

diverses origines : cations métalliques, déchets nucléaires [58].

III-2-1- Les métaux dans l’environnement

Les processus d’érosion naturels sont des sources importantes de

la délivrance des ions métalliques qui peuvent être transportés

vers les eaux de surface. De plus, la production de déchets par

l'ensemble des activités humaines est en augmentation

constante.

La prise de conscience du problème des polluants minéraux dans

les eaux destinées à la consommation humaine a conduit les

pouvoirs publics à mettre en place des législations de plus en

plus sévères vis-à-vis des rejets d'origines diverses. Ces

polluants minéraux sont essentiellement les métaux lourds dotés

de propriétés chimiques particulières leur conférant une réelle




toxicité aussi bien vis-à-vis de l'être humain qu'à l'égard des

organismes vivants des règnes animal et végétal.

III-2-2-Transfert des métaux lourds dans l’eau

La plus grande partie des métaux lourds dissous transportés par

les systèmes aquatiques naturels est sous des conditions

physicochimiques normales, fixés sur la matière en suspension

sous l’effet du phénomène d'adsorption. Ces métaux

immobilisés dans les sédiments n'y restent pas définitivement

mais peuvent se retrouver en solution dans l'eau sous l’action

d'un acide dans le milieu, par exemple [59].

A propos des teneurs métalliques dans la matière en suspension,

des études ont montré une relation linéaire entre les teneurs en

métaux lourds et la taille des particules pour des tailles

inférieures à 16 μm dans des échantillons récoltés au même

endroit. Il a été noté que, dans la plupart des rivières, l'équilibre

ne peut être complètement établi entre les deux phases solide et

aqueuse à cause de la courte durée d'existence des métaux en

solution et que ces derniers peuvent s'éliminer progressivement

de la phase aqueuse en fonction de la distance parcourue

[59,60].

Ainsi, les chlorures (à l'exception de ceux d'Ag, Pb et Mg) et les

sulfates de tous les métaux lourds sont rapidement solubles alors

que les carbonates, hydroxydes et sulfates se dissolvent très

difficilement. La solubilité varie avec la forme chimique

considérée. En effet, les formes hydroxydes sont converties

progressivement en des formes stables et inactives ; tandis que,

les formes sulfures sont pratiquement insolubles à pH neutre.

Pour les formes carbonates, leur solubilité dépend de la pression

partielle en CO2, exemple la solubilité du carbonate de Pb

(PbCO3) dans l'eau qui peut être augmentée par la présence du

gaz carbonique [59,60].




III-2-3- Remobilisation des métaux lourds à partir des

sédiments

Les métaux lourds une fois associés aux sédiments, peuvent être

relargués à la suite de certains changements chimique des

milieux [63]. Il en est de même lors de l'augmentation de la

teneur en sel, dans le milieu, ainsi les cations alcalins et

alcalinoterreux peuvent être en compétition avec les métaux

lourds liés aux particules solides [64].

Dans le cas des changements dans le potentiel Redox dus à la

diminution de la quantité d'oxygène dissous, les hydroxydes de

fer et de manganèse sont partiellement ou complètement dissous

ainsi que les métaux lourds qui sont incorporées. Les métaux

lourds peuvent être relargués à la suite d'une diminution de pH

ce qui permet d'une part de remettre en solution les métaux

précipités sous forme de carbonates ou d'hydroxydes et d'autre

part d'augmenter la désorption des métaux liés aux particules

solides [64].

Les bactéries peuvent également intervenir dans la

remobilisation des métaux lourds à partir des sédiments. En

effet, certaines bactéries sont capables de transporter le mercure

contenu dans les sédiments par méthylation et de le remettre

ainsi en solution [64].

III-2-4- Pollution par des métaux lourds

Les métaux lourds étudiés au cours de ce travail sont :

- Le Plomb : la forme la plus fréquente dans les milieux

naturels est Pb2+, ses caractéristiques physico-chimiques le

rapprochent des alcalino-terreux (Ca2+ et Ba2+). Parmi les

métaux lourds, le plomb a le plus grand rayon ionique (1.75 Å).

Il n’est pas essentiel pour les organismes et sa présence à des

taux élevés est toxique. Le plomb est connu pour entraver la

fabrication de l’hémoglobine et modifier la composition du

sang. Il agit également sur le système nerveux central et

provoque le saturnisme. Il provient essentiellement du carburant,




des batteries et de la peinture. A l’état naturel il se trouve dans la

galène (PbS). Il peut être également rencontré sous la forme

d’anglésite (PbSO4) et de cérusite (PbCO3). La concentration en

Pb dans la croûte terrestre est d’environ 17 mg/kg [65], mais

dans les zones urbaines et industrielles, elle se situe à des

teneurs comprises entre 100 et 500 mg/kg [66]. Le Pb est

généralement considéré comme étant fortement retenu dans les

sols et donc peu mobile, en particulier en conditions réductrices

[67]. Cet élément peut être associé aux sulfates et aux

carbonates mais aussi aux argiles et à la matière organique

suivant le pH. Cet élément a beaucoup d’affinités avec le

cadmium Cd et le zinc Zn. Lors de l’altération de minéraux

primaires, le Pb peut être fixé par des argiles comme la kaolinite

[68].

- Le chrome : Il provient généralement des résidus de

galvanoplastie, des tanneries, des raffineries et de l’industrie de

textile [69]. Il est toxique surtout sous forme de Cr VI

(chromate), il passe sous forme de Cr III (sels chromiques) en

milieu naturel. Le Cr VI est mutagène et cancérogène [70]. Les

quantités de chrome détectées dans les écosystèmes sont liées à

des émissions d'origine industrielle. Les déchets contenant du

chrome sont considérés comme des problématiques en raison de

leur comportement dans les couches profondes du sol lorsqu'ils

sont stockés dans des décharges. En milieu alcalin, on estime

que la stabilité des chromates peut atteindre 50 ans, et qu'ils

peuvent migrer vers les nappes aquifères, même au travers de

sols cohérents [71].

La combustion de boues contenant des composés chromiques

cause la pollution atmosphérique et par la suite affecte les

milieux aquatiques via les précipitations. Dans les systèmes

aquatiques, la toxicité des dérivés solubles du chrome varie en

fonction de la température, du pH, de la dureté de l'eau et de la

présence d’espèces bactériennes aquatiques. Les chromates ont




une bonne solubilité dans l'eau, mais dans le milieu naturel, ils

se transforment aisément en présence de matières organiques

oxydables, en composés de chrome (III), lesquels sont

relativement stables et de moindre hydrosolubilité [72-83].

- Mercure : Le Mercure, en raison de propriétés physiques et

chimiques très particulières, est un métal qui est utilisé dans de

nombreuses industries (industrie nucléaire, industrie du gallium,

industrie pharmaceutique, tanneries, fabrication d’instruments

de mesure, de piles, de tubes fluorescents, d’amalgames

dentaires, de la soude, du chlore et de l’eau de Javel par

électrolyse, ...) [84].

Les composés mercuriels sont rejetés dans l’environnement sous

forme de mercure inorganique ou organique. Tous les composés

mercuriels sont, dans une certaine mesure, toxiques [84].

Parmi eux, il est toutefois reconnu que le méthylmercure est le

plus dangereux du fait de sa stabilité et de la facilité avec

laquelle il est assimilé par les organismes vivants : en

particulier, il s’accumule dans la chair des poissons et des

crustacés jusqu’à des concentrations de 2000 à 10 000 fois celles

du milieu environnant [84].

L’ion méthylmercure et d’autres composés organomercuriels

sont responsables de l’inhibition de la croissance et de la

photosynthèse du phytoplancton pour les concentrations de

l’ordre de 0.0001 mg/l. En ce qui concerne la faune piscicole, les

concentrations létales pour des effets mesurés sur des durées de

plusieurs semaines ou plusieurs mois sont d’environ 0.1 mg/l

pour la plupart des espèces [84].

Chez l’homme, le mercure diffuse très rapidement à travers la

paroi alvéolaire des poumons sous sa forme élémentaire ou sous

forme de méthylmercure, mais peut également pénétrer dans

l’organisme par voie intestinale, notamment par consommation




de produits contaminés (sels mercuriques, dérivés organiques),

ou par voie cutanée (organo-mercuriels). Les conséquences

d’intoxications au mercure sont très variables selon qu’il

s’agisse d’intoxications aiguës ou chroniques : de nombreux

organes sont susceptibles d’être gravement affectés et les

symptômes concernent le plus souvent le système nerveux, les

yeux et les reins [84].

Le mercure est un élément chalcophile de la troisième série de

transition. Il possède trois degrés d’oxydation : 0, +I et +II et

dans l’environnement, il est présent sous forme dissoute dans les

eaux minérale et gazeuse. Dans la croûte terrestre, la

concentration en Hg est de l’ordre de 50-150 μg/kg [71],

principalement sous forme de minerai de sulfure de mercure

HgS (cinabre). Il est souvent rencontré dans les zones

supérieures des gisements de soufre, où il est le plus souvent

associé à la marcassite (FeS2). Dans les sols et les sédiments, le

Hg se concentre principalement dans la fraction fine en se liant

avec les argiles, les hydroxydes de Fe ou la matière organique

[72].

- Cadmium : Le Cadmium est principalement un sous-produit

de la métallurgie du zinc (l’élaboration de chaque tonne de zinc

produit en moyenne 3 kilogrammes de cadmium), ainsi qu’un

résidu des activités de métallisation, de fabrication

d’accumulateurs cadmium-nickel, d’alliages métalliques divers,

et de fabrication d’acide phosphorique et d’engrais phosphatés

(phosphogypse) [84].

Les divers composés du cadmium présentent des effets toxiques

très variables selon leur solubilité et, donc, leur facilité

d’assimilation par l’organisme. Ainsi, le chlorure de cadmium,

soluble, apparaît plus toxique que le sulfure de cadmium très

insoluble [84].




Le cadmium est un élément chalcophile, ce qui favorise son

association avec Zn et Hg et dans une moindre mesure avec Pb

et Cu [73]. L’abondance naturelle de Cd dans l’écorce terrestre

est de 0.11 mg/kg [65,73]. Le Cd possède 2 états de valence (0,

+II), mais n’est présent dans les eaux naturelles que sous sa

forme divalente. Près de 95 % du Cd transporté par les rivières

serait sous forme particulaire et associé à des molécules

d’hydratation et des carbonates [74,75]. Le cadmium naturel est

présent à l’état de traces, il provient aussi des résidus de placage

électronique et des engrais chimiques [76]. Le cadmium peut

être transporté sur de longues distances lorsqu'il est absorbé par

les boues. Ces boues riches en cadmium peuvent polluer aussi

bien les eaux de surface que les sols [77].

La toxicité du cadmium vis-à-vis du poisson est assez mal

connue. Les effets observés au cours des tests dépendent

fréquemment de l’animal testé, de son âge, de la composition de

l’eau, et de la température. Les seuils correspondant aux effets

toxiques observés varient entre 0.01 et 10 mg/l. Pour la Daphnie,

on observe une limite de toxicité à 0.1 mg/l. Il faut également

noter le pouvoir synergique important du cadmium vis-à-vis

d’autres métaux (cuivre en particulier) et du cyanure [84].

Chez l’Homme, le cadmium est surtout toxique par inhalation

ou, plus rarement, par voie digestive (de l’ordre de 5% des

quantités ingérées). En revanche, aucun effet significatif n’a été

mis en évidence par voie cutanée. Le principal danger du

cadmium réside dans son effet cumulatif, il peut entraîner,

notamment, des lésions des tissus rénaux se traduisant par une

protéinurie, ainsi qu’une pathologie osseuse dénommée

"maladie d’Itaï-Itaï" [84].

- Arsenic : L’Arsenic est un métalloïde utilisé en métallurgie, dans la

fabrication du verre et de la céramique, dans les tanneries, dans la

teinturerie et dans l’industrie chimique. Son utilisation principale est




la fabrication des pesticides et la protection du bois. Il est également

un sous-produit de l’exploitation de certains minerais de métaux

(pyrites de fer, minerais sulfureux de cuivre, argent, or, plomb, ...)

[84].

Les concentrations létales pour la plupart des poissons sont

comprises entre 3 et 8 mg/l pour des durées d’expérience

comprises entre 3 et 10 jours. Par ailleurs, on estime que des

concentrations de 2 à 4 mg/l n’interfèrent pas sur le pouvoir

auto-épurateur des rivières [84].

L’arsenic est connu pour être particulièrement toxique pour

l’homme (l’ingestion de 100 à 150 mg/l est suffisante pour

provoquer un empoissonnement grave). En outre, il a un effet

cumulatif dans le corps humain et sa vitesse de disparition lente

peut conduire à des conséquences graves sur la santé après

absorption répétée de doses faibles [84].

Les manifestations de l’intoxication arsenicale sont très

polymorphes ; le tube digestif, le foie, les reins, le cœur, le

système nerveux et la peau sont le plus souvent touchés [84].

- Plomb : Le Plomb se distingue par une série de propriétés originales

qui déterminent des emplois spécifiques, à savoir, en particulier, une

inertie chimique face aux acides, une forte densité, un faible point de

fusion, et une ductilité élevée [84].

Les principaux secteurs industriels concernés, outre l’industrie

de l’extraction et du traitement des minerais, sont le génie

chimique avec, notamment, la fabrication du plomb tétra-éthyle

(carburants au plomb), la cristallerie, la fabrication

d’accumulateurs, de câbles, de tôles plombées, de stabilisants,

d’explosifs, de colorant (minium, céruse, jaune de chrome, ...).

Le plomb ne reste généralement pas très longtemps en solution

dans les eaux du milieu naturel car, à l’exception de certains sels




très solubles comme les acétates et les chlorures, il est insoluble

sous forme de carbonate et d’hydroxyde ou très peu soluble sous

forme de sulfates [84].

Les micro-organismes responsables des phénomènes de

dégradation des matières organiques sont sensibles au plomb dès

0.1 mg/l. La toxicité vis-à-vis des poissons est variable selon la

minéralisation des eaux (toxicité maximale dans les eaux peu

calcaires) et l’espèce étudiée [84].

Comme le mercure, le plomb est susceptible de donner des

composés toxiques par combinaison avec un radical organique

(substances issues d’un phénomène de méthylation ou

d’éthylation) [84].

Chez l’homme, les deux grandes voies d’assimilation du plomb

sont les voies digestive et pulmonaire. La manifestation du

saturnisme est conditionnée par la longue rétention du plomb

dans l’organisme, ce qui en fait un poison typiquement

cumulatif [84].

- Cyanures : Les Cyanures sont analytiquement absents dans les eaux

naturelles. Leur présence est liée aux rejets d’activités industrielles

spécifiques (cokeries, hauts fourneaux, traitements de surfaces,

pétrochimie, ...) [84].

Bien que la toxicité soit généralement exprimée sous forme

d’ions cyanures, il est reconnu que la forme la plus toxique est la

forme non dissociée (HCN). En pratique donc, l’effet toxique est

peu marqué au delà de pH 10, mais devient très important en

deçà de pH 8 (c’est-à-dire dans le domaine habituel de pH des

eaux superficielles). La toxicité devient également marquée

lorsque la température croît ou lorsque la teneur en oxygène

dissous du milieu diminue [84].




Chez les poissons, les cyanures inhibent l’enzyme permettant le

transfert de l’oxygène du sang vers les tissus. La toxicité est

variable selon la minéralisation et les espèces (une concentration

de 0.2 mg/l en CN, par exemple, constitue une concentration

létale moyenne pour 50 % des individus sur une durée comprise

entre 10 minutes et 5 jours suivant les auteurs pour la truite arc-

en-ciel) [84].

- Fluorures : Comme la plupart des métalloïdes, le fluor n’est jamais

rencontré sous sa forme moléculaire libre. Il apparaît comme

constituant du spath-fluor, du fluorure de calcium, de la cryolite, des

fluorures de sodium et d’aluminium, et de diverses roches

sédimentaires.

Les fluorures ne se trouvent généralement pas d’une façon

naturelle en quantité dangereuse dans les eaux superficielles ;

néanmoins, on peut trouver, de manière exceptionnelle, certaines

eaux naturelles présentant des teneurs en fluor atteignant jusqu’à

10 mg/l.

Les sources industrielles de pollution par le fluor comprennent

les activités de fabrication de fluor et de sels de fluor, de cryolite

artificielle, d’aluminium (procédé électrolytique), et les activités

de traitement de surfaces.

La présence de fluorures en quantité notable dans l’eau est

susceptible de provoquer des effets toxiques importants sur les

organismes aquatiques. Les symptômes d’intoxication présentés

par les poissons correspondent à un état apathique et anorexique

avec sécrétion accrue de mucus.

Par ailleurs, les fluorures induisent des modifications de la

composition du sang des poissons ; notamment, la teneur en

protéines du sérum diminue lors d’une intoxication. En outre, les

fluorures se fixent au niveau des tissus osseux, qui constituent à




ce titre d’excellents indicateurs de la contamination de la faune

piscicole par ces toxiques.

Les effets des fluorures sur les organismes aquatiques sont

fonction de nombreux paramètres, et en particulier des

concentrations en calcium, en magnésium et en chlorures du

milieu. On admet en général que des concentrations en fluorures

de l’ordre de 1,5 à 2,0 mg/l sont sans effet sur la faune et la flore

aquatique [81].

III-3- Etude de la conductivité électrique de l’eau

La conductivité de l’eau est une mesure de sa capacité à

conduire le courant électrique. L’unité de mesure communément

utilisée est (μS/cm). Elle est directement proportionnelle à la

quantité des sels minéraux dissous dans l’eau et constitués de

cations et d'anions.

La mesure de la conductivité permet d'apprécier rapidement

mais très approximativement la minéralisation de l’eau et de

suivre son évolution. Comme la conductivité donne une

indication sur la qualité d’eau et sa minéralisation globale, cette

minéralisation est liée à la conductivité à 20°C comme il est

indiqué sur le tableau 2.

Tableau 2 : Rapport entre la conductivité et la

minéralisation [81]

Conductivité Minéralisation

0-100 μS/cm Minéralisation très faible

100-200 μS/cm Minéralisation faible

200-333 μS/cm Minéralisation moyenne accentuée

333-666 μS/cm Minéralisation accentuée

666-1000 μS/cm Minéralisation importante

> 1000 μS/cm Minéralisation élevée

En effet, comme le montre ce tableau, la conductivité augmente

avec la minéralisation à une température bien déterminée.

En outre, la minéralisation de la plupart des eaux est dominée

par les ions majeurs, qui sont : le calcium, le magnésium, le




sodium, le potassium, le chlorure, les sulfates, les nitrates et les

hydrogénocarbonates [81].

Toutefois, la détermination de la teneur de ces ions dans l’eau

directement à partir de la conductivité semble complexe vu la

forte variation de la teneur en ces ions [81].

La conductivité électrique, en tant que paramètre brut, mesure la

concentration en ions d’une solution. Plus il y a de sels, d’acides

ou de bases dissociés dans une solution, plus sa conductivité est

élevée. Dans l’eau, il s’agit surtout d’ions de sels dissous. La

conductivité exprime ainsi la charge en sels de l’eau ou le degré

de pureté d’une eau [81].

La conductivité est le produit de la conductance de la solution

par la constante géométrique de la cellule de mesure. Pour les

solutions aqueuses l’échelle commence avec une conductivité de

0,05 μS/cm (25 °C) pour l’eau la plus pure. La conductivité des

eaux naturelles comme les eaux potables ou des eaux

superficielles est comprise dans la plage 100 - 1000 μS/cm. En

haut de l’échelle le graphique 1, on trouve certains acides et

bases [79].

Graphique 1 : Plage de conductivité de solutions aqueuses

[79].




La conductivité varie en fonction de la température [80]. Elle est

reliée à la concentration et à la nature des substances dissoutes.

En général, les sels minéraux sont de bons conducteurs, par

opposition à la matière organique et colloïdale, qui conduisent

peu [79].

La conductivité est un paramètre dont on ne peut plus se passer

en analyse moderne des eaux et permet d'évaluer rapidement le

degré de minéralisation d'une eau et d'estimer le volume

d'échantillon nécessaire pour certaines déterminations chimiques

[79].

PH : Les eaux superficielles constituent un système physico-

chimique complexe tamponné par les divers équilibres entre les

espèces moléculaires ou ionisées présentes, dont les équilibres

carboniques.

En général, les effets du pH se font surtout sentir par l’influence

qu’exerce ce paramètre sur les équilibres entre les autres

composés du milieu (azote ammoniacal, sulfure de sodium,

acide cyanhydrique, etc.) lorsqu’ils ont une toxicité variable

selon qu’ils se trouvent ou non sous forme ionisée [84].

Température : La température est l’un des facteurs écologiques

les plus importants parmi tous ceux qui agissent sur les

organismes aquatiques. Elle joue un rôle primordial dans la

distribution des espèces, aussi bien par ses niveaux extrêmes que

par ses variations diurnes ou saisonnières.

La plupart des réactions chimiques vitales sont ralenties voire

arrêtées par un abaissement important de température. A

contrario, des augmentations de température peuvent avoir pour

effet de tuer certaines espèces, mais également de favoriser le

développement d’autres espèces en entraînant ainsi un

déséquilibre écologique [84].




Pour chaque espèce, on définit un préférendum chimique qui

correspond à la zone de température où le poisson se tient le

plus facilement quand il est libre de se déplacer dans un gradient

de température. Par exemple, la température préférentielle est de

15°C pour la truite arc-en-ciel et de 23-24°C pour le gardon

[84].

III-3-1- Identification de quelques anions indicateurs de la

composition minérale

I-3-1-1- Chlorures

Généralement, les chlorures servent à désinfecter l’eau, la valeur

directive est limitée à 750 mg/L. Pour des concentrations

supérieures à cette valeur, le chlorure donne un mauvais goût à

l'eau et aux boissons préparées à partir d'eau. La présence de cet

ion dans les eaux naturelles est due soit au lessivage des roches

et des sols sédimentaires, soit à la désinfection des eaux

domestiques et des procédés industriels qui emploient le chlore

comme agent de blanchissement, des agents de nettoyage

domestique et du sel répandu sur les routes en hiver [81].

III-3-1-2- Sulfates

Les ions sulfates proviennent de la dissolution du gypse CaSO4,

2H2O) et par l’oxydation des sulfures en sulfates dans les

déchets miniers. Les principales sources industrielles sont les

effluents des tanneries, des ateliers de décapage métallique, des

usines de textile et des fabriques de pâtes et papiers [81].

Les ions sulfates sont très solubles et leur concentration est très

variable dans les eaux naturelles. La norme marocaine pour les

sulfates est de 400 mg/L. La présence de ces ions en quantité

supérieure à 300 mg/L peut entraîner dans certaines conditions

une attaque du béton et accélérer la corrosion du fer.

Des teneurs limites en sulfates sont nécessaires pour certaines

industries, ainsi des concentrations élevées en ces ions peuvent

poser des problèmes en agriculture, pour l’irrigation et




l’abreuvage. Une teneur supérieure à 480 mg/L rend l’eau

impropre à l’agriculture [81].

III-3-1-3- Nitrates

Les nitrates sont les formes d’azote les plus solubles dans l’eau.

Par conséquent, leurs concentrations varient selon les

événements hydrologiques atteignant ou dépassant parfois leurs

critères respectifs de qualité pour l’eau brute d’alimentation

humaine [31,87].

La présence de ces ions dans une eau est un indicateur de la

pollution de cette eau. Ces ions proviennent soit naturellement

du sol, soit de la pollution par l’industrie chimique, des

décharges électriques ou des engrais azotés [81].

Les eaux naturelles contiennent normalement des nitrates à des

doses variant selon les saisons. Les concentrations de ces ions

d’origine naturelle dans les eaux de surface et souterraines sont

généralement de quelques milligrammes par litre. Dans de

nombreuses eaux souterraines et de surfaces, on observe

aujourd’hui une augmentation de la concentration de ces ions.

La valeur maximale admissible en cet ion, d’après les normes

marocaines relatives à la qualité des eaux d’alimentation

humaine, est de 50 mg/L [81,87].

TDS : Les matières en suspension se composent de fines

particules insolubles. Leur provenance est variée : érosion des

sols, détritus organiques, rejets urbains ou industriels (agro-

alimentaires, papeterie, textile, chimie) [84].

Leur présence excessive peut augmenter la turbidité du milieu et

réduire la production photosynthétique, générer des carences en

oxygène, ou encore avoir des effets mécaniques sur les poissons

par colmatage des branchies ou sédimentation des zones de

frayères [84].

DBO5 : La DBO ou demande biochimique en oxygène à 5 jours

est la quantité d’oxygène nécessaire à la destruction ou à la




dégradation des matières organiques d’une eau par les micro-

organismes du milieu [84].

Ce paramètre est utilisable soit pour quantifier la charge

polluante organique de l’eau, soit pour évaluer l’impact d’un

rejet sur le milieu naturel (toute matière organique

biodégradable rejetée va entraîner une consommation d’oxygène

au cours des procédés d’autoépuration), soit pour évaluer

l’intensité du traitement nécessaire à l’épuration d’un rejet par

un procédé biologique [84].

Les valeurs de DBO mesurées dans l’industrie peuvent être très

faibles pour des eaux résiduaires peu biodégradables et aller

jusqu’à plusieurs grammes par litre dans des secteurs comme

l’agro-alimentaire [84].

DCO : La DCO ou demande chimique en oxygène représente

tout ce qui est susceptible de demander de l’oxygène, en

particulier les sels minéraux oxydables (sulfures, sels de

métaux,...) et la majeure partie des composés organiques,

biodégradables ou non [84].

Elle nous renseigne de cette manière sur la charge organique

totale des eaux.

Azote global : L’azote global est la somme des différentes

formes de l’azote :

1) les formes réduites (ou NTK) qui sont l’azote organique

(protéines, polypeptides, acides aminés, urée, hydrazine, etc.) et

l’azote ammoniacal.

2) les formes oxydées qui sont l’azote nitreux et l’azote nitrique.

Les nitrates en eux-mêmes semblent peu toxiques vis-à-vis de la

faune aquatique. L’azote des nitrates avec, dans une moindre

mesure, celui des nitrites et de l’ammoniaque, est l’un des




éléments nutritifs majeurs des végétaux, dans lesquels il est

métabolisé pour fournir essentiellement des protéines, des acides

nucléiques et les polymères des parois cellulaires. Les nitrates

constituent un facteur d’eutrophisation mais, pratiquement, on

estime qu’ils n’induisent pas de développement d’algues

gênantes en dessous d’une teneur de 2 à 5 mg/l dans le milieu

récepteur [84].

Les nitrites peuvent être très présents dans l’eau sous forme non

ionisée d’acide nitreux ou ionisée. La première forme, qui

apparaît dans certaines conditions de température et de pH, est la

plus toxique pour les organismes vivants : l’azote nitreux

intervient dans le phénomène de méthémoglobinémie et dans la

production soupçonnée de nitrosamines. Dans le milieu naturel,

sa toxicité se manifeste à faible dose, en particulier chez les

espèces de saumons [84].

L’azote ammoniacal se trouve dans les eaux sous forme ionisée,

peu néfaste vis-à-vis de la faune aquatique, ou sous forme

hydratée qui, en revanche, peut entraîner de graves

conséquences sur les milieux récepteurs du fait de sa toxicité.

L’ammoniaque provoque, même à de faibles concentrations, des

lésions branchiales qui limitent les échanges entre le sang et le

milieu extérieur [84].

Phosphore total : Les eaux résiduaires industrielles peuvent

éventuellement comporter des teneurs non négligeables en

phosphore, comme par exemple, dans le cas de certaines

industries agro-alimentaires et chimiques [84].

Les orthophosphates présentent rarement une toxicité vis-à-vis

du poisson et sont d’ailleurs utilisés en pisciculture pour

augmenter la biomasse planctonique. Cependant, en trop

grandes quantités, ils favorisent l’eutrophisation [84].




A ce titre, outre la réduction du taux d’oxygène du milieu

aquatique la nuit, on rappellera que les principales nuisances

liées à l’eutrophisation sont :

1) une modification de l’équilibre carbonique et une élévation

du pH le jour par accroissement de la photosynthèse, ce qui peut

provoquer des phénomènes de toxicité aigüe de l’ammoniac ;

2) une gêne pour la production d’eau potable du fait de la

prolifération de phytoplancton, qui perturbe la décantation et la

filtration, et du fait de la sécrétion de substances toxiques par

certaines algues, qui confèrent un goût désagréable à l’eau ;

3) un risque de relargage de substances indésirables ou toxiques

(hydrogène sulfuré, métaux lourds, ...) par le dépôt de matière

organique dans le lit des cours d’eau et le fond des lacs ;

4) une toxicité pour le poisson dans les cas extrêmes, soit par

colmatage direct des branchies, soit en raison des sécrétions des

algues.

Pour les eaux douces, le phosphore est généralement considéré

comme le facteur limitant sur lequel il est possible d’agir

efficacement pour combattre l’eutrophisation, tandis que l’azote

serait limitant pour l’eutrophisation des eaux marines.

Cuivre : Le Cuivre est utilisé dans le domaine de la métallurgie,

dans l’industrie électrique, le textile, les tanneries, l’industrie

photographique, le traitement de surfaces, la fabrication des

insecticides, etc.

La toxicité du cuivre varie en fonction des espèces et des

caractéristiques physico-chimiques de l’eau ; elle dépend en

particulier de la température, de la concentration en oxygène

dissous, de la dureté et de la quantité de dioxyde de carbone

libre.




En présence d’une eau dure, une grande partie du cuivre sera

précipitée sous forme de composés insolubles et, en particulier,

de carbonate (on estime que des concentrations comprises entre

0.1 et 1 mg/l en eau dure sont sans danger pour la plupart des

poissons, tandis que ces mêmes concentrations ont pour

conséquence des effets toxiques sur de nombreuses espèces en

eau peu calcaire).

La présence de phosphates et de magnésium semble jouer un

rôle dans la toxicité des sels de cuivre. Par ailleurs, des effets

synergiques ont été notés en présence de chlore libre, de zinc, de

cadmium ou de mercure. Le cuivre n’a pas d’effet cumulatif

chez l’homme et les intoxications sont exceptionnelles [84].

Zinc : Le Zinc sous forme de métal est utilisé dans des

domaines industriels aussi divers que la galvanisation, la

fabrication d’alliages (notamment les laitons), les déplacements

de métaux précieux, l’imprimerie, la teinturerie, etc. Sous forme

de sels, il intervient dans la fabrication de pigments en peinture,

de caoutchouc, de piles, d’insecticides, dans l’industrie du

traitement de surfaces et l’industrie pharmaceutique, ... [84].

Les sels tels que les chlorures et les sulfates sont extrêmement

solubles et il y a donc des risques importants de les retrouver

partiellement dans le milieu naturel. En revanche, les

carbonates, les oxydes et les sulfures sont insolubles et il est

donc facile de les éliminer lors de l’épuration des eaux

résiduaires [84].

Vis-à-vis des poissons et des autres organismes aquatiques, le

zinc présente une toxicité variable selon la dureté de l’eau.

Ainsi, pour une espèce donnée, la concentration létale est de 0.3

mg/l dans une eau contenant 1 mg/l de calcium alors qu’elle est

supérieure à 2 mg/l sur 96 heures pour la même espèce dans une

eau contenant 50 mg/l de calcium [84].




L’effet toxique n’est en général pas immédiat et un poisson

soumis à une pollution accidentelle par le zinc peut ne mourir

que quelques jours après. Pour les crustacés du genre Daphnia

Magna, il y a un début d’intoxication lorsque la concentration

dépasse 1.8 mg/l [84].

En agissant sur les protozoaires et les bactéries, on a pu

constater que des concentrations inférieures à 1 mg/l de zinc

avaient un effet stimulant sur la nitrification, tandis que des

concentrations de l’ordre de 10 mg/l avaient pour effet d’inhiber

ce même processus [84].

Chrome : Le Chrome provient habituellement du rejet des eaux

usées industrielles. A l’état pur, il est assez peu employé dans

l’industrie, mise à part la fabrication des aciers spéciaux. Ses

dérivés sont en revanche très employés [84].

Les sels de chrome (VI) sont utilisés dans le traitement des

métaux (galvanoplastie et anodisation de l’aluminium),

papeterie, peinture, teinturerie, en industrie de la céramique et

des explosifs. Les sels de chrome (III) sont essentiellement

employés en teinturerie, en tannerie, en industrie du verre et de

la céramique, ainsi que dans le domaine de la photographie [84].

Si les composés du chrome trivalent montrent une tendance

particulière à s’oxyder en chrome hexavalent, la réduction est

quant à elle plus délicate et exige l’utilisation de la chaleur ou

l’emploi de substances réductrices spécifiques [84].

Les problèmes liés à la nuisance et à la tolérance des sels de

chrome sont assez complexes et font l’objet de controverses.

Historiquement, le chrome sous sa forme hexavalente a été

considéré comme très toxique et les législations ont

généralement imposé des valeurs limites de rejet sévères. Le

chrome (VI) est très mobile dans les organismes vivants, où il




peut inhiber la chaîne des réactions de la respiration, ou encore

jouer le rôle d’agent mutagène en modifiant la structure des

bases d’ADN [84].

Comparativement à la forme hexavalente, il est admis que la

forme trivalente est sans danger significatif pour l’alimentation

en eau potable, la faune et la flore aquatique. A très faible

concentration, le chrome trivalent semble même avoir une

fonction biologique bien établie, intervenant en tant que

constituant essentiel des systèmes métaboliques de nombreux

organismes vivants [84].

Organochlorés : Les Organochlorés sont des substances qui

associent du chlore et du carbone, fabriquées industriellement et

commercialisées sous forme de produits aussi divers que des

pesticides (aldrine, dieldrine, lindane), des plastiques (PVC), des

solvants, des lubrifiants, des réfrigérants et certains gaz

propulseurs (chlorofluorocarbures), des diélectriques dans les

condensateurs, des additifs dans les peintures et les encres, etc.

[84].

Des composés organochlorés sont également formés non pas à

partir d’un processus volontaire de fabrication mais en tant que

sous-produits. Les secteurs industriels susceptibles d’être

concernés sont divers et les substances en cause parfois mal

identifiées. On peut notamment citer les secteurs du recyclage de

câbles électriques (lors du brûlage du revêtement isolant en

PVC) ou de la pâte à papier (blanchiment au chlore) [84].

Lorsque les organochlorés pénètrent dans l’environnement

aquatique, leur comportement dépend de leurs procédés

physiques :

1) les chlorofluorocarbures et les solvants comme le

chloroforme et le tétrachlorure de carbone sont généralement




volatils. Ils ont tendance à pénétrer dans l’atmosphère où ils se

décomposent lentement. Certains organochlorés volatils gagnent

la stratosphère où ils constituent une menace pour l’ozone ;

2) Les composés aromatiques comme les polychlorobiphényles

(PCB), la dieldrine et les dioxines sont moins volatils. Ils ont

tendance à se fixer dans les sédiments et à remonter les chaînes

alimentaires. Pour la plupart, les organochlorés se dissolvent

plus facilement dans les graisses et les huiles que dans l’eau ; ils

ont donc tendance à s’accumuler dans les tissus adipeux des

organismes vivants [84].

Les organochlorés sont des composés généralement persistants

dont la toxicité pour l’environnement est largement reconnue,

notamment après bioamplification (accroissement du taux

d’accumulation d’un niveau de la chaîne alimentaire au suivant)

[84].

Ils sont susceptibles d’interférer sur la reproduction du monde

animal, de perturber le système immunitaire et d’attaquer le

système nerveux et des organes tels que le foie et les reins [84].

III-3-1-4- Hydrogénocarbonates

Une concentration trop élevée en carbonate de potassium dans

l'eau est susceptible d'avoir une incidence négative mais

réversible sur la potabilité de l'eau [85].

Les ions hydrogénocarbonates sont dosés pour connaitre leur

effet dans la canalisation et les risques de corrosion du réseau de

distribution qu’ils peuvent provoquer [85].

Les ions bicarbonates HCO3- et carbonates CO3

2- constituent le

tampon principal des systèmes d’eaux douces [85]. Ils

permettent le rétablissement des conditions initiales en cas de

pollution par des déversements acides [86].

Le matériel et les méthodes utilisées pour déterminer les

paramètres physico-chimiques sont donnés en annexes.




IV : ETUDE DE QUELQUES GERMES INDICATEURS

DE POLLUTION DE L’EAU DE CONSOMMATION

IV- 1 Salmonella typhi et paratyphi A et B

L’agent causal de la fièvre typhoïde est le bacille typhique

d’Eberth (Salmonella typhi) appartenant au genre Salmonella. Il

a une forte résistance au milieu extérieur. Le seul réservoir de

germes de la fièvre typhoïde est l’homme malade ou le porteur

de germes [88].

S.typhi est un bacille à Gram négatif, asporulé, péritriche,

facilement cultivable sur la gélose et dans le bouillon nutritif. La

température optimale de la croissance est 37°C. Il dégrade les

sucres (glucose, maltose, mannose) sans production de gaz. Il

contient les antigènes O, H, Vi. L’infection par les germes se

fait par la voie orale, les germes sont éliminés de l’organisme

avec les selles et les vomissures [88].

Les fièvres paratyphoïdes A et B sont des maladies infectieuses

aiguës qui ressemblent beaucoup à la typhoïde par leurs

symptômes cliniques, les altérations pathologiques et leur

caractéristique épidémiologique. Les agents des paratyphoïdes

sont les bacilles paratyphiques A et B de Schottmüller dont la

morphologie est analogue à celle du bacille typhique et qui s’en

distinguent seulement par leurs propriétés chimiques et

structure antigénique. Ils appartiennent au genre Salmonella. Les

germes sont rejetés de l’organisme de l’homme avec les selles et

les vomissures donc, la transmission se fait par voie orale

[88,89, 93].

IV- 2 Vibrio cholerae ou bacille en virgule est l’agent causal du

choléra. Il appartient à la famille des Vibrionaceae, du genre




Vibrio. Le vibrion est un bacille incurvé, pourvu d’un flagelle,

asporulé, cultivable rapidement sur les milieux ordinaires à

37°C. Le choléra est une maladie diarrhéique provoquée par les

vibrions classiques (V. cholerae) et le vibrion El Tor, isolé pour

la première fois en 1906 dans la péninsule du Sinaï (station de

quarantaine de Tôr). Dans le choléra, la source d’infection est

l’homme atteint de choléra ou le porteur de vibrions. L’homme

malade peut éliminer des germes dès le début de la période

d’incubation. Les malades rejettent les vibrions cholériques en

grande quantité avec les selles, les masses vomies. La

contamination se fait par la voie orale [88, 89].

Quelques rares cas se manifestent chaque année en Europe et

aux Etats-Unis qui ne provoquent jamais d'épidémie. Mais en

Afrique, en Amérique Latine et en Asie, les victimes se

comptent chaque année par milliers. L’Amérique Latine (le

Pérou d'abord puis rapidement les pays limitrophes) a été

frappée en 1991 par une épidémie de choléra: au moins 2000

morts et 70 000 personnes touchées, selon les chiffres officiels

du début de l'épidémie [90, 91].

Le choléra est la maladie de la pauvreté : l'origine de l'épidémie

est une grave crise économique qui a favorisé l'émergence d'un

sous-prolétariat à la périphérie des grandes villes d'Amérique

Latine; une croissance urbaine anarchique a engendré

l'apparition d'un habitat précaire et insalubre caractérisé par

l'absence d'infrastructures dans le domaine de l'eau et de

l'assainissement. A cela, il faut ajouter une éducation sanitaire

inexistante [89].

IV- 3 Shigella, comptant plus de 100 représentants, sont les

agents causaux de la maladie appelée la dysenterie bacillaire.

Tout le genre des Shigelles se subdivise en sous-groupes,

espèces, sous-espèces, types et sous-types. Les principales sous-

espèces de Shigella dysenteriae isolées sont les suivantes :

Shiga-Grigoriev, de Stutzer-Schmitz, de Large-Sachs et espèce




flexneri et de Sonnei. Les bacilles de l’espèce S. flexneri sont

divisés, par leurs propriétés antigéniques, en sous-espèces :

flexneri, newcastle et boydii. Parmi les germes énumérés, les

moins résistants sont les bactéries de Shiga-Grigoriev, les plus

résistantes celles de Sonnei et flexneri [88].

Les Shigelles sont des bacilles Gram négatif, asporulés,

immobiles et à faible pouvoir métabolique et sont capables de

pousser sur les milieux ordinaires à 37°C. Pour les cultiver, on

utilise les milieux contenant le lactose, cela permet de distinguer

les Shigelles des colibacilles. Les germes se distinguent entre

eux par leur pouvoir antigénique (Ag O) [88].

Les sources d’infection sont l’homme atteint de la dysenterie

aiguë ou chronique, les porteurs de germes, les convalescents.

Le bacille dysentérique est contagieux dès le premier jour du

mal et jusqu’à la guérison. Les malades atteints de formes

bénignes sont les plus dangereux. Ces bactéries restent viables

des semaines et même des mois sur les bassins sales, les

vaisselles et linge humide, sur les aliments (lait, pain, viande) et

dans l’eau. La dysenterie, comme les autres infections

intestinales, se transmet par la voie oro-fécale [88].

Il a été démontré que les caractéristiques de survie de

Salmonella et de Shigella dans l’eau, et leur vulnérabilité à la

désinfection, ressemblent à celles des coliformes.

C’est pourquoi la surveillance de routine qui vise à assurer

l’absence de coliformes devrait suffire pour protéger l’eau

potable contre la plupart des possibilités de contamination par

ces micro-organismes [88, 92].

IV- 4 Escherichia coli est un bacille Gram négatif, asporulé,

péritriche. Chimiquement il est actif, il décompose plusieurs

sucres et produit le gaz. Il est capable de pousser sur les milieux

ordinaires à 37°C. Ce microorganisme est présent seulement

dans le tractus digestif des animaux à sang chaud, y compris les




êtres humains. Même si la plupart des souches ne sont pas

pathogènes, certaines peuvent causer de graves infections

diarrhéiques chez les êtres humains [88,89].

La colibacillose est une affection intestinale causée par

Escherichia coli possédant un pouvoir pathogène. A l’heure

actuelle, on réunit plus de 30 sérotypes sous le nom de

colibacilles (qui sont des représentants de nombreux groupes

sérologiques O). Dans les colibacilloses, les sources d’infection

sont les malades qui éliminent les germes avec leurs selles à la

période aiguë de la maladie et les porteurs de microbes [88, 89,

93, 94].

E. coli pathogènes sont subdivisés en cinq groupes en fonction

de leurs caractéristiques sérologiques et de leur virulence [94].

IV- 4-1 E. coli entéropathogènes : EPEC (Entero-Pathogenic

Escherichia coli) : O26, O55, O111, O119, O125, O126, O127,

O128 et O142. Ces souches sont responsbles de gastro-enterites

infantiles. Elles adhèrent à la surface des cellules épithéliales de

l’intestin grêle sans les envahir, en faisant disparaître les

villosités. La reduction de l’absorption, due à la perte des

microvillosités, peut provoquer de la diarrhée, surtout chez les

enfants. Elles produisent les toxines SLT (Shiga-toxine) qui

seraient aussi responsables des lésions [96,97] ;

IV-4-2 E. coli entéro-invahisseurs : EIEC (Entero-Invasive

Escherchia coli) : O28, O112, O124, O136, O143, O144, O147

et O152. Ces souches (très voisines des Shigelles par leurs

caractères biochimiques, antigéniques et le mécanisme de leur

pouvoir pathogène) sont responsables de syndromes

dysentériques avec invasion de la muqueuse intestinale. Elles

ont le pouvoir d’envahir les cellules épithéliales du gros intestin,

de s’y multiplier et de causer des réactions inflammatoires

localisées pouvant aboutir à des ulcérations [96,97].




IV-4-3 E. coli entérotoxigènes : ETEC (Entero-Toxinogenic

Escherichia coli) : O6, O8, O15, O20, O25, O63, O78, O80,

O85, O115, O128 et O139. Ces souches sont responsables de la

«diarrhée des voyageurs » et de syndromes diarrhéiques

épidémiques dans les pays du tiers monde. Leur pouvoir

pathogène est lié d’une part, à la possession de fimbriae, souvent

appelés CPA (colonization factor antigen), qui leur permettent

d’adhérer aux cellules de l’intestin grêle et de se multiplier à

leur surface sans y pénétrer, d’autre part, à la production des

toxines qui dérèglent le mécanisme normal

d’excrétion/absorption de ces cellules. La toxine thermolabile

(LT) est immunologiquement apparentée à celle produite par

Vibrio cholerae et agit par le même mécanisme. Elle se fixe aux

gangliosides des cellules intestinales par une de ses sous-unités

«B» et ceci permet le passage intracellulaire de la sous-unité

active ‘’A’’ qui active l’adenylate-cyclase ; l’augmentation de

l’AMP cyclique intracellulaire entraîne une stimulation de la

sécrétion de l’ion Cl et/ou une inhibition de l’absorption de

NaCl, ce qui conduit à une diarrhée séreuse. La toxine

thermolabile (ST), petite molécule de 18 acides aminés, se fixe

sur des récepteurs cellulaires de la bordure en brosse intestinale

(ces récepteurs sont plus nombreux chez l’enfant, ce qui

expliquerait la gravité des diarrhées dans ce cas), active la

guanylate-cyclase, accroît le taux de guanyidyl phosphate

cyclique et ainsi bloque la rentrée de NaCl et favorise la

sécrétion de l’ion Cl. Les fimbriae et les entérotoxines sont

codés par des gènes localisés sur des plasmides [96,97].

IV-4-4 E. coli entérohémorragiques : EHEC (Entero-

Haemorragic Escherichia coli) : O157 :H7 mais aussi O26 et

O111. Ces souches sont responsables de diarrhées

hémorragiques d’origine alimentaire qui peuvent être

compliquées du syndrome hémolytique-urémique. Non

invasives, elles produisent de puissantes cytotoxines (SLT),




immunologiquement ou fonctionnellement reliées aux toxines

de Shigella dysenteriae type 1. Ces toxines agissent sur les

ribosomes des cellules eucaryotes au niveau de l’ARN

ribosomique et inhibent la synthèse protéique. L’effet de la

toxine est lié aussi à l’adhérence de ces souches bactériennes à

l’épithélium. Les SLT peuvent aussi donner des signes

cérébraux qui seraient liés à des troubles vasculaires et non à

une toxicité sur les neurones. Le syndrome hémolytique-

urémique (SHU) est une maladie brutale caractérisée par

l’apparition d’une thrombopénie, d’une anémie hémolytique,

d’une insuffisance rénale aiguë avec anurie survenant plutôt

chez le jeune enfant, la femme enceinte et en post-partum ; la

participation directe des toxines SLT sur les endothéliums des

capillaires est probable [96,97].

IV-4-5 E. coli entéroagrégatifs (EAHC) : O111 :H12. Les

souches de ce groupe provoquent une diarrhée persistante chez

les enfants, particulièrement dans les pays en voie de

développement. Le pathogène produit des toxines et des

adhésines, mais on ne connaît pas le mécanisme de sa

pathogenèse. Les souches d’EAHC se caractérisent ‘’in vitro’’,

par le mode ‘’agrégatif’’ de leur adhérence aux cellules

Hep-2. La souche partage les propriétés des EAHC [96, 97].

Les concentrations d’E.coli non pathogène typique, qui servent à

indiquer une récente contamination fécale, seront toujours plus

élevées dans les matières fécales que celles des souches

pathogènes, même au cours des éclosions [98, 99].

IV-5 Indicateurs de pollution fécale des eaux :

IV-5.1 Coliformes totaux :

Dans la 20ème

édition de « Standard Methods for the

Examination of Water and Wastewater 2 », on définit comme

suit le groupe des coliformes totaux :




1) toutes bactéries anaérobies facultatives, en forme de

bâtonnet, non sporulées et Gram négatif qui fermentent le

lactose avec production de gaz et d’acide en moins de 48 heures

à 35 ºC ;

2) de nombreuses bactéries anaérobies facultatives, en

forme de bâtonnet, non sporulées et Gram négatif qui forment

des colonies rouges à reflets métalliques (or) en moins de 24

heures à 35ºC dans un milieu de type Endo contenant du

lactose;

3) toutes les bactéries dotées de l’enzyme -

galactosidase, qui clive un substrat chromogène (p. ex., ortho-

nitrophényl-D-galactopyranoside), ce qui libère un agent

chromogène (orthonitrophénol).

Ces définitions ne doivent pas être considérées comme

identiques: elles désignent plutôt trois groupes à peu près

équivalents. Ces trois groupes comprennent diverses espèces de

genres Escherichia, Klebsiella, Enterobacter et Citrobacter,

mais le dernier groupe contient 11 genres supplémentaires dont

la plupart sont présents naturellement dans l’environnement. On

peut utiliser l’épreuve de l’oxydase cytochrome pour l’exclure.

Les membres du genre Aeromonas, qui peuvent fermenter le

lactose et, par conséquent, produire des résultats faussement

positifs indiquent erronément la présence de coliformes totaux

[91, 101].

Le groupe des coliformes thermotolérants comprend les

coliformes totaux qui sont capables de produire du gaz dans les

24 heures et de former les colonies rouges sur le milieu Endo à

44,5ºC. Ce groupe comprend les genres Escherichia et, à un

degré moindre, Klebsiella, Enterobacter et Citrobacter. Comme

la plupart des espèces appartenant à ces genres ne sont pas

associées exclusivement aux matières fécales, on a remplacé

l’expression «coliformes fécaux» par «coliformes




thermotolérants», qui est plus exacte. Cette distinction est reliée

au fait que les coliformes thermotolérants peuvent tolérer des

températures élevées d’incubation pendant la culture. On utilise

l’incubation à des températures plus élevées pour distinguer les

coliformes thermotolérants des coliformes totaux. Escherichia

coli est le principal coliforme présent dans les matières fécales et

le seul membre du groupe des coliformes thermotolérants

exclusivement associé aux matières fécales. Il s’agit donc de

l’indicateur le plus spécifique de pollution par des matières

fécales et de la présence possible de microorganismes

pathogènes. La présence confirmée d’E.coli dans l’eau potable

traitée devrait déclencher la diffusion immédiate d’un avis

d’ébullition de l’eau. On peut distinguer Escherichia coli et

d’autres coliformes au moyen de l’épreuve classique ou d’une

épreuve sur substrat défini. Cette dernière repose sur la présence

de la glucuronidase, enzyme constitutive unique que l’on trouve

dans E.coli, Shigella spp. et certaines Salmonella spp., mais

rarement dans d’autres coliformes. La méthode la plus populaire

repose sur la capacité d’E.coli d’hydrolyser le 4-

méthylumbelliferyl - D-glucuronide pour former du 4-

méthylumbelliferone, qui produit une fluorescence à la lumière

ultraviolette de grande longueur d’onde [100, 101].

IV-5-2 Campylobacter et Yersinia

Les éclosions de gastro-entérite d’origine hydrique mettant en

cause Campylobacter jejuni et Yersinia enterocolitica sont de

plus en plus fréquentes depuis quelques années [102]. Rollins et

Colwell ont décrit récemment la présence de formes viables,

mais non cultivables, de Campylobacter jejuni dans le milieu

aquatique. Ils ont émis l’hypothèse que ce type non cultivable

pourrait expliquer pourquoi on ne parvient pas toujours à isoler

Campylobacter dans l’eau au cours des éclosions de

campylobactériose d’origine hydrique. On a souvent établi un

lien négatif entre la densité de Campylobacter et celles des




coliformes thermotolérants, des coliformes totaux, des

streptocoques fécaux et des bactéries hétérotrophes. Il se

pourrait donc que les coliformes ne constituent pas un bon

indicateur de la présence de C. jejuni et de Y. Enterocolitica

[103, 104].

IV-5-3 Legionella pneumophila

On a constaté la présence, dans l’eau potable de certaines

municipalités canadiennes, de faibles concentrations de

Legionella pneumophila, l’agent pathogène à l’origine de deux

maladies respiratoires, soit la légionellose soit la fièvre de

Pontiac. Legionella peut coloniser diverses niches dans les

immeubles (p. ex., les tours de refroidissement, les réservoirs

d’eau chaude, les pompes de douche, les aérateurs) et

contaminer l’eau potable et l’air. Cette situation est

particulièrement problématique dans les hôpitaux, où des sujets

humains vulnérables peuvent être exposés à des aérosols

contenant des concentrations dangereuses de L. pneumophila.

Legionella pneumophila est un microorganisme thermophile qui

a des exigences nutritionnelles très précises. Dans les films

biologiques, il peut établir des relations de symbiose avec

d’autres bactéries hétérotrophes (Flavobacterium,

Pseudomonas, Alcaligenes et Acinetobacter). C’est pourquoi des

taux élevés de bactéries hétérotrophes peuvent indiquer la

présence de Legionella pneumophila. Les coliformes ne sont pas

des indicateurs convenables de leur présence [91, 101].

IV-5-4 Aeromonas hydrophila est un bacille anaérobie

facultatif, en forme de bâtonnet, non sporulé et Gram négatif qui

appartient à la famille des Vibrionaceae. Cette bactérie est

omniprésente dans l’environnement et a été isolée dans des

réseaux de distribution d’eau potable. Aeromonas hydrophila est




de plus en plus reconnue dans le domaine de la santé publique

parce qu’on l’a incriminée comme agent pathogène possible de

gastro-entérite, de septicémie, de cellulite, de colite et de

méningite, et qu’on l’isole souvent dans les plaies infectées en

milieu aquatique. Les sujets humains sont infectés après

ingestion d’eau ou d’aliments contaminés, ou suite à une

coupure de la peau. On a signalé que le risque d’infection est

plus élevé chez les enfants, les personnes âgées et les sujets dont

le système immunitaire est déficient. Le risque d’infection

atteint son point culminant pendant la période chaude parce que

ces microorganismes se multiplient rapidement dans l’eau

chaude.

Les coliformes ne sont pas un indicateur convenable de la

présence d’Aeromonas hydrophila, mais un nombre élevé de

bactéries hétérotrophes peut en indiquer la présence [91, 101].

IV-5-5 Helicobacter pylori est un petit bacille microaérophile

Gram négatif, il a la forme d’une spirale ou d’un ressort. Sur une

culture de gélose, il se présente sous la forme de bâtonnets

légèrement incurvés. On a établi un lien entre H. pylori

infectieux et la gastrite, les ulcères duodénaux et le risque accru

de carcinome gastrique chez les êtres humains. Presque tous les

patients qui ont des ulcères du duodénum sont infectés par H.

pylori. On ne connaît toujours pas complètement le mode de

transmission de ce micro-organisme, même si le fait qu’on en a

trouvé dans l’estomac et dans des échantillons de matières

fécales indique fortement une transmission par voie orale-orale

ou fécale-orale. Les études épidémiologiques ont indiqué un lien

ténu ou inexistant entre les sources d’eau potable et la

transmission de H. pylori. D’autres facteurs de risque suggérés

concernant la transmission comprennent la consommation de

légumes crus irrigués au moyen d’eaux usées non traitées

[91,101, 105].




IV-5-6 Mycobacterium avium. Ces mycobactéries sont des

bacilles en forme de bâtonnet, non mobiles, non sporulés,

aérobies et acidorésistants. Mycobacterium avium est une des

espèces les plus importantes des mycobactéries non

tuberculeuses ou atypiques. On a isolé ce micro-organisme dans

des eaux de surface, des aérosols et des réseaux de distribution

d’eau, y compris les eaux chlorées des hôpitaux. Il peut causer

des bactérioses généralisées et des affections pulmonaires chez

les personnes âgées ou immunodeprimés. Le contact prolongé

avec de l’eau contaminée, l’inhalation d’organismes en aérosol

et l’ingestion semblent constituer les principaux modes de

transmission [91, 101].

IV-5-7 Virus de la poliomyélite. C’est un virus de la famille

des Picornaviridae. On en connaît 3 types antigéniques 1, 2, 3.

La plupart du temps c’est le type 1 qui est rencontré. Ce virus

appartient au groupe des entérovirus étant donné que dans

l’organisme d’une personne réceptive il se multiplie dans les

cellules de la paroi intestinale et des autres parties du tube

digestif. Outre les trois types de virus poliomyélitique, on

compte, dans le groupe des entérovirus, environ 60 représentants

d’une structure antigénique particulière, dont les virus Coxsakie

et les virus ECHO. La source d’infection est l’homme atteint

soit de la forme clinique évidente, soit de la forme fruste de la

poliomyélite, qui reste souvent inapparente. Ce sont ces formes

qui ont le plus d’importance dans la propagation de l’infection.

La contamination se fait aussi dans cette maladie par la voie oro-

digestive à travers l’eau ou les aliments souillés [106].

IV-5-8 Virus de l’hépatite A. Il provoque l’hépatite infectieuse

épidémique (maladie de Botkine, ictère de catarrhal). La source

d’infection dans l’hépatite épidémique est l’homme atteint de

forme clinique évidente ou fruste. La contamination se fait par la

voie oro-digestive à travers l’eau ou les aliments souillés.

Chaque année il y a des poussées épidémiques de l’hépatite A




dans plusieurs pays. En 2005, en Russie il y a eu une épidémie

de l’hépatite A qui a touché quelques centaines de personnes.

La cause de cette épidémie est la panne survenue sur le réseau

de distribution d’eau potable [106].

IV-5-9 Entamoeba histolytica. C’est un protozoaire

hématophage qui se présente sous trois formes à savoir :

-la forme tissulaire (forme magna) possède une grande

mobilité et est déterminée par la présence d’érythrocytes

phagocytés ;

-la forme commensale ou végétative (forme minuta), elle

est capable de se déplacer et dégage un enzyme protéolytique;

-le kyste, sphérique à contour simple et immobile entouré

d’une enveloppe de 1 à 4 noyaux. C’est la forme de résistance,

de conservation, de dissémination mais aussi la forme infestante

de la maladie. Entamoeba histolytica provoque la dysenterie

amibienne, ou l’amibiase. La source d’infestation est l’homme

malade d’amibiase ou le porteur des kystes tétranucléés qui les

rejette avec les selles. La contamination se fait par la voie orale

à travers l’eau ou les aliments souillés [106].

IV-5-10 Ascaris lumbricoïdes C’est un grand nématode appelé

ascaride ou ascaris. Les femelles mesurent 20 à 40 cm de long et

les mâles, 15 à 25 cm. Le corps de l’ascaride est cylindrique,

fusiforme, rétréci aux deux extrémités, recouvert d’une cuticule

épaisse et strié transversalement. Le bout céphalique porte trois

grandes lèvres entourant l’orifice oral. Le bout caudal du mâle

est recourbé vers le côté ventral et porte deux spicules. Les

dimensions des œufs sont de 0,05 à 0,07 x 0,04 à 0,05 mm.

L’ascaridiase est une géochelminthiase, pérorale, une

anthroponose. L’hôte définitif et la seule source d’infestation

sont l’homme. La transmission se fait par l’ingestion des œufs

embryonnés à travers l’eau ou les aliments souillés [106].




IV-6 Mode de transmission des infections et infestation

intestinales

Les germes des infections et infestations intestinales (la

fièvre typhoïde, les paratyphoïdes A et B, les dysenteries

amibienne et bacillaire, le choléra, l’hépatite virale, la

poliomyélite, les helminthiases sans deuxième hôte) se

localisent dans l’intestin et sont éliminés dans le milieu

extérieur, principalement avec les matières fécales. Pour les

maladies qui s’accompagnent de la circulation du germe dans le

sang (fièvre typhoïde, paratyphoïde A et B, leptospiroses,

hépatite virale, brucellose, etc.) des voies d’élimination

complémentaires peuvent être différents organes: foie, reins,

poumons etc. Les germes des infections intestinales qui sortent

dans le milieu environnant avec les matières fécales, l’urine, les

masses vomies (choléra) ne sont pas capables de rendre malade

un bien portant que dans le cas où ils pénètrent dans son

organisme par la bouche avec les aliments ou l’eau potable ou

apportés par les mains sales. Donc, le mécanisme de leur

transmission est oro-fécal. Les principaux moyens de lutte

contre les infections intestinales sont des mesures d’hygiène et

d’assainissement écartant toute possibilité de transmission des

germes pathogènes par les aliments, l’eau, les mouches, les

mains sales, etc. Il est également très important de dépister et

d’isoler à temps les malades et les porteurs de germes, de

suspendre de leur travail des porteurs travaillant dans les

entreprises alimentaires [88].

V- PRESENTATION DU POTENTIEL HYDRAULIQUE

DE LA REPUBLIQUE DE GUINEE

V-5-2 Politique de gestion et de développement des

ressources en eau en République de Guinée [123]

Le diagnostic ayant conduit à l’élaboration de cette politique a

révélé que les principaux problèmes afférents à la gestion et au

développement des ressources en eau sont les suivants :




- insuffisance de leur connaissance dans l’ensemble de leurs

composantes (eau atmosphérique, eau de surface continentale et

maritime, eaux souterraines phréatiques et profondes) ;

- insuffisance et par endroit, absence de systèmes de suivi hydro-

écologique des bassins fluviaux nationaux et partagés ;

- ensablement et envasement de lits de certaines portions de

fleuves et rivières et de certains lacs et mares ;

- phénomènes de pollutions localisées dues à des activités

industrielles, agricoles et/ou artisanales ;

- insuffisance de capacités d’intervention des services et

organismes en charge de la gestion des ressources en eau en

particulier et de l’environnement en général notamment au

niveau déconcentré territorial. [123]

La politique ainsi que la stratégie sont exprimées dans la Lettre

de Politique sectorielle de l’Eau et de l’Assainissement préparée

sur financement de la Banque Mondiale. Elle a été approuvée

conjointement le 16 août 1996 par les Ministres de

l’Agriculture, des Eaux et Forêts, le Ministre des Ressources

Naturelles et de l’Énergie et le Ministre de l’Urbanisme et

Habitat. Elle stipule, entre autres, que l’eau en tant que source de

vie, a toujours constitué pour le Gouvernement de Guinée une

préoccupation prioritaire dans sa politique de développement

social et économique, tant dans les villes et agglomérations

périurbaines qu’en milieu rural. [123]

La recherche de la mobilisation et de la mise à disposition des

usagers de cette ressource fondamentale a toujours occupé une

place de premier plan. Le développement du secteur est articulé

autour de :

i) la gestion et l’administration des ressources en eau,

ii) l’hydraulique urbaine,

iii) l’hydraulique rurale et

iv) l’assainissement en milieu urbain ou rural.




La stratégie spécifique de gestion globale et de l’administration

des ressources en eau s’articule autour de la maîtrise et de la

cohérence de plusieurs actions dont les suivantes :

- renforcement des capacités liées à la collecte et au traitement des

données de base des ressources ainsi qu’en matière de

planification /programmation du secteur de l’eau ;

- mise en place et gestion de systèmes de prévisions

hydrologiques et de suivi hydrologique à l’échelle des bassins

versants ou groupes de bassins versants et établissement de

plans d’ouvrages et d’aménagements hydrauliques répondant à

des intérêts socio-économiques ou écologiques particuliers ;

- élaboration de textes d’application du code de l’eau pour la

gestion rationnelle durable des ressources en eau ;

- mise en place des organes du fonds de l’hydraulique ;

constitution et gestion de banque de données et d’information

sur les ressources en eau ; formation, information,

sensibilisation et animation des institutions et du public

impliqués dans la gestion et l’administration des eaux ;

- promotion de la coopération internationale,

intergouvernementale et intercommunautaire en matière de mise

en valeur et gestion intégrée des ressources en eau, notamment

des eaux partagées. La réalisation des projets régionaux portant

sur le massif du Fouta Djallon fait également partie des

composantes du Plan d’action [123].

La Lettre de Politique nationale de l’eau et de l’assainissement

est assortie d’un plan d’action dont le financement a été assuré

par le 3ème Projet Eau et Assainissement dans sa composante «

gestion des ressources en eau ». En effet, les problèmes liés à

l’approvisionnement en eau potable se posent en termes de

déficit quantitatif, de qualité et d’accessibilité financière faibles

en milieu urbain. D’autres instruments de planification tels le

Document de politique de la santé publique, le Plan d’action

national de lutte contre la désertification, le plan d’action




national d’adaptation aux changements climatiques ont été

adoptés. [119]

V-5-3 Gestion institutionnelle de l’eau potable

Le secteur urbain de l’eau potable est géré (production et

distribution) par la Société des Eaux de Guinée (SEG) et en

milieu rural par le Service National d’Aménagement des Points

d’Eau (SNAPE) pour la production [112].

De 1958 à 1984 : seules 7 villes dont la capitale Conakry sur les

33 villes du pays ont été équipées en systèmes d’adduction

d’eau potable, plus ou moins fonctionnels [112].

De 1984 à 2005 : en plus de la rénovation complète de tous les 7

systèmes existants, 19 autres villes ont été équipées en systèmes

d’alimentation en eau potable. Aujourd’hui, seules huit (8) villes

n’ont pas encore été équipées en systèmes d’adduction d’eau

potable [112].

Capacité de production d’eau

A Conakry, l’approvisionnement est passé de 45 000 m3/j en

1984 à 100 000 m3/j en 1994 (année d’achèvement des travaux

du second projet eau). Cette capacité de production est toujours

la même aujourd’hui pour la ville de Conakry [112].

Pour les centres de l’intérieur, l’approvisionnement est passé de

7500 m3/j en 1984 à 45 000 m

3/j en 1999 (année d’achèvement

des travaux de la dernière ville équipée et mise en exploitation).

Le parc de branchements a progressé de 12 000 en 1984 à 81

000 pour l’ensemble du territoire national au 31 décembre 2004.

A la date du 21 septembre 2005 le SNAPE a aménagé au total

12 690 points d’eau modernes répartis comme suit :

1 104 puits busés




9 925 forages dont plus d’une cinquantaine sont équipés

en mini réseaux d’adduction d’eau potable (AEP) ;

661 captages de source dont sept en adduction en eau

potable gravitaires [112].

La Direction Nationale des Statistiques du Ministère du Plan a

mené en 2002/2003 une enquête à indicateurs multiples (MICS-

2003) dans le cadre de la mise en œuvre de la stratégie de

réduction de la pauvreté [112].

Cette enquête a couvert l’ensemble du territoire national et

concerne un échantillon représentatif d’environ 3200 ménages

dans les 7 régions administratives (Boké, Kindia, Mamou, Labé,

Faranah, Kankan et N’Zérékoré et la ville de Conakry.

L’échantillon a été stratifié par région administrative et non par

régions naturelles pour disposer d’indicateurs opérationnels

[112].

Selon les informations disponibles, la principale source

d’approvisionnement en eau de boisson au niveau de l’ensemble

du pays est constituée de puits à pompe/forages. 37,5 % des

ménages utilisent cette source [112].

Les puits et les sources constituent la deuxième source

d’approvisionnement en eau. En effet, 26,1% des ménages

utilisent ce mode d’approvisionnement (18,6 % utilisent des

puits non protégés et des sources non aménagées et 7,5 % des

puits protégés et des sources aménagées) [112].

En milieu rural, près de 29 % des ménages utilisent les puits

pour s’approvisionner en eau (22% de puits non

protégés/sources non aménagées et près de 7% de puits

protégés/sources aménagées) [112].




Le puits non protégé ou la source non aménagée continue d’être

une source importante d’approvisionnement en eau, même en

milieu urbain (10,3 %). En milieu urbain pauvre, ce mode

d’approvisionnement en eau concerne 17,2 % des ménages

[112].

La troisième source d’approvisionnement en eau est constituée

par le robinet : 21,6 % des ménages guinéens l’utilisent. Presque

inexistant en milieu rural (moins de 1% des ménages), le robinet

concerne principalement les ménages urbains (73,1 % des

ménages de ce milieu) [112].

Le poids de Conakry est prépondérant et explique le

pourcentage élevé de ménages urbains s’approvisionnant en eau

au robinet (91,2 %). En milieu urbain pauvre, seulement 59,1 %

des ménages utilisent cette source. D’importantes disparités

existent au niveau régional en matière d’approvisionnement en

eau de boisson au robinet. Si à Conakry plus de 9 ménages sur

10 utilisent l’eau de robinet, cette proportion ne dépasse guère 1

ménage sur 10 dans les autres régions. Boké, enregistre la plus

grande proportion (17,5 %), parmi les régions de l’intérieur du

pays. Dans les autres régions, ces proportions sont insignifiantes

(près de 5 % dans la région de N’Zérékoré et 2,7 % dans celle de

Labé) [112].

Les eaux de surface (cours d’eau, lacs, mares etc.) constituent la

quatrième source d’approvisionnement en eau des ménages

(16,3 %). Elles continuent d’être un mode important

d’approvisionnement en eau en milieu rural et concernent 22,7

% des ménages de ce milieu (24,2 % en milieu rural pauvre). Ce

mode d’approvisionnement en eau est dominant dans les régions

de Kindia, Mamou et Boké (37,1 %, 33,3 % et près de 24 %,

respectivement) [112].




V-3 Etudes géophysiques en Guinée

Entre 1979 et 1982, la Direction Générale des Mines et Géologie

(DGMG) en collaboration avec ses structures décentralisées

dans certaines villes de l’intérieur (Gaoual, Boffa, Kissidougou,

Kouroussa, Kankan, Mandiana, Beyla, Kérouané, Lola et

Yomou), a réalisé des études géophysiques. Ces études ont eu

pour but l’implantation de forages de reconnaissance dans 14

villes : 33 forages ont été implantés et 27 ont été exécutés pour

un métré total de 1.338,2m avec un débit de pompage variant de

1 à 25 m3/h et une profondeur moyenne de 49,6m [111].

Les mêmes services ont effectué au compte de la CBG de 1986 à

1987 des études hydrogéologiques dans le cadre de

l’alimentation en eau potable à partir des eaux souterraines dans

une zone de 20 km² où 27 forages de reconnaissance avec un

total de 1.760,3 m de longueur ont été exécutés (débits variant

de 45 à 110 m3/h). Trois forages d’exploitation totalisant 226m

et des débits de pompage variant entre 150 à 200 m3/h ont été

également exécutés [111].

Le comblement progressif des cours et plans d’eau par

l’exploitation anarchique à leurs abords immédiats, la

destruction du couvert végétal ainsi que l’érosion en nappes

compromettent dangereusement les capacités d’infiltration et par

voie de fait les ressources en eau souterraine. Les pollutions de

tous ordres viennent ajouter à cette situation déjà non reluisante.

V-4 Bassins fluviaux de la Guinée

La gestion de ce patrimoine constitue une préoccupation

majeure sur laquelle convergent le plus souvent les efforts de

l’Etat et de ses partenaires au développement [108].

En effet, depuis les années 1970, plusieurs programmes et

projets ont été élaborés et exécutés en matière de gestion des

ressources en eau. Malheureusement, toutes les actions n’ont




produit que peu ou pas d’impacts positifs capables de minimiser

les pressions induites sur les ressources en eau ou les affectant

rendant ainsi l’accès à l’eau potable un luxe, notamment en

milieu rural ou périurbain. [123]

Tableau 3 : Caractéristiques physiques des bassins fluviaux

guinéens [121]

N° Bassin fluvial Superficie Longueur

en Guinée

Etats riverains

1 Cogon 8502 379

2 Tinguilinta 5031 160

3 Kapatchez 2906 105

4 Fatala 6092 205

5 Konkouré 18692 339

6 Soumba 392 39

7 Killy 300 31

8 Forécariah 2226 103

9 Méllakhouré 1049 50

10 Kolenté 5178 210 Gui, SL

11 Koliba 18122 407 Gui, GB

12 Gambie 12038 211 Gui, Se, G

13 Bafing/Sénégal 18672 450 Gui, Ma, Se, Mau,

14 Kaba 5427 91 Gui, Sl

15 Niger 97168 661 Gui, Ma, BF, Ni, CI, Be, Nig, Th, Ca

16 Sassandra 10839 0 Gui, CI

17 Cavally 2116 75 Gui, CI

18 Mani 2506 157 Gui, Li

19 Diani 9333 246 Gui, Li

20 Loffa 1684 64 Gui, Li

21 Makona 8384 262 Gui, SL

22 Kayanga-Géba 20 5 Gui, GB, Se

23 Mano 10 3 Gui, SL, Li

TOTAL 236687 4253




Légende:Gui: Guinée Conakry;Se; Sénégal; Ma: Mali; Mau;

Mauritanie; SL: Sierra Léone; Be: Bénin;

GB: Guinée Bissau; Li: Libéria; CI: Côte d’Ivoire; Ni: Niger;

Nig: Nigeria; BF: Burkina Faso; G: Gambie;

Th: Tchad; Ca: Cameroun.

Source: Annuaires Hydrologiques de la Direction Nationale de

l’Hydraulique

Carte N°1 : Bassins versants [108]

En matière d’hygiène et d’assainissement, la situation est loin

d’être satisfaisante. Les comportements hygiéniques à risque des

populations, la déficience des moyens d’évacuation des excrétas,

l’absence de schéma directeur d’assainissement, la mauvaise

gestion des déchets solides et liquides (eaux usées et pluviales)

favorisent la forte prévalence des maladies d’origine hydrique.

[108]

D’autres problèmes entravent la gestion des ressources en eau en

Guinée notamment:

- L’insuffisance des capacités techniques et financières des

responsables administratifs centraux et locaux;




- Les insuffisances de nombreuses structures d’appui en

matière d’approches participatives et de choix des

technologies appropriées. [108]

L’approche de la gestion des ressources en eau sous l’angle

exclusif ou privilégié de fourniture d’eau de consommation, sans

intégration des autres domaines comme la gestion des eaux

usées, des déchets solides, est un autre handicap. Cette option,

associée aux insuffisances des politiques de développement

sectoriel se traduit par les phénomènes ci-après:

- Modification du régime hydrologique,

- Tarissement des têtes de sources,

- Augmentation de la turbidité des cours d’eau,

- Envasement/ensablement des lits des cours d’eau,

- Diminution des réserves en eaux souterraines,

- Dégradation de la qualité physico-chimique et biologique

des eaux de surface.

V-5 La part de l’agriculture [118]

Le potentiel en terres du pays est de 6,2 millions d’hectares de

superficies cultivables dont 1,37 millions sont actuellement mis

en culture.

Le potentiel de terres irrigable s'élève à 362 000 ha dont 30 200

ha sont aménagés.

Le système de culture dominant pratiqué sur les divers sols est

de type traditionnel. Il est basé sur le brûlis après défrichement

et fait appel à une jachère naturelle plus ou moins longue selon

les régions. Il s'agit d'une agriculture largement extensive et

dominée par les cultures vivrières : céréales et tubercules

principalement [118].

Dans le domaine agricole par exemple, la population active est

constituée en moyenne de 144 femmes pour 100 hommes.

L’agriculture fournit une occupation à 87% de la population

féminine active.




En raison du rôle particulier que jouent les femmes dans

l’agriculture, il est évident que les femmes sont plus sensibles à

la dégradation de l’environnement et des ressources naturelles et

elles sont plus à mesure de réagir promptement que les hommes

pour lutter contre la dégradation de l’environnement et des

ressources naturelles. C’est pourquoi les femmes ont été prises

comme cibles et actrices de la gestion de l’environnement.

Ainsi, le Gouvernement guinéen a élaboré le Plan d’Action de la

promotion des femmes en 1997. Ce plan tient compte des axes

stratégiques de la Conférence mondiale sur les femmes tenue à

Beijing en septembre 1995 [118].

Parmi les objectifs de ce Plan d’Action, on retrouve la réduction

de l’analphabétisme, l’amélioration de l’accès des femmes à la

formation, à la science et à la technologie et l’amélioration de la

participation de la femme à la protection de l’environnement et à

la gestion des ressources naturelles en particulier aux échelons

communautaire et local.

Carte N°2 : Situation du Sol [110]

Source : FAO, 2004

La superficie totale des bas-fonds et plaines est évaluée à 362

000 ha. L’évaluation des aménagements hydro agricoles fait

apparaître que les projets instruits pendant la période de la




LPDA2, ont permis l’aménagement de 8500 ha de bas-fonds,

3000 ha de plaines et 5000 ha de mangrove. Les travaux

d'aménagement de bas-fonds et de plaines ont porté sur toutes

les régions naturelles.

V-6 Problèmes de l’eau potable en Guinée [110]

En milieu urbain, l’accès à l’eau potable est géré par la SEG qui

dessert actuellement 25 villes. Le taux de desserte en eau

potable est de l’ordre de 64%, dont 51% par branchements

particulier et voisin, et 13% par bornes fontaines. Le taux

d’accès à l’eau par forage ou puits protégés est évalué à 24%, ce

qui porte à 78% le taux d’accès à une eau conforme au critère

d’atteinte des Objectifs du Millénaire pour le Développement

(OMD). Au plan national, le robinet est la principale source

d’approvisionnement en eau des ménages de Conakry (plus de

85%) et dans les villes secondaires (environ 42 %).

Malgré les énormes ressources en eau et les progrès entrepris

pour le maintien du service public de distribution de l’eau

potable aussi bien en milieu urbain que rural, les populations

continuent d’éprouver des difficultés d’accès à une source d’eau

potable [110].

Pour relever les défis auxquels le secteur est confronté, les

objectifs stratégiques du Gouvernement sont les suivants : (i)

doter le pays d’une politique nationale de l’eau ; (ii) créer un

environnement politique, institutionnel et légal favorable au

développement du secteur et entamer les réformes devant

conduire à une meilleure organisation au niveau stratégique et

opérationnel; (iii) utiliser des approches et technologies

novatrices et durables pour la gestion et le suivi du secteur ; (iv)

élaborer et mettre en place un programme de renforcement des

capacités des principales structures impliquées dans la gestion

du secteur ; et (v) mettre en place un mécanisme efficace de

financement du secteur (à travers entre autres le développement




du Partenariat Public Privé et la promotion de la coopération

sud-sud) [110].

Pour l’essentiel les moyens de production d’eau, les adductions

et les infrastructures primaires de distribution de Conakry ont

été développées à l’occasion des 1er, 2ème et 3ème Projets Eau

(années 1960, 1990 et 2000). Le développement des systèmes

d’Alimentation en eau potable (AEP) dans les centres de

l’intérieur est plus récent : 3 centres ont été équipés durant les

années 1970, 6 centres durant les années 1980 et 15 centres

durant celles de 1990 [110].

V-7 Accès à l’eau potable et distribution

L’approvisionnement des populations en eau potable a été l’une

des priorités du Gouvernement au cours de ces cinq dernières

années. Dans le cadre de l’évaluation des actions menées dans

ce domaine, les statistiques révèlent que 62% des Guinéens

avaient accès7 à une eau potable en 2002. En 2007, ce taux a

atteint 73,8% dans l’ensemble du pays, soit une hausse de 11,6

points de pourcentage entre 2002 à 2007 et un taux de 2,4% par

an environ avec des proportions variant de 94,1% à Conakry à

85,6% dans les autres centres urbains et 52,8% en milieu rural.

A ce rythme, le taux d’accès devrait atteindre 81,0% en 2010.

Cette progression est beaucoup plus accentuée en milieu rural

qu’en milieu urbain. [109]

Graphique 2 : Accès à l’eau potable selon les régions

administratives en 2007. [109]




Source: Rapport ELEP-2007.

En 2007, selon l’ELEP, on note que le taux d’accès a atteint

67,1% en milieu rural contre plus de 91,2% en milieu urbain.

Conakry a un taux de 98% environ alors que Kankan et Faranah

ont les taux d’accès les plus élevés, avec une moyenne de 87,9%

et 83,1% respectivement. Les autres régions à part Kindia

(55,7%) et Mamou (45,4%), ont des taux variant entre 66% et

77% [109].

Ces progrès résultent des investissements réalisés en matière de

forages d’une part et d’autre part des programmes d’urgence

entrepris pour améliorer l’adduction d’eau potable à Conakry et

dans les villes de l’intérieur. Le Service national d’aménagement

des points d’eau (SNAPE) a réalisé 728 points d’eau modernes

en 2007 et 679 en 2008. Ce qui lui a permis de se rapprocher de

l’objectif de 15 000 PEM à l’horizon 2010 fixé au démarrage du

projet en 1978. A ce jour, le cumul de Points d’eau réalisés est

de 14 792, soit un taux de réalisation de 98,6% [109].

En dépit de ces performances, le secteur reste confronté aux

problèmes suivants : capacité de production et de traitement de

l’eau limités par rapport à la demande, faible extension du




réseau de distribution, perte technique et fraude commerciale

élevées, indisponibilité des capacités installées pour faute de

maintenance ou de combustible et cadres institutionnel et

juridique du secteur inadaptés. [109]

La SEG couvre au total, 25 centres urbains sur les 34 du pays.

Ces centres urbains sont répartis en 6 Directions Régionales :

Basse Guinée, Moyenne Guinée, Haute Guinée, Guinée

Forestière et 2 à Conakry (Nord et Sud). La couverture de 9

centres supplémentaires, devant intégrer le périmètre de la SEG

dans les années à venir, est en projet. Il s’agit de Fria, Télimelé,

Koubia, Gaoual, Lélouma, Tougué, Beyla, Lola et Yomou. 6 de

ces centres bénéficient déjà d’un projet identifié : (i) les travaux

sont en cours à Télimelé, ils incluent la réalisation de 400

branchements particuliers et 20 bornes fontaines, (ii) les projets

des centres de Lola, Yomou, Lélouma, Gaoual, Tougué portent

sur la réalisation de 3 100 branchements particuliers et 155

bornes fontaines à l’horizon 2015. Par contre les études pour

Beyla, Fria et Koubia ne sont pas encore réalisées. Plusieurs

centres miniers de Basse Guinée, de tailles relativement

importantes ne sont pas desservis, comme Kamsar (61 000

habitants en 1996) et Fria (44 000 habitants en 1996) [110].

En fin 2011, le nombre de branchements à l’eau était d’environ

119 800 toutes catégories confondues, dont 93.600 à Conakry et

26.200 dans les autres centres. Une partie de la population est

alimentée par des branchements illégaux et des piquages sur les

conduites d’adduction et de distribution. La revente d’eau par

voisinage est aussi une pratique courante [110].

D’après une étude réalisée sur le secteur de l’eau potable en

milieu urbain, le taux de desserte total serait de 64% sur

l’ensemble du périmètre de la SEG. Le taux de desserte par

branchements particuliers (BP) et voisins s’élèverait à 51% et le

taux de desserte par bornes fontaines (BF) à 13%. Ainsi, environ

1,9 M habitants en 2011 auraient accès à l’eau de la SEG. Le




tableau qui suit présente les taux de desserte par branchements

particuliers (BP), par branchement d’une parcelle voisine et par

bornes fontaines (BF), ainsi que la population totale desservie

par la SEG [110].

Tableau 4 : Population desservie et Estimation du taux de

desserte par Direction Régionale en 2011 [110]

Direction régionale

(DR)

Total

population

desservie SEG

%

desserte

directe

(BP)

%

desserte

voisin

%

desserte

BF

%

desserte

totale

DR Conakry 1 632 868 35% 30% 7% 73%

DR Basse Guinée 118 314 10% 12% 17% 39%

DR Moyenne Guinée 116 721 16% 19% 20% 55%

DR Haute Guinée 130 444 12% 14% 20% 46%

DR Guinée Forestière 164 535 5% 6% 21% 32%

Total périmètre SEG 2 162 882 19% 23% 12% 64%

Sources : Données DSI, RGPH 1996, enquête QUIBB 2002 et

projections ARTELIA

Tableau 5 : Evolution des prélèvements de l’eau par la SEG

2010-2014 [109]

Source

Unité

Années

2010 2011 2012 2013 2014

Eau de surface Millions m3 51,71 52,49 53,45 53,20 54,53

Eau souterraine Millions m3 9,12 9,26 9,43 9,40 9,62

TOTAL Millions m3 60,83 61,75 62,88 62,70 64,15

Tableau 6 : Evolution des abonnements et la production

annuelle d’eau par la SEG [108]

Localité Années

2009 2010 2011 2012 2013 2014

Total Conakry 82159 85760 92953 96436 101474 105032

Total autres villes 22927 24553 25509 27947 29284 29928

Total général 105086 110313 118464 124383 130758 134960

Nombre de villes 25 25 25 25 25 25




Production globale d’eau potable par la SEG (en millions de m3)

51,20 57,93 58,77 60,32 61,3 62,76

La Basse Guinée et la Guinée Forestière affichent les plus

faibles taux d’accès direct à l’eau potable, respectivement de

10% et 5%. Corollairement, la desserte par branchement d’une

parcelle voisine est faible. Ces directions régionales sont

principalement alimentées en eau potable par bornes fontaines

[110].

Le Joint Monitoring Program OMS-UNICEF, chargé de suivre

les progrès réalisés pour l’atteinte des OMD relatifs à l’eau

potable et à l’assainissement (OMD 7), estime que 24% des

ménages sont alimentés par des forages privés ou des puits

protégés, ce qui donnerait un taux d’accès à l’eau potable de

78% [110].

V-8 La crise d’eau

Avec une pluviométrie abondante, un réseau hydrographique

dense couvrant presque tout le pays, la République de Guinée

dispose de potentialités hydrauliques considérables. Plusieurs

cours d’eau partagés entre les quatre régions naturelles de la

Guinée et arrosant plusieurs pays voisins font d’elle le château

d’eau de l’Afrique de l’Ouest [124].

La demande d’eau potable n’est pourtant satisfaite qu’à un faible

degré, aussi bien dans les villes que dans les campagnes. Aussi,

l’évacuation des eaux usées et l’assainissement des lieux publics

sont autant de problèmes auxquels la République de Guinée se

trouve confrontée [124].

Bien que l’accès à l’eau soit globalement très faiblement

amélioré en milieu rural, le droit de chaque guinéen est loin

d’être garanti puisqu’il existe encore environ 49% de la

population guinéenne qui n’a pas accès à l’eau potable [125].




La population avec un faible revenu et un coût élevé

d’approvisionnement en eau de robinet, comble ses besoins par

les eaux de surface et les puits traditionnels. Mais des études

portant sur la qualité des eaux de puits ont montré une forte

pollution de ces points d’eau alors que ces sources

d’approvisionnement continuent à être utilisées pourtant par

35% de la population urbaine de Conakry [124].

La population urbaine est passée de 16% de la population totale

en 1975 à 31,3% en 1998 et cette population pourrait représenter

42,9% en 2015. Cette importante croissance démographique

s'est traduite par une pression sur l'habitat et les équipements -

eau, voirie, assainissement [126].

En ce qui concerne les équipements sociaux, des efforts

significatifs ont été déployés ces dernières années, notamment

dans le domaine de l’hydraulique villageoise pour promouvoir et

développer des programmes d’assainissement et

d’approvisionnement des populations en eau potable. Malgré un

fort potentiel hydraulique et les efforts déployés par le pays et

l’aide au développement dans le cadre de la décennie sur l’eau

potable, l’accès à l’eau potable en Guinée demeure encore un

problème de luxe, notamment en milieu rural. En milieu urbain,

la distribution et la gestion de l’eau sont assurées par la SEG qui

est une entreprise publique responsable du développement, de la

réhabilitation et du renouvellement du réseau. Le sous secteur de

l’hydraulique villageoise est quand a lui géré par le Service

National des Points d’Eau (SNAPE) [126].

Durant les vingt dernières années, 9402 points d’eau modernes

ont été réalisés dans le pays (63% de l’objectif de 15 000 points

d’eau à atteindre en 2005). Entre 1990 et 1999, 5.415 points

d’eau modernes ont été réalisés avec l’appui des partenaires au

développement, mais les besoins restent importants selon

l’Enquête Démographie et Santé (EDSGuinée, 1999), 70.8% des




ménages s’approvisionnent en eau à partir des sources

traditionnelles non potables (marigot, rivière, fleuve). Les cours

d’eau constituent ainsi dans chacune des régions naturelles la

principale source d’eau et ils sont utilisés par 75% des ménages

de la Haute Guinée, 78% des ménages de la Basse Guinée et

plus de 80% des ménages de la Guinée Forestière et de la

Moyenne Guinée [126].

Si en milieu urbain, la qualité de l’eau est bonne, les populations

n’en profitent pas assez en raison du coût relativement élevé des

abonnements et de consommation (680 FG le m³ avec 7 m³

autorisés au delà desquels 1 m³ équivaudrait à 1250 FG) et de la

limite des réseaux de distribution [126].

En milieu rural cette situation est la conséquence du manque

d’infrastructures de base et de valorisation suffisante du parc

existant (temps d’arrêt des pompes pour réparation trop longue,

vieillissement des pompes de première génération, incapacité

financière des exploitants à les remplacer, eau impropre à la

consommation en raison d’une teneur élevée en fer (14% des

points d’eau modernes dépassent la norme de 0.3 mg/l

recommandée par l’OMS) ou en nitrates (67% en Guinée

Forestière). L’accès à l’eau potable est également réduit en

raison de l’éloignement des points d’eau des lieux d’habitation :

24,4% des ménages font plus de 500 mètres pour

s’approvisionner [126].

En matière d’hygiène et d’assainissement la situation n’est pas

meilleure. Les comportements à risque des populations, les

pratiques hygiéniques néfastes, la déficience des moyens

d’évacuation des excrétas, l’absence de schéma directeur

d’assainissement, la mauvaise gestion des déchets solides et

liquides ainsi que la faiblesse des connaissances et l’accès à

l’information favorisent la forte prévalence des maladies,

notamment celles d’origine hydrique. Selon l'EDS II réalisée en

1999, environ 5,7% des ménages disposent de toilettes avec




chasse d'eau et 22,9% ont des latrines améliorées, 23,6% des

ménages ne disposent que de latrines de type sommaire non

protégées, tandis que 45,4% des ménages ne disposent d'aucun

système de gestion des excrétas humains. Selon l’Enquête à

Indicateurs Multiples (EIM, 1996), seulement 13,3% des

ménages guinéens assurent une gestion correcte des ordures

ménagères. Tous ces facteurs concourent à accroître la

persistance de l’insalubrité de l’habitat et de l’environnement, la

contamination fécale et ont comme conséquence la prolifération

de toutes sortes de maladies diarrhéiques et des parasitoses

[126].

Sur la base des statistiques sanitaires, 40% des malades

consultés dans les centres de santé se plaignent de diarrhée ou de

choléra, helminthiase et autres parasitoses. Parmi toutes ces

maladies, les diarrhées arrivent en troisième position. Il existe là

aussi un pic saisonnier durant l’hivernage pour toutes les

régions. Conakry, capitale de la République de Guinée est la

région qui présente la plus forte incidence [127].

V-9 Problèmes d’hygiène et d’assainissement en Guinée

La propreté de l’eau n’est pas encore une préoccupation pour la

population rurale. L’approvisionnement et l’utilisation se font le

plus souvent sans précautions particulières [131].

En ce qui concerne les puits traditionnels, là où ils existent, ils

se trouvent généralement dans les concessions. Ces puits

traditionnels ne sont pas bien protégés et leur environnement

immédiat n’est pas propre. Certaines personnes aménagent à

proximité des puits des points d’abreuvage pour les animaux

domestiques. L’eau est souvent polluée par toutes sortes de

débris qui tombent dans les puits. Les cordes et seaux traînent à

même le sol. Rien ne garanti que l’eau qui vient de 10 à 20

mètres de profondeur ne soit propre (particulièrement en ville ou

dans les environs). A l’intérieur de certaines concessions, fosses




septiques et puits sont situés au même endroit, et les eaux usées

des ménages versées dans les rues s’infiltrent jusqu’à la nappe

phréatique [131].

En l’absence de puits, les villageois s’approvisionnent en eau

dans les retenus des barrages, les canaux d’irrigation et les lits

des cours d’eau. Dans les maisons, l’eau est stockée dans les

canaris selon leur utilisation (eau de boisson, de cuisine, pour la

toilette). Les canaris sont lavés mais les petits gobelets de

ramassage sont posés à même le sol et sont réutilisés sans être

nettoyés. Enfin de compte, les dangers de l’eau malpropre ne

sont pas perçus [132].

Selon les normes sanitaires, les puits doivent être construits

suivant un schéma approprié (annexes fig.1, 2) de construction

des puits traditionnels et modernes [133].

Tableau 7: Problèmes liés aux produits chimiques rejetés

par les industries et leur description [110]

Nature du

problème

Ville/Région Brève description du problème Produit(s) chimique

(s) / polluant(s)

Pollution des

sols

Régions

administratives,

Ville de

Conakry et

Préfectures

La pollution des sols au niveau

des magasins, usines de

production,

laboratoires, périmètres cultivés,

etc., est essentiellement due aux

produits chimiques souvent

stockés en des lieux

incommodes et dans des

emballages non appropriés et

peu résistants. Cette forme de

pollution peut également être

provoquée par des déversements

accidentels et /ou des fuites de

produits chimiques et de

médicaments, de même que par

l'épandage d'engrais et de

pesticides surdosés.

POP et autres

pesticides, engrais

(urée), produits

pétroliers, produits

industriels et réactifs,

médicaments et

autres

produits

pharmaceutiques, etc.

Les émissions de plomb par la

combustion des carburants

fossiles, de même que les

Plomb dans

l'essence, POP et

autres




Pollution de

l'air

Régions

administratives,

Ville de

Conakry et

Préfectures

envolées de poussières de

bauxite, d'alumine, de ciment, de

boues rouges, de gaz, de vapeurs

et de fumées provenant des

industries chimiques constituent,

entre autres, les principaux

problèmes de pollution de l'air

par les produits chimiques. A

ces types d'émissions s'ajoutent

les gaz et fumées toxiques

produits par l'incinération

sauvage des déchets dangereux,

médicaments périmés, pneus

usagers et autres matières

plastiques en polyéthylène

chloré. Les chlorofluorocarbones

(CFC) libérés au niveau des

ateliers de froid, ainsi que les

engrais, POP et autres pesticides

volatiles constituent également

des sources non négligeables de

pollution de l'air.

pesticides, engrais

(urée), alumine,

ciment, bauxite,

cyanure, solvants,

diluants,

ammoniaque,

benzène, produits

d'imprimerie et de

photographie,

polymères des

industries de mousse

et de plastique,

vapeur d’alcool,

CFC, etc.

Pollution des

cours

d'eau

Régions

administratives,

Ville de

Conakry et

Préfectures

Les cours d'eau avoisinant les

unités industrielles et périmètres

agricoles sont souvent pollués

par des boues rouges, des

effluents non traités, des

solutions cyanurées, des eaux de

lessivage des sols et des plantes

traités par des engrais, des

pesticides et des huiles usées de

garages et d’ateliers.

Métaux lourds

toxiques, POP et

autres pesticides,

engrais (urée)

produits chimiques

industriels,

cyanure, huiles

usées, etc.

Pollution des

nappes

phréatiques

Régions

administratives

Ville de

Conakry,

Préfectures,

Sous-préfectures

et villages

La pollution des nappes

phréatiques est occasionnée par

des déversements et des

infiltrations prolongés de

polluants chimiques persistants

(POP) et autres

pesticides, engrais, produits

pétroliers, produits chimiques

industriels, piles sèches usées,

lixiviats des décharges

publiques, etc. Ce type de

pollution est

manifeste au niveau des

centrales thermiques de

production d'électricité et des

périmètres d'exploitation de l'or

par la méthode de cyanuration.

Métaux lourds

toxiques, POP et

autres pesticides,

engrais (urée),

produits pétroliers,

industriels,

cyanure, le mercure,

etc.




Contamination

de l'eau

potable

Régions

administratives,

Ville de

Conakry et

Préfectures

La contamination de l'eau

potable par des produits

chimiques a lieu par

infiltration accidentelle de ces

produits dans les réseaux

d'adduction d'eau, dans les

forages et points d'eau.

Produits chimiques

toutes catégories

confondues

Source : Secrétariat Permanent de la Stratégie de Réduction de la Pauvreté (SP-SRP) 2007.

V-10 Cadre institutionnel du secteur de l’eau

Le cadre institutionnel du secteur de l’eau s’articule autour des

organismes suivants :

Le Ministère d’Etat en charge de l’Energie (MEE) : il a

pour mission la conception, l’élaboration, la mise en

œuvre, le suivi et l’évaluation de la politique du

Gouvernement en matière d’hydraulique ;

La Direction Nationale de l’Hydraulique (DNH) : c’est

l’organe opérationnel du Ministère. Elle est chargée de la

coordination des actions des différents acteurs pour

mettre en œuvre une politique nationale de l'eau et de

l’administration des droits et ressources en eau ;

La Commission Nationale de l’Eau : elle est chargée

d’adopter le projet de politique nationale de l’eau, dont

les attributions sont en cours d’élaboration par le MEE ;

Le Fonds de l’hydraulique, sous la responsabilité

conjointe des ministres chargés de l’Hydraulique et des

Finances : les ressources du fonds sont destinées à

favoriser le développement des ressources en eaux et la

mise en œuvre de la politique de l’eau ;

L’Agence de régulation des services publics d’eau et

d’électricité (ARSPEE) : elle joue le rôle de régulateur

du secteur ; un projet de loi sur la régulation du secteur

est en préparation et les statuts de cette agence sont en

cours d’élaboration ;

Les collectivités territoriales : elles ont pour mission la

gestion de l’eau, des points d’eau et la distribution de

l’eau potable ;




La Société des Eaux de Guinée (SEG) : elle gère et

développe le patrimoine de l’hydraulique urbaine,

l’exploite et l’entretient en vue d’assurer la fourniture

d’eau potable ;

Le Service National des Points d’Eau (SNAPE) : il a

pour mission de promouvoir et de développer

l’hydraulique villageoise, en vue d’améliorer la desserte

en eau potable et en équipements d’assainissement en

milieu rural.

Le cadre légal du secteur de l’eau est constitué essentiellement

de quatre codes :

Le Code de l’eau (loi 94/005/CTRN du 15 février 1994) définit

le régime juridique de l’eau. Il a été complété en 2005 par deux

lois sur les redevances de prélèvement et les pénalités

applicables aux infractions. Toutefois ce code doit être révisé

pour l’adapter au contexte politique et institutionnel en vigueur.

Le Code de l’environnement (ordonnance

045/PRG/SGG/87 du 28 mai 1987) établit les principes

et les règles destinés à gérer et protéger les ressources en

eau. Il définit les règles applicables aux installations

classées et aux études d’impact environnementales ;

Le Code de la santé d’avril 1992 définit les règles de

surveillance et de contrôle de la qualité des eaux par le

Ministère chargé de la Santé publique et par l’Institut National

de Santé Publique ;

Le Code foncier et domanial (ordonnance 92/019 du 30

mars 1992) définit les régimes fonciers et les règles

d’expropriation pour cause d’utilité publique.

Cet ensemble est complété par des règlements sur les

investissements publics et le contrôle des entreprises publiques

et des documents de politique et stratégie sectorielles.

L’organisation et le contrôle des entreprises publiques et

la réforme des entreprises publiques ;




Le Code des marchés publics ;

La lettre de politique sectorielle de l’eau et de

l’assainissement du 16 août 1994, mais n’étant plus

d’actualité ;

Le Document de Stratégie de Réduction de la Pauvreté 3

(DSRP 2013 – 2015) ;

La Feuille de route des activités de transition vers la

GIRE 2011 – 2015.

Services chargés de la mise en valeur des ressources en eau

- Direction Nationale du Plan (DNP) sous la tutelle du

Ministère du Plan.

- Direction Nationale de Dette et des Investissements Publics

(DNDIP) sous la tutelle du Ministère de l’Economie et des

Finances.

- Ministère de la Coopération Internationale.

- Service National d’Aménagement des Points d’Eau

(SNAPE) sous la tutelle du MHE.

- Société des Eaux de Guinée (SEG) sous la tutelle du MHE.

- Direction Nationale du Génie Rural (DNGR) sous tutelle du

MAE.

- Direction Nationale de l’Energie (DNE) sous tutelle du

MHE.

- Electricité de Guinée (EDG) sous tutelle du MHE.

Services chargés de la protection et de la conservation des

ressources en eau

- Direction Nationale de la Protection de la Nature sous tutelle

du Ministère de l’Environnement.

- Direction Nationale de la Prévention et de la Lutte contre les

Pollutions et Nuisances sous tutelle du Ministère de

l’Environnement.

- Direction Nationale de la Santé Publique (DNSP) sous

tutelle du Ministère de la Santé.




- Centre Régional pour l’Eau Potable et l’Assainissement

(CREPA-Guinée).

- Direction Nationale de l’Aménagement du Territoire et de

l’Urbanisme sous tutelle du Ministère de l’Urbanisme et de

l’Habitat.

- Direction Nationale des Eaux et Forêts (DNEF) sous tutelle

du MAE.

- Institut National de Normalisation et de Métrologie et le Service

National de Contrôle de la qualité et des Normes sous tutelle du

MCIPME.

- Ministère de la Justice.

Services chargés de l’utilisation des ressources en eau

- Direction Nationale de l’Agriculture sous tutelle du MAE.

- Direction Nationale de l’Elevage sous tutelle du MAE.

- Direction Nationale de la Pêche Continentale et de l’Aquaculture

(DNPCA) sous tutelle du Ministère de la Pêche et de

l’Aquaculture.

- Centre de Recherche Scientifique de Conakry Rogbané

(CERESCOR) sous la tutelle du Ministère de l’Enseignement

Supérieur et de la Recherche Scientifique.

- Institut National de Recherche et d’Action Pédagogique

(INRAP) sous tutelle du MEPEEC.

- Centre d’Etude et de Recherche en Environnement (CERE) sous

tutelle du Ministère de l’Enseignement Supérieur et de Recherche

Scientifique.

- Direction Nationale de l’Entretien Routier (DNER) et Direction

Nationale des Investissements Routiers (DNIR), sous la tutelle du

Ministère des Travaux Publics et des Transports.

Au niveau local, les populations bénéficient de l’appui du

gouvernement et des bailleurs de Fonds à travers des activités

menées par les services techniques de l’administration

décentralisée et déconcentrée ainsi que des ONG nationales et




internationales y évoluant dans le domaine de l’eau et de

l’assainissement [111, 113, 116].

Directions Régionales de la SEG

Les objectifs des OMD à l’horizon 2015 dans le domaine de la

desserte en eau fixent un taux de desserte global 75%. Ce taux

ne pourra pas être atteint à cet horizon par le seul accès de la

population à l’eau du service public, les éléments actuellement

disponibles faisant état d’un taux d’accès de 64% en 2011[108].

Les projets en cours et les tendances prolongées jusqu’en 2015

vont permettre d’atteindre un taux de desserte de 69% en 2015,

une légère amélioration par rapport à la situation de 2011. Ceci

suppose la réalisation de 15 700 BP et 120 BF d’ici 2015 soit

l’accroissement de presque 4 000 BP et 30 BF par an (la SEG a

réalisé environ 6 000 BP par an entre 2009 et 2011). Ensuite, le

taux global de desserte atteint 80% en 2020, 89% en 2025 et

93% en 2030 [108].

Ces projections sont faites d’abord sur la base de projets

identifiés incluant la réalisation de BP et BF ; ensuite sur le

travail continu de la SEG dans le but de répondre aux demandes

de branchements des populations ; et enfin sur l’objectif de la

SEG de réduire de moitié le nombre de personnes n’ayant pas

accès au service d’eau potable en 2015 [108].

Accès à l’eau potable en Guinée

Le vocable « eau potable » sous entend l’utilisation des sources

d’approvisionnement en eau suivantes : robinet, puits

protégés/sources aménagées, puits de forage et vendeur/camion

citerne. Un ménage a accès à l’eau potable s’il utilise au moins

l’une des sources ci-dessus énumérées pour s’approvisionner en

eau et met moins de 30 minutes pour y aller [117].

Le taux d’accès des ménages à l’eau potable au niveau de

l’ensemble du pays se chiffre à près de 62%. Ce taux est en nette

progression par rapport aux résultats de l’enquête de 1994-1995

qui l’avait estimé à 51,5 %. L’examen du taux d’accès par




source d’approvisionnement en eau montre que le forage

demeure la principale source (33,5 %). Mais des disparités

existent dans l’accès à l’eau potable en Guinée. En effet, si dans

l’ensemble, on compte près de 62 % des ménages qui ont accès

à l’eau potable, cette proportion est de 98,7 % pour les ménages

très riches et seulement de 9,8 % pour les pauvres [117].

En milieu rural, le taux d’accès est de 52,3 % (50,4 % en milieu

rural pauvre) contre 85,6 % en milieu urbain (77 % en milieu

urbain pauvre). Les régions de Mamou (39,4 %), Kindia

(42,6%), Labé (52,4 %) et N’Zérékoré (57 %) enregistrent des

taux d’accès à l’eau potable en dessus de la moyenne nationale.

Conakry enregistre un taux d’accès de 93 % [117].

La gestion des trois (3) fleuves internationaux est accordée à des

organismes de coopération inter pays : l’OMVG pour le fleuve

Gambie, l’ABN pour le Niger et l’OMVS pour le fleuve

Sénégal, auquel la Guinée adhère depuis 2006. Le pays dispose

de 4 grands barrages de plus de 15 m de hauteur de digue (BM,

2006), mais 129 sites ont été identifiés (MMG, 2006) pour le

développement futur. La mise en valeur des ressources en eau

par les barrages, envisagée dans l’avenir, présente de forts

risques environnementaux (santé, modification de débits, plantes

envahissantes…) [117].

Tableau 8 : Répartition des ménages selon la source

d’approvisionnement en eau potable (en %) [117]

1999 2012

Urbain Rural Total Urbain Rural Total

Source

d'approvisionnement

Robinet 63,7 4,2 21,2 73,1 0,9 21,7

Puits/source 21,1 29,5 27,1 19,2 28,9 26,1

Forages 12 34,7 28,2 5,2 46,8 34,8

Autres 3,5 32 23,9 2,5 23,4 17,4

Source: SP-SRP 2004

Stratégie de gestion de l’eau

Conformément à la lettre de politique sectorielle de l’eau et de

l’assainissement adoptée par le Gouvernement en Août 1996, la




stratégie générale du secteur s’articule autour des sous secteurs

hydraulique urbaine et rurale, gestion et administration des

ressources, assainissement urbain et rural [110].

Les contraintes et difficultés sont notamment liées à la qualité

des ressources, à l’irrégularité de la pluviométrie, au caractère

transfrontière des fleuves et à l’absence de mécanisme efficient

de coordination des interventions sur les ressources, etc. [110].

Les stratégies pour la gestion des ressources en eau sont :

- renforcement des capacités liées à la collecte et au traitement

de données de base ainsi qu’à l’exercice de planification /

programmation ;

- gestion des systèmes de prévisions hydrologiques et de suivi à

l’échelle des bassins versants ;

- établissement de plans d’ouvrage pour les groupes de bassins

versants et des zones d’intérêt socio économiques ou

écologiques particuliers ;

- application du code de l’eau et des autres lois connexes ;

- mise en place des organes du fonds de l’hydraulique en vue de

participer au financement du secteur ;

- constitution de banques de données et d’information sur les

ressources ;

- sensibilisation des institutions et du public dans la gestion et

l’administration des eaux ;

- promotion de la coopération internationale,

intergouvernementale et intercommunautaire en matière de mise

en valeur et de gestion des ressources, notamment partagées

transfrontières [110].

Stratégie de gestion de l’eau potable




L’objectif fondamental dans ce sous secteur vise à préserver le

riche potentiel des ressources en eau du pays, et permettre à

toute la population d’avoir accès à l’eau potable [110].

La stratégie pour le secteur de l’eau potable est articulée autour

des orientations ci-dessous :

- l’exploration des opportunités de financement pour la mise en

œuvre du programme d’investissement ;

- la mise en avant du caractère social de l’eau et son impact sur

la santé des populations ;

- la mise à profit des stratégies des bailleurs de fonds vers ce

secteur pour mobiliser des dons et subventions afin de soulager

le budget de l’État et d’alléger le service de la dette ;

- le développement des systèmes simplifiés d’alimentation en

faveur des grosses agglomérations en milieu rural [110].

V-11 Situation environnementale de la Guinée

Le réseau hydrographique est dense en Basse et en Moyenne

Guinée, moyen en Haute Guinée et assez moyen en Guinée

Forestière. Tous les cours d’eau internationaux de la région

(fleuves Niger, Sénégal, Gambie, Korubal, Diani, etc.), prennent

leur source en Guinée, d’où son nom de « Chateau d’eau » de

l’Afrique de l’Ouest. Le massif du Fouta Djallon et la dorsale

guinéenne sont la ligne de partage de ces cours d’eau qui coulent

vers le nord et le nord-est ou vers le sud et l’ouest [112].

La végétation du pays se compose de forêts de palétuviers

(mangroves), de savanes herbeuses, de savanes arborées, de

savanes boisées, de forêts claires, de forêts denses sèches et de

forêts denses humides. Cette diversité de types de végétation est

due à l’existence des différentes régions naturelles

susmentionnées, correspondant à des régions éco-climatiques

différentes. La Guinée jouit d’un climat tropical soudano-

guinéen caractérisé par l’alternance de deux saisons de durée




variant selon les régions naturelles: la saison sèche pendant

laquelle sévit l’harmattan et la saison pluvieuse régie par la

mousson ouest-africaine [112].

La saison pluvieuse dure de 5 à 9 mois du nord vers le sud ; il

tombe en moyenne 1 988 mm d’eau. La répartition de cette

pluviométrie est inégale aussi bien dans l’espace que dans le

temps. Elle dépend à la fois de la latitude, de la topographie et

de la continentalité. Les maxima sont situés dans la région de

Conakry (4 000 mm) et Macenta (2 000 mm) et les minima sont

observés dans les régions du nord du pays [112].

La Guinée est en général un pays chaud et humide. La plus forte

température (supérieure à 30°C) est enregistrée en mars/avril

dans la zone nord, aux frontières guinéo-sénégalaise et

guinéo-malienne. La plus basse température est observée en

décembre/janvier dans les hauteurs du Fouta Djallon (10°C à

Labé) [112].

En Basse Guinée et en Guinée Forestière, l’humidité

atmosphérique maximale moyenne est élevée (plus de 90%).

L’air est plus sec en Moyenne Guinée et en Haute Guinée,

surtout en saison sèche, lorsque l’harmattan souffle sur le pays

(moins de 20% en janvier-février-mars). L’ensoleillement est en

général important en Guinée et dépasse 2 000 heures par an. Les

plus faibles valeurs mensuelles sont enregistrées en saison

pluvieuse lorsque la nébulosité est maximale sur l’ensemble du

pays [112].

V-12 Statistiques environnementales

Le laboratoire de l’ancienne Direction Nationale de

l’Environnement est chargé d’effectuer toutes les analyses d’air,

d’eau et de sol pour le Service de l’Environnement. Des

analyses et expertises environnementales ont effectivement été

faites, mais uniquement à la demande des services nationaux, de

projets, d’organismes nationaux ou internationaux, de sociétés

privées ou autres et à l’occasion de problèmes




environnementaux particuliers (pollutions importantes de l’air,

de l’eau ou du sol) pour lesquels l’administration de

l’environnement devait nécessairement intervenir. Les activités

du laboratoire n’ont pas été finalisées vers un suivi de

l’évolution de l’état de l’environnement dans le pays [113].

Des projets domiciliés à la Direction Nationale de

l’Environnement ont également fait des études ponctuelles sur

des facteurs environnementaux. On peut citer :

- le Projet Stratégie Nationale et Plans d’Action sur la Diversité

Biologique : évaluation des espèces de flore et de faune ;

- le Projet Changement Climatique (1997-2002) : évaluation des

émissions de gaz à effet de serre : gaz carbonique, méthane,

peroxyde d’azote ;

- le Projet d’Extraction de Sable dans l’embouchure du fleuve

Konkouré (2001) : concentration de l’eau en oxygène dissout,

phosphate, nitrate, silicate, l’alcalinité et le pH;

- le Projet Polluants Organiques Persistants (projet naissant), etc.

Ces études de cas n’ont pas permis l’établissement, par la

Direction Nationale de l’environnement, de statistiques

environnementales au sens propre de l’expression [113].

D’autres structures (services nationaux, université, projet) ont

installé leurs propres équipements de recherche pour l’obtention

de données environnementales. C’est le cas de la Direction

Nationale de l’Hydraulique, du Service National des Sols

(SENASOL), du Centre d’Etude et de Recherche en

Environnement (CERE), du Centre de Recherche en Sciences

Océanographiques de Conakry Rogbanè (CERESCOR) et du

Centre National des Sciences Halieutiques de Boussoura

(CNSHB). Les recherches de certaines de ces structures n’ont

souvent porté que sur un seul enjeu environnemental,

correspondant à leurs préoccupations [113].

Cependant, elles possèdent presque toutes, des données

d’observations assez régulières mais sur une période limitée.




La Direction Nationale de l’Hydraulique effectue un

suivi plus ou moins régulier de la qualité des eaux de

certains fleuves et rivières. Des analyses

microbiologiques, bactériologiques et chimiques sont

réalisées par ses laboratoires à cet effet.

Le Service National des Sols (SENASOL) ne s’occupe

que d’études pédologiques. Il a élaboré une première,

puis une deuxième et enfin une troisième approximation

de la classification des sols de Guinée. Tous les sols du

pays sont actuellement inventoriés et identifiés selon la

systématique du SENASOL [113].

Le Centre d’Etude et de Recherche en Environnement

(CERE) de l’Université de

Conakry a un domaine d’investigation plus large. Il étudie la

qualité de l’air, de l’eau et du sol. Créé en 1994, ses premières

analyses n’ont porté que sur l’eau. C’est vers 1997 que le CERE

étend ses recherches à l’air et au sol. Depuis cette même date, il

effectue un suivi régulier de l’eau dans trois (3) des quatre (4)

régions éco-climatiques de la Guinée : la Guinée Maritime, la

Moyenne Guinée et la Haute Guinée. Ses recherches sur l’air et

le sol ne sont encore que des études de cas [113].

Le Centre de Recherche en Sciences Océanographiques

de Conakry Rogbanè (CERESCOR) effectue des études

sur les eaux et les ressources marines. Ses recherches

sont censées faire l’objet d’un suivi régulier, mais faute

de moins les observations sont parfois discontinues

[113].

Le Centre National des Sciences Halieutiques de

Boussoura (CNSHB) procède régulièrement à des

inventaires des ressources halieutiques non seulement

dans les eaux océaniques, mais aussi dans les principaux

cours d’eau continentaux du pays [113].




Les statistiques environnementales sont donc dispersées,

fragmentaires et incomplètes en Guinée. Il n’y a pas encore de

suivi régulier de l’environnement dans son ensemble. Même si

l’on possède quelques données sur l’air, l’eau et le sol, les

observations régulières sur les superficies des différentes

formations végétales, sur les effectifs de faune terrestre et sur les

richesses spécifiques fauniques et floristiques ne sont presque

jamais effectuées [113].

Le Centre National d’Observation et de Suivi Environnemental

(CNOSE) vient justement d’être créé pour relever ce défi. Les

principales missions du CNOSE sont :

- assurer le suivi régulier des facteurs environnementaux qui

pourraient affecter la santé des populations et l’équilibre des

écosystèmes ;

- analyser les interactions environnement/développement ;

- contribuer à l’élaboration d’une politique générale de

développement durable pour la

Guinée [113].




VI. CONAKRY, CAPITALE DE LA REPUBLIQUE DE GUINEE

VI.1 Renseignements généraux de la ville de Conakry

VI.1.1 Situation géographique et population:

Carte N°3 : Situation administrative de la ville de Conakry

[134]

Image 6 : Conakry en 1912 [136]

Image 7 : Conakry en 2016

http://commons.wikimedia.org/wiki/File:Konakry-Vue_g%C3%A9n%C3%A9rale.jpg?uselang=fr




Ses coordonnées géographiques sont : 9° 32′ 53″ Nord 13° 40′

14″ Ouest9. 5479376, -13.6704254.

À Conakry comme dans le reste de la Guinée prévaut une

grande diversité de langues, en plus du français, dont les plus

importantes étaient reconnues et enseignées durant la Première

République: le sosso, le pular et le maninka [136].

Conakry est en territoire sosso, population de pêcheurs,

dépositaire d'un riche folklore. Les visiteurs sont frappés par le

caractère monumental et la grandeur de l'art baga. Sa principale

divinité est « Mba » ou « Nimba » la déesse de la fécondité et de

l'abondance. Son masque est promené à l'occasion des cultures

(semailles et récoltes). Il est un buste taillé dans un bois massif,

avec des macules plates et allongées. Sa coiffure tressée et

dominée par un cimier médian surplombant un nez aquilin.

Malgré l'influence du christianisme et de l'islam, cause profonde

de la mutation de son art, le peuple « soussou » reste fidèle à sa

culture et le masque est au centre des manifestations rituelles de

la forêt sacrée [136].

VI-1-2 Géologie et hydrogéologie

http://tools.wmflabs.org/geohack/geohack.php?language=fr&pagename=Conakry&params=9.5479376_N_13.6704254_W_type:city

http://tools.wmflabs.org/geohack/geohack.php?language=fr&pagename=Conakry&params=9.5479376_N_13.6704254_W_type:city

http://fr.wikipedia.org/wiki/Soussou_(langue)

http://fr.wikipedia.org/wiki/Poular

http://fr.wikipedia.org/wiki/Malink%C3%A9




La géologie de la péninsule de Conakry est constituée des

péridotites (en roches ultrabasiques) d’origine mésozoïque. La

surface du sol se divise en plusieurs couches composées de

roche volcanique et de latérite qui se sont désagrégées. Ainsi la

péninsule forme un plateau situé entre 100 et 300 m d'altitude

avec largeur de 1 à 6 km [135].

Les eaux de surface à Conakry font partie de la principale

hydrographie avec les fleuves et les ravins qui coulent d’une

arête vers la mer à un intervalle de 2 km des deux côtés de la

ligne de crête. Le cours d’eau d’un ruisseau de montagne est

vertical par rapport à l’axe de la ligne de crête dans le sens

longitudinal. Dans les grands fleuves, l’eau coule en permanence

et serpente largement dans le marécage près de la plage [135].

En altitude, des zones en hauteur ont connu une croissance

rapide de leur population ces dernières années. Cependant, étant

donné que les réseaux d'égouts ne sont pas aménagés, la

majorité des eaux usées se jette directement dans les fleuves et

provoque leur pollution [135].

Les eaux souterraines peu profondes coulent près de la couche

de surface. Pendant la saison des pluies, avec la hausse d’un

coefficient de perméabilité à l'eau, bien qu'à des degrés divers,

les eaux entrent dans la nappe d’eaux souterraines et

commencent à s’écouler du fait de la gravité. Ceci augmente

fortement le risque de la souillure et la pollution des eaux à

travers dans les puits traditionnels [135].

Par contre, les eaux souterraines profondes coulent dans la

couche de latérite de régolithe. Étant isolées par la couche

imperméable intermédiaire, les eaux souterraines profondes

échappent au risque de pollution en provenance de la couche de

surface [135].

VI-1-3 Météorologie

Le climat de la Guinée maritime comporte deux saisons : la

saison sèche d’octobre à mai, et la saison des pluies de juillet à




septembre avec des précipitations annuelles entre 3.000 et 4.500

mm grâce à l’environnement océanique de mousson. Le climat

est humide (entre 65% et 93%) avec des températures élevées :

moyennes annuelles entre 23°C et 31°C. Pendant la saison des

pluies, les précipitations intenses peuvent submerger certains

quartiers, et pendant la saison sèche, il y a peu de pluie et le vent

venant du désert (l’harmattan) peut souffler fort [135].

Graphique 3 : Précipitations mensuelles moyennes et

températures à Conakry (2001-2012) [135]

VI-2- Les sources de déchets dans la ville de Conakry

Les sources des déchets urbains sont nombreuses et diverses.

Nous citerons, selon leur importance:

1) Les ménages : Les 2/ 3 des déchets produits dans la ville de

Conakry proviennent des ménages. Ces déchets très hétérogènes

de par leur composition comprennent : des plastiques, des

caoutchoucs, des verres, des bouteilles, des papiers, des métaux,

bois etc. [138].

2) Les marchés publics : Les marchés publics produisent aussi

des ordures trop grandes en quantité. En parlant de marché, nous

voulons citer les lieux où se rencontrent plusieurs acteurs ;

acheteurs, vendeurs, pour des fins de transactions. Le marché de

Madina, de Matoto, de Kénien, etc., en sont quelques espaces

publics où se produisent chaque jour des dizaines de tonnes

d’ordures [138].




3) Les organismes publics : Les écoles, les hôpitaux, les

tribunaux de justice, etc., produisent des ordures : de la

paperasse pour quelques-uns, des plastiques, aiguilles, sérums,

etc., pour d’autres. Certaines de ces ordures sont dangereuses et

d’autres ne le sont pas [138].

4) Les rues : Etant donné que le nombre des occupants de

l’économie informelle ne cesse d’augmenter et que le long des

routes s’exercent des commerces qui produisent des déchets. Le

manque criard de poubelles publiques, le niveau faible du

civisme dans la société, la faible importance que les citoyens

accordent aux biens collectifs; les sachets en plastique des eaux

consommées, les papiers après usages, les eaux usées, les

ordures ménagères se retrouvent dans les rues. Avec la pluie, ces

ordures bondent les canaux d’évacuation, obstruent leur

conduite et finissent dans les rues [138].

5) Les industries : Les usines produisent des débris et des

déchets divers. Bien souvent, ceux-là sont d’une grande toxicité.

En tenant compte de leur nature, les différentes ordures

produites par les usines peuvent êtres classées en : plastiques,

rebus de métaux, huiles de moteurs, caoutchouc, papiers, des

poussières (comme des usines de ciments), des fumées, des

déchets liquides dangereux, etc. [138].

6) Débris de construction et démolition : Les constructions et

démolitions produisent assez de débris. La nature de ces débris

est bien souvent variée : les briques, des bois, des morceaux de

tôles, de pointes, des pierres [138].

VI-2-1 Le volume des ordures produites dans la ville de

Conakry

Il est difficile de dire combien de tonnes d’ordures sont

produites chaque jour par les différentes sources susmentionnées

dans la ville Conakry. Pour des raisons ci-dessous, les ordures




produites chaque jour ne sont pas avec exactitude celles-là

présentées lors des différentes collectes :

-certains déchets se décomposent,

-certains déchets sont triés par des particuliers,

-d’aucuns servent de nourriture pour des animaux,

-d’autres sont incinérés par des familles et particuliers,

Nonobstant ces difficultés statistiques, en moyenne, 2000 tonnes

d’ordures sont produites chaque jour dans la ville de Conakry

[138].

VI-2-2 Gestion des Eaux usées et excrétas

Faute de système d’évacuation hygiénique approprié, la presque

totalité des eaux usées ménagères produites sont rejetées dans

les concessions, sur les rues, dans les caniveaux et rarement

dans les puisards très rudimentaires quelque fois, mal conçus et

non couverts. Le constat général qui se dégage, est que la

majorité des rejets d’eaux usées s’effectuent en milieu naturel

sans aucun traitement, favorisant ainsi la pollution du sol, des

puits, des eaux de surface, etc. [139].

Il n’existe pas d’infrastructures d’assainissement collectives ou

semi collectives d’évacuation et de traitement des eaux usées

qu’à Conakry où le réseau d’égouts se limite à la Commune de

Kaloum ; tandis que les cités minières de Kamsar, de Sangarédi

et de Friah disposent d’un système d’assainissement semi-

collectif [139].

Dans l’ensemble du pays, près d’un ménage sur cinq (22,5 %)

ne dispose pas du tout de toilettes ; et plus du tiers de ces

ménages (34,5%) utilisent des fosses ou latrines non couvertes

(ENENSE Guinée 2007). Cette situation entraine l’émanation

des mauvaises odeurs, la prolifération des insectes et le transport

des vecteurs de maladies par les mouches [139].

Le faible niveau d’adoption de pratiques d’hygiène reste une

préoccupation majeure, en effet selon l’enquête MICS, 2008,




seulement 48,3% de personnes se lavent les mains après les

toilettes [139].

En milieu rural, près du tiers des ménages (31,8%) pratiquent la

défécation à l’air libre contre 40,9% qui utilisent des fosses ou

des latrines non couvertes (ENENSE Guinée 2007). Les boues

de vidanges sont pour la plupart évacuées dans la rue pendant la

saison des pluies ou enfouies dans le sol de la concession durant

la saison sèche [139].

La mauvaise évacuation des eaux usées et des excréta entraine

la pollution du sol, de l’air, des eaux souterraines et de surface

ainsi que la stagnation des eaux usées en certains endroits avec

le développement des gites larvaires [139].

VI-2-3 Collecte et évacuation des ordures ménagères

Les principaux modes d’évacuation des ordures ménagères sont

le rejet dans la nature, les espaces libres, les cours d’eau, la mer,

les caniveaux, etc. Au niveau national 77% des ménages

rejettent les ordures dans la nature, ce taux est de 93% en milieu

rural, 18,1% à Conakry et 64,4% dans les autres centres urbains.

(Rapport UNICEF, 2009) [139].

Selon cette même source, le ramassage public ne se fait qu’à

Conakry et concerne 55,4% des ménages, le ramassage privé

compte pour 10,5% et l’incinération pour 6,1%. Dans toutes les

autres villes les décharges ne sont pas contrôlées et les systèmes

de transfert des ordures sont inappropriés La présence des

dépotoirs sauvages un peu partout dans la ville de Conakry et à

l’intérieur du pays favorise la prolifération des insectes, des

mouches et des rongeurs vecteurs de maladie. La décomposition

de la matière organique et le brulage des ordures à ciel ouvert

peuvent occasionner par exemple des problèmes de santé

respiratoire et oculaires [139].

VI-2-4 Drainage des eaux pluviales




Les villes guinéennes en général enregistrent un important

déficit en matière de drainage des eaux pluviales. Cette

défaillance se traduit par des inondations dans les villes, les

débordements des caniveaux, la stagnation des eaux, la

dégradation des chaussées et des habitations. Les caniveaux

remplis d’eaux usées et obstrués par les déchets constituent un

milieu propice pour le développement des vecteurs de maladies

[139].

VI-3 Problèmes d’approvisionnement en eau par la SEG

dans la ville de Conakry

La ville de Conakry, la capitale de la République de la Guinée se

trouve au bout d’une péninsule, avec une côte nord-est et une

côte sud-ouest qui s’étale sur un axe de 36 km à partir de l’ouest

du continent africain vers l'océan Atlantique. Le centre de la

péninsule est en hauteur, marqué par les ruisseaux coulant sur la

ligne de crête vers la mer. Autrefois, la péninsule de Conakry

avait des forêts tropicales denses. Pourtant, la végétation y a

fortement changé suite à l’urbanisation, et des forêts naturelles

ne restent que sur une partie de la péninsule [135].

En Guinée, un grand retard a été constaté dans la réalisation et

l’aménagement des installations pour l’approvisionnement

stable en eau potable. Et dans la capitale Conakry, la capacité de

distribution d’eau ne pouvait pas répondre à l’accroissement des

besoins en eau résultant de la concentration de la population

[135].

Faisant face à cette situation, le Gouvernement guinéen a

déployé et déploie tous ses efforts pour améliorer le système

d’approvisionnement en eau potable en ayant recours aux aides

financières non-remboursables du Japon etc. À Conakry, la

population à approvisionner en eau potable a augmenté sans

cesse et s’accroît d’une manière galopante ces dernières années.

Elle était estimée à 1 million 520 mille personnes en 2003 et

celle administrative de la ville de Conakry estimée par la SEG




qui est l’organisme d’exécution du Projet atteint actuellement 3

millions 70 mille personnes en raison de l’afflux de population

des villes régionales, de la croissance démographique, de

l’extension des zones de service, etc. [135].

Selon la SEG, la population totale de la zone urbaine

comprenant une partie de la préfecture de Coyah et de Dubréka

couverte par le réseau de distribution d’eau de la SEG est

estimée à 3.938.000 (en 2013). De ce fait, l’aménagement

d’installations ne répond pas aux besoins et le taux de

couverture en 2012 reste moins élevé (46%) à l’égard de

l’étendue élargie avec des zones hydrauliques de banlieue. Le

volume total des besoins en eau potable des habitants de la ville

de Conakry est de 294.000m3 par jour [135].

Par contre, la capacité nominale de toutes les installations

existantes : les stations de traitement, les forages, les

installations de captage d’eau de jaillissement, tous confondus,

n’est que de 166.000m3 par jour. En outre, si l’on tient compte

de la perte d’eau par le vieillissement des installations, elle

couvre à peine la moitié des besoins. Surtout, la population à

approvisionner de la partie centrale en hauteur augmente

considérablement de telle façon que la quantité d’eau assurée

pour cette partie est très petite, soit environ 30% de celle pour

les basses zones, ce qui constitue un grave problème des

inégalités en matière d’accès à l’eau potable entre les zones

hydrauliques. Dans de telles circonstances, des accidents de

casse ont aussi provoqué sur une conduite d’eau traitée en

plastiques renforcés de fibres de verre (ci-après désignés

‘‘conduite en PRV’’) 1100 mm dont la longueur est de 3,35km

comprenant une installation faisant l’objet du Projet et servant

au transport d’eau vers la partie centrale en hauteur. Les mesures

adéquates doivent être promptement menées pour remédier aux

problèmes d’approvisionnement en eau potable [135].




Le Gouvernement guinéen a élaboré en 2013 le Document de

Stratégie de Réduction de la Pauvreté III (DSRP III) dans lequel

un des objectifs généraux retenus vise à assurer, d’ici 2015, un

pourcentage d’accès à une eau potable de 92,8% dans la capitale

Conakry. Le présent projet contribue à atteindre cet objectif et

est donc considéré comme nécessaire. En outre, comme le

Programme d’urgence pour l’amélioration de la desserte à

Conakry élaboré par le Gouvernement guinéen en janvier 2014

pour faire face à des situations aggravées souligne explicitement

le contenu de la présente requête, il convient de dire que le

présent projet est considéré comme urgent [135, 137].

VI-4 Production et consommation de l’eau à Conakry

85% de l’eau distribuée à Conakry provient de l’usine de

traitement de Yessoulou, qui est alimentée en eau brute par la

retenue des Grandes Chutes située à environ 80 km de la ville.

Le reste de l’eau distribuée à Conakry provient d’autres

ressources superficielles (lac Sonfonia, captages de Kakoulima)

et de 7 sites de forages situés dans l’agglomération urbaine. Les

24 centres de l’intérieur sont alimentés par des eaux de surface à

hauteur de 66% et par des eaux souterraines pour 34% [111].

Les deux atouts majeurs de la SEG sont le caractère gravitaire

de l’approvisionnement en eau à partir de Yessoulou et la bonne

qualité de l’eau brute exploitée par cette usine de traitement, à

un faible coût de revient. Il convient cependant d’être prudent

sur la qualité de l’eau brute, car une exploitation minière en

développement dans le bassin versant la menace. En effet, le

déboisement pour l’ouverture de nouvelles carrières de bauxite

provoque une augmentation de la turbidité de l’eau de la retenue

en saison des pluies.

Sur la période 2000-2011, la production a plus que doublé,

passant de 27,8 à 58,8 M m3. Avec un rendement estimé de 65%

pour Conakry et 60% dans les autres centres, et une amélioration




à 80% d’ici 2020, les ressources en eau à mobiliser (hors pointe)

représentent :

88,7 mille m³ en 2020, dont 66,03 mille m³ à Conakry, soit

178.175 m³/j ;

151,53 M m³ en 2030, dont 109,13 M m³ à Conakry, soit

299.000 m³/j [111].

Quant à la consommation, elle est passée de 13 à 42,1 mille m3

Sur la période 2000-2011. Selon les projections faites, la

consommation totale des abonnés du périmètre de la SEG

devrait rester constante d’ici à 2015, puis connaître une

évolution importante d’ici à 2030, passant de 42,1 mille m3 en

2011 à 48,2 mille m3 en 2020 et 102,6 mille m3 en 2030, soit

une multiplication par 2,4 sur la période.

Ces projections sont faites sur la base des tendances observées

sur la période 2011-2012 et en intégrant ensuite les estimations

attendues des nouveaux centres selon la date de réalisation des

investissements prévus. Ces chiffres montrent que la production

est en mesure de combler les consommations des abonnés.

Toutefois le fait qu’une partie importante des abonnés soit

facturée au forfait ne permet pas d’avoir une connaissance

précise des volumes effectivement consommés. Les fuites

techniques, erreurs de comptage, erreurs de relevé d’index,

erreurs d’estimation, etc. constituent autant de facteurs

susceptibles de biaiser l’estimation de la consommation [111].

Sur le plan des tarifs de l’eau, ceux-ci sont fixés par arrêté

conjoint du ministre chargé de l’hydraulique et du ministre des

Finances. Les frais de branchement au réseau sont facturés sur

devis, dont le montant varie en fonction de la nature des travaux,

en particulier de la longueur du branchement, et du diamètre du

compteur. La grille comprend cinq (5) catégories d’abonnés : les

abonnés particuliers, les administrations, les commerces, les

bornes fontaines, les industries et organismes internationaux

[111].




Le principal défi auquel est confronté la SEG est l’alimentation

en énergie des installations de pompage et de traitement, car, en

raison des délestages d’Electricité de Guinée (EDG), elle doit

s’approvisionner en électricité avec ses groupes électrogènes,

dont le coût d’exploitation est le double du prix de l’électricité

d’EDG. C’est plus particulièrement pénalisant dans les centres

de l’intérieur où le coût de l’énergie par m3 d’eau produit atteint

en moyenne 2 047 GNF (0,29 USD), soit 75% du prix de vente

moyen de l’eau dans ces centres (0,40 USD). Ainsi la SEG est

dépendante d’EDG qui ne parvient à fournir de l’électricité que

dans 6 centres de l’intérieur sur 24 et de façon très intermittente.

Par ailleurs, elle est dépendante du Gouvernement qui fixe la

tarification de l’eau et depuis plusieurs années le tarif ne permet

pas d’approvisionner suffisamment en carburant les groupes

électrogènes installés pour pallier la carence d’EDG. Cette

situation conduit la SEG à réduire au minimum acceptable le

temps de fonctionnement de ses installations (15 heures en

moyenne par jour) [111].

VII- TRAITEMENT DE L’EAU DESTINEE A L’ALIMENTATION

VII-1 - LA POTABILISATION DE L'EAU

Consommer une eau ne présentant aucun risque sanitaire est un

besoin vital pour chaque être humain. L'homme doit

donc consommer de l'eau potable.

De nombreux paramètres doivent être corrigés pour rendre l’eau

potable. Les usines de traitement sont placées à proximité d'un

point d'eau. Les médecins et les professionnels de l'eau ont

élaboré des traitements microbiologiques et physico-chimiques.

Le réseau de distribution est donc étroitement surveillé afin

d'éviter les pollutions et les contaminations bactériennes. En

effet, l'eau pompée ne répond généralement pas aux normes de




potabilité, elle contient souvent des produits indésirables tels

que des particules en suspension, des sels dissous ou des

germes. Après lui avoir ôté ces substances, il faudra alors ajouter

des réactifs pour que l'eau possède certaines qualités et respecte

les normes en vigueur [133].

VII-2 - Le Pompage - le Stockage et le Tamisage

La première étape du processus de potabilisation consiste à

pomper l'eau dans son milieu naturel afin de l'acheminer jusqu'à

la station. Lorsque le relief naturel n'est pas adapté, il faut

relever les eaux au niveau de l'usine par le biais de pompes ou

d'une vis d'Archimède. Cette vis est en réalité une hélice

tournant autour de son axe dans une goulotte, permettant ainsi le

déplacement des liquides.

Schéma 3 : Vis d'Archimède en mouvement

Acheminée à la station, l'eau est, ensuite, dégrillée à différents

niveaux, comme pour l'assainissement. Elle traverse une

première grille, destinée à arrêter les gros corps flottants et à

éliminer ainsi les plus gros déchets : c'est le pré-dégrillage. Puis,

l'eau subit un dégrillage moyen. Enfin, un dégrillage fin est

effectué. Suivant les caractéristiques de l'eau à traiter, les

différentes grilles peuvent être placées les unes derrière les

autres ou séparément. On distingue les grilles à nettoyage

manuel et les grilles à nettoyage automatique. Cet équipement

doit être correctement dimensionné de façon à obtenir une




vitesse de passage suffisante pour plaquer les déchets contre les

grilles afin qu'ils ne soient pas ré-entraînés.

Après avoir été dégrillée, l'eau rejoint un bassin de stockage de

forte capacité afin de parer aux éventuelles pollutions ou pointes

de consommation. Ce stockage est souvent doté d'une

autoépuration naturelle provenant des rayons du soleil, de la

faune et de la flore présentent dans le bassin. L'eau pompée

reçoit un traitement de pré-désinfection au chlore ou à l'ozone

permettant de diminuer le taux de bactéries.

L'eau est, ensuite, épurée à l'aide d'un tamis rotatif dont

l'écartement des mailles est compris entre 6 et 0,5 mm. Le

fonctionnement est simple : la vitesse du flux est réduite

par une boîte d'alimentation. L'eau passe sous une lame

siphoïde qui élimine les turbulences avant que les liquides et les

solides en suspension soient au contact du tamis rotatif. Les

solides restent à la surface externe du filtre et sont retirés par une

lame. L'effluent traverse le tamis cylindrique de l'intérieur vers

l'extérieur assurant ainsi l'auto-nettoyage. Son action est

complétée par une rampe de lavage [133].

VII-3 - Le Prétraitement : Coagulation, Floculation,

Décantation

Dans le cadre d'un traitement de potabilisation, la coagulation-

floculation est une technique employée pour réduire la turbidité

de l'eau et éliminer les matières organiques comme les micro-

particules d'argile responsables du trouble de l'eau. Ce procédé

physico-chimique repose sur la difficulté qu'ont certaines

particules à se décanter naturellement : les colloïdes. Les

particules colloïdales sont caractérisées par un très faible

diamètre (du micro au nanomètre) et sont chargées

électronégativement, engendrant des forces de répulsion.




Ces propriétés confèrent aux colloïdes une vitesse de

sédimentation extrêmement faible.

La coagulation-floculation a pour but de s'affranchir de cette

absence de sédimentation. Dans un premier temps, déterminer,

en fonction de l'eau à traiter, la dose de réactifs à ajouter et la

vitesse d'agitation du milieu, est indispensable. Ces grandeurs

s'évaluent en effectuant un jar test en laboratoire. Des béchers

reçoivent différentes doses de réactifs et sont tous agités à la

même vitesse. En fin d'expérience se définissent les couples

quantités de réactifs par rapport à la vitesse et au temps

d'agitation qui permettent d'obtenir l'eau la plus limpide et de

gros flocs.

Un surdosage de réactif provoque une détérioration du

traitement et un surcoût des opérations.

L'eau tamisée passe par une cuve de prétraitement où l'on ajoute

du micro-sable et des coagulants à base d'aluminium (Al3+)

ou

de fer (Fe3+

), tel que du sulfate d'aluminium, du chlorure

ferrique, du chlorosulfate ferrique... Ces réactifs, très

électropositifs, permettent de supprimer les répulsions

intercolloïdales : les cations métalliques se lient aux colloïdes et

les neutralisent. Les particules peuvent désormais se rencontrer.

La vitesse d'agitation des eaux à traiter est donc plutôt rapide

pour bien mélanger l'eau avec les cations métalliques et ainsi

favoriser leur rencontre avec les colloïdes.

La floculation permet de résoudre les problèmes liés au faible

diamètre des colloïdes. En effet, la masse de ces particules est si

petite qu'elle ne permet pas une sédimentation naturelle

suffisante. L'ajout de floculant organique ou naturel tels que :

l'alginate de sodium, la silice activée et l'amidon permet

l'agglomération des particules colloïdales. En effet, les




floculants ajoutés vont jouer le rôle de colle entre les particules.

Les plus fines, contenant les polluants, se rassemblent alors en

flocons de plus en plus gros autour du micro-sable. L'agrégation

des particules forme des flocs possédant une masse suffisante

pour être décanter. Ces amas de particules emprisonnent d'autres

éléments tels que des bactéries pouvant être pathogènes. La

vitesse d'agitation est relativement faible afin de ne pas détruire

les flocs déjà formés.

La décantation est une opération de séparation mécanique qui,

sous l'action de la gravitation, peut séparer soit plusieurs

liquides de densités différentes, soit des solides insolubles. Le

procédé de décantation dit à « contre-courant » consiste en une

séparation des flocs et de l'eau au moyen d'un décanteur à

lamelles superposées. Pour obtenir une efficacité maximale, les

lamelles sont inclinées de 60°. Ainsi, les flocs se déposent et

glissent au fond du bassin. A ce stade, 95 % de la pollution et

100 % des matières en suspension ont déjà été éliminées. L'eau

clarifiée est alors récupérée en surface tandis que les particules

décantées sont extraites par purges régulières ou centrifugées.

VII-4 - La Filtration sur Sable et Anthracite

A la sortie du décanteur, l'eau est conduite vers un filtre à sable

(en couche supérieure) et à anthracite (en couche inférieure). Ce

filtre contient des bactéries capables de transformer l'ammoniac

en nitrites puis en nitrates en quantité infime : 2 fois en dessous

de la norme en vigueur. Il permet d'éliminer les métaux lourds

tels que le zinc (Zn), le cuivre (Cu) et le plomb (Pb). La

suppression de particules dont la taille est supérieure à 20 μm est

également réalisée lors de cette étape. La filtration s'effectue sur

plusieurs filtres parallèles l'un à l'autre, équipés d'un régulateur

qui permet de maintenir un plan d'eau constant. Le nettoyage de




ces filtres est réalisé à « contre-courant » avec de l'air puis de

l'eau [133].

Schéma 4 : Filtre à bicouche

VII-5 - La Désinfection - l'Ozonation

Après sa filtration, l'eau subit une désinfection qui a pour but

d'éliminer les germes bactériens résiduels. L'utilisation de

procédés chimiques tels que : la chloration, l'ozonation ou le

traitement par ultraviolets sont essentiels. La chloration

s'effectue à l'aide de chlore ou de dérivés chlorés : Eau de Javel,

dioxyde de chlore... L'ozonation, quant à elle, est réalisée

avec un gaz : l'ozone. L'oxydation, par le chlore ou l'ozone, agit

principalement sur les métaux comme le fer et le manganèse

ainsi que sur les matières organiques. Il détruit ou inactive les

germes vivants, les virus et les bactéries présents dans l'eau.

L'ozonation est un traitement chimique par oxydation permettant

d'hydrolyser les grosses molécules carbonées en petites chaînes




carbonées biodégradables. L'élimination des pesticides,

herbicides, fongicides et micro-algues présentes dans l'eau

pouvant altérer les nanomembranes est ainsi effectuée.

L'utilisation de réactifs chimiques oxydants dans le traitement

des eaux a pour visée la stérilisation de l'eau : la destruction des

germes pathogènes.

L'ozone a l'avantage de permettre des actions complémentaires

dans la destruction d'un grand nombre de micropolluants et dans

l'amélioration des goûts, des odeurs et des couleurs. C'est une

molécule formée de trois atomes d'oxygène : O3. Ce gaz soluble

dans l'eau est un puissant oxydant. Ce réactif est qualifié de

multifonctionnel. En effet, il détruit des composés toxiques tels

que les cyanures et les phénols ainsi que les colorants artificiels

et organiques naturels comme les acides humiques et les tanins

responsables de la coloration des eaux.

Malheureusement, l'ozone étant un gaz instable, il est donc

nécessaire de le produire sur le lieu de consommation. A

l'échelle industrielle, l'ozone est produit dans des générateurs

tubulaires grâce à des décharges électriques. Cette production

est créée par un générateur d'ozone [133].




Image 1 : Générateur d'ozone pour eau potable

VII-6 - La Microfiltration et l'Ultrafiltration

L'étape suivante est celle de la micro et de l'ultrafiltration. Ces

techniques de filtration permettent de dissoudre des solides et

d'éliminer la turbidité de l'eau. La qualité du travail est

déterminée par la taille des pores des membranes qui varient de

0.1 à 10 µm. Ces deux procédés rendent possible la destruction

des substances plus grosses que les pores mais, les plus petites

ne sont généralement pas totalement supprimées. Leur efficacité

dépend de la pression à laquelle l'eau est envoyée. En effet,

celle-ci est projetée perpendiculairement sur des pré-filtres

verticaux en inox, composés de micro-membranes.

La microfiltration élimine toutes les bactéries et permet de

contenir une partie de la contamination virale. En effet, les virus

sont retenus par les membranes.

Image 2 : Système de microfiltration

L'ultrafiltration permet l'élimination complète des virus. Cette

technique est cruciale dans le cadre de la potabilisation de l'eau :

les membranes utilisées permettent de supprimer des particules

de 0.001 à 0.1 µm. Les pollens, les algues, les parasites, les




germes et les grosses molécules organiques sont filtrés laissant à

l'arrivée une eau parfaitement clarifiée et désinfectée sans

utilisation de produits chimiques. Ces membranes sont dites

"basses pressions". L'ultrafiltration permet donc une clarification

et une désinfection de l'eau en une seule étape.

La micro et l'ultrafiltration constituent des étapes de

prétraitement de l'eau. Elles précèdent la nanofiltration et de

l'osmose inverse et évitent l'encrassement des nanomembranes.

A l'usine de production d'eau potable de Méry-sur-

Oise, un nettoyage mécanique des micro-membranes est

pratiqué toutes les 30 heures. L'eau est projetée sous très haute

pression en sens inverse. Un nettoyage chimique est pratiqué

tous les 15 jours : il contient du détergent et de l'acide citrique

qui permettent d'éliminer les corps gras et les matières

organiques déposés sur les filtres [133].

Image 3 : L’appareil servant l'Ultrafiltration de l’eau

VII-7 - La Nanofiltration et l'Osmose Inverse

L'eau, déjà très bien traitée, passe ensuite au stade de la

nanofiltration, puis de l'osmose inverse.




La nanofiltration est effectuée sur une membrane semi-

perméable. Ce procédé est caractérisé par une "forte filtration" :

la taille des particules ciblées est de l'ordre de 1 à 10 nm et par

une "forte pression" s'élevant à 20 bars. Les membranes de

nanofiltration permettent d'éliminer la matière organique

résiduelle et d'avoir une eau à grande stabilité bactériologique

lors de sa distribution. Par ailleurs, cette technique nécessite une

très faible quantité de chlore garantissant l'absence de goût. La

taille des pores permet de supprimer quasiment tous les

polluants. A l'issue de ce procédé, le calcium et le magnésium

sont détruits. Un produit est formé : le dioxyde de carbone. Le

problème majeur de la nanofiltration est son coût qui

est supérieur de 60% à celui de la filière classique du traitement

de l'eau. Cependant, les normes de plus en plus strictes

développent les filières comme celles de la nanofiltration [133].

Image 4 : L’appareil servant l’Unité de nanofiltration

L'osmose inverse constitue la dernière étape de filtration de

l'eau. Utilisée pour la première fois par la US Navy pour fournir

de l'eau potable aux sous-mariniers, ce procédé est aujourd'hui

employé pour la purification et le dessalement de l'eau de mer.

Ce système de filtrage très fin ne laisse passer que les molécules

d'eau. On appelle osmose le transfert de solvant à travers une

membrane. En exerçant une pression de 80 bars, on dépasse




ainsi la pression osmotique (pression d'équilibre). L'eau franchit

la membrane en un sens : ainsi, un plus grand volume d'eau

pure est obtenu d'un côté. De l'autre, un plus petit volume d'eau

plus concentrée sert de piston.

Cependant, quelques inconvénients demeurent. En effet, les

membranes se dégradent vite : elles ont une espérance moyenne

de vie de trois ans. De plus, cette technique consomme

beaucoup d'énergie. Enfin, on observe 25% de pertes en eau qui

ne sont pas filtrés : le concentrat.

Image 5 : Principe d'osmose inverse




Image 6 : Système d'osmose inverse




Schéma 5 : Les différentes fonctions des filtrations

VII-8- Le Dégazage et le Post-Traitement : La Chloration

Le dioxyde de carbone formé, lors de la nanofiltration, étant

instable et agressif, doit être supprimé. L'eau est donc acheminée

dans des réservoirs afin que le CO2 se diffuse dans l'atmosphère.

La dernière étape de la potabilisation de l'eau est la chloration.

En effet, à sa sortie elle est chlorée en grande quantité afin

d'éliminer les dernières bactéries. Le milieu ne contenant plus de

matière organique, les bactéries ne pourraient pas se développer.

Pour que l'eau n'attaque pas le réseau de distribution, elle doit

avoir un pH neutre. On le rééquilibre grâce à de la Chaux, du

carbonate de sodium, de la soude, de l'acide sulfurique et de




l’acide chlorhydrique, du bicarbonate de sodium et du carbonate

de calcium. Pour que l'eau n'ait pas de goût désagréable, on

procède à une déchloration. L'eau reste légèrement chlorée en

fin de parcours afin de ne pas être altérée lors de sa distribution.

Le chlore se décompose vite lorsqu'il est utilisé en grande

quantité. Il faut donc légèrement chlorer l'eau en sortie d'usine

afin de pouvoir la rechlorer tout au long du réseau de

distribution par les stations de réchloration. Pour protéger le

réseau des antitartres et anticorrosifs sont utilisés. L'eau est

ensuite stockée dans des châteaux d'eau avant d'être consommée

par la population via les réseaux hydrauliques [133].




CHAPITRE II : MATERIEL ET METHODES




II.1 Milieu d’études :

Conakry est la capitale de la République de Guinée. Son centre

historique se situe sur l'île de Tombo, au bord de l'océan

Atlantique. En 2010, l'agglomération comptait plus de 2 millions

d'habitants, ce qui en fait la plus importante ville du pays : un

Guinéen sur cinq vit à Conakry. Le territoire bâti déborde

aujourd'hui largement à l'intérieur des terres, en particulier sur la

presqu'île de Kaloum à laquelle l'île est reliée par une digue.

L'activité portuaire constitue aujourd'hui le secteur majeur de

l'économie de la ville.

La ville de Conakry connaît une croissance démographique

soutenue. En 1958, elle comptait 50 000 habitants; en 1980,

600 000 habitants; en 1983, 705 300 habitants; en 1996,

1 092 936 habitants; en 2008, 1 857 153 habitants et en 2009

2 160 000 habitants (soit une hausse moyenne annuelle de

4,52 % sur la période de 12 ans 1996-2008) Sa superficie est de

45 000 ha = 450 km2 pour une densité de 3 706 hab./km

2 [134].

II.2 Cadre de travail :

Les travaux d’étude de la qualité physico-chimique et

bactériologique des sources d’approvisionnement en eau des

populations de la ville de Conakry ont été réalisés au laboratoire

de Microbiologie du Département de Biologie de l’Université

Gamal Abdel Nasser de Conakry (UGANC), au laboratoire du

ministère de l’élevage et de la production animale, au laboratoire

de bactériologie de l’Institut de Recherche en Biologie

Appliquée de Guinée (IRBAG) et au laboratoire du Service

National des Points d’Eau (SNAPE).

http://fr.wikipedia.org/wiki/Capitale

http://fr.wikipedia.org/wiki/R%C3%A9publique_de_Guin%C3%A9e

http://fr.wikipedia.org/wiki/Oc%C3%A9an_Atlantique

http://fr.wikipedia.org/wiki/Oc%C3%A9an_Atlantique




Image 8 : Borne fontaine de la SEG à Kissosso plateau/ Image 9 : Forage à Lambanyi

Image 10 : Puits à Wanindara / Image 11 : Puits à Kobaya

Image 12 : Forage à Kissosso/ Image 13 : Puits tubé à pompe électrique à Lambanyi

Images 14 et 15 : Conduits qui passent dans des caniveaux à Yattayah-Fossidet




Images 16 et 17 : Conduits non enterrés avec des fuites à Yattaya-Fossidet

II-3- Type et durée des études

Ce travail est une étude transversale descriptive de type

prospectif effectué dans les cinq communes de Conakry sur la

qualité physico-chimique et bactériologique des sources

d’approvisionnement en eaux des populations. Il est réalisé sur

une durée de six mois allant du mois de mars au mois d’août

2016, touchant ainsi les deux principales saisons de l’année

(saison sèche ‘’étiage’’ et saison des pluies ‘’crue’’).

II-4- Population d’études

L’étude a porté sur quatre sources d’approvisionnement des

populations en eaux de la zone spéciale de Conakry : les eaux de

puits, les eaux de forages, les eaux de foyers disposant d’un

réseau de distribution d’eau courante de la SEG et les eaux des

sociétés productrices d’eaux minérales pendant la période

d’étude.

II-5 Echantillonnage

L’échantillonnage a été aléatoire simple et concerne quatre

sources d’approvisionnement en eaux dans la ville de Conakry

avec 228 prélèvements dans 114 sources d’eaux, soit deux

prélèvements par sources. Tous les prélèvements ont été soumis

aux analyses physico-chimique, chimique et bactériologique.

Les prélèvements ont été réalisés dans 30 puits numérotés de P1

à P30 ; 30 forages numérotés de F1 à F30 ; 30 concessions

disposant d’un réseau de distribution d’eau de la Société des

Eaux de Guinée (SEG) numérotées de R1 à R30 et de 24

sociétés productrices d’eaux minérales également numérotées de

EM1 à EM24.

Tableau 9 : Superficie et populations des cinq communes où les prélèvements ont

été effectués

Communes Superficie Population

Kaloum 25 km2 62.675




Dixinn 40,50 km2 137.287

Ratoma 62km2 653.934

Matam 8 km2 143.658

Matoto 36km2 670.310

TOTAL 450 km2 1 667 864 habitants

(Rec. 2014)

II-6- Critères de sélection

- Critères d’inclusion : ont été inclues dans cette étude,

toutes les sources d’approvisionnement en eaux dans la ville

de Conakry : puits fonctionnels, forages fonctionnels, réseau

de distribution public (Robinet) et eaux minérales en sachets

plastiques vendues à Conakry pendant la période d’études.

- Critères d’exclusion : ont été exclues dans cette étude,

toutes les sources d’eaux ne remplissant pas les critères

d’inclusion.

II-7 -Plan de collecte des données

Nous avons effectué au total 248 prélèvements dans 124

sources. L’échantillonnage pour la physico-chimique et

bactériologique ne pose pas de problème particulier. Des flacons

plastiques ou en verre stériles sont suffisants et le volume du

prélèvement est de un litre pour une analyse complète. L’eau de

puits est recueillie à l’aide des flacons stériles attachés à une

corde également stérile. Pour les forages et les eaux de robinets,

le bec du robinet est flambé à l’aide de la flamme d’une lampe à

alcool ou de bougies et laisser couler les premiers jets. Pendant

la récolte, l’ouverture du flacon ne doit pas toucher le bec du

robinet. Seuls les sachets d’eaux minérales en bon état

physiques sont choisis. Les échantillons d’eaux recueillis dans

les flacons hermétiquement fermés et en sachets sont placés

dans une glacière à la température de 4°C.

Pour éviter des changements imprévisibles dans la flore

bactérienne et certains éléments chimiques de l’échantillon,




l’analyse a commencé le plus tôt possible après le prélèvement.

L’intervalle entre le prélèvement de l’échantillon et le début de

l’analyse n’a pas dépassé 4 heures. Car, les éléments chimiques

comme des Nitrites peuvent subir des modifications lors de la

conservation ainsi que certaines bactéries peuvent se multiplier

comme les psychrophiles et les mésophiles.

II-8- Etude des variables

Les variables physico-chimiques et chimiques

Tous les éléments chimiques importants dans l’eau ont été dosés

notamment des éléments majeurs :

- Variables physico-chimiques : Température, pH, TDS,

Turbidité, Potentiel-redox, Dureté et Conductivité.

- Variables chimiques : Chlorures, Nitrates, Nitrites,

Manganèse, Fer, Fluor, Arsenic, Ammonium.

II-8-1 Méthodes de dosage des constituants physico-chimiques et chimiques l’eau

Tableau 10 : Paramètres et méthodes d’analyses physico-chimiques et chimiques de

l’eau

Paramètres Méthodes d’analyses

Température pH-mètre HANA

pH pH-mètre HANA

Turbidité NF EN ISO 7027

Conductibilité pH-mètre HANA

Dureté NF B 35-301

Potentiel redox pH-mètre HANA

TDS NF EN ISO 872

Fer NF EN ISO 11885

Nitrates NF EN ISO 13395

Nitrites NF EN ISO 13395

Chlorures NF EN ISO 10304-1

Ammonium NF T 90 015-2

Fluor NF EN ISO 10304-1

Manganèse NF EN ISO 11885

Arsenic NF EN ISO 11885

Les modes opératoires (voir annexe 24) II-8-2 Les variables bactériologiques

Tous les indicateurs importants de pollution bactérienne de

l’eau de consommation ont été recherchés : la Flore Mésophile

Aérobies Totale (FMAT), les Coliformes totaux thermotolérants




(CTT), les Coliformes fécaux (Escherichia coli), les

Entérocoques (Streptocoques de groupe D), les spores des

bactéries Aérobies Sulfito-Réductrices (ASR). Des bactéries

pathogènes responsables de maladies graves transmises par l’eau

comme Salmonella spp., Shigella spp. et Vibrio cholerae ont été

également recherchés et isolés. En dehors de Salmonella spp.

qui a été recherché par la méthode bactériologique et la PCR,

Shigella spp. et Vibrio cholerae ont été recherchés uniquement

par la méthode moléculaire (PCR).

Les variables dépendantes : FMAT, Coliformes fécaux.

Les variables indépendantes : la Somme de l’Etat Sanitaire

ou environnemental des puits (E.S.P) : présence d’un

couvercle; margelle haute; puisard fixe; absence d’ordures à

proximité ; latrines bétonnées ; Puits en amont des latrines ; et

Puits situé à plus de 15 m des latrines.

Images 18 et 19 : Les échantillons prêts à l’analyse et des

boites de Pétri contenant des milieux de culture stériles

Images 20 et 21 : Echantillons d’eau prêts à l’analyse et Dosage dans des tubes (Eppendorfs) pour la PCR

II-8-3 Méthodes de dénombrement et recherche des germes dans l’eau

Méthode de routine pour le Dénombrement des microorganismes- par

comptage des colonies à 36°C NF.EN ISO6222

Méthode par filtration de 100 ml pour la recherche des Coliformes

totaux dans l’eau à 36°C .

NF.EN ISO9308-1





fécaux ou E. coli dans l’eau à 44°C . NF.EN ISO9308-1


fécaux ou E. coli dans l’eau à 44°C .NF.EN ISO9308-1

Méthode par filtration de 100 ml pour la recherche des Entérocoques

intestinaux

(Streptocoques du groupe D) dans l’eau à 44°C NF.EN ISO7899-2

Méthode pour la recherche des spores de bactéries Aérobies Sulfito-

Réductrices à 36°C dans l’eau NF EN ISO6461-2

Méthode par filtration 5000 ml d’eau pour la recherche des Salmonella

spp. ISO 6579

Les modes opératoires en annexe 23

II-8-4 : Méthode d’analyses moléculaires : Amorces utilisées pour l’identification des

Salmonella, Shigella et des Vibrio (Fournisseur : AmpliSens ‘’OKI’’ Screening. FL)

Bactéries isolées

Espèce cible

gène

Vibrion Vibrio cholerae ctxAB

Salmonella Salmonella spp. FRT

Shigella Shigella spp. FEP

Amplification sur la PCR en temps réel

Type Rotor-Gene 6000

Cycle Température °C Durée Nombre

1 50 30 minutes 1

2 95 15 minutes 1

3

95 10 secondes

45 60 25 secondes

72 10 secondes

Expérimentation

Run Name Ampl-OKI 2016-07-15 (1)

Run Start 15.07.2016 13:34:22

Run Finish 15.07.2016 15:39:29

Operator

Notes

Run On Software Version Rotor-Gene 1.7.72

Run Signature The Run Signature is valid.

Gain Green 10,

Gain Yellow 10,




Quantitation Information

Threshold 0,050

Left Threshold 1,000

Standard Curve Imported No

Standard Curve (1) N/A

Standard Curve (2) N/A

Start normalising from cycle 1

Noise Slope Correction No

No Template Control Threshold 10%

Reaction Efficiency Threshold Disabled

Normalisation Method Dynamic Tube

Normalisation

Digital Filter Light

Sample Page Стр.1

Imported Analysis Settings

Profile

Cycle Cycle Point

Hold @ 50°c, 30 min 0 secs

Hold 2 @ 95°c, 15 min 0 secs

Cycling (45 repeats) Step 1 @ 95°c, hold 10 secs

Step 2 @ 60°c, hold 25 secs, acquiring to

Cycling A ([Green][1][1],[Yellow][2][2])

Step 3 @ 72°c, hold 10 secs

Résultats de l’analyse de la PCR real time

No. Colour Name Type Ct Given

Conc

(Копии)

Calc Conc

(Копии)

% Var

1

1 Unknown 22,02

2

2 Unknown 28,85

3

3 Unknown NEG (NTC)

4

4 Unknown NEG (NTC)

5

5 Unknown NEG (NTC)

6

6 Unknown 28,09




No. Colour Name Type Ct Given

Conc

(Копии)

Calc Conc

(Копии)

% Var

7

7 Unknown NEG (NTC)

8

k- Unknown NEG (NTC)

9

k+ Unknown 24,61

10

1 Unknown 32,42

11

2 Unknown 31,06

12

3 Unknown NEG (NTC)

13

4 Unknown 32,87

14

5 Unknown NEG (NTC)

15

6 Unknown 30,58

16

7 Unknown 30,39

17

k- Unknown NEG (NTC)

18

k+ Unknown 20,73

Graphique 2: Résultats de la PCR (avant correction des résidus)

Graphique 3 : Résultats de la PCR (après correction des résidus)




Legende: NEG (NTC) - Sample cancelled due to NTC Threshold.

NEG (R. Eff) - Sample cancelled as efficiency less than reaction

efficiency threshold.

Interprétation des résultats

Les résultats ont été interprétés à l’aide du logiciel de l’appareil

à travers le croisement de la courbe de fluorescence avec la ligne

de seuil.

Salmonella spp., Shigella spp. et Vibrio cholerae sont détectés

par « FAM » (vert) et l’ADN/S par « JOE » (Jaune) grâce à 96 la

PCR-mix-1(Salmonella spp., Shigella spp. et Vibrio cholerae).

/internal control.

II-9 Appréciation de l’état sanitaire des puits

Avant de prélever l’eau pour les analyses physico-chimiques et

bactériologiques, nous avons apprécié l’état sanitaire de chaque

puits. Les résultats sont enregistrés sur les fiches d’enquête

(voir tableau 40 annexe 6). Pour chaque puits, les paramètres les

plus importants au nombre de 8 sont considérés:

Présence d’un couvercle;

Margelle haute;




Puisard fixe;

Puits bétonné ;

Absence d’ordures à proximité ;

Latrines bétonnées ;

Puits en amont des latrines ;

Puits situé à plus de 15 m des latrines

En fonction de l’importance de ces paramètres dans la contamination des puits,

nous avons attribué à chacun d’eux des points suivants :

Paramètres sanitaires

Points

Présence Absence

Couvercle 40 0

Puisard fixe 30 0

Margelle haute 50 0

Absence d’ordures à

proximité

20 0

WC bétonné 40 0

Puits en amont des latrines 50 0

Puits tubé ou bétonné 20 0

Puits à plus de 15 m du WC 50 0

Somme des paramètres

sanitaires (S.P.S.)

300 0

II.10 Détermination de la corrélation :

Pour la détermination de la corrélation entre l’état sanitaire et les

paramètres bactériens de contamination des puits, nous avons

utilisé la méthode de PEARSON.

La corrélation est calculée suivant la formule :

yx

yxr22

yx,

dd

)dd(

Légende : rx,y - Coefficient de corrélation entre deux

variables ;

X – une variable d’une série de valeurs indépendantes (E.S.P);




y – une variable d’une série de valeurs dépendantes (FMAT ou

Coli-index);

dx- la différence entre la moyenne arithmétique et chaque

variable de la première série;

dy – la différence entre la moyenne arithmétique et chaque

variable de la deuxième série;

Σ – la somme ;

La corrélation peut être positive (+) ou négative (-).

Les valeurs de r peuvent être comprises entre –1 et +1.

Il est habituel de considérer que :

Caractères de

corrélation

Puissance de

corrélation

Positive (+)

Négative (-)

Parfaite + 1 - 1

Forte + 1 > r +

0,7

- 1 < r -

0,7

Modérée (moyenne) + 0,7 > r +

0,3

- 0,7 < r -

0,3

Faible + 0,3 > r > 0 - 0,3 < r < 0

Nulle r = 0

mr – erreur standard (écart type) se calcule par :

2

1 ,2

n

rm

yxr

Test Student (ou t de la distribution Student) est calculé par :

r

yx

m

rt

,

Coefficient t obtenu est comparé avec le tableau de

distribution Student. Pour le nombre d’échantillon 30, t est

2.

II.11 Analyse des résultats :

Traitement des données : les données, ont été dépouillées, validées, centralisées, saisies et

traitées avec les logiciels Word, Excel 2007 et la Corrélation statistique entre la somme des




états sanitaires des puits et le FMAT et Coli index a été calculée par la méthode de

PEARSON.




CHAPITRE III : RESULTATS




Les résultats obtenus sont présentés sous forme de tableaux et de

graphiques, lesquels ont été commentés, interprétés, discutés

selon les données de la littérature disponibles.

III-1 Résultats des paramètres sanitaires des Puits de la ville

de Conakry

En fonction de l’importance de ces paramètres dans la

contamination des eaux puits, nous avons attribué à chacun

d’eux des points dont le total fait 300 points.

Tableau 11 : Répartition des puits selon les paramètres sanitaires

Paramètres Nombre de

cas

Pourcentage

Couvercle 30 100

Puisard fixe 28 93,33

Margelle haute 14 46,67

Absence d’ordures à

proximité

12 40,00

WC bétonnés 10 33,33

Puits tubé ou bétonné 1 3,33

Puits en amont des latrines 15 50,00

Puits situé à plus de 15 m

des latrines

25 83,33

Il ressort de notre étude que 100% des puits disposent d’un

couvercle et 93,33 de puisards uniques ; 83,33% des puits sont

situés à plus de 15 m des latrines ; 60% des puits ont des ordures

à proximité et 46,67% ont une margelle haute. Cependant, un

seul puits est tubé ou en béton (soit 3,33%), 77% des latrines ne

sont pas bétonnées et 40% des puits sont situés en amont des

latrines.

Graphique 4 : Répartition des puits selon leur état sanitaires




Il ressort de ce tableau les constats suivants :

- 27% des puits seulement présentent un Bon état sanitaire contre ;

- 50% des puits présentent un état sanitaire Moins bons ;

- et 23% des puits présentent un Mauvais état sanitaire.

Le plus mauvais puits (P5) avec 70 points sur 300 a été trouvé à

Tombo dans la commune de Kaloum et le meilleur puits (P17)

avec 280 points à Lambanyi dans la commune de Ratoma. Cela

explique la vulnérabilité des eaux de puits vis-à-vis des facteurs

influençant la qualité de cette source. (Tableau 42, Annexe 5)

III-2 Résultats des paramètres physico-chimique et chimique

des eaux de puits de la ville de Conakry

Tableau 12 : Conformité des paramètres physico-chimiques des eaux de Puits dans la

ville de Conakry

N° paramètres Unité Normes Paramètres de conformité

Conforme Non conforme

Nombre % Nombre %

1 Température °C 25 - - 30 100

2 Conductibilité µs/cm 500 16 53,33 14 46,67

3 TDS mg/l 1000 30 100 - -

4 pH 6.5-8.5 5 16,67 25 83,33

5 Turbidité NTU 5 7 23,33 23 76,67

6 Dureté (Ca++ Mg

+) mmole/l ˂ 1,3 - - 30 100

7 Potentiel Redox mV 650 - - 30 100

Du point de vue température, aucun échantillon d’eau n’est

conforme à la norme de 25°C. La température moyenne des

puits est 28,09°C ; minimale est de 25,6°C (elle est trouvée dans

le puits P26) et celle maximale est de 31°C (elle est trouvée dans

23,33

50

26,67

Bons puits

Moyen Bons puits

Mauvais puits




les puits P28 et P29). Pour la conductivité électrique, l’eau de

53% des puits est conforme contre 47%. La proportion du Total

des Solides Dissous (TDS) dans l'eau se situe entre 220 et 238

mg/L1. Ce qui signifie que l’eau de tous les puits est conforme à

la norme de 1000 mg/L1. Les valeurs observées : moyenne est

de 214,27 mg/l, la minimale est 24,4 mg/l (P27) et la maximale

est de 369 mg/l (l’eau de puits P7). Le pH de 83% n’est pas

conforme (˂6,5). La valeur moyenne est de 6, la valeur

minimale est 5,03 (rencontrée dans le puits P22) et celle

maximale est de 7,8 (rencontrée dans l’eau du puits P29).

S’agissant de la turbidité, l’eau de 76,67% des puits investigués

est trouble. Le titre hydrotimétrique ou dureté de l'eau, est

l’indicateur de la minéralisation de l’eau. Elle est surtout due

aux ions calcium et magnésium. Selon les normes, une eau peut

être douce (˂1,3 mmol/l), mi-dure (1,3-2,5 mmol/l), dure (2,5-

3,8 mmol/l) ou très dure (> 3,8 mmol/l). L’eau de 100% des

puits analysés est non douce : l’eau 6,67% est mi-dure et celle

de 93,33% est dure. Aucun échantillon d’eau de puits ne

présente les caractéristiques d’une eau douce. La valeur

moyenne observée est de 975,10 mmol/l ; la minimale est de

300 mmol/l (rencontrée dans l’eau du puits P13) et celle

maximale est de 1400 mmol/l (trouvée dans l’eau du puits P4).

Les paramètres eaux troubles varient en moyenne de 11,76, le

minima est de 2 (rencontré dans les puits P10 et P30) et le

maxima est de 46 (dans le puits P14) et eaux dures voir très

dures sont trouvées dans les puits P1, P3, P4, P5, P7, P9, P11,

P12, P13, P14, P16, P18 à P30. Les valeurs varient entre la

moyenne qui est de 2,07 NTU, la minimale, 1,5 NTU (P23 et

P29) et maximale enregistrée est de 3,1 NTU (eau de puits P2 et

P12). (Voir tableau 43, annexe 6).

Tableau 13 : Conformité des paramètres chimiques des eaux de Puits dans la ville de

Conakry

N°

Paramètres

Unités

Normes

Paramètres de conformité


https://fr.wikipedia.org/wiki/Eau

https://fr.wikipedia.org/wiki/Ion

https://fr.wikipedia.org/wiki/Calcium

https://fr.wikipedia.org/wiki/Magn%C3%A9sium




Nombre % Nombre %

1 Nitrate (NO3)

mg/l 50 18 60 12 40

2 Nitrite (NO2) mg/l 0.1 26 86,67 4 13,33

3 Arsenic (As) µg/l 0.01 7 23,33 23 76,67

4 Fer (Fe) mg/l 0.3 30 100 - -

5 Fluor (F) mg/l 0.01 4 13,33 26 86,67

6 Chlorures (Cl) mg/l 250 - - 30 100

7 Ammonium (NH4) mg/l 0.5 18 60 12 40

8 Manganèse (Mn) mg/l 0,4 23 76,67 7 23,33

L’eau de 60% des puits est conforme aux normes de l’OMS

pour le paramètre nitrates. Elle varie entre la moyenne qui est de

95,33 mg/l, la valeur minimale de 15 mg/l (trouvée dans les

puits P21, P23, P24, P26, P28 et P29) et celle maximale de 250

mg/l (P2, P4, P7, P9, P11 et P16). La teneur normale en nitrites

existe également dans 86,67% des puits. Elle varie entre la

moyenne qui est de 0,11 mg/l, la teneur minimale est de 0,025

mg/l (trouvée dans les puits P24, P25, P27 et P29) et la

maximale est 0,4 mg/l (dans le puits P15). Cependant, la teneur

en arsenic dépasse la normale dans 76,67% des puits. Le

paramètre de l’élément biotique Fer est normal dans l’eau de

100% des puits. Cependant, sa teneur varie de la moyenne de

0,03 mg/l, la minimale de 0,01 mg/l (dans 14 puits voir annexe

7) et la maximale de 0,05 mg/l (P26). Le Fluor est hors norme

dans 86,67% des puits investigués et sa teneur varie de la

moyenne de 0,05 mg/l, la minimale de 0,01 mg/l (P27) et la

maximale de 0,089 mg/l (P2 et P12). L’eau de 100% des puits

est conforme aux normes de 250 mg/l pour les Chlorures. Leurs

teneurs varient de la moyenne de 3,42 mg/l, la minimale de 1,5

mg/l et la maximale de 7,5 mg/l (P4, P9 et P14).

Pour le paramètre ammonium dont la teneur varie entre la

moyenne qui est de 1,16 mg/l, la minimale de 0,1 mg/l (P1, P4,

P5 et P12) et la maximale de 8 mg/l (P2 et P8), 40 % des eaux

de puits ne sont pas conformes. Alors que 76,67% des eaux sont

conformes aux normes pour l’élément biotique Manganèse dont




la teneur varie entre la moyenne de 0,26 mg/l, la minimale de

0,1 mg/l et la maximale de 0,9 mg/l (P20).

La teneur en arsenic varie entre la moyenne de 15,66 µg/l, la

minimale de 0,01 µg/l et la maximale de 89 µg/l (retrouvée

dans le puits P2). Cependant, elle est très élevée dans les puits

P1 à P15. Cette situation a été observée pendant la saison sèche

(mars-mai 2016) car, à la saison des pluies (juillet-août 2016), la

teneur s’est normalisée. (Voir tableau 44 annexe 7).

III-3 Résultats des paramètres physico-chimiques et

chimiques des eaux de Forages de la ville de Conakry

Tableau 14 : Conformité des paramètres physico-chimiques des eaux de Forage dans la

ville de Conakry

N° paramètres Unités Normes Paramètres de conformité


Nombre % Nombre %


2 Conductibilité µs/cm 500 - - 30 100

3 TDS mg/l 1000 30 100 - -

4 pH 6.5-8.5 12 40 18 60

5 Turbidité NTU 5 9 30 21 70

6 Dureté (Ca++ Mg

+) mmole/l ˂ 1,3 - - 30 100


Du point de vue température, elle varie entre la moyenne de

27,42°C, la minimale de 25,1°C (F27 et F29) et la maximale de

29,7°C (F1). Aucun échantillon d’eau de forage n’est conforme

à la norme de 25°C. La conductivité électrique varie aussi entre

la moyenne de 295,65 µs/cm, la minimale de 36,4 µs/cm (F28)

et la maximale de 495 µs/cm (F17), l’eau de 100% des forages

est non conforme. La TDS de l’eau de tous les forages varie

entre la moyenne de 178,9 mg/l, la valeur minimale de 18,3 mg/l

(F28) et celle maximale de 421 mg/L1 (F25). Ainsi, l’eau de tous

les forages est conforme à la norme de 1000 mg/L. Le pH de

60% de l’échantillon est non conforme (˂6,5). Cependant, la

valeur de ce paramètre varie entre la moyenne de 6,49, la valeur

minimale de 5,03 (F8) et celle maximale de 8,6 (F11). La

turbidité aussi varie entre la moyenne de 6,49 NTU, la valeur




minimale de 5,03 NTU (F8) et celle maximale 8,6 NTU (F11).

La norme de ce paramètre est dépassée dans 70% des eaux de

forages investiguées. La dureté de l'eau est anormale pour 100%

des échantillons. Cependant, elle varie entre la moyenne de 1,99,

de la minimale de 1,5 (F4 et F9) et la maximale de 2,7 (F8).

Ainsi, 83% des eaux sont mi-dures et 16,67% des eaux sont

dures. Aucune eau de forage n’est douce.

Les paramètres eaux troubles varient entre la moyenne de 8,66

NTU, la minimale de 0 NTU (F7) et la maximale de 22 NTU

(F22), 70% des échantillons ne sont pas conformes. Et la

plupart des eaux sont dures voir très dures trouvées dans les

eaux de forages F1, F3, F4, F8, F11, F12, F13, F14, F15, F19,

F21, F24 à F30. (Voir tableau 45, annexe 8).

Tableau 15 : Conformité des paramètres chimiques des eaux de Forage dans la ville de

Conakry

N° paramètres Unités Normes

OMS



Nombre % Nombre %

1 Nitrate (NO3)

mg/l 50 25 83,33 5 16,67

2 Nitrite (NO2) mg/l 0.1 23 76,67 7 23,33

3 Arsenic (As) µg/l 0.01 1 3,33 29 96,67

4 Fer (Fe) mg/l 0.3 30 100 - -

5 Fluor (F) mg/l 0.01 3 10 27 90

6 Chlorures (Cl) mg/l 250 30 100 - -

7 Ammonium (NH4) mg/l 0.5 15 50 15 50

8 Manganèse (Mn) mg/l 0,4 30 100 - -

Dans ce tableau, l’eau de 83,33% des forages est conforme aux

normes de l’OMS contre 16,67% de teneur anormale. La teneur

normale en nitrites existe aussi pour 76,67% des forages. Celle-

ci varie en moyenne de 0,118 mg/l, la minimale de 0 mg/l (F1 et

F13) et la valeur maximale de 0,5 mg/l (F23). Celle de nitrates

varie entre la moyenne de 55,616 mg/l, la valeur minimale ˂0,01

dans les forages F17, F18, F20 et la maximale de 250 retrouvée

dans les forages F3, F8 et F13. La teneur en arsenic quant à elle

dépasse la normale dans 96,67% des forages. Elle varie aussi en

moyenne de 27,25 µg/l, la valeur minimale de 0,01µg/l (F1) et la




valeur maximale de 82 µg/l (F3). Le paramètre Fer est normal

dans l’eau de 100% des échantillons. Cependant, elle varie en

moyenne de 0,046 mg/l, la valeur minimale observée est de

0,02 mg/l (F28) et celle maximale est de 0,12 mg/l (voir tableau

45 en annexe 9).

Le Fluor est hors norme dans 90 des forages investigués, la

valeur moyenne est de 13,63 mg/l, minimale est de 0 mg/l (F4)

et maximale est de 36 mg/l (trouvée dans les eaux de forages

F16, F21 et F26). L’eau de 100% des forages est conforme aux

normes de 250 mg/l pour les Chlorures alors que des variations

de sa teneur sont observées en moyenne de 2,106 mg/l, la valeur

minimale de 1,2 mg/l (F25) et celle maximale de 3,5 mg/l dans

les forages F16, F23 et F30 (voir tableau 43 en annexe 9). Pour

le paramètre ammonium, 50 % des eaux de forage sont non

conformes : sa teneur en moyenne est de 0,84 mg/l, minimale

de 0,01 mg/l (F5) et maximale de 4 mg/l (F10). Tandis que le

Manganèse est conforme dans 100% des échantillons prélevés et

sa teneur normale varie en moyenne de 15,2 mg/l, minimale de 3

mg/l (F1) et maximale de 25 mg/l rencontrée dans les puits F3,

F4, F16 et F22.

La teneur en arsenic est très élevée dans les eaux pour les

forages F1 à F5 qui correspond à la campagne de recueil de la

saison sèche. Pendant la saison des pluies, la teneur s’est

normalisée. La teneur en fluor aussi est élevée dans les eaux des

forages F2, F3, F8, F12, F13, F16 à F30. (Voir tableau 45 en

annexe 9).


chimiques des eaux de Robinets de la ville de Conakry

Tableau 16 : Conformité des paramètres physico-chimiques des eaux de Robinet dans la

ville de Conakry

N°

paramètres

Unités

Normes

OMS



Nombre % Nombre %


2 Conductibilité µs/cm 500 30 100 - -




3 TDS mg/l 1000 6 20 24 80

4 pH 6.5-8.5 11 36,67 19 63,33

5 Turbidité NTU 5 10 33,33 20 66,67

6 Dureté (Ca++ Mg

+) mg/l ˂ 1,3 - - 30 100


Du point de vue température, aucun échantillon d’eau de

Robinet n’est conforme à la norme de 25°C. Les valeurs sont

comprises entre la moyenne de 27,38, la minimale de 24,9 (R30)

et la maximale de 29,7 (R6). Pour la conductivité électrique,

l’eau de 100% des robinets est non conforme. Elle varie entre la

moyenne de 200,67 µs/cm, la minimale de 29,5 µs/cm (R19) et

la maximale de 587 µs/cm (R25 et R30). La TDS de l’eau de

tous les Robinets varie entre la moyenne de 133,96 mg/l, la

minimale de 22 mg/l (voir annexe 10) et la maximale de 294

mg/l (R25 et R30). Ainsi, l’eau de tous les Robinets est

conforme à la norme de 1000 mg/l à ne pas dépasser. Le pH

varie entre la moyenne de 6,30, la valeur minimale de 5,53

(R25) et celle maximale de 7,29 (R12). Il se trouve que 63% de

l’échantillon ne sont pas conformes. La variable turbidité varie

également entre les valeurs suivants : la moyenne est de

9,33 NTU, la valeur minimale de 2 NTU (voir tableau 44 en

annexe 10) et celle maximale de 24 NTU (R14). Ainsi, la

turbidité de 66,67% de l‘eau de robinet investigués n’est pas

conforme. La dureté de cette source est comprise entre les

valeurs suivantes : la moyenne de 1,85 mg/l, la minimale de 1,6

mg/l (voir annexe 10) et celle maximale de 3,1 mg/l (R7). Cette

variable indique qu’aucune eau de robinet n’est douce. Ainsi,

93% des eaux sont mi-dures (ou mi-douces) et 7% sont dures.

La turbidité de cette source varie entre la moyenne de

9,33 NTU, la minimale de 2 NTU et la maximale de 24 NTU

(R14). Les paramètres eaux troubles et eaux dures sont observés

dans les échantillons d’eaux prélevés dans les Robinets R2, R5,

R11, R12, R13, R14, R21 à R30. (Voir tableau 47, annexe 10).




Tableau 17 : Conformité des paramètres chimiques des eaux de Robinet dans la ville de

Conakry

N° paramètres Unités Normes

OMS



Nombre % Nombre %

1 Nitrate (NO3)

mg/l 50 30 100 - -

2 Nitrite (NO2) mg/l 0.1 30 100 - -

3 Arsenic (As) µg/l 0.01 15 50 15 50

4 Fer (Fe) mg/l 0.3 30 100 - -

5 Fluor (F) mg/l 0.01 6 20 24 80

6 Chlorures (Cl) mg/l 250 30 100 - -

7 Ammonium (NH4) mg/l 0.5 24 80 6 20

8 Manganèse (Mn) mg/l 0,4 30 100 - -

L’eau de 100% des Robinets est conforme aux normes de

l’OMS de 50 mg/l pour les nitrates. La teneur varie entre la

moyenne de 4,8 mg/l, la teneur minimale de 0,1 mg/l et celle

maximale de 40 mg/l (R30). Aussi, la teneur en nitrites est

100% normale pour tous les Robinets ; elle varie de la moyenne

de 0,044 mg/l, de la teneur minimale de 0 mg/l (R1 et R4) et

celle maximale de 0,1 mg/l (R2). Cependant, teneur en arsenic

est normale pour 50% seulement des échantillons. Celle-ci aussi

varie entre la moyenne de 28,173 mg/l, la teneur minimale de

0,01 mg/l (Voir tableau 45 en annexe 11) et celle maximale de

78 mg/l (R8). Le paramètre de l’élément biotique Fer est

normal dans l’eau de 100% des Robinets et sa teneur varie entre

la moyenne de 0,036 mg/l, la teneur minimale de 0,02 mg/l et

celle maximale de 0,1 mg/l (R5). Alors que le Fluor est hors

norme dans 80% des eaux de Robinets investigués. Ce

paramètre aussi varie entre la moyenne de 2,816 mg/l, la teneur

minimale de 0,01 mg/l et celle maximale de 13 mg/l (R17, R22

et R27). L’eau de 100% des Robinets est conforme aux normes

de 250 mg/l pour les Chlorures. Néanmoins, des teneurs

suivantes ont été observées : la Moyenne est de 2,45 mg/l, la

teneur minimale est de 1,5 mg/l et celle maximale est de 7,5

mg/l (R28 et R30). Pour le paramètre ammonium, 80 % des

eaux de Robinets sont conformes. La teneur de cet élément varie




également entre la moyenne de 0,52 mg/l, la teneur minimale de

0,1 mg/l (R2 et R5) et la teneur maximale de 2 mg/l (R3).

Le paramètre de l’élément biotique le Manganèse est normal

pour les 100% des échantillons : la teneur moyenne est de 24,5

mg/l ; minimale est de 10 mg/l et maximale est de 90 mg/l

(R18 et R25).

La teneur en arsenic très élevée a été observée dans les eaux de

Robinet R1 à P14. Cette situation a été étudiée pendant la saison

sèche car, à la saison des pluies, la teneur s’est normalisée. Et la

teneur en fluor élevée a été également observée dans les eaux

des Robinets R16 à R30. (Voir tableau 48, en annexe 11)


chimiques des eaux minérales vendues en sachets dans la

ville de Conakry

Tableau 18 : Conformité des paramètres physico-chimiques des eaux minérales vendues

en sachets dans la ville de Conakry

N°

paramètres

Unités

Normes

OMS



Nombre % Nombre %


2 Conductibilité µs/cm 500 24 100 - -

3 TDS mg/l 1000 24 100 - -

4 pH 6.5-8.5 16 53,33 8 26,67

5 Turbidité NTU 5 5 16,67 19 63,33

6 Dureté (Ca++ Mg

+) mg/l ˂ 1,3 21 87,5 3 12,5


Le paramètre température varie entre la moyenne de 28,92°C, la

minimale de 22,3°C (EM9) et la maximale de 31,5°C (EM2).

Aucun échantillon d’eau minérale en sachet n’est conforme à la

norme de 25°C. Pour la conductivité électrique aussi varie entre

la moyenne de 177,31µs/cm, la valeur minimale de 12,45 µs/cm

(EM7) et la valeur maximale est de 739 µs/cm (EM3). L’eau

minérale de 100% de l’échantillon est conforme à la norme. La

TDS de l’eau de toutes les entreprises productrices d’eaux

minérales varie entre 22 et 368 mg/L1donc inférieur à la limite

des normes admises de 1000 mg/L (à ne pas dépasser). Ce qui




veut dire que l’eau de toutes les sociétés productrices d’eaux

minérales investiguées est conforme à ce paramètre. Cependant,

le pH de 26,67 % des échantillons est non conforme et ce

paramètre varie entre la moyenne de 6,83, la valeur minimale st

de 6,14 (EM18) et celle maximale de 7,68 (EM12). La turbidité

varie également entre la moyenne de 7,875 NTU, la minimale de

4 NTU (EM11) et la valeur maximale est de 13 NTU (EM5 et

EM17). Il est trouvé que 63% des eaux minérales en sachet ne

sont pas conformes. Contrairement aux eaux de puits, de forages

et de robinets, les eaux minérales de 87,5% de l’échantillon de

cette source sont douces et 12,5% sont dures. Les valeurs de ce

paramètre varient entre la moyenne de 0,975 mg/l, la minimale

de 0,6 mg/l (EM7, EM15 et EM21) et la valeur maximale de 1,4

mg/l (EM9). Pour le potentiel d’oxydation, les eaux minérales

en sachet plastique pour les 100% échantillons ont un potentiel

redox soit supérieur ou soit inférieur à 650 mV. Certainement ce

qui explique les difficultés liées à l’élimination de tous les

germes dans ces eaux. Les valeurs de ce paramètre sont entre la

moyenne de 548,79 mV, la minimale de 64 mV (EM12) et la

valeur maximale est de 996 mV (EM23).

La plupart des eaux minérales sont troubles, cette turbidité varie

entre la moyenne de 7,875 NTU, la valeur minimale est de 4

NTU (EM11) et la valeur maximale est de 13 NTU (EM5 et

EM17). Cependant, l’eau minérale EM9 est la seule qui est dure,

toutes les autres eaux sont douces. (Voir Tableau 49, annexe

12).

Tableau 19 : Conformité des paramètres chimiques des sachets d’eaux minérales vendus


N°

paramètres

Unités

Normes

OMS



Nombre % Nombre %

1 Nitrate (NO3)

mg/l 50 24 100 - -

2 Nitrite (NO2) mg/l 0.1 21 87,5 3 12,5

3 Manganèse (Mn) mg/l 0.4 - - 24 100

4 Fer (Fe) mg/l 0.3 12 50 12 50

5 Chlorures (Cl) mg/l 250 24 100 - -




6 Ammonium (NH4) mg/l 0.5 22 91,67 2 3,33

7 Fluor mg/l 0.1 - - 24 100

8 Arsenic µg/l 0.01 1 4,17 23 95,83

L’eau en sachet de 100% des eaux des sociétés productrices des

eaux minérales est conforme aux normes de l’OMS pour le

paramètre Nitrates. Cependant, la teneur varie entre moyenne est

égale à 0,05 mg/l, la valeur minimale est égale à 0,01 mg/l (voir

annexe 13) et la valeur maximale est égale à 0,12 mg/l (EM10

et EM18). Par contre, la teneur est normale en Nitrites pour

87,5% des eaux et celle-ci varie 0,077 mg/l pour moyenne, de

0 mg/l (EM1 et EM4) pour la valeur minimale et pour la valeur

maximale de 0,5 mg/l (EM9). Le paramètre Manganèse dépasse

la normale dans 100% des échantillons. La teneur de cet élément

biotique varie entre la moyenne de 41,66 mg/l, la valeur

minimale de 25 mg/l et celle maximale de 50 mg/l. L’élément

biotique fer est normal dans l’eau de 50%. L’eau en sachet de

100% des échantillons est conforme aux normes de 250 mg/L

pour les Chlorures : la valeur moyenne est égale à 1,60 mg/l, la

valeur minimale est de 1,5 mg/l et celle maximale est de 2,5

mg/l (EM24)). Pour le paramètre ammonium, 91,67 % des eaux

sont conformes. Là aussi, la teneur varie entre la moyenne de

0,375 mg/l, la minimale de 0,2 mg/l et la maximale de 0,7 mg/l

(EM6). L’eau d’une seule société correspond à la norme pour

l’arsenic dont la moyenne est 0,05 mg/l, la valeur minimale est

de 0,01 mg/l (EM1) et celle maximale est de 0,09 mg/l et 100%

des sociétés sont hors normes pour le fluor. Cet élément

abiotique varie dans cette source entre la moyenne de

18,29 mg/l, la valeur minimale de 13 mg/l (EM6) et la valeur

maximale de 32 mg/l (EM5 et EM12). (Voir tableau 50 en

annexe 13).

III-7 Résultats d’analyses bactériologiques des eaux de

Puits de la ville de Conakry

Tableau 20 : Pourcentage de contamination des eaux de Puits par les germes

Quantité de germes par échantillon




Germes

Contamination TOTAL

Sans Modéré Sévère

Quantité % Quantité % Quantité % Quantité %

FMAT - - - - 30 100 30 100

CT - - 6 20 24 80 30 100

CF- CTT 5 16,66 5 16,66 20 66,67 30 100

ENT 4 13,33 4 13,33 22 73 ,34 30 100

ASR - - 15 50 15 50 30 100

SAL 21 70 - - 9 30 30 100

Dans ce tableau, aucune eau de puits ne répond aux exigences

liées aux bactéries mésophiles aérobies totales (˂100 ufc/1ml) et

100% des échantillons ont une contamination sévère. Ce

paramètre varie entre la moyenne de 8402414 germes dans 1 ml

d’eau, le nombre minimal est de 320000 germes/ml (trouvé dans

le puits P5) et le nombre maximal est de 81000000 germes dans

1 ml d’eau (P16).

Pour l’indicateur Coliformes totaux, 20% des puits ont une

contamination normale contre 80% des eaux ayant une

contamination sévère alors que la norme de l’OMS pour les

Coliformes totaux est ˂10 coliformes totaux/100 ml. Cependant,

les eaux de 16,66% des puits sont dépourvues de Coliformes

fécaux ; les eaux de 16,66% ont une contamination modérée et

66,67% des eaux ont une contamination sévère d’Escherichia

coli (la norme est de 0 dans 100 ml). Les eaux de 13% sont

conformes aux normes (0 ufc/100 ml) pour l’indicateur

Entérocoques contre 13% de contamination modérée et 73% de

contamination sévère pour les Streptocoques du groupe D. Les

eaux de tous les puits renferment des spores de bactéries

Aérobies Sulfito-Réductrices (ASR) avec 50% de contamination

modérée et 50% de contamination sévère. Cette contamination

varie entre la moyenne de 14 spores de bactéries ASR dans 20

ml, le nombre minimal est de 1 spore et celui maximal est de 40

spores/20 ml d’eau.

S’agissant du paramètre Salmonella spp., 70% des échantillons

sont conformes aux normes de 0 dans 500 ml.




Les mauvaises eaux de puits (les eaux qui renferment tous les

indicateurs de pollutions et le germe pathogène Salmonella spp.)

sont trouvées à Sans-fil dans la commune de Kaloum (P10), à

Dabondy Ecole (P13) et Dabondy 1 (P23), dans la commune de

Matoto, à Bellevue marché dans la commune de Dixinn (P16 et

P25), à Yattayah-Fossidet dans la commune de Ratoma (P18), à

Bonfi (P20), à Coléah Imprimerie (P26) et à Sankoumbaya

(P29) tous dans la commune de Matam. Compte tenu du nombre

trop élevé voir incomptable de germes dans certains éléments

(c’est le cas de CT, CF, Entérocoques) de l’échantillon, nous

n’avons pas pu donner de valeurs statistiques dans cette source

d’eau de puits. (Voir tableau 51, annexe 14).

Tableau 21 : Qualité bactériologique des eaux de Puits

Caractères

Qualité

Nombre Pourcentage

Satisfaisants - -

Non satisfaisants 30 100

TOTAL 30 100

L’évaluation de la qualité microbiologique de tous les

échantillons des eaux de puits prélevées dans les cinq communes

de la ville de Conakry indique qu’aucun échantillon n’est

conforme aux normes pour l’ensemble des indicateurs des

pollutions. Ce qui signifie que l’eau de tous les puits est

impropre à la consommation humaine.


Forage de la ville de Conakry

Tableau 22 : Pourcentage de contamination des eaux de Forage par les germes

Germes


TOTAL Contamination



FMAT - - - - 30 100 30 100

CT 3 10 3 10 24 80 30 100

CF- CTT 2 6,66 5 16,66 23 76,67 30 100

ENT 6 20 5 16,67 19 63,33 30 100

ASR - - 26 86,67 4 13,33 30 100

SAL 26 86,67 - - 4 13,33 30 100




Dans ce tableau 21, les eaux de tous les forages renferment une

grande quantité de bactéries mésophiles aérobies totales

(FMAT) avec 100% de contamination sévère. Cette

contamination varie entre la moyenne de 4289333 germes dans

1 ml d’eau, le nombre minimal de 150000 germes/1ml d’eau et

Maximal de 11000000 germes/1ml d’eau.

Pour les Coliformes totaux, 10% des eaux de forages sont

conformes aux normes exigées par l’OMS (˂10 coliformes

totaux/100 ml d’eau) contre 10% de contamination modérée et

80% de contamination sévère. Près de sept pour cent (6,66%)

des eaux de forages sont conformes pour les Coliformes fécaux,

93% renferment des Coliformes thermo-tolérants avec 16,66%

de contamination modérée et 76,67% de contamination sévère.

Pour les Entérocoques, les eaux de 20% des forages sont

dépourvues de cet indicateur contre 86,67 de contamination

modérée et de 13% de contamination sévère. Les eaux de tous

les forages renferment des spores de bactéries Aérobies Sulfito-

Réductrices avec 86,67 % de contamination modérée et 13,33%

de contamination sévère. Cette contamination varie entre le

nombre moyen de 4 spores dans 20 ml d’eau, le nombre

minimal est de 1 spore et celui maximal est de 12 spores dans 20

ml d’eau.

Pour le germe pathogène Salmonella spp., 13,33% des eaux de

forages renferment des Salmonelles.

Les plus mauvaises eaux de forages, c’est-à-dire ceux

renfermant tous les indicateurs de pollutions et le germe

pathogène Salmonelle sont trouvées à Dixinn Bora (F3), à

Béhanzin (Lycée AST) (F7) dans la commune de Matoto, à

Matam (Lycée 1er

Mars) (F11) dans la commune de Matam et à

Sandervalia (F16) dans la commune de Kaloum. Compte tenu

du nombre trop élevé voir incomptable de germes dans certains

éléments (c’est le cas de CT, CF, Entérocoques) de l’échantillon,




nous n’avons pas pu donner de valeurs statistiques dans cette

source d’eau de forages. (Voir tableau 53, annexe 15)

Tableau 23: Qualité bactériologique des eaux de Forage

Caractères

Qualité

Nombre

%

Satisfaisants - -


TOTAL 30 100

Tous les échantillons d’eaux de forages prélevées dans les cinq

communes de la ville de Conakry renferment des germes

indicateurs de pollution, soit 100% polluées.


Robinets de la ville de Conakry

Tableau 24 : Pourcentage de contamination des eaux de Robinet par les germes

Germes


TOTAL Contamination



FMAT - - - - 30 100 30 100

CT 4 13,33 9 30 17 56,67 30 100

CF- CTT 8 26,67 9 30 13 43,33 30 100

ENT 7 23,33 4 13,33 19 63,34 30 100

ASR 1 3,33 29 96,67 - - 30 100

SAL 26 86,67 - - 4 13,33 30 100

Dans ce tableau 23, aucune eau de Robinet ne répond aux

exigences des bactéries mésophiles aérobies totales (˂100

ufc/1ml) et 100% des eaux de cette source ont une

contamination sévère. Cette contamination varie grandement

entre la moyenne de 6518666 germes/1ml d’eau, le nombre

minimal de 180000 germes/1ml d’eau et celui maximal est de

65000000 germes/1ml d’eau. Treize pour cent (13,33%) des

eaux de Robinets sont conformes aux normes de l’OMS pour les

Coliformes totaux contre 30% de contamination modérée et

56,67% de contamination sévère. Les eaux de 26,67% de

Robinets sont dépourvues de Coliformes fécaux ou thermo-

tolérants contre 30% de contamination modérée et 43,33% de




contamination sévère d’Escherichia coli. Les Entérocoques sont

absents dans 23,33% des eaux de Robinets, et 13,33 ont une

contamination modérée et 63,34 de contamination sévère de

Streptocoques du groupe D. Par contre, seulement les eaux de

3,33% de Robinets ne renferment pas de spores de bactéries

Aérobies Sulfito-Réductrices contre 96,67% de contamination

modérée. Cette contamination varie peu entre la moyenne de 4

spores dans 20 ml d’eau, le nombre minimal de 0 spore et celui

maximal est de 9 spores dans 20 ml d’eau.

S’agissant le paramètre Salmonella spp., 13% des échantillons

d’eaux sont positifs (renferment ce germe pathogène). Les plus

mauvaises eaux de Robinets, c’est-à-dire celles qui contiennent

tous les indicateurs de pollutions ainsi que le germe pathogène

Salmonelles sont trouvées aux quartiers Bonfi Marché (R3) dans

la commune de Matam, à Manquepas (R16) dans la commune

de Kaloum, à la Camayenne (R25) et à la Bellevue (R30) tous

dans la commune de Dixinn. Compte tenu du nombre trop élevé

voir incomptable de germes dans certains éléments, c’est le cas

de CT, de l’échantillon, nous n’avons pas pu donner de valeurs

statistiques dans cette source d’eau du réseau de distribution

d’eau de la SEG. (Voir tableau 52, annexe 16)

Tableau 25: Qualité bactériologique des eaux de Robinet

Caractères

Qualité

Nombre

%

Satisfaisants - -


TOTAL 30 100

L’évaluation de toutes les eaux de Robinets prélevées dans les

cinq communes de la ville de Conakry a montré que tous les

échantillons renferment tous des germes indicateurs de

pollution, soit 100%.




III-10 Résultats d’analyses bactériologiques des eaux

minérales vendues en sachets plastique dans la ville de

Conakry

Tableau 26 : Pourcentage de contamination des sachets d’eaux minérales par les germes

Germes


TOTAL Contamination



FMAT - - 23 95,83 1 4,17 24 100

CT 6 25 5 20,83 13 54,17 24 100

CF- CTT 7 29,17 7 29,17 10 41,66 24 100

ENT 15 62,5 4 16,67 5 20,83 24 100

ASR 30 100 - - - - 24 100

SAL 30 100 - - - - 24 100

Ce tableau indique qu’aucun échantillon des eaux minérales

provenant des 24 sociétés productrices d’eaux de boisson ne

répond aux normes exigées pour les bactéries mésophiles

aérobies totales (˂100 ufc/1ml). Cette contamination varie

grandement entre la moyenne de 11257 germes dans 1 ml d’eau

minérale, le nombre minimal de 2500 germes dans 1 ml et le

nombre maximal de 30000 germes environnementaux dans 1

ml0 d’eau. Cependant, 95,53% des échantillons ont une

contamination modérée et 4,17% ont une contamination sévère.

Pour les Coliformes totaux, 25% des échantillons sont

conformes aux normes de l’OMS (soit ˂ 10 coliformes

totaux/100 ml). Par contre, 20,83% des eaux de cette source

contiennent une contamination modérée et 54,17% une

contamination sévère. Les eaux minérales de 29,17% des

échantillons sont dépourvues de Coliformes fécaux contre

29,17% de contamination modérée et 41,66% de contamination

sévère par l’Escherichia coli. Pour les Streptocoques du groupe

D, les eaux minérales de 62,5% correspondent aux normes (0

ufc/100 ml) pour cet indicateur contre 16,67% de contamination

modérée et 20,83% de contamination sévère par les

Entérocoques. Cette contamination varie entre la moyenne de 8




bactéries dans 100 ml d’eau minérale, le nombre minimal de 0

bactérie et celui maximal de 69 bactéries dans 100 ml d’eau.

Les eaux de toutes les sociétés productrices des eaux minérales

sont dépourvues de spores des bactéries Aérobies Sulfito-

Réductrices et les bactéries pathogènes Salmonella spp.

Les eaux minérales de qualité acceptable bien qu’elles

renferment la FMAT dépassant de loin les normes sont EM1,

EM3, EM6, EM13 et EM24. Tandis que les eaux minérales avec

des qualités médiocres sont EM2, EM5, EM8, EM10, EM11,

EM17, EM19, EM20, EM21 et EM22. Compte tenu de la

faiblesse ou l’absence de germes indicateurs de pollution

d’origine fécale dans la plupart des éléments de cet échantillon,

nous n’avons pas pu donner de valeurs statistiques dans cette

source d’eaux minérales. (Voir tableau 54, annexe 17)

Tableau 27: Qualité bactériologique des sachets d’eaux minérales

Caractères

Qualité

Nombre

%

Satisfaisants 6 25


TOTAL 24 100

Ce tableau indique que les eaux des 24 sociétés productrices

d’eaux de table analysées, 6 seulement (25%) sont conformes

aux normes internationales pour les indicateurs étudiés et sont

par conséquent considérées comme des eaux potables. Par

contre, les eaux des 18 sociétés (75%) ne peuvent pas être

considérées comme potables. La présence des indicateurs de

pollution dans ces sources serait due à l’insuffisance de

traitement et à la mauvaise manipulation lors de l’ensachage.

III-11 Résultats de recherche par la PCR des Salmonella

spp., Shigella spp. et Vibrio cholerae dans des eaux de puits

de la ville de Conakry

Tableau 28 : Contamination des eaux de Puits par

Salmonella spp., Shigella spp. et Vibrio cholerae

Contamination




Germes Négatif Positif TOTAL

Effectif % Effectif % Effectif %

Salmonelles 11 73,33 4 26,67 15 100

Shigelles 15 100 - - 15 100

Vibrions 11 73,33 4 60 15 100

Dans ce tableau, la méthode d’analyses par la PCR en Temps

Réel pour l’identification des bactéries pathogènes dans cette

source a montré que 26,67% des échantillons des eaux de 15

puits contiennent de Salmonella spp. et de Vibrio non O139.

Tous les échantillons sont dépourvus de Shigella spp. (Voir

tableau 55, annexe 18)

Tableau 29 : Qualité de l’eau de Puits par rapport aux Salmonella spp., Shigella spp. et

Vibrio choleea

Caractères

Qualité

Nombre

%

Satisfaisants 11 73,33

Non satisfaisants 4 26,67

TOTAL 15 100

Pour la détermination de la qualité des eaux de puits, 73,33% de

cette source sont dépourvues de Salmonella spp. et de Shigella

spp. et 26,67% contiennent des Salmonella spp. et de Vibrio non

O139.

III-12 Résultats de recherche par la PCR des Salmonelles,

Shigelles et Vibrions dans des eaux de Forages de la ville de

Conakry

Tableau 30 : Pourcentage de contamination des eaux de Forage par les Salmonella spp.,


Germes

Contamination

TOTAL Négatif Positif


Salmonelles 12 80 3 20 15 100

Shigelles 15 100 - - 15 100

Vibrions 15 100 - - 15 100

Ce tableau indique que 20% des eaux de forages contiennent des

Salmonella spp. Les bactéries pathogènes Shigella spp. et Vibri

cholerae sont absentes dans 100% des échantillons. (Voir

tableau 56, annexe 19)




Graphique 6: Qualité des eaux de Forage par rapport aux Salmonella spp., Shigella spp.

et Vibrio cholerae

Du point de vue qualité ce graphique montre que 20% des eaux

de forages ne doivent pas être utilisées car elles contiennent

Salmonella spp.


spp., Shigella spp. et Vibrio cholerae dans des eaux de

Robinets de la ville de Conakry

Tableau 31 : Contamination des eaux de Robinet par Salmonella spp., Shigella spp. et

Vibrio cholerae

Germes

Contamination



Salmonelles 12 80 3 20 15 100

Shigelles 15 100 - - 15 100

Vibrio 15 100 - - 15 100

Il ressort de ce tableau que pour les eaux de Robinets, les

résultats indiquent que 20% des échantillons contiennent

Salmonella spp. et que Shigella spp. et Vibrio cholerae sont

absents dans 100% des échantillons. (Voir tableau 57, annexe

20)

0

10

20

30

40

50

60

70

80

90

Satisfaisante Non satisfaisante

Série1




Graphique 7: Qualité des eaux de Robinet par rapport aux Salmonella spp., Shigella spp.

et Vibrio cholerae

La qualité des eaux de Robinets pour Salmonella spp., Shigella

spp. et Vibrio cholerae montre que 80% des eaux de cette source

en sont dépourvues et alors que 20% contiennent Salmonella

spp.


spp., Shigella spp. et Vibrio cholerae dans des eaux minérales

vendues à Conakry

Tableau 32: Contamination des sachets d’eaux minérales par Salmonella spp., Shigella

spp. et Vibrio cholerae

Germes

Contamination



Salmonelles 15 100 - - 15 100

Shigelles 15 100 - - 15 100

Vibrion 15 100 - - 15 100

Il ressort de ce tableau que les eaux minérales de tous les

échantillons sont dépourvues de Salmonella spp., Shigella spp.

et de Vibrio cholerae, soit 100% négatifs pour ces indicateurs.

(Voir tableau 58 en annexe 21)

Tableau 33 : Qualité des eaux minérales en sachets par rapport aux Salmonella spp.,


Caractères

Qualité

Nombre

%

Satisfaisante 15 100

Non satisfaisante - -

TOTAL 15 100

0

10

20

30

40

50

60

70

80

90

Satisfaisante Non satisfaisante

Série1




Ce tableau d’appréciation de la qualité des eaux minérales

produites par quinze sociétés productrices d’eaux de table

concernant la recherche des bactéries pathogènes Salmonella

spp., Shigella spp. et Vibrio cholerae montre que tous les

échantillons sont dépourvus de ces germes. Cependant, il est à

noter que les variations saisonnières ont fortement influencé la

contamination des eaux de cette source.

Si la pollution significative est observable dans toutes les

sources dans les deux saisons (saison sèche et saison pluvieuse),

celle-ci augmente grandement pendant la saison des pluies.

Ainsi, en saison des pluies principalement au mois d’août, toutes

les sources ont connu une forte augmentation de pollution

notamment par la FMAT, Coliformes totaux, Coliformes fécaux

et parfois les Entérocoques. Ces indicateurs pour certaines

sources, demeurent incomptables. (Voir tableaux des résultats

globaux en annexes)

III-15 Comparaison de la qualité des sources d’eaux à

Conakry

Tableau 34: Comparaison des paramètres physico-

chimiques des sources

Paramètres Puits Forages Robinets Eaux minérales

Conformes

TDS 100% TDS 100% Conductibilité

100%.

TDS 100%,

conductibilité

100.

Non conformes

T° 100%, pH

83%, turbidité

76%, dureté 100

%, conductibilité

46%.et Pot redox

100%.

T° 100%, pH

60%,

conductibilité

100%, turbidité

70%, pot redox

100% et 100 %

dureté.

T° 100%, TDS

80%, pH 63%,

turbidité 66%,

Dureté 100% et

Pot redox

100%.

T° 100%,

turbidité 63%,

Pot redox

100%, Dureté

63%, et pH

26%.

Au regard de ce tableau 34, nous constatons que toutes les

sources n’ont pas le même degré de dépassement des valeurs

normales (normes OMS) dont le taux est soit 100% ou soit

moins de 100%: 1 paramètres sur 7 sont conformes pour les

puits, 1/7 pour les eaux de forages, 1/7 pour les eaux de robinet




et 2/7 pour celles minérales. Les taux semblables de

dépassement des valeurs des paramètres physico-chimiques pour

les eaux de puits et forages montrent l’origine commune de ces

sources (nappe phréatique) qui sont des eaux brutes. Les mêmes

problèmes rencontrés au niveau des eaux de robinet expliquent

la contamination des eaux dans les réseaux de distribution par

les eaux de surface chargées de matières. Le fait que la plupart

des eaux minérales ont des valeurs minérales normales de plus

de 50% s’explique par le traitement donné à cette source qui a

permis de l’adoucir : 87% d’eaux douces pour les eaux

minérales contre 93% d’eaux mi-dures et 7% d’eaux dures pour

les eaux de robinets, 83% d’eaux mi-dures et 17% d’eaux dures

pour les eaux de forages et 7% d’eaux mi-dures et 93% d’eaux

dures voir très dures pour les eaux de puits.

Tableau 35: Comparaison des paramètres chimiques des

sources


Conformes

Fer 100%. Fer 100%,

Chlorures 100%

et Mn 100%.

NO3 100%,

NO2 100%, Fer

100%,

Chlorures 100%

et Mn 100%.

NO3 100%, et

Chlorures

100%.

Non conformes

NO3 40%, NO2

13%, As 76%,

Fluor 86%,

Chlorures 100%,

NH4 40% et Mn

23%.

NO3 16%, NO2

23%, As 96%,

Fluor 90%, et

NH4 50%.

As 50%, Fluor

80% et NH4

20%.

NO2 12%, Mn

100%, Fer 50%,

NH4 3%, Fluor

100% et As

95%, NO2 87%.

Dans ce tableau 35, nous constatons que la valeur trouvée des

paramètres chimiques étudiés est conforme aux normes de

l’OMS est fonction des sources : c’est le cas de l’Arsenic, le

Fluor, Nitrates, Nitrites, les Chlorures et le Fer. Ces variables

n’ont pas le même degré de dépassement des valeurs normales

(normes OMS) dont le taux est soit 100% soit plus de 50%: 1

paramètres sur 8 sont conformes pour les puits, 3/8 pour les

eaux de forages, 5/8 pour les eaux de robinet et 2/8 pour celles

minérales. La présence de l’Arsenic dans ces eaux ne constitue

pas un réel danger pour la santé des populations car, l’élément

Arsenic ne provient pas d’une contamination industrielle mais

de l’altération des roches qui forment les couches sédimentaires

de la ville et les chlorures sont aussi des produits de lessivage

des roches ou de désinfection. Cependant, des recherches

peuvent être menées pour connaitre la vraie nature de l’Arsenic

trouvé dans les eaux de Conakry.

Tableau 36: Comparaison des paramètres bactériologiques





Contamination

modérée

Bactérie ASR

50%, 13%

Streptocoque D,

20% CT et 16%

CF.

Bactérie ASR

87%, 16%

Streptocoque D,

10% CT et 16%

CF.

Bactérie ASR

96%, 13%

Streptocoque D,

30% CT et 30%

CF.

95% FMAT,

Bactérie ASR

50%, 16%

Streptocoque D,

20% CT et 29%

CF.

Contamination

sévère

100% FMAT,

80% CT, 66%

CF-CTT, ASR

50%, 73%

Streptocoques D,

26,67% Vibrio et

26,67%

Salmonella spp.

100% FMAT,

80% CT, 76%

CF-CTT et 63%

Streptocoques

D et 13%

Salmonella spp.

100% FMAT,

56% CT, 43%

CF-CTT, ASR

50% et 63%

Streptocoques

D et 13%

Salmonella spp.

4% FMAT,

54% CT, 41%

CF-CTT, 20%

et Streptocoques

D.

Du point de vie bactériologie, ce tableau 36 indique que tous les

éléments des échantillons d’eaux de puits, de forages, de

robinets ainsi que ceux des eaux minérales renferment des

microorganismes bactériens indicateurs de pollution. Cependant,

la plus forte concentration est rencontrée dans les eaux de puits,

de forages et de robinets avec une différence pour certaines

bactéries dans le cas des contaminations sévères comme FMAT,

CT, CF-CTT, Streptocoques du groupe D, Salmonella spp. et

Vibrio non O139. Là, les puits viennent en première position

pour leur taux de contamination avec 80% de CT, 66% de CF,

50% d’ASR, 73% de Streptocoques du groupe D, 26,67% de

Vibrio non O139 et 30% de Salmonella spp. Ils sont suivis par

les eaux de Forages et celles de Robinets qui contiennent toutes

13% de Salmonella spp. Cette contamination serait due à la

vulnérabilité de cette source à cause de manques d’entretien

approprié pour bon nombre d’utilisateurs. Les eaux de forages

sont traitées avant la remise de l’infrastructure mais

malheureusement celles-ci ne subissent pas de traitement après.

Les eaux de robinets sont contaminées lors du stockage et la

distribution dans des conduits vétustes passant dans des

caniveaux recevant des eaux usées et à la surface avec de

nombreuses fuites. La plupart des eaux minérales sont

insuffisamment traitées ou quasi non traitées.

Tableau 37: Qualité des sources d’eaux à Conakry

Qualité Puits Forages Robinets Eaux minérales

Satisfaisante - - - 25%

Non satisfaisante 100% 100% 100% 75%

Ce tableau n°37 indique que l’eau de la plupart des sources

d’approvisionnement en eaux dans la ville de Conakry est

impropre à la consommation car, elle contient des bactéries

indicatrices de pollution d’origine fécale et mêmes des bactéries

pathogènes comme les Salmonella spp. et Vibrio. Ainsi, 100%




des eaux de puits, de forages et de robinets sont impropres à

l’alimentation humaine contre 25% d’eaux minérales

considérées comme sans danger pour la santé du consommateur.

Il serait mieux de proécer à un traitement par chloration avant la

consommation.

III-16- Détermination de la corrélation entre l’état

sanitaire des puits et certaines variables bactériologiques:

Pour la détermination de la corrélation entre l’état sanitaire des

puits et la contamination bactérienne, nous avons utilisé la

méthode de PEARSON.

Les résultats de calcul de corrélation par cette méthode sont

enregistrés dans le tableau ci-dessous :

Tableau 38 : Corrélation entre des variables

Matrices r ± m t p

ESP – FMAT 0,0 ± 0,1 0,00 < 95 %

ESP - Coli-index - 0,32 ± 0,09 3,5 > 95 %

Légende : r = coefficient de corrélation; m = écart type ; t =

coefficient Student; P= probabilité de la corrélation à 95%.

Comme indique le tableau 33, il n’existe aucune corrélation

entre l’état sanitaire des puits et la contamination par la FMAT,

le coefficient de corrélation étant égale à 0. Dans l’autre cas,

nous avons constaté une corrélation moyennement significative

négative entre l’E.S.P et Coli-index selon Pearson : r = -0,32 ; t=

3,5 ; p > 95 %. La corrélation négative signifie que

l’augmentation de la somme des paramètres sanitaires des puits

s’accompagne de la diminution de Coli-index (plus E.S.P est

bon moins il y a de coliformes dans l’eau.)

La corrélation entre l’état sanitaire des puits et la contamination

bactérienne aurait été fortement négative si les quotas des

paramètres sanitaires étaient élevés, car les puits sont très

contaminés.




CHAPITRE IV : DISCUSSION




Dans la littérature, nous n’avons pas trouvé assez de données

concernant l’étude de l’eau à Conakry.

Pour la recherche, nous avons étudié les paramètres suivants :

- Appréciation de l’état sanitaire des puits par une enquête active

(margelle haute, couvercle, puisard fixe, absence d’ordures,

puits situé en amont de la latrine, puits situé à 15 m de la latrine,

puits bétonné ou tubé, WC bétonné) ;

- Propriétés physico-chimiques (température, turbidité,

conductibilité, pH, TDS, dureté et potentiel redox) et les

propriétés chimiques (Nitrates, Nitrites, Arsenic, Fer, Chlorures,

Fluor, Manganèse et Ammonium);

- Détermination de la pollution bactérienne. Cette dernière

comprend la recherche de la flore mésophile aérobie-anaérobie

totale (FMAT), les Coliformes totaux, les Coliformes fécaux ou

Coliformes thermo-tolérants (E.coli), les Entérocoques

principalement les Streptocoques du groupe D et les Spores des

bactéries aérobies Sulfito-réductrices (ASR);

- Recherche des Salmonella spp., Shigella spp. et Vibrio cholerae

par la culture pour les Salmonella spp. et la PCR pour la

confirmation moléculaire des Salmonella spp., Shigella spp. et

Vibrio cholerae pour l’ensemble des sources.

L’eau contaminée pourrait être à l’origine de l’apparition des

maladies intestinales graves. Nous n’avons pas fait d’enquêtes

pour connaître la situation de la santé des populations de la ville

de Conakry, mais nous savons néanmoins que les maladies

d’origine hydriques sont les causes principales de morbidité et

de morbidité dans la ville de Conakry.

Cette situation de contamination de l’eau des sources

d’approvisionnement des populations de la ville de Conakry est

comparable à celle de plusieurs autres parties du monde.

I- Source : Les puits traditionnels




I-1 Appréciation de l’état sanitaire des puits

Selon les normes sanitaires admises pour la construction des

puits, l’état sanitaire de chaque puits doit correspondre à un

certain nombre de paramètres. C’est pourquoi, avant de prélever

l’eau des puits pour l’analyser, nous avons apprécié leur état

sanitaire. Les paramètres étudiés sont enregistrés dans la fiche

d’enquête (voir annexe 26). L’analyse de ces paramètres a

montré que la majorité des puits ne correspondent pas aux

normes sanitaires et environnementales des puits.

Il ressort de notre étude que 100% des puits disposent d’un

couvercle cependant, rien n’indique qu’il est constamment

fermé pendant toute la journée. La non fermeture de celui-ci

peut favoriser la contamination de l’eau par les microorganismes

se trouvant dans l’air, la pénétration des rongeurs, des escargots,

des insectes dans les puits;

- 93,33% des puisards sont uniques ou fixes. A propos du

mode de gestion de l’eau, les ménages entretiennent mal le

puisard après le recueil de l’eau. Il est déposé à même le sol, ou

sur la dalle du puits. Comme conséquence, ces puisards

favorisent le transport mécanique des contaminants dans l’eau.

Certains puisards sont fabriqués à l’aide des chambres à air en

forme d’outres attachés à une corde, d’autres à l’aide de bidons

d’huile d’arachides ou de sojas en plastique (5, 10 ou 20 litres)

ouverts aux deux flancs vers le haut et d’autres encore à l’aide

d’un flotteur des pêcheurs ouvert également aux deux côtés vers

le haut. Les enquêtes faites au Bénin ont relevé les mêmes

mauvais entretiens des puisards par les ménages [96].

- La présence des ordures à proximité pour 40% des puits

(poubelles à ordures, fosse à purin ou à lisier, fossé non busé

recevant des eaux usées, tas d'ensilage, déversement des eaux

usées directement au sol dans la cour) entraîne la contamination

microbienne des puits immédiatement ou par l’intermédiaire du

sol ;




- Les enquêtes ont révélé que 77% des latrines ne sont

pas bétonnées et 96,67% des puits ne sont pas tubés (latrines,

anciennes fosses d'aisance, surtout la sortie de fosse septique

s'écoulant à proximité), élevage d'animaux (volailles, moutons,

cabris, chenils, stabulation, etc.) favorisent la contamination

bactérienne notamment par les entérobactéries.

- La margelle haute se rencontre pour 46,67% et 83,33%

des puits sont situés à plus de 15 m des latrines. Cependant, 60%

des puits sont situés en aval des latrines. Toutes ces défaillances

prouvent la méconnaissance des règles élémentaires d’hygiène

par ces populations.

L’emplacement des installations d’évacuation des excrétas

par rapport aux sources d’approvisionnement en eau potable doit

obéir aux règles suivantes :

1. Eviter d’installer les latrines ou autre installation d’évacuation

des excrétas en amont d’un puits ;

2. Prévoir entre le puits et la latrine une distance d’au moins de 15

m ;

3. Le fond de la latrine doit être situé à 1,5 m au moins au dessus

de la nappe aquifère, à condition que le sol soit homogène car il

se produit une migration relativement faible de bactéries et de

substances chimiques (schémas 6 et 7) [139].

Les latrines non bétonnées profondes, un sol poreux non homogène

et des roches fissurées favorisent la contamination de la nappe

phréatique par des entérobactéries surtout lorsque celles-ci sont en

amont des puits ou à moins de 15 m en position horizontale. Dans

ce cas, la distribution et la migration de la pollution bactérienne et

chimique du sol est maximale, en sens vertical aussi bien

qu’horizontal (schémas 8 et 9) [139].

La pollution verticale par les latrines est de 3 mètres à partir de la

base [139]. Les paramètres de mesure des risques de pollution

bactérienne de la nappe phréatique sont présentés dans le Tableau

41 (Voir annexe 4). [139]




- La margelle basse dans certains cas, margelle mal faite,

mauvaise étanchéité, mauvais entretien et mauvaise utilisation

des puits sont à la base de la contamination microbienne

provenant du sol et par les eaux de ruissellement. La

contamination pourrait avoir lieu après l’installation

inappropriée du cuvelage ou l’absence du tubage, ou à la suite

d’une entrée d’eau de surface contaminée dans le puits.

Toutes les faiblesses que nous avons rencontrées au cours de nos

enquêtes sont sans doute à la base de la contamination des eaux

de puits utilisées dans toutes les 5 Communes de la ville de

Conakry.

En somme, des points attribués à chaque paramètre étudié nous

ont permis d’apprécier l’état sanitaire de chaque puits. Nous

avons constaté que tous les puits diffèrent selon leur état

sanitaire. Selon ce paramètre, les puits sont classés en 3

catégories : « Bons », « Moins bons » et «Mauvais». L’analyse

des paramètres sanitaires a montré que 27% des puits seulement

présentent un « bons » état sanitaire, 50% des puits ont un était

sanitaire Moins bon et 33% des puits ont un Mauvais était

sanitaire.

En faisant l’analyse comparative de l’état sanitaire des puits par

commune, nous avons constaté que les « mauvais puits » se

rencontrent dans toutes les cinq communes de Conakry.

I-2 Qualités physico-chimiques, chimiques et

bactériologiques des sources d’approvisionnement en eau


La ville de Conakry (Presqu’île de Kaloum) s’est édifiée au-

dessus d’un important gisement de fer, de chrome et de nickel et

aussi d’une importante nappe souterraine qui sont liés

principalement aux processus d’altération des dunites [140]. La

vitesse d'infiltration élevée de l'eau en milieu saturé constitue un

facteur positif de vulnérabilité de la nappe à la pollution par des

substances chimiques et des microorganismes des eaux




souterraines (NAVULUR et ENGEL, 1998 ; PIXIE et DENNIS,

1995) [137].

La texture du sol de la presqu’ile de Kaloum (Conakry)

provenant de l’altération des dunites, explique sa perméabilité.

Ceci démontre clairement la vitesse d'infiltration de l’eau qui

reste grande dans le sol et implique la pollution des sources

d’eau souterraines (Puits et forages) de Conakry [137].

L’étude des qualités physico-chimiques et chimiques des eaux

obéit à une certaine norme pour que celles-ci soient considérées

comme de l’eau potable. Ces normes peuvent être fixées par ISO

ou par l’OMS.

I-2-1 Qualités physico-chimiques des eaux de puits

Du point de vue température, aucun échantillon d’eau de puits

n’est conforme à la norme de 25°C. Pour la conductivité

électrique, l’eau de 53% des puits est conforme. La proportion

du Total des Solides Dissous (TDS) dans l'eau se situe entre 220

et 238 mg/L1. Ce qui signifie que dans ce travail, l’eau de tous

les puits est conforme à la norme de 1000 mg/L1. Le pH de 83%

n’est pas conforme (˂6.5). S’agissant de la turbidité, l’eau de

76,67% des puits investigués est trouble. Le titre

hydrotimétrique ou dureté de l'eau, est l’indicateur de la

minéralisation de l’eau. Elle est surtout due aux ions calcium et

magnésium. Selon les normes, une eau peut être douce (˂1,3

mmol/l), mi-dure (1,3-2,5 mmol/l), dure (2,5-3,8 mmol/l) ou très

dure (> 3,8 mmol/l). L’eau de 100% des eaux de puits analysés

n’est pas conforme : l’eau mi-dure est de 6,67% et celle dure est

de 93,33%. Par conséquent, l’eau de tous les puits ne peut être

considérée comme de l’eau douce.

Le Potentiel Redox (POR) est utilisé dans le traitement des eaux

usées, apprêtage des métaux, traitement des fruits et légumes

frais, traitement à l’ozone (aquariums publics, désinfection de

l’eau), vinification, production d’eau de Javel, traitement des

https://fr.wikipedia.org/wiki/Eau

https://fr.wikipedia.org/wiki/Ion

https://fr.wikipedia.org/wiki/Calcium

https://fr.wikipedia.org/wiki/Magn%C3%A9sium




volailles, industrie papetière (blanchiment de la pulpe), piscines

et établissement thermaux [141].

L’Organisation Mondiale de la Santé (en 1972) a reconnu, dans

ses Normes sur l’eau potable, qu’avec un POR de 650 mV, l’eau

était désinfectée et que l’inactivation virale était quasi-

instantanée. Diverses recherches ont montré qu’avec un POR de

650 mV, certaines bactéries comme l’E. coli étaient éliminées

dès le contact ou en l’espace de quelques secondes [14].

Ces résultats sont en accord avec ceux obtenus par Chippaux et

al. (2002) au Niger et Saâdia et al. (2007) au Maroc. Les

résultats des essais physico-chimiques ont révélé également

l’existence d’une température élevée sur l’ensemble des puits

étudiés avec une moyenne de 29,23 °C supérieure à la limite

acceptable qui est de 25 °C recommandée par l’OMS. Ces

températures élevées pourraient s’expliquer par l’influence de la

chaleur ambiante sur les eaux prélevées et aussi par le gradient

géothermique de la zone. Les résultats de notre étude montrent

que 98,2% des puits prélevés ont un pH en dessous de la

normale qui varie entre 6,5 et 8,5 unités pH, ce qui pourrait

expliquer un risque de corrosion du ciment ou des métaux des

canalisations avec entraînement de plomb. L’acidité du pH au

niveau des puits dans notre étude est semblable à l’étude faite

par Nduka et al. (2007) à Warri au Nigeria [152].

Costa et al., en 2002, ont trouvé que 100 % des puits prélevés

ont une température au-delà de la norme fixée par l’Organisation

mondiale de la santé qui est de 25 °C (la température varie entre

28,3 et 28,9 °C) contrairement à la conductivité qui est

inférieure à 400 μs/cm. Les concentrations de nitrate-N,

supérieures au niveau accepté pour l'eau potable de 10 mg l-1,

étaient présentes dans 36% des puits échantillonnés et 67% des

échantillons avaient des concentrations en nitrates supérieures

au niveau de fond de 5 mg l-1. La fluctuation temporelle des

concentrations de nitrate dans les eaux souterraines a été




attribuée aux fluctuations saisonnières de la recharge et de la

croissance des plantes [152].

Les travaux de Makeleke en 2010 ont montré des variations de

température entre 20 et 28°C et de pH entre 6 et 7,4 [142].

I-2-2 Qualités chimiques de l’eau des puits

L’eau de 40% des puits n’est pas conforme aux normes de

l’OMS pour le paramètre nitrates. La teneur normale en nitrites

existe pour 86,67% des puits. Cependant, la teneur en arsenic

dépasse la normale dans 76,67% des puits. Le paramètre de

l’élément biotique fer est normal dans l’eau de 100% des puits.

Le Fluor est hors norme dans 86,67% des puits investigués.

L’eau de 100% des puits est conforme aux normes de 250 mg/l

pour les Chlorures. Pour le paramètre ammoniac, 40 % des eaux

de puits ne sont pas conformes. Alors que 76,67% des eaux sont

conformes aux normes pour l’élément biotique Manganèse.

L’analyse chimique des eaux prélevées au cours de l’étude

révèle la présence d’éléments polluants comme les nitrites, le fer

et le manganèse. En effet, 13,3 % des eaux de puits prélevées

présentent un taux de nitrites et de fer total respectivement

supérieur à 0,1 mg/L et 0,2 mg/L tandis que 16,7 % ont un taux

de manganèse supérieur à 0,05 mg/L, norme recommandée par

l’OMS [159]. La présence de ces éléments traduit la pollution

chimique de certains puits prélevés. Cette situation pourrait

s’expliquer par le faible niveau d’assainissement et de l’hygiène

publique précaire dans les cinq communes de la ville de

Conakry.

En effet, dans ces communes, la population ne dispose pas d’un

système de traitement des ordures ménagères, encore moins

d’un système adéquat de collecte, de traitement et d’évacuation

des eaux usées. Quant aux latrines, 52,9 % sont situées à une

distance non conforme à la norme minimale recommandée par

l’OMS qui est de 15 m entre latrines et puits. La mauvaise

gestion des ordures ménagères et des eaux usées, la




contamination du sol par les excréta humains, le non-respect de

la distance entre les latrines et les puits se traduisent par la forte

teneur de l’eau en certains éléments chimiques (nitrites, fer,

manganèse) qui sont des indices de pollution. Cette pollution

chimique observée à l’issue de l’analyse de certaines eaux de

puits prélevées dans notre série d’étude est conforme aux

conclusions de Kiki Migan [129] dans la ville de Cotonou, de

Assani dans la commune de Grand-Popo, de Djafarou dans la

commune de Kandi [143].

Vingt-sept pour cent (27%) des puits de surface avaient des

concentrations en nitrates supérieures à 5mg/L comparativement

à 3,6% des puits artésiens. La majorité des concentrations de

nitrates mesurées dans les puits artésiens ne dépasse pas 1 mg/L

(120 puits artésiens sur 135), ce qui correspond (selon SBSC,

1992) aux concentrations naturelles de nitrates dans l'eau. Il

apparaît aussi que les puits de surface situés en zone agricole et

construits dans des sols sablonneux sont plus susceptibles d'être

contaminés par les nitrates. Ces résultats étaient prévisibles

puisqu'ils ont établi que le type de sol influence le lessivage des

contaminants dans l'eau souterraine. Ainsi, les sols sablonneux

sont plus perméables aux nitrates que les sols non sablonneux

(Asselin, 1993) [145].

Les résultats de l’analyse physico-chimique présentés dans ce

travail ont montré que la conductivité, l’ammonium,

l’oxydabilité, le calcium, le magnésium, le total des sels dissous,

peuvent être considérés admissibles et ne présentent aucune

incidence sur la qualité de l’eau des puits.

Nos résultats sont comparables à ceux trouvés par C. DEGBEY

et al, en 2009 [146], qui montrent que 10% et 43,64% des puits

ont un taux d’aluminium et de fer total respectivement supérieur

à la limite admissible qui est de 0,2 mg/L et 0,3 mg/L. Les eaux

de puits étudiés affichent également une concentration élevée en

nitrates et en nitrites. Les nitrates (NO3-) et les nitrites (NO2-)




sont des ions présents de façon naturelle dans l’environnement.

Ils sont le résultat d’une nitrification de l’ion ammonium

(NH4+), présent dans l’eau et le sol, qui est oxydé en nitrites par

les bactéries du genre Nitrosomonas, puis en nitrates par les

bactéries du genre Nitrobacter. Les nitrates sont très solubles

dans l’eau, ils migrent donc aisément dans la nappe phréatique

lorsque les niveaux excèdent les besoins de la végétation [146].

Ils sont aussi comapables à ceux trouvés par KELEKE et al, en

2010, les teneurs en ammonium des eaux des 123 puits sur les

293 dépassent le seuil de 0,5mg/l. La valeur la plus élevée

enregistrée est de 297,79 mg/l l’a été dans un puits situé sur la

pente d’un bas-fond à Nkouikou dans l’arrondissement de

Loandjili. Cet élément est absent dans les puits de la zone rurale.

Sur 293 puits, 8 contiennent des eaux dont les concentrations en

nitrites sont comprises entre 0,1 et 0,3 mg/l. Sur 293 points

d’eau analysés, il ressort ce qui suit : 106 puits ont des teneurs

en nitrates inférieures à 50 mg/l, et 87 puits dont la teneur en

nitrates excède 50 mg/l, teneur maximale en nitrates l’eau

destinée à la consommation humaine (réglementation française :

décret 2001-1220 du 20 décembre 2001 et réglementation

européenne : directive du 3 novembre 1998) [142].

Les mesures de Chlore libre obtenues sur 293 puits donnent des

valeurs comprises entre 0 et 0,64 mg/l. La valeur la plus élevée

étant 0,64 mg/l a été obtenue dans un seul puits [142].

Ils sont également comparables à ceux de N. AGHZAR et al en

2002, qui ont trouvé les résultats qui révèlent que les teneurs en

nitrates des eaux souterraines sont très variables d'un puits à

l'autre. Elles se situent, durant la période de suivi, entre 3 et 228

mg/L dans la zone de Béni Amir et entre 6 et 152 mg NO3 dans

la zone de Béni Moussa. Par ailleurs, l'augmentation des

concentrations en nitrates est nettement claire au niveau de

quelques puits durant la période août 96-avril 98 [165].




La qualité de l’eau est médiocre par rapport au paramètre

nitrates puisque seuls les puits témoins 9 et 25 respectent les

normes marocaine et française de 50 mg/L. Les valeurs

moyennes maximales atteignent 107 mg/L dans le puits 30 et 95

mg/L dans le puits 13. Ces derniers sont situés à des distances

différentes des eaux usées : à 1325 m et à 450 m respectivement.

Ces résultats montrent une pollution par les nutriments, dont les

origines sont probablement liées aux engrais utilisés dans la

région (Lhadi et al., 1996), en vue de fertiliser au maximum le

sol, d’une part, et, d’autre part, à l’oxydation des nitrites par les

bactéries de la nitrification suite à l’infiltration des eaux usées

(Aghzar et al., 2001) [147].

Sur le plan hydrochimique, Jaouad El Asslouj et al, en 2007, ont

prouvé que les eaux des puits présentent de fortes concentrations

des éléments majeurs (Na+, Cl-, K+, Ca2+, etc.). Les faits

importants qui caractérisent les eaux souterraines de la région

étudiée. Les eaux sont fortement minéralisées, très dures (de 80

à 213 mg/L en calcium, de 54 à 191 mg/L en magnésium) et très

chlorurées (de 535 à 1 239 mg/L en chlorures). En comparant

ces résultats avec les normes préconisées par la France, seules

les eaux des puits témoins 9 et 25 montrent des valeurs

acceptables [147].

La concentration de l’As est nettement inférieure à la norme

OMS. La teneur minimale (1,4 μg/L) est observée au puits n° 5,

alors que le maximum 3,6 μg/L est enregistré au puits n° 15.

Notons que dans notre cas d’étude (milieu oxydant = 9 mg/L),

l’As est présent à l’état d’oxydation +5, il serait sous forme

d’arsénite généralement complexé et adsorbé par les hydroxydes

de fer. Ce processus est fonction du pH : plus le milieu est

alcalin, plus l’adsorption des arsénites décroît (PLANT et al.,

2003). L’As (V) est relativement immobile en raison de la

coprécipitation avec Fe(OH)3 (Belz ile et Tessier , 1990).

Notons aussi que l’adsorption par les hydroxydes de fer




amorphes [am-Fe(OH)3] est un facteur contrôlant le

comportement de l’As (V) et As (III) dans l’eau (Smedley Et

Kinniburgh, 2002). La corrélation négative observée entre le Fe,

Mn et As montre qu’un apport en Fe et Mn réduit la

concentration d’As dans les eaux (Casiot et al., 2003; Halim et

al., 2009). Cependant, des corrélations significatives avec les

éléments étudiés dans les terrils de la mine de Jérissa et dans le

sol avoisinant sont observées. Ce résultat signifie que la

présence de l’As dans les eaux de la nappe, proviendrait de la

dissolution des roches carbonatées et non des rejets miniers et

des engrais [148].

Les analyses physico-chimiques réalisées par CHOUTI W. K. en

2007, ont révélé que tous les échantillons prélevés sont acides et

présentent une concentration très élevée en nitrate qui indique

une pollution fécale ; quatre (4) sur sept (7) ne respectent pas les

normes de potabilité concernant les nitrates. Les eaux de ces

puits sont très douces.

Qualité bactériologique de l’eau de puits

Les résultats de nos recherches ont prouvé que l’eau de tous les

puits traditionnels contient une forte quantité de flore mésophile

aérobie totale (FMAT) qui forme les bactéries indicatrices de

pollution d’origine environnementale non pathogènes. Cet

indicateur de pollution (FMAT) a des limites de numération très

grandes : de 300 000 à 14 000 000 germes/ml. Les puits les

moins pollués varient entre 300 000 à 500 000 germes/ml et les

plus pollués 600 000 à 14 000 000 germes par ml alors que la

norme est ˂100 germes/ml. Ce qui veut dire que l’eau de tous

les puits est très polluée (100%) par cet indicateur.

Pour les Coliformes totaux, nous remarquons que cet indicateur

a des limites assez variées : de 2 à plusieurs centaines de milliers

de germes dans 100 ml. Cependant, 20% des eaux de cette

source correspondent à la norme de moins de 10 Coliformes

totaux/100 ml contre 80% de contamination sévère. Ce qui veut




dire que les 80% des eaux de puits sont polluées par cet

indicateur.

S’agissant des Coliformes thermo-tolérants ou Coliformes

fécaux ou encore Escherichia coli, cet indicateur montre que

16,66% des eaux de puits sont conformes à la norme de zéro

E.coli dans 100 ml contre 16,66% de contamination modérée et

66,67% de contamination sévère.

Pour les Entérocoques notamment les Streptocoques du groupe

D, cet indicateur a des limites très variées et varient entre 0

germe à 223 germes dans 100 ml. Selon ce paramètre, l’eau de

20% des puits est dépourvue de ce germe contre 16,66% de

contamination modérée et 63,33% de contamination sévère par

les Streptocoques fécaux.

Quant aux Spores des bactéries Aérobies Sulfito-Réductrices

(ASR), elles sont présentes dans tous les échantillons prélevés

(100% des puits). Cet indicateur de pollution aussi a des limites

peu variées : de 2 à 8 spores dans 20 ml alors que la norme est

de zéro spore/20 ml. Nous remarquons qu’il y a 86,67% de

contamination modérée et 13,33% de contamination sévère. La

présence des ASR dans l’eau en l’absence des germes fécaux

peut-être interprétée comme un défaut de protection de la nappe.

Pour Salmonella spp., cet indicateur est présent dans 30 % des

eaux de puits traditionnels contre 70 % où se germe pathogène

est absent.

Comme indiquent certains auteurs, la contamination de cette

source d’eau se produit souvent avec les nouveaux puits, les

puits creusés recevant l'eau de drainage du sol ou les puits qui

n'ont pas servi pendant quelque temps. La consommation de

cette eau n'est pas recommandée [159].

L’eau peut devenir potable après le traitement, par exemple par

filtration, chloration, chauffage [149,150].




La contamination significative peut être due au mauvais état

sanitaire des puits et au non-respect des conditions d’hygiène

publique et individuelle des utilisateurs.

Nos résultats de recherches se rapprochent de ceux trouvés par

certains auteurs comme : Coulibaly K. en 2005, une étude

effectuée dans la capitale malienne (Bamako) a montré que le

nombre de Coliformes totaux dans les eaux de puits analysées

dépasse de très loin la recommandation de l’OMS (˂10

coliformes totaux dans 100 ml). Toutes les eaux analysées au

cours de cette étude présentent des coliformes en très forte

quantité (Coliformes totaux et Coliformes fécaux), soit 100% des

puits [151].

Les résultats trouvés par Soncy K. et al. en 2015, ont montré une

non-conformité des eaux de puits par rapport aux germes de

contamination fécale dans 65% des cas et dans 70% des cas par

rapport à E. coli [161].

Nos résultats sont aussi comparables à ceux trouvés par J.-P.

Chippaux et al en 2002 à Niamey (Benin) dans une étude

effectuée qui a indiqué que la pollution bactériologique est

largement confirmée dans la plupart des puits [152].

Au Québec, une étude effectuée par Danielle G. et Marlène M.

(en 1998) a montré que 14,7% des puits ont présenté une

contamination bactérienne totale hors norme, c'est-à-dire au

moins une fois des concentrations hors normes pour les bactéries

coliformes totaux ou fécaux (norme étant de < 10 bactéries

coliformes totaux/100 ml d'eau et < 1 bactérie coliforme

fécale/100 ml d'eau) ou des concentrations hors normes pour les

bactéries Streptocoques fécaux (norme étant < 1 bactérie

Streptocoque fécale/100 ml). Les valeurs de Coliformes totaux

dépassant les normes varient de 13 à 84 bactéries/100 ml d'eau.

Pour les Coliformes fécaux, ces valeurs varient de 1 à 60

bactéries/100 ml d'eau et pour les Streptocoques fécaux, de 1 à

74 bactéries/100 mL d'eau [145].




Pareille pour AISSI, en 1992 [144, 96], KIKI MIGAN, en 1993

[129], CONILANVI en 1994 [95] qui ont retrouvé des taux de

coliformes dépassant largement 104 colonies par 100 ml.

Au Cameroun, M. Nola et al. (en 2001) ont montré que les eaux

des sources et des puits analysées hébergent les communautés de

Pseudomonas aeruginosa 1 à 22x103, Aeromonas hydrophila 1

à 7,8x103 UFC, 9x10

5 Coliformes, pH varie 3 à 5. Les densités

de ces 2 bactéries pathogènes opportunistes subissent des

fluctuations spatio-temporelles. La concentration des bactéries

coliformes dans les eaux souterraines atteint parfois 9 x 105

UFC/100 ml (NOLA et al., 1999). Les fluctuations observées

seraient liées aux conditions de l'environnement [153].

Au Congo, les études réalisées par KELEKE S. et col. en 2010,

ont indiqué que toutes les eaux des puits analysées contiennent

des germes spécifiques de contamination fécale (Coliformes

thermo-tolérants et Streptocoques fécaux) à l’exception d’un

puits où la concentration en chlore libre a été de 0,64 mg/l. [142]

En effet, les travaux de recherche menés par M. MAKOUTODE

et al. en 1999, dans la sous-préfecture à Grand-Popo au Bénin,

l’analyse des eaux de 100 puits auprès de 100 ménages a révélé

que sur l’ensemble des eaux de puits analysées, la moyenne des

colonies dépasse 105 bactéries coliformes par 100 ml. Tous les

puits investigués sont pollués. Les germes identifiés sont : E.

Coli (31 %), Klebsiella (15 %), Salmonella spp. (9 %),

Citrobacter (41 %), Enterobacter (5 %) puis Enterococcus (100

%) [63].

Les différentes analyses bactériologiques réalisées pour les

points d’eau de boisson en Afrique montrent que la plupart des

puits traditionnels et sources d’eau sont polluées.

Toujours au Benin, les travaux de recherche menés par C.

DEGBEY et col (en 2009) montraient que des Coliformes

étaient retrouvés dans toutes les eaux et il en était de même pour

Escherichia coli. Il ressort que 97,27% des puits investigués




présentent une pollution par les Klebsiella pneumoniae et

Staphylococcus aureus, de même 96,36% des puits prélevés sont

pollués par Salmonella spp. et Shigella spp. Les Streptocoques

fécaux ont été identifiés dans 97 puits sur les 110 prélevés (soit

88,2%) [146].

En 2008, les résultats de recherches effectuées par Cyriaque D.

et col. ont montré que les germes les plus fréquemment isolés

sont Escherichia coli (100 %), Salmonella spp. et Shigella spp.

86,7 % pour des Coliformes et Entérobactéries. Quant aux

Streptocoques fécaux, ils sont identifiés dans 19 puits soit 63,3

%. Il est utile de souligner que tous les puits sont fortement

contaminés par le Clostridium perfringens, 96,7 % [143].

Les analyses physico-chimiques réalisées par CHOUTI W. K.

ont révélé que l'analyse bactériologique qui a porté sur un seul

échantillon de 100 ml révèle la présence de 141 colonies

d'Escherichia coli à 37°C et d'une colonie à 44°C ; les

streptocoques fécaux sont indénombrables [174].

Nos résultats sont comapables à ceux de Saâdia BRICHA et al.

en 2007, qui ont trouvé des résultats de l’analyse de la qualité

physico-chimique des eaux de la nappe phréatique M’nasra, au

Maroc, une concentration moyenne en nitrates est de119mg/L,

avec une valeur maximale (252mg/L) qui a atteint un niveau 5

fois plus élevé que la norme. Les concentrations de la dureté

totale au niveau des puits P2, P4 et P7 sont respectivement de

l’ordre 6,76; 7,2 et 8,2mèq/L, lesquelles dépassent les normes

recommandées par l’OMS. Cependant, les eaux de la nappe

M’nasra affichent des concentrations très faibles en sulfates

(34,46mg/L), en matières organiques (0,54mg/L) et en azote

nitreux (0,014mg/L) [160].

Aussi, ils ont montré que le pH, la température, la matière

organique et les sulfates peuvent être considérés admissibles et

ne présentent aucune incidence sur la qualité de la nappe. Ainsi,

les valeurs moyennes du pH (7,3), la température (22°C), la




matière organique (0,54mg/L) et les sulfates (38mg/L) sont

compatibles avec les normes des eaux d’alimentation [160].

Ces résultats sont en accord avec ceux obtenus par Chippaux et

al. [152], lors de leurs études sur les eaux de la nappe phréatique

de la plaine alluvionnaire de Niamey au Niger [160].

Toujours en 2007, Saâdia BRICHA et al. ont trouvé également

lors des essais physico-chimiques, l’existence d’une dureté

élevée au niveau des puits P2, P4 et P7 avec respectivement

6,76; 7,2 et 8,2méq/L. Alors qu’une salinité élevée a été

enregistrée au niveau du puits P1 (1493YS/cm). Les résultats de

l’analyse physico-chimique montrent que les eaux de sept puits

étudiés affichent une concentration élevée en nitrates 119mg/L

avec une valeur maximale de l’ordre de 252mg/L. Les valeurs

élevées en nitrates sont rapportées par d’autres auteurs qui ont

travaillé sur la nappe M’nasra [160].

En effet, Krira A. et al. en 2001 ont trouvé la valeur 223,20mg/L

comme valeur maximale en nitrates. La pollution nitrique des

eaux souterraines étudiées est due à l’utilisation massive des

fertilisants azotés, à l’élevage et au mode d’irrigation gravitaire

[162].

Pour l’ensemble de la zone M’nasra, Krirar et al.[162] ont

signalé un taux moyen d’azote potentiellement lixiviable de

l’ordre de 161,10kgN/ha/an. De même, la nature sablonneuse du

sol de la zone M’nasra contribue à l’aggravation de la pollution

nitrique [162;163]. Ces auteurs ont montré que plus, les

formations géologiques sont perméables et peu épaisses, plus les

concentrations en nitrates dans la nappe sous-jacente sont

élevées [161].

La variation de la concentration en nitrates constatée entre les

différents puits peut être liée, entre autres, à l’hétérogénéité du

milieu physique. Pour Saadi et al. en 2007 [160], la grande

variabilité spatiale des nitrates au niveau de la zone d’étude

M’nasra serait due à la texture de la surface et à la lithologie.




Les précipitations lourdes et l’absence de la couverture végétale

contribuent à la lixiviation rapide des nitrates vers la nappe

M’nasra selon Saadi et al. en 2007 [165]. De même, Zilliox et

al. en 1990 [166] ont constaté que la période hivernale constitue

la phase critique de lessivage de l'azote excédentaire dans les

eaux souterraines en France dans la vallée du Rhin, du fait de

l'absence du couvert végétal et de l'incidence de fortes

précipitations [166].

Au Burkina-Faso, au Rwanda et au Bénin, les études révèlent

que respectivement 70 % des puits traditionnels au Burkina-

Faso, 55 % des sources captées au Rwanda et, 96 % des puits

traditionnels au Bénin sont pollués par ces indicateurs.

Dans la région de Québec, quinze pour cent (15%) des puits

analysés (22 puits sur 150) étaient au delà des normes pour les

Coliformes totaux ou fécaux ou Streptocoques fécaux. Les

valeurs des Coliformes totaux dépassent les normes qui vont de

13 à 84 bactéries par 100 ml. Pour les Coliformes fécaux, ces

valeurs vont de 1 à 60 bactéries et pour les Streptocoques

fécaux, de 1 à 74 bactéries par 100 ml d’eau. Par ailleurs, 53%

des puits de surface ont présenté une contamination bactérienne

au delà des normes québécoises. De plus, les trois quart des

puits de surface (3 puits sur 4) ont présenté une contamination

bactérienne hors norme. Environ dix pour cent (10%) des puits

artésiens ont présenté une contamination bactérienne hors norme

et soixante quinze pour cent (75%) de ceux qui ont présenté des

décomptes de bactéries Coliformes totaux dépassant la norme

sont associés à des puits de moins de 15 m de profondeur [154].

Il reste à préciser que l’on ne peut pas conclure à la salubrité de

l'eau après un seul test. Elle est dite potable seulement lorsque

l'analyse de trois échantillons prélevés à des intervalles d'une à

trois semaines n'indique pas d'augmentation du taux de

bactéries, que l'état de cette eau est jugé stable et que le puits est




protégé et situé au moins 30 m de toute source de matières

fécales humaines et animales [157].

Par ailleurs, la nappe phréatique M’nasra héberge de fortes

densités en flore totale et en indicateurs de la contamination

fécale, en accord avec ceux trouvées par Boutin et Dias [167]

pour la nappe de Marrakech (Maroc). Les valeurs élevées en

coliformes fécaux et streptocoques fécaux au niveau de la nappe

phréatique M’nasra sont similaires à ceux trouvées au niveau de

la nappe phréatique de Yaoundé (Cameroun) où les

concentrations maximales annuelles fluctuent entre 2 et 3,5

log10/100mL pour les Coliformes fécaux et de 1,9 à 3,7 log10

/100 mL pour les Streptocoques fécaux [168].

De même des fortes concentrations en coliformes fécaux sont

enregistrées au niveau des eaux de puits de la nappe phréatique

de Yembeul au Sénégal avec des fluctuations entre 0 et 6,8

log10/100mL [168]. Les densités de ces bactéries subissent

d’amples fluctuations spatio-temporelles au niveau des eaux de

puits et de forages dans la ville de Conakry. En effet, à M’nasra,

la forte concentration en coliformes totaux et en streptocoques

fécaux enregistrée au niveau de puits P1 (5,86 et

6,10log10/100mL) respectivement, peut être attribuée à

l’influence de l’Oued Sebou qui reçoit des déchets divers.

L’intensité de la pollution des eaux souterraines dépend du type

du sol et de la dose en polluants [168, 160].

Les résultats obtenus par K. Soncy et al. en 2015 ont montré une

non-conformité des eaux de puits par rapport aux germes de

contamination fécale dans 65% des cas et dans 70% des cas par

rapport à E. coli [161].

Qualités physico-chimiques, chimiques et bactériologiques

des eaux de forages

Qualité physico-chimiques

La température de tous les échantillons d’eau de forage dépasse

la norme de 25°C. Pour la conductivité électrique, l’eau de




100% des forages est non conforme. La TDS de l’eau de tous les

forages varie entre 22 et 368 mg/l. Ainsi, l’eau de tous les

forages est conforme à la norme de 1000 mg/l. Le pH de 60%

des échantillons est non conforme. La turbidité de 70% des

forages investigués ne sont pas conformes. La dureté de l'eau est

anormale pour 100% des échantillons. Ainsi, 83% des eaux sont

mi-dures et 16,67% des eaux sont dures. Aucune eau de forage

n’est douce.

Les résultats obtenus par Maoudombaye T. et al en 2015,

montrent que, du point de vue physique, les eaux de puits et de

forages ont un pH à tendance acide et du point de vue chimique,

les eaux de forages et de rivières présentent des teneurs en ions

nitrates supérieures à la norme de l’OMS [171].

Qualités chimiques des eaux de forages

L’eau de 83,33% des forages est conforme aux normes de

l’OMS contre 16,67% de teneur anormale. La teneur normale en

nitrites existe aussi pour 76,67% des forages. Celle en arsenic

dépasse la normale dans 96,67% des forages. Le paramètre fer

est normal dans l’eau de 100% des échantillons. Le Fluor est

hors norme dans 90% des forages investigués. L’eau de 100%

des forages est conforme aux normes de 250 mg/l pour les

Chlorures. Pour le paramètre ammonium, 50 % des eaux de

forage ne sont pas conformes. Tandis que le Manganèse est

conforme dans 100% des échantillons prélevés.

La vitesse d'infiltration élevée de l'eau en milieu saturé,

constitue également un facteur positif de vulnérabilité de la

nappe à la pollution nitrique des eaux souterraines (Navulur et

Engel, en 1998 ; Pixie et Dennis, en 1995). Malgré leur texture

argileuse, argilolimoneuse ou limonoargileuse, les sols du Tadia

sont assez perméables. Ceci montre clairement que la vitesse

d'infiltration des sols n'est pas liée uniquement à la texture mais




également à la structure du sol (Booltink, en 1995), or les sols

du Tadia présentent une bonne structure [153].

Des concentrations anormalement élevées en nitrate dans l’eau

souterraine sont généralement dues à l’utilisation intensive de

fertilisants ou à une contamination reliée aux effluents de fosse

septique. Sur la zone d’étude, les concentrations en nitrate les

plus élevées ont été enregistrées surtout dans des puits de

surface, mais la concentration maximale (32,5 mg N‑NO3/l) a

été mesurée dans un puits profond situé à l’aval du bassin. Sur

les 62 puits analysés, 11 (18 %) présentent des concentrations

supérieures à 1,5 mg N‑NO3/l (concentrations similaires au

bruit de fond; Menv, en 2004) [156].

Même si elle n’est pas généralisée, la contamination en nitrate

de l’eau souterraine est donc présente dans la zone d’étude.

Trois puits (5 %) comptent entre 1,5 et 3 mg N‑NO3/L

(concentrations soupçonnées de résulter de l’activité humaine

mais d’autres sources peuvent également exister; Menv, en

2004) et cinq puits (8 %) ont une concentration en nitrate entre 3

et 10 mg N‑NO3/l (concentrations définitivement attribuables

aux activités humaines; Menv, en 2004). Trois puits (5 %)

excèdent la norme pour l’eau potable, i.e. 10 mg N‑NO3/l

(MDDEP, en 2008b). Vingt-cinq pourcent (25%) des puits de

surface et 10 % des puits profonds ont une concentration en

nitrate supérieure à 3 mg N‑NO3/l, ce qui est comparable aux

résultats de MENV (2004). Aucune tendance de diminution des

concentrations avec la profondeur des forages n’a pu être mise

en évidence, contrairement à ce que Bolduc et al. (en 2006) ont

observé pour l’aval du bassin [156].

Les résultats de recherche de AHOUSSI K. E. et al. en 2013, ont

montré que les teneurs en nitrates observées dans les eaux de la

ville d’Abidjan diffèrent d’un aquifère à l’autre. En effet, les

eaux de la nappe du Quaternaire sont les plus riches en nitrates,

avec des teneurs qui varient de 0,05 mg/L à 196,20 mg/L, pour




une moyenne de 49,42 mg/L. Ces teneurs sont supérieures à la

norme OMS (50 mg/L) pour une eau de consommation. Au

niveau des eaux de la nappe du Continental Terminal (CT), les

teneurs en nitrates varient de 0 à 120 mg/L, avec une moyenne

de 13,07 mg/L. Dans le Continental Terminal, les teneurs

excessives en nitrates sont observées dans les localités du

Plateau, d’Adjamé et de Yopougon Zone Ouest. La distribution

spatiale des nitrates dans les eaux de la nappe du Quaternaire

montre que la majorité des points de captage de cette nappe est

soumise à une pollution nitratée [172].

La vulnérabilité intrinsèque d’un aquifère est l’aptitude du

milieu à transmettre verticalement un contaminant de la surface

à la zone saturée et ne fait pas référence à un contaminant en

particulier (Boisvert et al., en 2008b). Si on associe la

vulnérabilité intrinsèque à l’infiltration, 75 % du territoire du

bassin de la rivière Noire serait vulnérable (infiltration élevée :

de 200 à 250 mm) ou très vulnérable (infiltration très élevée : >

250 mm). Ce résultat est comparable à celui de Delisle et al. (en

1998) qui ont trouvé une contamination atteignant 70 % de

l’aquifère du bassin de la Yamaska (dont la rivière Noire est

tributaire) serait très vulnérable. Cette évaluation de la

vulnérabilité de l’aquifère est cependant incomplète puisqu’elle

ne tient pas compte de la direction de l’écoulement souterrain ni

d’autres processus qui limitent ou réduisent les concentrations

de contaminant dans l’aquifère [156].

Qualités bactériologiques des eaux de forages

L’eau de tous les forages renferme une grande quantité de

bactéries mésophiles aérobies totales (FMAT) avec 100% de

contamination sévère. Dix pour cent (10%) de l’eau de forage

sont dépourvues de Coliformes totaux et 20% sont conformes

aux normes exigées par l’OMS (-10 coliformes totaux/100 ml

d’eau) pour 10% de contamination modérée et 80% de




contamination sévère. 16,66% des eaux de forages sont

dépourvues de Coliformes thermo-tolérants avec 16,66% de

contamination modérée et 66,67% de contamination sévère

d’E.coli. Pour les Entérocoques, l’eau de 13% des forages est

dépourvue de cet indicateur contre 13 % de contamination

modérée et de 73% de contamination sévère. L’eau de tous les

forages renferme des spores de bactéries Aérobies Sulfito-

Réductrices avec 50 % de contamination modérée et 50% de

contamination sévère. 13% des eaux de forages renferment de

Salmonella spp.

Tous les échantillons d’eau de forages prélevés dans les cinq

communes de la ville de Conakry renferment des germes

indicateurs de pollution (soit 100%). Ce qui signifie que l’eau de

tous les forages devrait aussi subir un traitement préalable avant

la consommation.

Il convient de souligner qu’une eau de température située entre

25°C et 28°C constitue un bon milieu de culture pour les micro-

organismes de l’environnement, ce qui veut dire que l’élévation

de la température des eaux créé des conditions favorables à la

pollution des celles-ci en milieu tropical [125].

Une étude effectuée par J.-P. Chippaux et al en 2002 à Niamey a

indiqué une forte pollution bactériologique dans la plupart des

eaux de forages [152].

Au Cameroun, M. Nola et al, en 2001ont montré que l'eau d'une

nappe phréatique apparaît d'autant plus vulnérable à la pollution

microbiologique que le toit de la nappe est proche de la surface

du sol et que les terrains qui surmontent l'aquifère sont

perméables aux sources superficielles de pollution [154].

Les résultats obtenus par K. Soncy et al. ont montre que les eaux

de forages étaient contaminées à 53,54% par la flore aérobie

mésophile, à 26,77% par les coliformes totaux et à 2,03% par

les streptocoques fécaux [161].




Les résultats de l’analyse bactériologique ont indiqué que les

eaux de puits ont été contaminées par la plupart des germes

recherchés. La contamination d’origine fécale a été importante.

Elle était respectivement de 98,55% de Coliformes totaux

86,48% Coliformes thermotolérants et 70,08% d’E. coli [161].

Les résultats de recherche obtenus par J.P. Chippaux et al. en

2002, ont montré que la nappe superficielle, accessible par les

puits, présente une forte pollution azotée et une pollution

bactériologique (coliformes et streptocoques fécaux) qui rendent

l’eau impropre à la consommation. La nappe profonde, qui

approvisionne les forages, est également polluée chimiquement

(azote oxydable) et bactériologiquement (streptocoques fécaux)

mais à un degré moindre. La pollution fécale augmente après la

saison des pluies [152].

L’origine des pollutions peut être attribuée à diverses causes:

défaut d’assainissement et de collecte des ordures ménagères,

transfert de polluants à partir des couches superficielles,

conditions de puisage et structure des installations. À terme,

l’utilisation de la nappe phréatique pourrait s’accroître et

constituer un risque sanitaire important pour une majorité des

habitants de Niamey [152].

Les teneurs en nitrates n’excèdent jamais le seuil et celles des

nitrites sont supérieures dans 1 puits sur 17 et 6 forages sur 20.

La pollution bactériologique est largement confirmée dans la

plupart des puits ou forages [152].

Les mesures de conductivité électrique, de concentration en c

chlorures et en azote, des teneurs en bactéries, pratiquées avant

et après chloration et vidange des puits, montrent que la

pollution touche la nappe phréatique superficielle sur les deux

rives et ne peut être seulement imputée à une contamination

locale des eaux des puits liée aux conditions d’exploitation. Les

facteurs de pollution découlent donc de problèmes majeurs et

tiennent essentiellement au manque de salubrité [152].




Les résultats trouvés par K. Soncy et al. en 2015, ont montré que

les eaux de forages étaient contaminées à 53,54% par la flore

aérobie mésophile, à 26,77% par les Coliformes totaux et à

2,03% par les Streptocoques fécaux [161].

Aussi, J.P.Chippaux et al. (2002) ont aussi trouvé une

contamination excessive des eaux de puits de Niamey par les

Coliformes totaux et Streptocoques fécaux. Des observations

similaires à ceux des eaux de puits de Lomé et à Meknès, au

Maroc concernant les Coliformes totaux et les Streptocoques

fécaux (Belghiti et al., 2013). A. Abengourou, en Côte d’Ivoire,

Aka et al. (2013) ont dénombré dans 28% des eaux de puits

analysées des souches d’Escherichia coli. Selon Bricha et al.

(2007), les réseaux d’égouts, les fosses septiques, les eaux usées

des usines et les déchets solides seraient les sources principales

de pollution des eaux souterraines dans le secteur urbain et dans

les zones périurbaines. De plus, la contamination de la nappe

des puits dépend de la perméabilité du sol, de la profondeur de

la nappe, de l’absence ou l’inadaptation des ouvrages

d’assainissement, de la mauvaise gestion des ordures et de la

méthode de puisage (Yapo et al., 2010 ; Degbey et al., 2010 ;

Coulibaly, 2005 ; Hassane, 2010 ; Mokofio et al., 1991). Les

eaux de forage analysées sont moins contaminées par rapport à

celles des puits. Il existe une différence significative (p<0,05)

entre l’eau des puits et celle des forages par rapport à tous les

germes recherchés [170].

L’analyse de la qualité bactériologique des eaux des puits a mis

en évidence la contamination d’origine fécale de la nappe

phréatique spécialement par E. coli (Degbey et al ., 2010). Ces

germes ont été dénombrés dans les jus frais obtenus à partir des

fruits lavé s à l’aide des eaux de puits de Lomé (Soncy et al.,

2014). Or, l’Institut national de santé publique du Québec

(2004) a recommandé que l’eau contaminée par la bactérie de E.

coli ne soit pas consommée, à moins qu'elle ait été bouillie




pendant au moins une minute. De plus il faudrait également

s’abstenir de préparer des glaçons, de laver les aliments, de se

brosser les dents ou de donner le bain à un bébé avec cette eau.

De leurs cotés, Bawa et al. (2008) et Tampo et al. (2014)

proposent une chloration adaptée à la composition des eaux de

puits et de forages.


des eaux de robinets

Qualités physico-chimiques

La température de tous les échantillons d’eau de Robinets

dépasse la norme de 25°C. Pour la conductivité électrique, l’eau

de 100% des robinets est non conforme. La TDS de l’eau de

tous les forages varie entre 22 et 368 mg/l. Ainsi, l’eau de tous

les forages est conforme à la norme de 1000 mg/L à ne pas

dépasser. Le pH de 63% de l’échantillon est non conforme. La

turbidité de 66,67% d’eau de robinets investigués n’est pas

conforme. Aucune eau de robinet n’est douce. Cependant, les

eaux de 93% sont mi-dures et 7% sont dures.

Les analyses physico-chimiques de tous les prélèvements

effectués par le laboratoire de la SEG en 2014 ont montré des

variations : la température varie entre 26.9 et 29.9°C ; pH entre

6.17 et 6.39 et Turbidité 0.25 à 11 NTU [160].

Qualités chimiques des eaux de robinets

L’eau de 100% des Robinets est conforme aux normes de

l’OMS de 50 mg/l. La teneur en nitrites est 100% normale pour

tous les Robinets. Cependant, celle en arsenic est normale pour

50% seulement des échantillons prélevés. Le paramètre biotique

fer est normal dans l’eau de 100% des Robinets. Le Fluor est

hors norme dans 80 des eaux de Robinets investigués. L’eau de

100% des Robinets est conforme aux normes de 250 mg/L pour

les Chlorures. Pour le paramètre ammonium, 80 % des eaux de

Robinets sont conformes. Le paramètre de l’élément biotique le

Manganèse est normal pour les 100% des échantillons.




Cheikh Fall en 2007 a troué une pollution des eaux de la nappe

par les nitrates (496,3 mg/L à Sahm Notaire) alors que l'eau de

robinet présente partout des teneurs en nitrates relativement

faibles et conformes à la valeur limite recommandée par l'OMS

qui est de 50 mg/L [173].

Ces résultats concernant les paramètres physiques (conductivité

électrique, pH et température des eaux) montrent partout des

dépassements pour ce qui concerne les références internationales

pour en matière d'eau potable [173].

Les analyses chimiques de tous les prélèvements effectués par la

SEG en 2014 ont montré des variations du Chlore libre de 0.19 à

1.39 ml/l et le Chlore total entre 0.19 et 1.43 mg/l [175].

Qualité bactériologique de l’eau de canalisation

centralisée (Robinet)

En effet, l’eau de robinet de tous les prélèvements contient une

grande quantité de flore mésophile aérobie totale (FMAT) qui

forme les bactéries indicatrices d’hygiène. L’indicateur de

pollution FMAT a des limites de numération peu variées c’est

pourquoi l’eau de tous les robinets est fortement contaminée

180 000 à 11 000 000 de germes par millilitre d’eau analysée.

Pour les Coliformes totaux déterminant l’indicateur d’efficacité

de traitement, nous remarquons que cet indicateur a des limites

assez variées : de 0 à incomptable germes dans 100 ml d’eau

analysée. Sur l’eau des 30 foyers investigués disposant d’un

réseau de distribution d’eau courante, 4 seulement sont

dépourvues de coliformes totaux soit 13,33% contre 86,67% de

contamination modérée (30%) et sévère (56,67%) alors que la

norme est de moins 10 coliformes dans 100 ml. Ce qui signifie

que l’eau de 56,67% est considérée hors norme pour cet

indicateur. La présence des Coliformes totaux témoigne d’une

contamination fécale ancienne.




S’agissant des Coliformes thermo-tolérants ou Coliformes

fécaux ou encore Escherichia coli, cet indicateur signe une

contamination fécale. Ils ne sont pas dangereux par eux-mêmes,

mais ils peuvent accompagner d’autres bactéries intestinales qui,

elles, sont pathogènes (Salmonella spp., Shigella spp., Vibrio

cholerae). Sur les 30 prélèvements, l’eau de 26,67% est

dépourvue de coliformes fécaux contre 73,33%. Cet indicateur

de pollution varie grandement : de 0 à incomptable germes alors

que la norme est de 0 germe dans 100 ml. 0 à 9 Coliformes

signifie risque bas, 10 à 100 Coliformes signifie risque moins

(30%) et de 101 à plusieurs centaines de milliers de Coliformes,

le risque élevé représente 43,33%. Leur présence témoigne

d’une contamination fécale récente.

Pour les Entérocoques notamment les Streptocoques du groupe

D, ce sont également des indicateurs de pollution fécale. Cet

indicateur a des limites qui varient 0 germe à incomptable

germes alors que la norme est de 0 germe dans 100 ml. Ainsi,

23% de cette source sont dépourvues de Streptocoques contre

13% de contamination modérée et de 64% de contamination

sévère.

Quant aux spores des bactéries Aérobies Sulfito-Réductrices

(ASR), il s’agit d’une flore non pathogène ; elle se développe

dans la matière organique. Elle est présente dans l’eau mais en

très faible quantité, car elle ne peut s’y multiplier. Cet indicateur

de pollution a des limites très peu variées : de 0 à 8 spores.

L’eau de 3% des foyers seulement est dépourvue de spores des

bactéries Aérobies Sulfito-Réductrices contre 92% de

contamination modérée alors que la norme est de 0 spore dans

20 ml.

Pour Salmonella spp., l’eau ne doit pas contenir ce germe parmi

lesquels se trouvent les agents responsables de la fièvre typhoïde

et des toxi-infections alimentaires. Cet indicateur est présent




seulement dans l’eau de 13 % des foyers. Ce qui signifie que

l’eau de cette source est impropre à la consommation.

Les exigences de qualité bactériologique proposées par l'OMS,

intégrées dans la réglementation européenne, indiquent que les

eaux distribuées ne doivent contenir ni organismes pathogènes

ni indicateurs de contamination fécale (streptocoques,

coliformes thermo-tolérants). L’analyse faite en 1995 en Europe

sur 638 unités de distribution montre au moins un résultat non

conforme pour ces indicateurs [159].

Les analyses effectuées par le laboratoire de la SEG (2014) dans

certaines préfectures de l’intérieur du pays disposant d’un réseau

de distribution de l’eau ont montré également une pollution

fécale. Sur un échantillonnage de 4288, 4115 renferment des

Coliformes. La répartition par rapport aux régions naturelles

donne la situation suivante : Basse Guinée 93%, Moyenne

Guinée 96%, Haute Guinée 97% et la Guinée Forestière 87%

[176].

Des échantillons prélevés à la sortie des stations de production

d’eau pour la ville de Conakry en 2014 ont donné des résultats

suivants: Kakimbo, 9 Coliformes totaux, Gbéssia, 10 Coliformes

totaux, Kobaya, 2 Coliformes totaux, Demoudoulah 9

Coliformes totaux, Stade FE, 11 Coliformes totaux, Donka-1 5

Coliformes totaux, Donka-2, 9 Coliformes totaux, PK-43 11

Coliformes totaux, Nongo Stade, 10 Coliformes totaux,

Kakoulima, 9 Coliformes totaux et Borne Fontaine, 8

Coliformes totaux soit 36% des stations de production d’eau

potable non conformes [176].

En effet, des analyses bactériologiques effectuées au niveau des

réservoirs et aux robinets des abonnés à Conakry ont donné des

résultats ci-après :

- Réservoir Aviation - Amont : 38 ufc E.coli, 25 ufc Entérocoques

et 76 Coliformes totaux ; Aval : 12 ufc /100 ml d’E.coli ; 8




ufc/100 ml d’Entérocoques et 19 ufc/100 ml de Coliformes

totaux ;

- Réservoir Koloma- Amont : 11 ufc d’E.coli, 7 ufc Entérocoques

et 32 Coliformes totaux ; Aval : 0 ufc d’E.coli, 0 ufc

Entérocoques et 10 Coliformes totaux ;

- Réservoir Sonfonia-Amont : 0 ufc d’E.coli, 0 ufc Entérocoques

et 8 Coliformes totaux ; Aval : 6 ufc d’E.coli, 2 ufc

Entérocoques et 18 Coliformes totaux ;

- Réservoir Jica-3- Amont : 0 ufc d’E.coli, 0 ufc Entérocoques et

6 Coliformes totaux ;

- Réservoir Jica-1- Amont : 4 ufc E.coli, 2 ufc Entérocoques et 14

Coliformes totaux ;

- Commune de Kaloum : 18 ufc E.coli, 7 ufc Entérocoques et 27

Coliformes totaux ;

- Commune de Matam : 17 ufc E.coli, 6 ufc Entérocoques et 41

Coliformes totaux ;

- Commune de Dixinn : 21 ufc E.coli, 14 ufc Entérocoques et 65

Coliformes totaux ;

- Commune de Ratoma : 6 ufc E.coli, 2 ufc Entérocoques et 18

Coliformes totaux ;

- Commune de Matoto : 9 ufc E.coli, 4 ufc Entérocoques et 16

Coliformes totaux ;

- Zone périphérique : 9 ufc E.coli, 3 ufc Entérocoques et 15

Coliformes totaux [176].

L’analyse des résultats du laboratoire de la SEG montre bien

non seulement ils ont effectué une analyse sommaire qui est du

reste insuffisante pour apprécier la qualité de l‘eau dans les

stations de productions d’eaux potables ainsi que dans les

châteaux de stockage de ces eaux avant leur distribution à

travers le réseau de distribution dans la ville de Conakry mais

aussi l’inefficacité de traitement et la mauvaise conservation de

ces eaux destinées à l’alimentation des populations de la ville. Il




est à noter que l’augmentation de polluants chimiques et

microbiologiques dans les eaux de robinets provient d’une part

par la vétusté des réseaux et les multiples fuites enregistrées

dans bien de quartiers sans oublier que certains conduits passent

directement dans des fossés ou des canalisations pour

l’évacuation des eaux usées.

Cependant que nous avons obtenu en 2016 sont en dépassement

avec ceux obtenus par le laboratooire de la SEG en 2014. Ceci

peut s’expliquer par la performance des moyens mis à notre

disposition pour les études et le nombre de paramètres étudiés.


des eaux minérales

Qualités physico-chimiques

Du point de vue température, aucun échantillon d’eau minérale

en sachet n’est conforme à la norme de 25°C. Pour la

conductivité électrique, l’eau de 100% est conforme. La TDS de

l’eau de toutes les entreprises productrices d’eaux minérales

varie entre 22 et 368 mg/L1donc inférieur à la norme admise de

1000 mg/L à ne pas dépasser. Ce qui veut dire que l’eau de

toutes les sociétés productrices d’eaux minérales investiguées

est conforme à cette norme. Cependant, le pH de 26,67 % des

échantillons est non conforme. La turbidité de 63% des eaux en

sachet n’est pas conforme. Toutefois, l’eau de 87,5% est douce

et 12,5% est dure. Pour le potentiel d’oxydation, les eaux en

sachet pour les 100% échantillons ont un potentiel redox soit

supérieur soit inférieur à 650 mV. Certainement ce qui explique

les difficultés liées à l’élimination de tous les germes dans ces

eaux.

Nos résultats sont comparables avec ceux trouvés par N’Diaye

Anna en 2008 indiquant que le pH s’est révélé en conformité

avec les normes de l’OMS pour la majorité des sachets d’eau,

tant pour le type industriel que artisanal. Ainsi, 41,96 % des




sachets de type artisanal avaient un pH compris entre 6,5 et 8,5

contre 38,91 % des sachets de type industriel [ ].

Qualités chimiques des eaux minérales

L’eau en sachet des sociétés productrices des eaux minérales est

conforme aux normes de l’OMS pour les Nitrates dans 100%

des cas. La teneur normale en Nitrites existe pour 87,5% des

eaux. Le paramètre Manganèse dépasse la normale dans 100%

des échantillons. L’élément fer est normal dans l’eau de 50%.

L’eau en sachet de 100% des échantillons est conforme aux

normes de 250 mg/L pour les Chlorures. Pour le paramètre

ammonium, 91,67 % des eaux sont conformes.

Les paramètres Fluor et Arsenic sont élevés dans toutes les eaux

minérales. L’arsenic est très dangereux car, l’ingestion de 100 à

150 mg/l est suffisante pour provoquer un empoisonnement

grave. Il a un effet cumulatif dans le corps humain et sa vitesse

de disparition lente peut conduire à des conséquences graves sur

la santé après absorption répétée de faibles doses [84].

Qualités bactériologiques des eaux minérales

Aucun échantillon d’eau minérale provenant des 24 sociétés

productrices d’eaux de boisson ne répond aux normes exigées

pour les bactéries mésophiles aérobies totales (-100 ufc/ml).

Cependant, 95,53% des échantillons ont une contamination

modérée et 4,17% ont une contamination sévère. Pour les

Coliformes totaux, 25% des échantillons sont conformes aux

normes de l’OMS (soit ˂ 10 coliformes totaux/100 ml). Par

contre, 20,83% des eaux de cette source contiennent une

contamination modérée et 54,17% une contamination sévère.

L’eau minérale de 29,17% de l’échantillon est dépourvue de

Coliformes fécaux. Pour les Streptocoques du groupe D, l’eau

minérale de 62,5% correspond aux normes de 0 ufc/100 ml pour

cet indicateur. L’eau de toutes les sociétés productrices des eaux

minérales est dépourvues de spores des bactéries Aérobies




Sulfito-Réductrices et bactéries pathogènes comme les

Salmonella spp.

A noter que des 24 sociétés productrices d’eaux de table, l’eau

de 25% de celles-ci seulement est conforme aux normes

internationales pour les indicateurs étudiés et est par conséquent

considérée comme de l’eau potable c’est-à-dire ne constituant

pas de danger pour la santé de l’homme. La présence des

indicateurs de pollution dans ces sources serait due à

l’inefficacité de traitement.

Nos résultats sont sinilaires à ceux trouvés par certains auteurs.

Les travaux réalisés par N’Diaye Anna en 2008 montrent que

les sachets d’eau de type industriel présentaient 27,83% de

contamination contre 22,17%, tandis que les sachets d’eau de

type artisanal révélaient 29,78% contre 20,22% de cultures

négatives. Ces chiffres importants ont montré que ces eaux ne

sont pas exemptes de microorganismes et qu’en dehors des

germes cibles de l’étude, d’autres germes sont arrivés à

s’infiltrer et à se développer dans ces eaux [180].

En effet, l’analyse microbiologique a permis d’identifier 265

souches de microorganismes, en générale des Coliformes, des

Pseudomonas et des Staphylococcus.

Ces germes sont pour la plupart des commensaux du tube

digestif de l’Homme et des animaux (les coliformes fécaux) et

sont considérés à juste titre comme des indicateurs de

contamination fécale mais aussi des commensaux de la peau et

des muqueuses (Staphylococcus spp. et Pseudomonas spp. qui

selon l’OMS ne devraient exister dans 100ml d’eau de boisson

[183,185, 186].

Ces germes ont prouvé l’existence d’un polymorphisme

bactérien comprenant aussi bien des bactéries pathogènes que




non pathogènes. Cet écosystème bactérien pourrait être le

résultat d’une colonisation des eaux de boisson en sachets par

les bactéries provenant des producteurs et aussi de

l’environnement.

Germes d’origine fécale isolés par type de sachet d’eau Les eaux

en sachet de type artisanal renfermaient en plus de la diversité

des germes, plus de germes d’origine fécale que les eaux en

sachet de type semi industriel.

Cependant, en termes de comparaison, les sachets de type

industriel étaient aussi impropres à la consommation que les

sachets de type artisanal du fait de leur dénominateur commun

qui était la présence de germes traduisant une contamination

fécale, donc une mauvaise qualité bactériologique [181, 182,

184].

Ces résultats peuvent être mis en relation avec le nombre de

candidats à l’ensachage des sachets d’eau de type artisanal qui

est un facteur important en terme de contamination car, plus il y

a de candidats à l’ensachage plus le risque de contamination de

l’eau par les mains est grand [187].

Evaluation de la qualité de l’eau par la PCR

La méthode d’analyses par la PCR pour la recherche des

bactéries pathogènes dans l’eau des sources

d’approvisionnement des populations de la ville de Conakry a

donné les résultats suivants :

Qualités par la recherche des Salmonella spp., Shigella spp.

et Vibrio cholerae dans les eaux de puits

L’analyse par la PCR des eaux de puits des cinq communes de

la ville de Conakry a montré que 26,67% des échantillons des

eaux de puits (15 puits) contiennent des Salmonella spp. et des




Vibrio non O139. Tous les échantillons sont dépourvus de

Shigella spp.

Pour la détermination de la qualité des eaux de puits, 73,33%

des eaux de cette source sont dépourvues de Salmonella spp. et

de Shigella spp., et 26,67% contiennent des Salmonella spp. et

des Vibrio non O139.


et Vibrio cholerae dans les eaux de forages

Il a été démontré que 13,33% des eaux de forages (15 forages)

contiennent de Salmonella spp. Les bactéries pathogènes

Shigella spp. et Vibrio cholerea sont absentes dans 100% des

échantillons.

Du point de vue qualité, 13,33% des eaux de forages ne doivent

pas être utilisées car elles contiennent des Salmonella spp.


et Vibrio cholerae dans les eaux de robinets

Les résultats indiquent que 13,33% des échantillons (l’eau de

robinet de 15 foyers) contiennent des Salmonella spp. et que

Shigella spp. et Vibrio cholerea sont absents dans 100% des

échantillons.

La qualité des eaux de Robinets pour Salmonella spp., Shigella

spp. et Vibrio cholerae montre que 86,67% des eaux de cette

source en sont dépourvues et 13,33% contiennent des

Salmonella spp.


et Vibrio cholerea dans les eaux minérales

Pour les eaux minérales, tous les échantillons sont dépourvus de

Salmonella spp., Shigella spp. et Vibrio cholerae, soit 100%

absents.




CONCLUSION ET RECOMMANDATIONS




CONCLUSION

A la lumière des résultats obtenus, nous pouvons tirer les

conclusions suivantes :

Il ressort de notre étude que sur les 30 puits investigués, l’état

sanitaire de 23% seulement est «« BBoonn »» ccoonnttrree 5500%% «« MMooiinnss

bboonn »» eett lleess «« MMaauuvvaaiiss »» ppuuiittss rreepprréésseenntteenntt pplluuss ddee 2266%% ;;

Si 100% des puits disposent d’un couvercle et 93% d’un puisard

unique ; 83 % sont situés à plus de 15 m des latrines ; cependant

un seul puits est tubé ou bétonné, 50 % des latrines ne sont pas

bétonnées ;

- Si l’eau de 60% des puits est conforme aux normes de l’OMS

pour le paramètre nitrates, la teneur en arsenic dépasse la

normale dans 76,67% des puits, le fluor et les chlorures sont

hors normes respectivement dans 86,67% et 100% des

échantillons d’eau de puits ;

- Le pH de 83,33% de l’échantillon n’est pas conforme, 100% des

eaux sont mi-dures et dures (pas d’eau douce) et 76,67% des

eaux sont troubles;

- La température, la conductibilité, la dureté et le potentiel redox

sont hors normes pour 100% des échantillons d’eau de forage

investigués ;

- Le pH de 60% des eaux de forages est hors normes et 70% de

ces eaux sont troubles ;

- Si 83% des eaux de forages sont conformes pour les Nitrates et

76,67% pour les Nitrites, l’eau de 90% est hors norme pour le

fluor, 50% pour l’Ammonium et Arsenic 96,67 %;

- L’eau de 100% des Robinets est dure, le Potentiel redox hors

normes, 66,67% trouble et les substances dissoutes représentent

80% de dépassement;

- Si les paramètres Nitrates, Nitrites, Manganèse, Chlorures et Fer

sont conformes aux normes, cependant 50% et 80%

respectivement pour l’Arsenic et le Fluor sont hors normes pour

les eaux de Robinet;




- 63% des eaux minérales sont troubles et 26% ont un pH hors

normes ;

- Les indicateurs Fluor et Arsenic sont hors normes

respectivement dans 100% et 95,83% des eaux minérales;

- L’eau de tous les puits renferme une grande quantité de la

FMAT, de Coliformes totaux, de Coliformes fécaux,

d’Entérocoques, de spores bactéries ASR et 30% de Salmonella

spp. ;

- L’eau de tous les forages renferme une grande quantité de la

FMAT, de Coliformes totaux, de Coliformes fécaux,

d’Entérocoques, de spores de bactéries ASR et 13% de

Salmonella spp. ;

- L’eau de tous les Robinets investigués renferme une forte

quantité de la FMAT avec 86,67% de présence de Coliformes

totaux, 73% de présence de Coliformes fécaux, 76,67%

d’Entérocoques, 96,67 de spores de bactéries ASR et 13% de

Salmonella spp. ;

- L’eau de toutes les sociétés productrices d’eaux minérales

renferme une importante quantité de la FMAT, la présence de

75% de Coliformes totaux, de plus 70% de Coliformes fécaux,

de 37,7% d’Entérocoques, et absence dans 100 % des

échantillons de spores de bactéries ASR et de Salmonella spp. ;

- Aucun échantillon d’eaux de puits, de forages, de Robinets ne

répond aux normes d’eau potable, par contre, 25% des eaux

minérales peuvent être considérées comme de l’eau potable ;

- Les résultats de l’analyse par la PCR des eaux de 15 Puits, de 15

Forages, de 15 Robinets et de 15 Sociétés productrices d’eaux

minérales pour la recherche des Salmonella spp., Shigella spp. et

Vibrio cholerae sont les suivants : 26,67% des puits contiennent

des Salmonella spp. et des Vibrio non O139, 20% des forages

contiennent des Salmonella spp., 20% des eaux de Robinets

contiennent des Salmonella spp. et toutes les eaux minérales

sont exemptes de ces bactéries pathogènes ;




- Tous les échantillons contenant Salmonella spp. lors de

l’analyse bactériologique ont été confirmés par l’analyse

moléculaire par la PCR ;

- La forte présence de la FMAT, des coliformes, des

Entérocoques (Streptocoques de groupe D), des spores des

bactéries ASR, dans les eaux analysées de puits, de forages et

de robinets indique que l’eau de ces sources ne peut pas être

considérée comme de l’eau potable ;

- La contamination des eaux des sources d’approvisionnement

augmente considérablement pendant la saison des pluies pour

certains indicateurs de pollution;

- La présence dans certaines eaux minérales d’une importante

quantité de la FMAT et les autres indicateurs de pollution

indique l’inefficacité de traitement de ces dernières ;

- La contamination de ces sources d’eau est liée aux facteurs

exogènes principalement la perméabilité du sol de Conakry pour

les puits et forages, la vétusté des conduits, les nombreuses

fuites enregistrées sur des conduits domestiques et le passage de

certains dans des caniveaux recevant des eaux usées pour les

eaux de distribution centralisée ;

- La pollution des eaux des sources d’approvisionnement de la

ville de Conakry est liée au non-respect des conditions

d’hygiène publique (individuelle et collective), l’insuffisance de

traitement et le mauvais entretien des châteaux d’eaux et des

canalisations de la SEG ;

- Il existe une corrélation significative négative entre l’état

sanitaire des puits et le Coli-index;

- Les eaux de puits sont les plus polluées, suivies par celles des

forages et des robinets. Les eaux minérales sont les moins

polluées des sources d’eaux à Conakry.

RECOMMANDATIONS

Eu égard aux résultats obtenus, nous recommandons :




- Les résultats obtenus représentent des données utiles pour les

autorités guinéennes, les services de santé et les partenaires au

développement qui doivent prendre toutes les mesures

nécessaires pour traiter d’une manière efficace l’eau de ces

sources afin de diminuer les risques de maladies d’origine

hydrique ;

- Amélioration des structures d’approvisionnement en eau

potable et sensibilisation des populations pour un changement

de comportement, c’est à dire l’assimilation et le respect des

règles d’hygiène. Pour cela un programme d’Information,

d’Education et de Communication en direction des populations

pour la préservation de la qualité de l’eau depuis les sources

d’approvisionnement jusqu’à la consommation est

indispensable. Car une eau potable contaminée peut rendre

malade et peut même être mortelle;

- Amélioration de l’état des puits et entretenir leur environnement

de façon appropriée, car la qualité de l'eau d'un puits dépend de

la propreté de son environnement ;

- Suppression des sources de contamination et les possibilités

d'infiltration des eaux de ruissellement et de pénétration des

petits animaux dans les puits;

- Traiter l’eau des puits avant la consommation (p.ex., le

chauffage ou la chloration) ;

- Amener les Autorités (administratives et politiques) des cinq

communes de Conakry à prendre des mesures pour le traitement

de tous les puits (nettoyage et désinfection). Il est essentiel de

supprimer les causes possibles de contamination avant de

procéder à la désinfection, la pollution risquant de réapparaître

lorsque l'action des produits désinfectants cessera ;

- Amener les populations à analyser les eaux de puits et de

forages au moins une fois par an pour déceler toute présence de

contamination bactérienne. La fréquence pouvant être adaptée

en fonction des risques de contamination, des mesures de




protection prises et des résultats des analyses. Les résultats

d’analyses donnent la qualité de l’eau au moment du

prélèvement. Ils ne peuvent en aucun cas garantir la pérennité de

cette qualité ;

- Construction des puits selon les normes admises pour les puits

traditionnels individuels. Le choix approprié du site,

l’emplacement, la construction et l’entretien du puits

permettront de réduire la possibilité de contamination

microbienne et chimique de l’eau;

- Améliorer l’accessibilité à l’eau potable en créant des points

d’eaux potables ou en revitalisant les réseaux de distribution

publique. Assurer que les eaux produites dans les stations de

production gardent leur qualité jusque dans les foyers en

supprimant toutes les causes de contamination de celles-ci

durant leur stockage dans les châteaux d’eaux et leur transport ;

- Aménager des canaux d’évacuation des eaux usées et améliorer

les performances des structures de gestion de l’eau et de

l’assainissement en renforçant les capacités des PME de

ramassages et de collectes des ordures ;

- Améliorer la participation des communautés à une meilleure

gestion de l’eau ;

- Contrôler et réglementer les sociétés productrices d’eaux

minérales en Guinée;

- Identifier et répertorier tous les puits et forages dans la ville de

Conakry;

- Rendre fonctionnel les agents de la salubrité publique ;

- Organiser des séminaires-ateliers de formation des services

communaux d’assainissement pour accroître leur performance

sur la problématique de gestion, de l’hygiène et de

l’assainissement des communes de Conakry;

- Soumettre à l’approbation de l’autorité la réalisation des forages

dans toutes les villes à forte agglomération humaine comme

Conakry;




- Susciter chez les dirigeants l’adoption d’une politique

d’assainissement adaptée dans les communes urbaines.

- Mettre en place un observatoire de l’eau au niveau de la ville de

Conakry.




REFERENCES BIBLIOGRAPHIQUES




[1] Sakouvogui et al. « Etude sur la diarrhée » : Cornell

University pour le Ministère de la Santé. République de Guinée,

Conakry, 1992, p. 10-30.

[2] Bchitou R., : « Le suivi des métaux lourds dans les eaux et

les sédiments du moyen Sebou : Elaboration d’un plan

d’expérience afin d’éliminer le chrome », Thèse d’Etat, Faculté

des Sciences Université Mohammed V-Agdal Rabat. 2001.

[3] Montgomery J. Water Treatment Principles and Design.

John Wiley & Sons, ISBN 0-471-04384-2, USA, 1985.

[4]United Nations Development Program/http://

www.inegalites.fr/spip.php?article1225&id_groupe=20&id_mot

=128

[5] Rapport OMD 2015

[6] Bosca C., 2002. Groundwater law and administration of

sustainable development. Mediterranean Magazine, Science,

Training and Technology 2 : 13-17. 2002

[7]Boutin C., 1987. L’eau des nappes phréatiques superficielles,

une richesse naturelle vitale mais vulnérable. L’exemple des

zones rurales du Maroc. Sc. De l’eau 6 (3) : 357-365. (Boutin,

1987)

[8] Danielopol, D.L., Gibert, J., Griebler, C., Gunatilaka, A.,

Hahn, H.J., Messana, G., Notenboom, J. & Sket, B. Incorporat

ing ecolo- gical perspectives in European groundwater

management policy. Environmental Conservation 31: 1-5. 2004

[9] http://www.hydroecologie.org: Faune aquatique et qualité de

l’eau des puits et sources de la région d’Oum-El-Bouaghi (Nord-

Est Algérien)

[10] UN-Water. L’eau dans un monde qui change. 3ème

Rapport

mondial des nations unies sur la mise en valeur des ressources

en eau, 2015.

[11] Lamrini B., Le Lann M-V., Benhammou A., Lakhal K.,

Detection of functional states by the “LAMDA” classification

http://www.hydroecologie.org/




technique: application to a coagulation process in drinking water

treatment. Elsevier, C.R.Physique 6 pp1161-1168, 2005.

[12] Sipos P., T. Németh , I. Moha i et I. Dodon y, 2005. Effect

of soil composition on adsorption of lead as reflected by a study

on a natural forest soil profile. Geoderma., 124, 363‑374.

[13] Covelo E.F., N. Álvarez , M.L. Andrade Couce , F.A. Vega

et P. Marcet, 2004. Zn adsorption by different fractions of

Galician soils. J. Coll. I. Sci., 280, 343‑349;

[14] Costa J.L., H. Massone , D. Mart inez , E.E. Suero , C.M.

Vidal et F. Bed mar , 2002. Nitrate contamination of a rural

aquifer and accumulation in the unsaturated zone. Agric. Water

Manage., 57, 33‑47.

[15] Hadas A, B. Saving et N. Haru vy (1999). Agricultural

practices, soil fertility management modes and resultant nitrogen

leaching rates under semi-arid conditions. Agric.Water Manage.,

42, 81‑95.

[16] Patni N.K., L. Masse , et P.Y. Jui (1998). Groundwater

quality under conventional and no-tillage. Part I. Nitrate

electrical conductivity and pH. J. Environ. Qual., 27, 869‑876 ;

[17] Trabelsi R., M. Zairi et H. Ben Dhia (2007).Groundwater

salinisation of the Sfax superficial aquifer.Hydrogeol. J., 15,

1341‑1355 ;

[18] Krapac et al., 2002. Bassin d'oued Serrat : terrils et rejets

domestiques, reconnaissance des métaux lourds et polluants,

impact sur les eaux souterraines (nord-ouest de la Tunisie) ;

[19] http://id.erudit.org/iderudit/1006109ar: « Bassin d'oued

Serrat : terrils et rejets domestiques, reconnaissance des métaux

lourds et polluants, impact sur les eaux souterraines (nord-ouest

de la Tunisie)

[20] http://www.hydroecologie.org: Faune aquatique et qualité

de l’eau des puits et sources de la région d’Oum-El-Bouaghi

(Nord-Est algérien)

http://id.erudit.org/iderudit/1006109ar

http://www.hydroecologie.org/




[21] Georges Perdo : Livre. Cycles Biogéochimiques et

Ecosystèmes Continentaux, 64-65.

[22] Morel R., (1996). Les sols cultivés, Eds Lavoisier, 378p.

[23] Golterman H. L., De Groot C. J., Annls Limnol., 1994.

Nouvelles connaissances des formes du phosphate,

conséquences sur le cycle du phosphate dans les sédiments des

eaux douces peu profondes, 30 (3), 221-232.

[24] Bostrom B., Andersen J. M., Fleischer S., Janssen M.,

(1988). Exchange of phosphorus across the sediment-water

interface, Hydrobiologia, 170, 229-244.

[25] Leroux E., Fehri A., Dorioz J. M., Blanc P., 1987.

Contribution à l'étude des échanges de phosphore entre l'eau et

les sédiments dans un système fluviolacustre. Sciences de l’eau,

6, 97-106.

[26] Martin G., Ed. Technique et Documentation, Lavoisier,

Paris, 3. 1987.

[27] Golterman H. L., Slyp G., Thomas R. L., 1982. Unesco,

231.

[28]République de Guinée : Ministère délégué à

l’Environnement, Eaux et forêts : Politique nationale de

l’environnement-2011.

[29]http://www.lenntech.fr/eaux-souterraines/pollution-

sources.htm

[30] Benzizoune S., Nassali H. et Srhiri A., 2004. Etude de la

cinétique d’adsorption du phosphore en solution sur les

sédiments du lac Fouarat au Maroc, Larhyss Journal, ISSN

1112-3680, n° 03, 171-184.

[31] Bchitou R.,« Le suivi des métaux lourds dans les eaux et les

sédiments du moyen Sebou : Elaboration d’un plan d’expérience

afin d’éliminer le chrome », Thèse d’Etat, Faculté des Sciences

Université Mohammed V-Agdal Rabat. 2001.

[32] BARRY, Mamadou Samba: Participation Communautaire à

la Gestion Durable des Ressources en Eau en Guinée (Conakry).

Mémoire de DEPA. Alexandrie (Egypte), 2005.




[33] Lijklema, L., (1980). Interaction of orthophosphate with

Iron and aluminium hydroxydes. Enviro. Sci. Technol., 14, 537-

541.

[34] Boers P.C.M. & Vanhese O., (1988). Phosphorus release

from the pealy sediments of Loosdrecht lakes (The

Netherlands), Wat. Res., 22, 355-363.

[35] Leroux E., Fehri A., Dorioz J. & Blanc P., 1987.

Contribution à l’étude des échanges de phosphore entre l’eau et

les sédiments dans un système fluviolacustyre, Sciences de

l’eau, 6, 97-106.

[36]Boers, P.C.M., (1991). The influence of pH on phosphate

release from lake sediments. Wat. Res., 25, 309-311.

[37]Bostrom B., (1984). Potentiel mobility of phosphorus in

different types of lake sediment. Int. Rev. Ges. Hydrobiol., 69,

457-474.

[38] Marcia. H. & Neafus. J.E., (1980). Phosphorus release from

sediments from lake carl Blackwell. Oklahoma. Wat. Res., 14,

1477-1481.

[39]Massad R.S., 2009. Le point de compensation stomatique de

l’ammoniac : Comprendre et modéliser la relation au

métabolisme azote de la plante. Thèse de Doctorat, Université

Pierre et Marie Curie.

[40]Mojtahid M., 2007. « Les foraminifères benthiques : bio-

indicateurs d’eutrophisation naturelle et anthropique en milieu

marin franc », Thèse de Doctorat, Université d’Angers.

[41] Bliefert C. and Perraud R., 2001. Chimie de

l'environnement: Air, Eau, Sols, Déchets. Paris, Université De

Boeck, 477p.

[42] Zgheib S., 2009. « Flux et Sources des Polluants

Prioritaires dans les eaux urbaines en lien avec l’usage du

territoire », Thèse de Doctorat de l’école Nationale des Ponts et

Chaussées.




[43] 2ème Colloque International sur Chimie, Environnement et

Développement Durable, Faculté des Sciences de Rabat (20 et

21 Octobre 2011).

[44] Direction des Études et des Prévisions Financières,

Ministère des Finances et de la Privatisation : « Schéma de

développement des régions économiques du Maroc » (2006).

[45] Fatah N., Bahij J., Bchitou R., Bouhaouss A., 2007.

Epuration des eaux usées par lagunage en vue d’élimination des

composés phosphorés par usage de l’ACP, Phys. Chem. News,

38, 78-83.

[46]Galaf F. & Ghannam S., 2003. « Contribution à

l’élaboration d’un manuel et d’un site web sur la pollution du

milieu marin », mémoire de troisième cycle, Institut

Agronomique et Vétérinaire Hassan II, Rabat.

[47] Rapport sur l’état de l’environnement du Maroc,2001,

Ministère de l’Aménagement du Territoire, de l’Eau et de

l’Environnement, Royaume du Maroc.

[48] Corvaglia A.R., 2006. « Rôle des résidus d’antibiotiques

dans les environnements hydriques sur la sélection et la

diffusion de bactéries résistantes des genres Aeromonas,

Acinetobacter et Legionella », Thèse de Doctorat, Faculté des

Sciences de l’Université de Genève-Suisse.

[49] Merhi M., 2008. « Etude de l'impact de l'exposition à des

mélanges de pesticides à faibles doses : caractérisation des effets

sur des lignées cellulaires humaines et sur le système

hématopoïétique murin », Thèse de Doctorat, Université de

Toulouse. 2008.

[50] IFEN : Les pesticides dans les eaux, bilan des données

2003 et 2004. Rapport technique les dossiers 5, Institut Français

de l’Environnement.2006.

[51] Becking G.C., 1998. The effect of essentiality on risk

assessment. Biological Trace Element Research, 66, 423-438.




[52] He ZL., Yang XE., Stoffella PJ., 2005. Trace elements in

agroecosystems and impacts on the environment. Journal of

Trace Elements in Medicine and Biology, 19, 439-448.

[53] Mohammed F., Bchitou R., Nachid N., Bouhaouss A.,

(2011). Effects of phosphoric acid, cadmium and chromium on

the growth of argan trees, Phys. Chem. News 57, 128-134.

[54] Satoh M., Koyama H., Kaji T., Kito H., Tohyama C.,

(2002). Perspectives on cadmium toxicity research, Tohoku

Journal of Experimental Medicine, 196, 23-32.

[55] Tchounwou P.B., Ayensu W.K., Ninashvili N., Sutton D.,

(2003). Environmental exposure to mercury and its

toxicopathologic implications for public health, Environmental

Toxicology. 18, 149-175.

[56] Perrondon B., Paramètres de la qualité des eaux-Ministère

de l’Environnement, Direction de prévention des Pollutions,

France, 2ème édition, 259p.

[57] Papanikolaou N.C., Hatzidaki E.G., Belivanis S.,

Tzanakakis G.N. and Tsatsakis A.M., (2005). Lead toxicity

update, A brief review. Med. Sci. Monitoring, 11, 329-336.

[58] Pagotto C., (1999). « Etude sur l'émission et le transfert

dans les eaux et les sols les éléments traces métalliques et des

hydrocarbures en domaine routier », Thèse de Doctorat,

Université de Poitier.

[59] Valeurs de références ou valeurs guides. ANTEA, (2000).

[60] Karg F., (2001). Sites polluée par les métaux lourds ; les

pollutions les plus anciennes, Environnement et Technique, 212,

91-96.

[61] Evaluation mondiale du mercure, programme des nations

unies pour l’environnement substances chimiques, Genève,

Suisse décembre 2002, 39-42.

[62] Koppe.P. Investigation of the Behavior of Waste Water

Constituents From Metal-Working Industries in the Water Cycle




and Their Influence on Drinking Water Supply (in German).

GWF-Wasser/Abwasser, 114, 1973, pp.170 -175

[63] Decroot A. J., Degoeij J.J.M., Zengers, C., (1971). Contents

and behaviour of mercury as compared with other heavy metals

in sediment from the river Rhine and Ems. Geologie en

Mijnbouw, 50, 393-398.

[64] Bowen W. S., Steel K. F., (1975). Relation of lead

mineralisation and bottom sediment composition of streams,

Punca Boxley District, Arkansas Proc. Arcansas, Acad.Sci., 29,

24-26.

[65] Forstner U. And Wittmann G.T.W., (1981). Metal pollution

in aquatic environnement. Ed. Springer Verlag. 486p.

[66] Wood J.M., (1973). Metabolic cycles for toxic elements in

aqueous systems. Rev. Int. Oceanogr. Med. 31/32, 7-17.

[67] Taylor S.R., McLennan S.M., (1985). The continental crust

its composition and evolution, Blackwell Scientific Publications,

Oxford, 312.

[68]MEEO (Ministère de l’Environnement et de l’Energie de

l’Ontario), Qualité des sols, 8p.1995.

[69] Coynel A., Schäfer J., Hurtrez JE., Dumas J., Etcheber H.,

Blanc G., (2004). Sampling frequency and accuracy of SPM

flux estimates in two contrasted drainage basins. Science of the

Total Environment, 330, 233-247.

[70] Mosser Ch., (1980). « Etude géochimique de quelques

éléments traces dans les argiles des altérations et des sédiments

», Thèse de Doctorat, Strasbourg, ULP, 222 p.

[71] Kemmer N.F., (1984). Manuel de l’eau Technique et

Documentation (Lavoisier).

[72] Gaujous D., (1995). La pollution des milieux aquatiques,

aide-mémoire, Paris, 40-183.

[73] Wedepohl KH., (1995). The composition of the continental

crust, Geochimica et Cosmochimica Acta, 59, 1217–1232.




[74] Loredo J., Ordóñez A., Álvarez R., (2006). Environmental

impact of toxic metals and metalloids from the munon cimero

mercury-mining area (Asturias, Spain). Journal of Hazardous

Materials, 136 (3), 455-467.

[75] Deneux-Mustin S., Roussel-Debet S., Mustin C., Henner P.,

Munier-Lamy C., Colle C., Berthelin J., Garnier-Laplace J.,

Leyval C., (2003). Mobilité et transfert racinaire des éléments en

traces : influence des micro-organismes du sol. TEC & DOC,

Lavoisier, Paris 91-98.

[76] Gonzalez J.L., Dange C. & Thouvenin B., (2001).

Spéciation des contaminants métalliques en milieu estuarien :

Intérêt de la modélisation et application au cadmium,

Hydroécologie Appliquée, 13, 37-55.

[77] Gonzalez J.L., Thouvenin B., Dange C., Fiandrino A., and

Chiffoleau J.F.,

(2001). Modeling of Cd speciation and dynamics in the Seine

estuary (France), Estuaries, 24 (6B), 1041-1055.

[78] Fawell J.K. and Hunt S., (1988). Environmental toxicology:

Organic pollutants, Ellis Horwood Ltd, Chichester.

[79]Water Treatment Solutions http://www.lenntech.fr/data-

perio/cd.htm

[80] Diallo B., (1996).Analyse et contrôle de la pollution des

eaux du fleuve Niger par les rejets liquides urbains et industriels

du district de Bamako, Mémoire DEA de Biologie, Ensup

Bamako.

[81]Wissenschaftlich-Technische Werkstätten GmbH · Dr.-

Karl-Slevogt-Straße 1 · D-82362 Weilheim · Allemagne.

http://www.wtw.com/

[82] Environnement Canada, Références sur la qualité des eaux,

Guide des paramètres de la qualité des eaux, (1980).

[83] Procédés reconnus destinés au traitement de l’eau potable,

Office fédéral de la santé publique (OFSP), (2010)/

www.publicationsfederales.admin.ch




[84] www.basse-normandie.developpement-durable.gouv.fr

[85] Abdellaoui A., (1990). « Contribution à l’étude de la

pollution des cours d’eau marocains par les métaux lourds - cas

de l’oued Boufekrane -», Thèse, Faculté des sciences de

Meknès, Université Moulay Ismail.

[86] Pesson P., (1976). La pollution des eaux continentales.

Indice sur les biocénoses aquatiques – Gauthier-Villars, Bordas,

Paris.

[88]OMS/UNICEF- Rapport sur l’évaluation de la situation

mondiale de l’approvisionnement en eau et de l’assainissement

en 2000.

[89]Ministère de la santé : Bulletin santé pour tous – Conakry,

N°9, p.8– 9. 1999.

[90]Awwa Committee Report. “Emerging pathogens —

bacteria”. J. Am. Water Works Assoc., 1999, 91(9), p. 101–109.

[91]Barraque B. Angleterre, Allemagne, France: Trois modèles

de gestion de l'eau. In « Le grand livre de l'eau, la Manufacture

de la Cité des Sciences et de l'industrie », 1990, p. 255.

[92]Gugnani H.C. “Some emerging food and water borne

pathogens”. J. Communicable Dis., 1999, 31, p. 65–72.

[93]American Public Health Association/American Water

Works Association/Water Pollution Control Federation

« Standard methods for the examination of water and

wastewater: Recommandations pour la qualité de l’eau potable

au Canada »: 20e édition, Washington, 1998.

[94]Clark, J.A. et Vlassoff, L.T. « Relationships among

pollution indicator bacteria isolated from raw water and

distribution systems by the presence-absence (P-A) test». Health

Lab. Sci., 1973, 10, p.163-172.

[95]Comlanvi F. M., ‘’Amélioration de la qualité des eaux des

puits dans la ville de Cotonou : cas de quelques quartiers’’ pp -

78 . Mémoire : Aménagement, Protection de l’environnement :

Abomey- Calavi : CPU : 1994

http://www.basse-normandie.developpement-durable.gouv.fr/




[96] www.santetropicale.com

[97]www.waternunc.com

[98]El-Sherbeeny M.R. et al. “Comparison of gauze swabs and

membrane filters for isolation of Campylobacter spp. from

surface water”. Appl. Environ. Microbiol., 1985, 50, p. 611-614.

[99]UICN (Union internationale pour la conservation de la

nature et des ressources naturelles). « Vision pour l’eau et la

nature ». - Dans : Stratégie mondiale de conservation et de

gestion durable des ressources en eau au XXIe siècle. 2000.

[100]Organisation mondiale de la santé. « Normes

internationales pour l’eau de boisson ». 3e édition. – Genève,

1971.

[101]Goodman, K.J. et al. « Helicobacter pylori infection in the

Colombian Andes: A population-based study of transmission

pathways ». Am. J. Epidemiol., 1996, 144, p.290–299.

[102]Jacobs, N.J., et al. « Comparison of membrane filter,

multiple-fermentation-tube, and presence–absence techniques

for detecting total coliforms in small community water

systems”. Appl. Environ. Microbiology, 1986, 51, p. 1007–

1012.

[103]Labinskaya A.S. « Microbiologie et techniques de

recherches bactériologiques ». – Moscou : Edition

« Médecine », 1978, 392 p.

[103]Organisation mondiale de la santé. « Directives de qualité

pour l’eau de boisson ». Deuxième édition. - Genève, 1995, 1, p.

197.

[104]Edberg, S.C., Allen, M.J., Smith, D.B. “National field

evaluation of a defined substrate method for the simultaneous

detection of total Coliforms and Escherichia coli from drinking

water: comparison with presence-absence techniques”. Appl.

Environ. Microbiol., 1989, 55, p. 1003-1008.

http://www.santetropicale.com/

http://www.waternunc.com/




[105]Lisicina J.P., Kopita N.Y. « Guide des travaux pratiques de

l’hygiène sociale et de l’organisation de la santé publique ». –

Moscou : Edition « Médecine », 1984, 400 p.

[106]Chouvalova E. « Les maladies tropicales ». Moscou :

Edition « Mir », 1984, p. 311.

[107] Eau en Guinée : Centre d’Observation, de Surveillance et d’Information

Environnementales (COSIE), 2013.

[108] République de Guinée-Ministère de l’Economie et des

Finances- document de stratégie de réduction de la pauvreté

(2011-2012), 2011.

[109] Eau urbaine-République de Guinée, 2015.

[110] Ministère de l’énergie et de l’environnement- Programme

national intégré pour la gestion rationnelle des produits

chimiques et la mise en œuvre de SAICM en République de

Guinée, 2011.

[111]République de Guinée : Ministère délégué à

l’Environnement, Eaux et forêts- Politique nationale de

l’environnement-2011.

[112] Atelier sur les statistiques environnementales pour la zone

CEDEAO- Dakar- Situation des statistiques environnementales

en République de Guinée- 2005

[113]http://www.who.int/countryfocus/cooperation_strategy/ccs

brief_gin_fr.pdf

[114] La Politique et Stratégie Nationale de gestion des

ressources en eau : Élaboration de la politique de

l’environnement (PNE)-République de Guinée, 2011. p12-13.

[115] Rapport du Cadre de gestion environnementale et sociale

en République de Guinée, 2012. pp21

[116] Guinée - Enquête Intégrale sur les conditions de vie des

ménages (Avec module Budget et Consommation), 2012

(http://www.stat-guinee.org/nada/index.php/catalog/13)

[117] Rapport : Etude sur le rôle des politiques du secteur de

l’eau dans la Stratégie de Réduction de la Pauvreté (SRP) en

Guinée, 2006.

http://www.who.int/countryfocus/cooperation_strategy/ccsbrief_gin_fr.pdf

http://www.who.int/countryfocus/cooperation_strategy/ccsbrief_gin_fr.pdf

http://www.stat-guinee.org/nada/index.php/catalog/13




[118] BARRY, Mamadou Samba: Participation Communautaire

à la Gestion Durable des Ressources en Eau en Guinée

(Conakry). Mémoire de DEPA. Alexandrie (Egypte), 2005.

[119] CAMARA, Mamadou: L’évolution des 56 indicateurs de

suivi-évaluation de la Stratégie de Réduction de la Pauvreté

(SRP) en Guinée. Conakry, 2005.

[120] MP/DNS/DD: Enquête démographique et de santé.

Conakry, 1999.

[121] DIALLO El H. M. Aliou et BALDE El Ciradiou: Etat de

la prise en compte d’Action 21 (eau et assainissement). RIO+10.

Conakry, 2002.

[122] Rapport final : Etude sur le rôle des politiques du secteur

de l’eau dans la Stratégie de Réduction de la Pauvreté (SRP) en

Guinée, 2006.

[123] Celinas Yves. « Analyse de la qualité de l’eau de

consommation dans les quartiers de Bonfi et de Hafia

mosquée ». Ministère de la Santé de la République de Guinée.

Conakry, 1992, p. 220. 5

[124] PNUD- Rapport mondial 2006 « Au delà de la pénurie :

Pouvoir, Pauvreté et Crise mondiale de l’eau. »

[125] www.reseaucrepa.org/forum

[126] Ministère de la santé publique- Rapport sur le choléra : du

1er

janvier au 30 octobre 2006.

[127] www.msf.fr /activites/cholera : Action humanitaire : Quels

liens entre l'eau, l'assainissement, l'hygiène et la santé

[128] Rapport d’activités de l’Institut Pasteur de Guinée, Kindia,

République de Guinée, 2004, P.9.

[129] Kiki Migan E. L. V La problématique de la gestion des

déchets dans les mégalopoles africaines et perspectives d’avenir

: cas de la ville de Cotonou - 90 p. Thèse : Médecine : Cotonou :

1993, 569.

[130] OMS/UNICEF 2000- Commission sur le développement

durable (Commission for Sustainable Development, CSD).

http://www.reseaucrepa.org/forum




2002.10e session. Global water supply and sanitation

assessment, 2000 report. New York.

[131]Diallo, Mme Halimatou Tandéta. « Participation des

femmes à la protection de l’environnement. Etude de cas-gestion

des ordures ménagères : expérience française et perspective

d’application en Guinée ». Egypte, 1997 p. 23.

[132] www.city.ottawa.on.ca/city_services/water

[133]http://tpe-jouaud-protain-ribac.e-monsite.com/pages/ii-la-

potabilisation-de-l-eau.html

[134]https://www.google.com/search?q=conakry+carte+quartier

sconakry.blog.free.fr

[135]Rapport de l'étude préparatoire pour le projet

d’amélioration de l’approvisionnement en eau potable de la

partie centrale en hauteur de la ville de Conakry en République

de Guinée, 2014.

[136] http://fr.wikipedia.org/wiki/Conakry, 2016

[137]Boubacar Sow, Mémoire de diplôme de fin d’études

supérieures, « Modèle physico-géologique de certains types de

croute d’altération » IPGAN 1979.

[138]Lisicina J.P., Kopita N.Y. « Guide des travaux pratiques de

l’hygiène sociale et de l’organisation de la santé publique ». –

Moscou : Edition « Médecine », 1984, 400 p. 23.

[139] Moussa Ouedraogo, « Assainissement autonome », janvier

1997, pp 33-35.

[140]L’information du Technicien Biologiste : Revue

internationale d’informations scientifiques et techniques. - Paris,

1989, tome 2, N°4, p. 123 – 129.

[141] Le Potentiel d’Oxydoréduction (POR) : Un nouvel outil

pour évaluer la qualité de l’eau, Hybrid A Genetic Company.

[142] Keleke S. Marin Vi, Heib S. Hanus J. Lebeau M. Wolf R.,

Les eaux de puits à Point Noire (Congo) et ses environs :

Qualité physico-chimique et bactériologique. Essai de traitement

par chloration. 2010

http://www.city.ottawa.on.ca/city_services/water

http://tpe-jouaud-protain-ribac.e-monsite.com/pages/ii-la-potabilisation-de-l-eau.html

http://tpe-jouaud-protain-ribac.e-monsite.com/pages/ii-la-potabilisation-de-l-eau.html

https://www.google.com/search?q=conakry+carte+quartiersconakry.blog.free.fr

https://www.google.com/search?q=conakry+carte+quartiersconakry.blog.free.fr

http://fr.wikipedia.org/wiki/Conakry




[143] Cyriaque D., Michel M., Edgard-Marius O., Benjamin F.

et Christophe De B. «La qualité de l’eau de puits dans la

commune d’Abomey-Calavi au Bénin », 2008

[144] Aissi M. J. Impacts des déchets domestiques sur la qualité

de la nappe phréatique à Cotonou. - 69 p. Mémoire :

Aménagement, Protection de l’environnement: Abomey-Calavi :

CPU: 1992.

[145] Danielle Gaudreau et Marlène Mercier : la contamination

de l'eau des puits privés par les nitrates en milieu rural, 1998.

[146] C. Degbey 1, 3*, M. Makoutode 2, E. M. Ouendo 2 et C.

De Brouwer « Pollution physico-chimique et microbiologique

de l’eau des puits dans la Commune d’Abomey-Calavi au Bénin

en 2009 »

[147] Jaouad El Asslouj, Sanae Kholtei, Namira El Amrani-

Paaza et Abderrauf Hilali Revue des sciences de l'eau / Journal

of Water Science, vol. 20, n° 3, 2007, p. 309-321. (« Impact des

activités anthropiques sur la qualité des eaux souterraines de la

communauté Mzamza (Chaouia, Maroc) »)

[148] Ammar Mlayah, Eduardo Anselmo Ferreira Da Silva,

Nouri Hatira, Salah Jellali, Fethi Lachaal, Abdelkrim Charef,

Fernando Noronha et Chedly Ben Hamza- Revue des sciences

de l'eau / Journal of Water Science, vol. 24, n° 2, 2011, p. 159-

175. « Bassin d'oued Serrat : terrils et rejets domestiques,

reconnaissance des métaux lourds et polluants, impact sur les

eaux souterraines (Nord-Ouest de la Tunisie) »

[149] www.bape.gouv.qc.

[150]Volovskaïa M. « Epidémiologie et notions sur les maladies

contagieuses » Moscou : Edition « Mir », 1979, p. 320.

[151] Kassim Coulibaly : Etude de la qualité physico-chimique

et bactériologique de l’eau des puits de certains quartiers du

district de Bamako, 2005.




[152] Chippaux J.-P., Houssier S., Gross P., Bouvier C.,

Brissaud F.- Etude de la pollution de l’eau souterraine de la ville

de Niamey, Niger. Bull Soc Pathol Exot, 2002, 95 : 119-123.

[153]M. Nola, T. Njine, V. F. Sikati et E. Djuikom : Distribution

de Pseudomonas aeruginosa et Aeromonas hydrophila dans les

eaux de la nappe phréatique superficielle en zone équatoriale au

Cameroun et relations avec quelques paramètres chimiques du

milieu. »)- Revue des sciences de l'eau / Journal of Water

Science, vol. 14, n° 1, 2001, p. 35-53.

[154]Nature vol.387- World water vision:

makingwatereverybody’s business. Londres, Conseil mondial de

l’eau, Earthscan Publications Ltd. Costanza, R. ; d’Arge, R. ; de

Groot, R. ; Farber, S. ; Grasso, M. ; Hannon, B. et al. 1997. «

The value of the world’s ecosystem services and natural capital

». p. 253-60.

[155] Bolduc, S., M. Larocque et G. Prichonnet

(2006).Vulnérabilité de l’eau souterraine à la contamination par

le nitrate sur le bassin versant de la rivière Noire (Montérégie,

Québec). Rev. Sci. Eau, 19, 87-99

[156]Marie Larocque et Marie-Claude Pharand : Revue des

sciences de l'eau / Journal of Water Science, vol. 23, n° 1, 2010,

p. 73-88. « Dynamique de l’écoulement souterrain et

vulnérabilité d’un aquifère du piémont appalachien (Québec,

Canada) »

[157] www.techmicrobio.net

[158]Plusquellec A. « Les eaux » : Dans « Le contrôle

microbiologique des matières premières et des produits ». –

France, 1995, p. 327 – 334.

[159] Costa J.L., H. Massone , D. Mart inez , E.E. Suero , C.M.

Vidal et F. Bed mar (2002). Nitrate contamination of a rural

aquifer and accumulation in the unsaturated zone. Agric. Water

Manage., 57, 33‑47, Argentine.




[160] Saâdia BRICHA, Khadija OUNINE,Saïd Oulkheir,

Nourredine EL HALOUI, et Benaissa ATTARASSI, 2007 :

Etude de la qualité physicochimique et bactériologique de la

nappe phréatique M’nasra (Maroc).

[161] K. Soncy, B. Djeri, K. Anani, M. Eklou-Lawson, Y.

Adjrah, D.S. Karou*, Y. Ameyapoh et C. de Souza : Évaluation

de la qualité bactériologique des eaux de puits et de forage à

Lomé, Togo, 2015.

[162] A.Krira, B. Chakour et H.Fouta, «Intensification de

l’agriculture et son impact sur l’environnement. Cas des nitrates

dans la nappe phréatique de M’nasra du Ghab», Actes1er

Colloque sur le Développement agricol.Rech.Agron.au niveau

de la région du Ghab,(2001)

[163]M.Zeraouli, «Pollution par les nitrates. Premiers résultats

de la situation actuelle dans la nappe des Mnasra (décembre

1992; janvier 1993) »,Office régional de mise en valeur agricole

du Gharb, Département de développement agricole, Service des

études de développement agricole, Bureau Agro-Pédologique,

Publication interne ORMVAG, septembre, (1993)

[164] Secrétariat d’Etat chargé de l’Environnement, «Etude pour

programme d’action visant à minimiser et à contrôler l’impact

des engrais et des pesticides sur l’environnement du bassin de

Sebou», PPES Projet de l’environnement du Sebou), Secrétariat

d’état chargé de l’environnement,(Maroc),(1999)43p

[165]Z.Saadi,A.Maaslouhi, M. Zeraouli et J. P.Gaudet,

«Analyse et modélisation des variations saisonnières des

concentrations en nitrates dans les eaux souterraines de la nappe

M’nasra, Maroc»,C.R.Acad.Sci., Série2, Sci. Terre Planètes,

329(8)(1999)579;586




[166] L. Zilliox, C. Schenc, H. Kobus et B. Huwe, « Pollution

par lesnitrates: Quelsremèdes ? Supplément », La Recherche

Suppl. les enjeux de l’agriculture en Europe, 227(1990)18;21

[167] C. Boutin; N. Dias, «Impact de l’épandage des eaux usées

de la ville de Marrakech sur la nappe phréatique», Bull.Fac.Sci.

Marrakech (Sect.Sci.Vie),3(1987)5;25

[168]M. Nola, T. Njine, A. Monkiedje, V. Sikati Foko et E.

Djuikom, « Qualité bactériologique des eaux des sources et des

puits de Yaoundé (Cameroun) », Cahiers santé,8(5) (1998)

330;336

[169]A.A.Tandia, C.B.Gaye et A. Faye, «Origine

desteneursélevéesennitratesdanslanappephréatiquedessablesquat

ernaires (région de Dakar, Sénégal)», Sécheresse,8(4) (1997)

[170]R.E.White,J.S. Dayson, R.A.Haigh,W.A. Juryand

G.Sposito, «ATransfer Function Model of Solute Transport

Trough Soil », 2 Illustrative

Applications.WaterResourcesResearch,22(2)(1986)248;254

[171] Maoudombaye T. 1,2, Ndoutamia G. 1, Seid Ali M. 1 ,

Ngakou A.: Étude comparative de la qualité physico-chimique

des eaux de puits, de forages et de rivières consommées dans le

bassin pétrolier de Doba au Tchad, 2015.

[172] Ahoussi Kouassi Ernest1, Loko Solange2, Koffi Yao

Blaise1, Soro Gbombélé1, Oga Yéi Marie Solange1, SORO

Nagnin1: Evolution spatio-Temporelle Des Teneurs en Nitrates

des Eaux Souterraines de La Ville d’Abidjan (Côte d’Ivoire),

2013.

[173] Cheikh Fall , 2007: Etude de la qualité de l'eau de robinet

et de celle de la nappe phréatique dans les différentes

Communes d'Arrondissement du département de Guédiawaye,

Dakar, Sénégal, 2007.




[174] Chouti Waris Kéwouyèmi : Evaluation de la qualité des

eaux des puits couverts munis de pompe dans la commune

de Porto-Novo, 2007.

[175] N. Aghzar, H. Berdai, A. Bellouti et B. Soudi : Pollution

nitrique des eaux souterraines au Tadla (Maroc), 2002.

[176] Rapport d’activité 2014-SQE/SEG- Service Qualité de

l’eau, contrôle sanitaire externe exécuté par l’office national de

contrôle de qualité (ONCQ).

[177]http://www.eurofins.fr/agroalimentaire/solutions-par-

analyses/ogm-et-g%C3%A9notypage/ogm/analyses-

g%C3%A9n%C3%A9tiques-par-pcr/

[178] Fattouch S., M’Hirsi S., Acheche H., Marrakchi M.,

Marzouki MN., RNA Oligoprobe Capture RT-PCR, a Sensitive

Method for the Detection of Grapevine Fanleaf Virus in

Tunisian Grapevines. Plant Molecular Biology Reporter N° 19

(2001) pp. 235–244.

[179] Issam Ben Salem : Conception des amorces pour la

détection des salmonelles typhimirium et enteritidis par

héminested PCR dans le Merguez. 2008.

[180] N’Diaye Anna (2008) : Etude bactériologique des eaux de

boissons vendues en sachet dans quatre communes d’Abidjan.

Thèse de doctorat en pharmacie. Université de Bamako.2008.

pp132-134.

[181]Fondation de l’eau. Eau-Fondation-Developpement,

compte rendu, conclusion, recommandations.

[182] Geldreich E. et al Concept of faecal streptococci instream

pollution Jormal of the water pollution control federation. 1969,

41; 33.

[183] Gelinasp. Répertoire des micro-organismes pathogènes

transmit par les aliments. Saint Hyacinthe : Edisem, 1995 :211p

[184] Graun, G.F, Berger, PS., et Calderon, R. L. . (1997),

Coliform bacteria and waterborn disease out breaks.J.Am. Water

work Assoc., 89(3): 96-104

http://www.eurofins.fr/agroalimentaire/solutions-par-analyses/ogm-et-g%C3%A9notypage/ogm/analyses-g%C3%A9n%C3%A9tiques-par-pcr/






[185] OMS (10) L’OMS publie des directives révisées pour

l’eau de boisson afin de prévenir les flambées de maladies

hydriques. Centre des medias, communique de presse 2004,

Marrakech/Genève, 21 septembre 2004 ; annexe 4.

[186] Singleton P. Bactériologie : pour la médecine, la biologie

et les biotechnologies. Cours, 6ème

édition, Dunod. 2005.

[187] Thierry Amoin A. Evaluation du risque sanitaire des

eaux en sachet vendues dans la ville d’Abidjan. 114p.Thèse de

Pharmacie. Bamako, janvier 2005.




ANNEXES




ANNEXES 1

Images 22 et 23 : Dosage des échantillons dans des tubes Eppendorfs pour la PCR

Images 24 et 25 : Comptage manuel des colonies après 24 H des indicateurs de pollution

Images 26 et 27 : Milieux pré-enrichis pour Salmonelles et Hotte à flux laminaire




Images 28 et 29 : Cultures positives dans des boites de Pétri et tubes à culture

Images 30 et 31 : Milieux de culture avec des colonies après 24H.

Images 32 et 33 : Boites de Pétri et des tubes avec des colonies après 24H.




Schémas 8 et 9- Mouvement de la pollution dans un sol sec [139]

Schéma 8 Schéma 9

Schémas 10 et 11- Distribution de pollution bactérienne et chimique dans le sol [139]

Schéma 10

Schéma 6 : Organisation d’un puits moderne Schéma 7 : Organisation d’un puits traditionnel




Schéma 11



ANNEXE 3

Tableau 39. Paramètres microbiologiques d’une eau potable [100]

Germes

Volume

d’eau

analysé

Nombre de

germes

tolérés

Justifications

Salmonelles

5 Litres 0 Bactéries pathogènes.

L’eau ne doit pas contenir de salmonelles ou

de streptocoques qui sont des germes

responsables de toxi-infections alimentaires.

Elle doit être exempte d’entérovirus qui sont,

quant à eux, responsables de gastro-entérites.

Staphylocoques

pathogènes

100 ml 0

Entérovirus

10 Litres

0

Coliformes

100 ml

0 dans 95%

des cas

Bactéries intestinales.

L’eau doit être exempte de coliformes,

germes qui signent une contamination fécale.

Il s ne sont pas dangereux par eux-mêmes,

mais ils peuvent accompagner d’autres

bactéries intestinales qui, elles, sont

pathogènes (Salmonelles, Shigelles).

Certains coliformes sont opportunistes et

peuvent provoquer une infection chez des

sujets immunodéprimés.

Coliformes

thermotolérants

100 ml

0

Streptocoques

fécaux

100 ml

0

Spores des

bactéries sulfito-

réductrices

20 ml

0

Flore aérobie mésophile

Il s’agit d’une flore non pathogène ; elle se

développe dans la matière organique. Elle est

présente dans l’eau mais en très faible

quantité, car elle ne peut s’y multiplier.

La législation de 1989 fixe sa teneur

seulement pour l’eau conditionnée.

Pour l’eau non conditionnée, on peut trouver

des indications dans les directives du conseil

des communautés européennes du 15 Juillet

1980 :

-dénombrement des germes totaux pour les

eaux livrées à la consommation :

- à 37°C : 10 germes /ml

- à 22°C : 100 germes /ml

Parmi ces germes peuvent se trouver des

germes opportunistes tels que Pseudomonas,

particulièrement redoutés en milieu

hospitalier.

Bactéries

aérobies

revivifiables à

37°C après 24 h

1 ml

<20

Bactéries

aérobies

revivifiables à

22°C après 72 h

1 ml

<100

Tableau 40. Classification des entérobactéries coliformes en hygiène

et en santé publique [103]

Coliformes d’origine fécale Coliformes d’origine

aquatique ou tellurique

Coliformes isolés en

clinique : coloniseurs ou

pathogènes opportunistes

Escherichia coli Budvicia aquatic Cedecca davisae



Citrobacter freundii

Citrobacter diversus (Levinea

malonatica)

Citrobacter amalonaticus

(Levinea amalonatica)

Enterobacter aerogene

(Klebsiella mobilis)

Enterobacter cloacae

Klebsiella pneumoniae

Klebsiella oxytoca

Moellerella wisconsensis

Salmonella (sous genre III*

Arizonal)

Yersinia enterocolitica**

Buttiauxella agrestis

Enterobacter amnigena

Enterobacter intermedium

Klebsiella terrigena

Leclercia adecarboxylata

Rahnella aquatilis

Serratia liquefaciens

Serratia plymutica

Serratia fonticola

Yersinia frederikneri

Yersinia intermedia

Yersinia kristensenii

Cedecca lapagei

Cedecca neteri

Enterobacter agglomerans

Enterobacter gergoviae

Enterobacter sakazakii

Enterobacter taylorae

Escherichia hermani

Escherichia vulneris

Ewingella americana

Klebsiella trevisanii

Klebsiella ozenae

Kluyvera ascorbata

Kluyvera cryocrescens

Koserella trabulsii

Serratia marcescens

Serratia rubidae

Serratia odorifera

Serratia grimesii

Tous sont thermotrophes ou

thermotolérants**

Tous sont psychrotrophes

ou psychrotolérants

Mésophiles

ANNEXE4

Tableau 41: Paramètres de mesure de risque de pollution bactériologique de la nappe

phréatique à partir des latrines [157]

Importance

relative

Paramètres

Risques Désignation Spécification

Latrines

+ +

Charge

superficielle

-Dépend du type de latrine et de

son mode d’utilisation pour une

latrine familiale utiliser

normalement une charge de 150

mm par jour est une limite

supérieure.

-Le risque augmente avec la

charge spécifique



Aquifère

+ + + +

Structure

-Principaux faciès lithologique ;

-Sédimentaire plastique :

sables, sables argileux, argiles

et marnes, argiles calcaires ;

-Sédimentaire peu apte aux

déformations : grés, grés

argileux, grés calcaires,

calcaires dolomites ;

-Roches dures à « socle »,

cristallin : schistes, granites,

quartzites, roches

cristallophylliennes, roches

volcanique ;

-D’une manière général, le

risque augmente en passant

du sédimentaire plastique

(porosité d’interstice) aux

formations fracturées ou

fissurées (porosité de

fracture ou chenaux) ;

-On peut distinguer

grossièrement trois niveaux

de risque liés à la structure

de réservoir:

* risque minimal : sables,

alluvions, limons, argiles;

* risque élevé : roches

carbonatées (calcaires,

dolomites) ;

* risque intermédiaire :

roches compactes, fissurées

(granites, schistes, gneiss,

quartzites, basaltes, grés

etc) ;

Niveau

piézométrique

-Profondeur minimum de la

surface piézométrique par

rapport au niveau du sol.

-Le risque augmente quand

la profondeur diminue.

Climat

+

Pluie

Hauteur de pluie efficace

- Le risque augmente avec

la hauteur de pluie efficace.



Annexe 5

Résultats des analyses bactériologiques et physico-chimiques des sources

d’approvisionnement en eau à Conakry

Tableau 42 : Récapitulation des résultats des paramètres sanitaires des puits

Légende : (+) = Paramètres existants et (-) = Paramètres absents

Annexe 6

Paramètres

N° Puits

Cou

ver

cle

Pu

isoir

fix

e

Marg

elle

hau

te

Ab

sen

ce

d'o

rdu

res

Pu

its

en a

mon

t d

u

WC

WC

bét

on

né

Pu

its

tub

é ou

bét

on

né

Puits à

plus

de 15

m des

latrines

Somme

paramètres

sanitaires

Lieu de

Prélève-

ment

Normes + + + + + + + + 300

P1 + + - - + - - + 190 Ratoma

P2 + + - + + - - + 210 Matoto

P3 + + + + + - - + 230 Dixinn

P4 + + - + + + - - 180 Matam

P5 + + - - - - - - 70 Kaloum

P6 + + + - - + - + 210 Ratoma

P7 + + + - - - - + 170 Matoto

P8 + + + - - - - - 120 Dixinn

P9 + - - - + - - + 140 Matam

P10 + + - + + - - + 190 Kaloum

P11 + + + + + - - - 190 Ratoma

P12 + + - + + + - + 230 Matoto

P13 + + - - - - - + 120 Dixinn

P14 + + + - - + - - 160 Matam

P15 + + + - - - - + 170 Matoto

P16 + + + - - - - + 170 Dixinn

P17 + + + - + + + + 280 Ratoma

P18 + - - + - + - + 150 Matoto

P19 + + + + + - - + 240 Dixinn

P20 + + - + + + - + 220 Matam

P21 + + - - - - - + 120 Ratoma

P22 + + + - - + - + 210 Matoto

P23 + + + - - - - + 170 Dixinn

P24 + + + - - - - + 170 Matam

P25 + - - - + - - + 140 Ratoma

P26 + + - + + - - + 290 Ratoma

P27 + + + + + - - + 240 Matoto

P28 + + - + + + - + 130 Matoto

P29 + + - - - - - + 120 Matam

P30 + + + - - + - + 210 Kaloum



Tableau 43 : Résultats d’analyses physico-chimique des eaux de puits

N° Code pH T° Pot-redox Turbidité Dureté TDS Conduct.

Normes 6.5-8.5 25°C 650 5 ˂1,3 1000 500

Méthodes

pH-

mètre

HANA

pH-

mètre

HANA

pH-mètre

HANA

pH-mètre

HANA

NF B

35-301

NF

EN

872

NF EN

27888

P1 6,18 29,6 875 9 1,8 239 475

P2 6,07 29,3 930 5 3,1 368 737

P3 5,64 28,9 1158 18 1,7 220 442

P4 5,21 28,6 1400 35 2,4 343 686

P5 6,79 28,5 544 15 1,9 199 396

P6 5,79 29,6 1073 3 1,8 240 476

P7 6,65 29,2 612 14 1,9 369 749

P8 5,12 28,9 901 4 1,7 230 542

P9 5,84 28,6 1045 8 2,4 341 596

P10 6,09 28,5 917 2 1,9 292 496

P11 6,09 25,9 913 10 1,7 239 475

P12 5,94 26 998 14 3,1 368 737

P13 7,07 26,1 300 15 1,9 220 442

P14 5,50 26,3 1279 46 2,7 343 686

P15 6,05 26,5 943 3 2 199 396

P16 5,83 27 1077 10 2,3 175 564

P17 6,11 27,4 911 4 1,9 26,4 251

P18 6,62 27,8 631 23 1,8 272 266

P19 5,82 27,9 1059 8 2,5 38,3 286

P20 6,40 28 737 10 1,9 233 571



P21 5,55 26,6 1218 8 2,3 175 343

P22 5,03 27 1008 9 2,2 26,4 48,9

P23 5,43 27,3 1277 6 1,5 272 545

P24 5,74 27 1119 7 2 38,3 62,6

P25 5,52 27,1 1241 16 1,9 233 553

P26 6,49 25,6 1121 7 2,3 171 343

P27 5,60 30,7 1190 5 2,2 24,4 48,9

P28 6,19 31 877 17 1,5 272 545

P29 7,80 31 - 020 12 2 38,3 72,6

P30 6,11 30,9 924 10 1,9 223 453

Annexe 7

Tableau 44: Résultats d’analyses chimiques des eaux de puits

N° Code Nitrites Nitrates NH4 Fer Chlorures Fluor Arsenic Manganèse

Normes 0.1

mg/l

50 mg/l 0.5 mg/l 0.3 mg/l 250 mg/l 0.01 mgl 0.01µg/l 0,4 mg/l

Méthodes NF EN

ISO

13395

NF EN

ISO

13395

NF T 90

015-2

NF EN

ISO

11885

NF EN

ISO

10304-1

NF EN

ISO

10304-1

NF EN

ISO

11885

NF EN ISO

11885

P1 0,12 50 0,1 0,02 3,5 0,077 77 0,20

P2 > 0,5 250 8 0,05 2,5 0,089 89 0,25

P3 0,15 25 0,5 0,02 3,7 0,082 82 0,15

P4 0,15 250 0,1 0,05 7,5 0,082 33 0,10

P5 0,075 50 0,1 0,05 1,5 0,063 30 0,15

P6 0,075 50 0,5 0,02 3,5 0,078 7 0,10

P7 0,1 250 0,4 0,05 2,5 0,088 6 0,19

P8 0,2 25 8 0,02 3,7 0,080 2 0,14

P9 0,2 250 3 0,05 7,5 0,082 33 0,15



P10 0,05 50 0,8 0,05 1,5 0,066 30 0,10

P11 0,1 250 0,5 0,02 3,5 0,077 8 0,10

P12 0,15 25 0,1 0,05 2,5 0,089 7 0,10

P13 0,075 100 0,6 0,02 3,7 0,082 2 0,30

P14 0,05 150 0,5 0,05 7,5 0,082 33 0,25

P15 0,4 175 2 0,05 1,5 0,063 30 0,5

P16 ˂0,01 250 0,5 0,02 3,5 0,031 0,10 0,10

P17 ˂0,01 25 0,4 0,02 1,5 0,023 0,05 0,5

P18 0,15 100 2 0,05 3,5 0,018 0,05 0,10

P19 ˂0,01 150 0,3 0,05 1,5 0,026 0,05 0,30

P20 0,1 175 0,8 0,01 5,5 0,015 0,10 0,9

P21 0,075 15 1 0,02 3,5 0,05 0,01 0,5

P22 0,05 25 0,5 0,02 1,5 0,013 0,01 0,10

P23 0,05 15 0,3 0,05 3,5 0,06 0,10 0,5

P24 0,025 15 0,4 0,05 1,5 0,02 0,01 0,10

P25 0,025 35 0,3 0,01 5,5 0,02 0,01 0,30

P26 0,15 15 0,6 0,02 3,5 0,03 0,10 0,5

P27 0,025 25 0,5 0,02 1,5 0,01 0,01 0,10

P28 0,15 15 0,6 0,05 3,5 0,02 0,01 0,5

P29 0,025 15 0,6 0,05 1,5 0,02 0,10 0,10

P30 0,15 35 0,8 0,01 5,5 0,05 0,01 0,30

Annexe 8

Tableau 45 : Résultats d’analyses physico-chimiques des eaux de forages

N° Code pH T° Pot-

redox

Turbidité Dureté TDS Conduct.

Normes 6.5-8.5 25°C 650 5 ˂1,3 1000 500



Méthodes NF T 90

008

pH-

mètre

HANA

pH-

mètre

HANA

pH-

mètre

HANA

NF B 35-

301

NF EN

872

NF EN

27888

F1 6,33 29,7 795 12 1,7 141 281

F2 6,89 29,1 488 4 2,5 167 335

F3 5,36 28,6 1314 10 1,8 237 474

F4 6,33 28,6 798 9 1,5 155 315

F5 6,46 28,4 731 1 1,8 21 43

F6 7,44 29,0 201 2 1,7 142 291

F7 6,46 29,1 721 0 2,5 267 339

F8 5,03 28,9 948 19 2,7 230 454

F9 7,84 28,6 -15 4 1,5 160 315

F10 6,71 29,2 584 12 1,8 212 143

F11 8,60 25,6 -437 3 1,8 141 281

F12 6,62 26,1 638 8 1,7 167 335

F13 7,17 26,4 337 19 2,4 237 474

F14 6,41 26,5 741 11 2,5 155 315

F15 6,36 26,6 773 7 1,9 210 144

F16 6,95 27,1 456 7 1,9 241 115

F17 6,65 27,2 608 5 2,5 157 495

F18 6,45 27,7 710 3 1,9 238 191

F19 6,26 28,0 826 9 2,4 255 290

F20 6,82 28,0 520 5 2 120 494

F21 5,91 26,9 1135 22 1,9 241 281

F22 5,52 26,8 1058 7 2 157 335

F23 5,98 27,1 983 7 1,8 238 474

F24 6,30 27,1 849 13 2,2 255 415



F25 5,59 27,1 1197 8 2,3 421 435

F26 6,69 28,6 1024 7 1,8 39,2 78,6

F27 6,46 25,1 1083 14 1,8 128 257

F28 6,58 25,3 1049 11 1,9 18,3 36,4

F29 6,36 25,1 849 13 2 93,5 186,5

F30 6,40 25,2 546 8 1,6 123 247

Annexe 9

Tableau 46 : Résultats d’analyses chimiques des eaux de forages


Normes 0.1 mg/l 50 mg/l 0.5

mg/l

0.3 mg/l 250 mg/l 0.01 mg/l 0.01µg/l 0,4 mg/l

Méthodes NF EN

ISO

13395

NF EN

ISO

13395

NF T

90 015-

2

NF EN

ISO

11885

NF EN

ISO

10304-1

NF EN

ISO

10304-1

NF EN

ISO

11885

NF EN ISO

11885

F1 0,00 ˂0,1 0,3 0,02 1,5 0,04 0,01 3

F2 0,05 50 0,2 0,02 2,5 0,10 65 10

F3 0,075 250 0,1 0,02 2,5 0,50 82 25

F4 0,05 25 0,1 0,05 1,5 0,00 78 25

F5 0,15 0,1 0,01 0,02 1,5 0,03 65 20

F6 0,27 0,1 0,4 0,02 1,5 0,04 62 20

F7 0,075 50 0,5 0,02 2,5 0,05 62 5

F8 0,15 250 1,0 0,02 2,5 0,50 72 6

F9 >0,5 25 0,5 0,05 1,5 0,01 37 5

F10 0,03 0,1 4,0 0,02 1,5 0,03 36 5

F11 0,2 ˂0,1 0,3 0,02 1,5 0,04 15 10

F12 0,25 50 1,5 0,08 1,5 0,10 62 20

F13 0,00 250 0,7 0,02 2,5 0,50 72 5



F14 0,3 25 2,7 0,03 1,5 0,0 47 20

F15 0,05 0,1 0,5 0,04 2,5 0,03 62 15

F16 0,075 150 1,0 0,12 3,5 36 0,05 25

F17 0,05 ˂0,01 0,8 0,05 3 27 0,05 19

F18 0,04 ˂0,01 0,5 0,09 2,5 18 0,05 18

F19 0,15 5,0 3,0 0,08 1,5 29 0,02 20

F20 0,06 ˂0,01 0,4 0,02 2,5 25 0,02 20

F21 0,025 25 0,8 0,03 1,5 36 0,05 15

F22 0,04 35 0,6 0,04 2,5 27 0,05 25

F23 0,5 25 0,8 0,12 3,5 18 0,05 20

F24 0,075 30 0,6 0,05 1,5 29 0,02 20

F25 0,015 15 0,8 0,04 1,2 25 0,02 5

F26 0,075 25 0,7 0,08 1,5 36 0,05 5

F27 0,05 35 0,5 0,02 2,5 27 0,05 25

F28 0,5 25 0,8 0,03 1,5 18 0,05 20

F29 0,025 30 0,4 0,04 2,5 30 0,03 20

F30 0,1 15 0,7 0,12 3,5 26 0,04 5

Annexe 10

Tableau 47 : Résultats d’analyses physico-chimiques des eaux de robinets

N° pH T° Pot-redox Turbidité Dureté TDS Conduct.

Normes 6.5-8.5 25°C 650 mV 5 ˂1,3

mmol/l

1000 500

Méthodes NF T 90

008

pH-mètre

HANA

pH-mètre

HANA

pH-mètre

HANA

NF B 35-

301

NF EN

872

NF EN

27888

R1 6,67 29,5 598 2 1,8 22 46

R2 6,13 29,3 580 11 1,9 166 329



R3 6,18 29,1 885 6 1,9 22 44

R4 5,67 28,8 115 2 2,7 38 77

R5 6,66 28,6 652 16 1,9 22 46

R6 6,49 29,7 695 2 1,8 166 329

R7 6,57 29,3 663 2 3,1 22 44

R8 6,20 29,1 859 2 1,9 38 76

R9 6,56 28,5 665 2 1,8 22 44

R10 6,60 28,6 659 4 1,9 38 77

R11 6,91 25,9 487 7 1,9 22 46

R12 7,29 26 324 14 1,8 166 329

R13 6,87 26,2 497 12 1,8 22 44

R14 6,48 26,4 726 24 1,7 38 76

R15 6,23 26,6 839 5 1,8 39 77

R16 6,01 27 911 12 1,6 265 43,7

R17 6,52 27,1 695 7 1,6 259 128

R18 6,56 27,7 670 6 1,7 158 41,9

R19 6,67 27,9 611 5 1,8 294 29,5

R20 6,49 28 703 2 1,7 159 29,6

R21 5,72 26,9 1215 10 1,8 49 80

R22 5,90 26,9 1034 14 1,7 265 532

R23 6,10 27,2 924 11 1,8 259 518

R24 5,93 27,3 1037 19 1,9 158 315

R25 5,53 27 1227 12 1,8 294 587

R26 5,64 26,4 1160 22 1,6 40 79,6

R27 5,78 25,5 1085 8 1,7 265 532

R28 6,20 25,1 858 6 1,7 259 518



R29 6,40 25 751 19 1,8 158 315

R30 6,14 24,9 887 16 1,6 294 587

Annexe 11

Tableau 48: Résultats d’analyses chimiques des eaux de robinets



mg/l

0.3 mg/l 250 mg/l 0.01 mg/l 0.01µg/l 0,4 mg/l

Méthodes NF EN

ISO

13395

NF EN

ISO

13395

NF T

90 015-

2

NF EN

ISO

11885

NF EN

ISO

10304-1

NF EN

ISO

10304-1

NF EN

ISO

11885

NF EN ISO

11885

R1 0,0 0,1 0,2 0,04 2,5 0,01 66 10

R2 0,1 1,00 0,1 0,05 3,7 0,01 65 15

R3 0,05 ˂0,1 2 0,05 1,5 0,07 78 15

R4 0,0 ˂0,1 1 0,02 1,5 0,04 35 10

R5 0,025 0,1 0,1 0,02 1,5 0,03 67 10

R6 0,04 0,1 0,5 0,04 2,5 0,01 64 10

R7 0,06 0,1 0,4 0,05 3,7 0,01 63 10

R8 0,05 0,1 0,5 0,05 1,5 0,07 78 10

R9 0,05 0,1 0,2 0,02 1,5 0,04 32 10

R10 0,075 0,1 0,2 0,02 1,5 0,03 62 50

R11 0,05 ˂0,01 0,5 0,04 2,5 0,01 62 50

R12 0,05 ˂0,01 0,6 0,05 3,7 0,01 73 50

R13 0,025 ˂0,01 0,3 0,05 1,5 0,07 35 10

R14 0,075 ˂0,01 0,4 0,02 1,5 0,04 65 15

R15 0,015 ˂0,01 0,3 0,02 1,5 0,03 0,04 10

R16 ˂0,01 ˂0,01 0,5 0,02 1,5 5 0,01 15

R17 ˂0,01 ˂0,01 0,2 0,03 2,5 13 0,01 50



R18 ˂0,01 ˂0,01 0,2 0,02 1,5 6 0,01 90

R19 ˂0,01 ˂0,01 0,5 0,02 1,5 2 0,01 10

R20 ˂0,01 ˂0,01 0,3 0,03 2,5 2 0,01 10

R21 0,05 0,5 1,8 0,02 1,5 5 0,01 15

R22 0,025 ˂0,01 0,4 0,03 2,5 13 0,01 10

R23 0,05 ˂0,01 0,6 0,05 1,5 6 0,01 15

R24 0,05 ˂0,01 0,5 0,10 1,5 2 0,01 50

R25 0,05 ˂0,01 0,4 0,02 2,5 2 0,01 90

R26 0,05 5 1 0,02 1,5 5 0,01 10

R27 0,04 10 0,4 0,03 2,5 13 0,01 10

R28 0,05 5 0,6 0,05 7,5 6 0,01 10

R29 0,05 5 0,5 0,10 3,5 2 0,01 15

R30 0,025 40 0,4 0,02 7,5 2 0,01 50

Annexe 12

Tableau 49 : Résultats d’analyses physico-chimiques des eaux minérales en sachets N° code pH T° Pot-redox Turbidité Dureté TDS Conduct.

Normes 6.5-8.5 25°C 650 5 ˂1,3 1000 500

Méthodes NF T 90 008 pH-mètre

HANA

pH-mètre

HANA

pH-mètre

HANA

NF B 35-

301

NF EN

872

NF EN

27888

EM1 7,38 30,8 248 12 0,9 83 166,3

EM2 7,33 31,5 255 6 1 62 155,6

EM3 7,25 30,5 290 9 0,8 368 739

EM4 7,00 27,4 443 6 1,3 49 93,8

EM5 7,08 28,8 386 13 1,2 58 43,2

EM6 6,99 29 435 5 0,9 35 312,1

EM7 6,86 29,5 588 10 0,6 6 12,45

EM8 7,14 29,4 358 7 1,2 56 398



EM9 7,29 22,3 275 6 1,4 25 103,2

EM10 7,34 26,7 250 9 1 98 30,3

EM11 7,54 27,3 134 4 1,3 84 182,2

EM12 7,68 27,3 64 5 0,8 189 166,3

EM13 6,50 29,6 697 6 0,8 40 69,6

EM14 6,48 29,5 729 7 1,2 199 398

EM15 6,75 30 571 12 0,6 52 103,2

EM16 6,70 30,1 616 11 1,2 15 30,3

EM17 6,45 29,6 732 13 0,9 91,1 182,2

EM18 6,14 29,3 896 7 0,9 82,9 166,3

EM19 6,20 28,9 888 9 0,8 199 398

EM20 6,25 29,5 834 5 1 51,6 106,2

EM21 6,45 29,6 716 7 0,6 15,2 39,3

EM22 6,34 29,3 782 9 1,2 91,1 162,2

EM23 6,40 28,9 996 5 0,9 82,9 165,3

EM24 6,55 29,5 988 6 0,9 83,5 32,5

Annexe 13

Tableau 50 : Résultats d’analyses chimiques des eaux minérales en sachets N° Nitrites Nitrates NH4 Fer Chlorures Fluor Arsenic Manganèse


mg/l

0.3 mg/l 250 mg/l 0.01

mg/l

0.01µg/l 0.4 mg/l

Méthodes NF EN

ISO

13395

NF EN

ISO

13395

NF T

90

015-2

NF EN

ISO

11885

NF EN

ISO

10304-1

NF EN

ISO

10304-1

NF EN

ISO

11885

NF EN ISO

11885

EM1 0,00 0,04 0,3 0,04 1,5 23 0,01 25

EM2 0,05 0,05 0,2 0,02 1,5 15 0,05 50

EM3 0,075 0,05 0,5 0,02 1,5 15 0,05 25

EM4 0,00 0,06 0,5 0,02 1,5 24 0,04 50



EM5 0,025 0,05 0,3 0,02 1,5 32 0,09 25

EM6 0,10 0,05 0,7 0,02 1,5 13 0,05 50

EM7 0,05 0,12 0,5 0,02 1,5 15 0,05 50

EM8 0,025 0,05 0,3 0,02 1,5 14 0,05 25

EM9 0,5 0,05 0,2 0,02 1,5 18 0,05 50

EM10 0,12 0,12 0,5 0,02 1,5 15 0,04 25

EM11 0,3 0,09 0,2 0,02 2,5 24 0,09 50

EM12 0,075 0,05 0,3 0,02 1,5 32 0,05 50

EM13 0,025 0,01 0,6 0,02 1,5 23 0,05 50

EM14 0,025 0,05 0,5 0,02 1,5 15 0,04 50

EM15 0,075 0,05 0,5 0,02 1,5 15 0,09 25

EM16 0,05 0,05 0,3 0,02 1,5 18 0,03 50

EM17 0,05 0,01 0,3 0,03 1,5 16 0,05 50

EM18 0,075 0,12 0,2 0,01 1,5 15 0,02 25

EM19 0,025 0,05 0,5 0,02 1,5 15 0,03 50

EM20 0,05 0,05 0,3 0,02 1,5 18 0,05 25

EM21 0,025 0,05 0,3 0,02 1,5 15 0,04 50

EM22 0,075 0,01 0,3 0,02 1,5 18 0,09 50

EM23 0,05 0,05 0,2 0,03 2 16 0,05 50

EM24 0,02 0,01 0,5 0,01 2,5 15 0,05 50

Annexe 14

Tableau 51 : Dénombrement des bactéries dans les eaux de Puits N°

Code

FMAT CT CF- CTT Entérocoques Spore ASR Salmonelle

Lieux de

prélèvement

Commune

Normes ˂100/ ml ˂10/100

ml

0/100 ml 0/100 ml 0/20 ml 0/500 ml

P1 690000 16 0 21 2 0 Koloma 2 Ratoma

P2 630000 2 0 150 2 0 Yimbaya Ta Matoto

P3 3000000 150 150 0 3 0 Dixinn Bora Dixinn



P4 690000 41 30 52 7 0 Lansébounyi Matam

P5 320000 150 150 7 5 0 Tombo Kaloum

P6 500000 150 47 93 3 0 Kobayah Ratoma

P7 400000 150 3 221 1 0 Béhanzin Matoto

P8 3000000 150 6 21 2 0 Dixinn P. 2 Dixinn

P9 5000000 7 0 123 2 0 Domino Matam

P10 870000 17 3 213 4 Présence Sans-fil Kaloum

P11 670000 150 56 53 4 0 Touguiwond

i

Matam

P12 970000 50 19 43 3 0 Gbéssia P.1 Matoto

P13 850000 40 57 56 4 Présence Dabondy E. Matoto

P14 780 000 51 3 20 4 0 Kobayah Ratoma

P15 900 000 68 21 36 8 0 Hafia 2 Dixinn

P16 81 000 000 7 99 116 40 Présence Bellevue

marche

Dixinn

P17 8 700 000 1 0 0 12 0 Lambanyi Ratoma

P18 9 000 000 7 0 1 40 Présence Yattayah Ratoma

P19 11 000 000 2 4 1 40 0 Sangoyah

3ème

porte

Matoto

P20 9 800 000 incomptable incomptable incomptable 12 Présence Bonfi Matam

P21 9 800 000 incomptable incomptable 20 20 0 Matam

perma.

Matam

P22 6 900 000 26 15 0 11 0 Bonfi

routière

Matam

P23 9 900 000 incomptable incomptable 32 24 Présence Dabondy 1 Matoto

P24 10 000000 incomptable incomptable 17 22 0 Yattayah Ratoma

P25 9 900 000 incomptable incomptable 0 20 Présence Bellevue

marché

Dixinn

P26 12 000 000 incomptable incomptable incomptable 32 Présence Coléah

imprimerie

Matam

P27 13 400 000 incomptable incomptable 49 22 0 Wanindara 1 Ratoma

P28 13 000 000 incomptable incomptable 5 23 0 Wanindara 2 Ratoma

P29 15 000 000 incomptable incomptable 21 24 Présence Sankoumbay

a

Matam

P30 14000000 incomptable incomptable 34 20 0 Bellevue Dixinn

Annexe 15

Tableau 52 : Dénombrement des bactéries dans les eaux de Robinet

N° Code FMAT CT CF- CTT Entérocoque

s

Spore ASR Salmonelle

Lieux de

prélèvement

Communes

Normes ˂100/ 1

ml

10/100 ml 0/100 ml 0/100 ml 0/20 ml 0/500 ml

R1 930000 4 0 6 5 0 Koloma 1 Ratoma

R2 180000 0 0 51 1 0 Yimbaya

Marché

Matoto

R3 480000 150 63 150 1 Présence Bonfi

Marché

Matam



R4 530000 0 0 150 2 0 Dixinn Bora Dixinn

R5 570000 3 0 92 2 0 Tombo Kaloum

R6 4700000 0 0 78 1 0 Yatayah Ratoma

R7 800000 0 0 57 1 0 Béhanzin Matoto

R8 8000000 13 1 215 1 0 Dixinn P.2 Dixinn

R9 5000000 150 150 184 1 0 Lansébouny

i

Matam

R10 280000 150 7 198 1 0 Tombo Kaloum

R11 560000 4 0 45 2 0 Bonfi Rout. Matam

R12 560000 2 1 22 1 0 Gbéssia Po1 Matoto

R13 460000 9 2 12 1 0 Kobayah Ratoma

R14 560000 20 1 11 0 0 Bellevue

Ma

Dixinn

R15 250000 8 1 14 1 0 Almamiyah Kaloum

R16 5000000 12 26 2 3 Présence Manquepa Kaloum

R17 4500000 70 30 0 4 0 Donka cite

Boc Prof.

Dixinn

R18 5000000 4 1 0 4 0 Foula

Madina

Ratoma

R19 6000000 8 5 1 8 0 Sangoyah

3ème

porte

Matoto

R20 7000000 22 61 36 8 0 Bonfi bora Matam

R21 5500000 15 25 1 4 0 Boulbinet Kaloum

R22 6700000 21 11 0 8 0 Bonfi

routière

Matam

R23 6500000

0

14 10 0 6 0 Dabondi 1 Matoto

R24 7000000 8 0 0 2 0 Foula

Madina

Ratoma

R25 8900000 Incomptable Incomptable 0 8 Présence Camayenne Dixinn

R26 9100000 Incomptable Incomptable 54 7 0 Sandervalia Kaloum

R27 1000000

0

Incomptable Incomptable 13 6 0 Coléah

imprimérie

Matam

R28 1000000

0

10 1 0 3 0 Kissosso

plateau

Matoto

R29 1100000

0

Incomptable Incomptable 80 9 0 Lambanyi Ratoma

R30 1100000

0

Incomptable Incomptable Incomptable 4 Présence Bellevue Dixinn

Annexe 16

Tableau 53: Dénombrement des bactéries dans les eaux de Forage

N° Code FMAT CT CF- CTT Entérocoques Spore ASR Salmonelle



Normes ˂100/ml ˂10/100 ml 0/100 ml 0/100 ml 0/20 ml 0/500 ml Lieux de

prélèvement

Communes

F1 480000 0 0 150 1 0 Nassourlaye1 Ratoma

F2 380000 2 2 43 1 0 Cité de l’air Matoto

F3 320000 43 11 43 1 Présence Dixinn Bora Dixinn

F4 510000 71 33 88 1 0 Lansebounyi Matam

F5 160000 66 86 20 1 0 Tombo Kaloum

F6 3600000 0 1 27 1 0 Kobayah Ratoma

F7 9000000 98 23 111 1 Présence Lycée A.S.T Matoto

F8 2000000 37 21 98 1 0 Dixinn Port 2 Dixinn

F9 150000 3 2 153 1 0 Domino Matam

F10 160000 0 0 21 1 0 Sans-fil Kaloum

F11 480 000 11 7 33 2 Présence Lycée 1er

Mars

Matoto

F12 560 000 60 16 47 1 0 Dabondy E. Matoto

F13 670 000 21 14 17 1 0 Fossidet (S.T) Ratoma

F14 350 000 67 22 20 5 0 Concasseur

mosquée

Ratoma

F15 360 000 41 16 31 2 0 Koulewondy

(mosquée)

Kaloum

F16 3 000

000

89 108 3 4 Présence Sandervalia Kaloum

F17 5 000

000

1 1 0 12 0 Bellevue

marche

Dixinn

F18 6 200

000

33 73 3 8 0 Lambanyi Ratoma

F19 4 800

000

Incomptable Incomptable 96 8 0 Béhanzin Matoto

F20 6000 000 17 Incomptable 1 12 0 Matam (ST) Matam

F21 6000000 11 20 2 8 0 Manquepa Kaloum

F22 6600000 25 23 0 12 0 Matam Ludo Matam

F23 6600000 20 15 0 4 0 Dar-Es-Salam Matoto

F24 6900000 28 20 50 8 0 Gbessia cite 3 Matoto

F25 7900000 Incomptable Incomptable Incomptable 12 0 Kénien station Dixinn

F26 9700000 Incomptable Incomptable 0 5 0 Sandervalia Kaloum

F27 9800000 25 16 0 4 0 Petit Moscou Matam

F28 1000000

0

Incomptable Incomptable 0 2 0 Kissosso

plateau

Matoto

F29 1100000

0

Incomptable Incomptable 62 6 0 Simbayah Matoto

F30 1000000

0

Incomptable Incomptable 1 3 0 Bellevue Dixinn

Annexe 17

Tableau 54: Dénombrement des bactéries dans les eaux minérales

N° code FMAT CT CF- CTT Entérocoques Spore

ASR

Salmonelle

Entreprises



Annexe 18 ANALYSE BACTERIOLOGIQUE PAR LA METHODE DE LA PCR

Tableau 55 : Recherche des Salmonella spp., Shigella spp. et Vibrio cholerae dans les

eaux de Puits

Codes Lieux de prélèvement Quartiers Communes Dates Salmo Shigel Vibrio

P1 Fossidet Yattaya Ratoma 5/5/2016 - - -

P2 Cobayah-wariah Cobayah Ratoma 5/5/2016 + - -

P3 Lamabanyi Lambanyi Ratoma 6/5/2016 - - -

P4 Cobayah Cobayah Ratoma 7/6/2016 - - -

P5 Dabompa Dabompa Matoto 5/5/2016 - - -

P6 Béhanzin Béhanzin Matoto 6/5/2016 - - -

P7 Sangoyah Sangoyah Matoto 7/5/2016 - - -

P8 Coléah imprimerie Coléah Matam 6/5/2016 + - -

P9 Lansébounyi Lansébouny

i

Matam 6/5/2016 - - -

Normes ˂100/ ml ˂10/100 ml 0/100 ml 0/100 ml 0/20 ml 0/500 ml

EM1 5300 0 0 0 0 0 Eau Coyah

EM2 6300 42 32 6 0 0 Africa Water

EM3 5300 0 0 0 0 0 Eau Crystal

EM4 5600 2 1 0 0 0 Eau Tassana

EM5 2500 19 18 2 0 0 Eau Mamou

EM6 3700 0 0 0 0 0 Eau pour Tous

EM7 8800 21 19 0 0 0 Eau Nongo

EM8 30000 8 8 0 0 0 Eau Volvica

EM9 11000 9 5 0 0 0 Happy Water

EM10 20000 19 57 3 0 0 Eau Médine

EM11 3600 28 7 0 0 0 Eau Sonfonia

EM12 30000 14 7 0 0 0 Eau Evo

EM13 4200 0 0 0 0 0 Eau Waw

EM14 5500 1 0 0 0 0 Eau Parawol

EM15 6000 1 2 0 0 0 Eau de vie

EM16 72 00 36 21 0 0 0 Eau Good life

EM17 6600 21 5 13 0 0 Basse Côte Yé

EM18 6900 39 15 1 0 0 Eau Obama

EM19 7000 Incomptable Incomptable 0 0 0 Eau Kindia

EM20 7400 Incomptable Incomptable 47 0 0 Eau Kounkouré

EM21 20200 Incomptable 97 1 0 0 Dornèyayé

EM22 30000 Incomptable Incomptable 58 0 0 Eau Hariratou

EM23 30000 0 0 69 0 0 Eau de Guinée

EM24 3000 0 0 0 0 0 Eau Safayé

Kirinany



P10 Lansébounyi Lansébouny

i

Matam 6/5/2016 - - + non

O139

P11 Bellevue marché Bellevue Dixinn 6/5/2016 + - + non

O139

P12 Dixinn-Port Dixinn Dixinn 6/5/2016 - - -

P13 Dixinn-Bora Dixinn Dixinn 6/5/2016 + - + non

O139

P14 San-fil San-fil Kaloum 6/5/2016 - - + non

0139

P15 San-fil San-fil Kaloum 6/5/2016 - - -

Annexe 19


eaux de Forage

Codes Lieux de

prélèvement

Quartiers Communes Dates Salmo Shigel Vibrion

F1 UGLCS Sonfonia Ratoma 5/5/2016 - - -

F2 Kobayah-

wariah

Cobayah Ratoma 5/5/2016 + - -

F3 Lycée de

Kipé

Kipé Ratoma 5/5/2016 - - -

F4 Lycée A.

Sékou Touré

Aviation Matoto 5/5/2016 + - -

F5 Coléah

Domino

Coléah Matam 5/5/2016 - - -

F6 Lansébounyi Lansébounyi Matam 5/5/2016 - - -

F7 UGANC Landréah Dixinn 5/5/2016 + - -

F8 Station Total

Belvédère

Belle-vue Dixinn 6/5/2016 - - -

F8 Station Total

San-fil

San-fil Kaloum 6/5/2016 + - -

F9 Dabndy Ecole Dabondy

Ecole

Matoto 6/5/2016 - - -

F10 Lambanyi Lambanyi Rotama 6/5/2016 - - -

F11 Manquepas Manquepas Kaloum 6/5/2016 - - -

F12 Matam Ludo Matam Ludo Matam 6/5/2016 - - -

F13 Kissosso

plateau

Kissosso

plateau

Matoto 6/5/2016 - - -

F14 Bellvue Belvue Dixinn 6/5/2016 - - -

F15 Sandervalia Sandervalia Kaloum 6/5/2016 - - -

Annexe 20


eaux de Robinet

Codes N° Lieux de

prélèvement


R1 1 Fossidet Yattayah Ratoma 5/5/2016 + - -

R2 2 Cobayah-

wariah

Cobayah Ratoma 5/5/2016 - - -



R3 3 Béhanzin Béhanzin Matoto 5/5/2016 - - -

R4 4 Béhanzin Béhanzin Matoto 5/5/2016 + - -

R5 5 Lansébounyi Coléah Matam 5/5/2016 - - -

R6 6 Dixinn-Port Dixinn-Port Dixinn 5/5/2016 - - -

R7 7 Dixinn-Bora Dixinn-

Bora

Dixinn 5/5/2016 - - -

R8 8 Tombo Tombo Kaloum 6/5/2016 - - -

R9 9 Témenètaye Téménètaye Kaloum 6/5/2016 - - -

R10 10 Manquepa Manquepa Kaloum 6/5/2016 +

R11 11 Bonfi 1 Bonfi 1 Matam 6/5/2016 - - -

R12 12 Dabondy 1 Dabondy 1 Matoto 6/5/2016 - - -

R13 13 Béhanzin Bénhanzin Matoto 6/5/2016 - - -

R14 14 Bonfi routière Bonfi

routière

Matam 6/5/2016 - - -

R15 15 Yattaya Yattaya Rotama 6/5/2016 - - -

Annexe 21


eaux minérales

Codes N° Lieux de

prélèvement


Co 1 UGLC Sonfonia Ratoma 6/5/2016 - - -

EPT 2 Cobayah-

wariah

Cobayah Ratoma 6/5/2016 - - -

Cr 3 UGANC Landréah Dixinn 6/5/2016 - - -

Ma 4 Marché

Matoto

Matoto Matoto 6/5/2016 - - -

EN 5 Lambanyi Lambanyi Ratoma 6/6/2016 - - -

Me 6 Cobayahé Kobayah Ratoma 6/6/2016 - - -

ET 7 Kissosso Kissosso Matoto 6/5/2016 - - -

EK 8 Canadien Lambanyi Ratoma 6/5/2016 - - -

EGL 9 Enco 5 Wanidara Ratoma 6/6/2016 - - -

EV 10 UGLC Sonfonia Ratoma 6/6/2016 - - -

EE 12 UGLC Sonfonia Ratoma 6/5/2016 - - -

AW 13 UGLC sonfonia Ratoma 6/5/2016 - - -

EO 14 UGLC Sonfonia Ratoma 6/6/2016 - - -

HW 15 UGAC Landréah Dixinn 6/6/2016 - - -

Légende : Co = Eau Coyah ; Cr= Eau Crystal ; EPT= Eau Pour Tous ; Me= Eau Médine ;

EN= Eau Nongo ; Ma= Eau Mamou ; ET= Eau Tassana ; EK= Eau Konkouré ; EGL= eau

good life ; EV= Eau Volvica ; EE= Eau Evo ; AW= Africa water ; EO= Eau Obama et HW=

Happy water.

Annexe 22

Méthodes physico-chimiques et chimiques d’Analyses

VIII-10-1Méthodes d’analyses

VIII-10-1-1 Caractéristiques physiques

a – Température



La détermination de la température est faite au laboratoire à l’aide d’un thermomètre

incorporé à l’oxymétre étalonné avant chaque manipulation. On lit directement la température

exprimée en degré Celsius (°c).

b – Le pH

- Principe

Pour cette détermination, nous utilisons une méthode électrométrique avec électrode

combinée selon la norme AFNOR. Cette méthode consiste à plonger dans l’échantillon, une

électrode spécifique.

- Mode opératoire

Le mode opératoire est donné en annexe 1.

c – Turbidité

Principe

Méthode néphélométrique ; le faisceau lumineux traverse horizontalement la cuvette

contenant l’échantillon, une partie de cette lumière est diffusée par effet Tyndall grâce aux

particules en suspension.

Le photomultiplicateur d’électron situé à un angle de 90° par rapport au faisceau lumineux

capte les photons diffusés et transforme cette énergie lumineuse en signal électrique dont le

potentiel est fonction de la turbidité.

Le fonctionnement du turbidimètre est donné en annexe 2.

d – La conductivité

Principe

La détermination de la conductivité se fait par la mesure de la résistance électrique de la

solution. Un voltage est appliqué entre deux électrodes plongées dans l’échantillon, et la chute

du voltage due à la résistance de la solution est utilisée pour calculer la conductivité par

centimètre.

Le mode opératoire est donné en annexe 5

e – Conductivité / solides totaux dissous (TDS)

La conductivité électrique a été déterminée à l’aide d’un conductrimètre électrique qui permet

de mesurer également les solides totaux dissous.

VIII-10-1-2 Caractéristiques chimiques

a– Dureté totale

La méthode spectrométrique est la plus courante par sa capacité à mesurer de très faibles

concentrations de calcium et magnésium.

Principe : L’indicateur utilisé est la colmagite qui forme une coloration bleue-violette en

solution fortement alcaline et vire au rouge en présence de calcium et de magnésium libre.

L’analyse du calcium et du magnésium est effectuée en complexant le calcium avec l’EDTA

pour détruire la coloration due à ces deux éléments (calcium, magnésium). En mesurant la

coloration rouge dans ces différents états, les concentrations du calcium et du magnésium sont

obtenues.


b- Dosage du fer



Principe : Le réactif ferrozine forme un complexe de couleur violette avec les traces de fer

dans l’échantillon tamponné à PH 3,5. Cette méthode peut être utilisée aussi pour l’analyse

des échantillons contenant de la magnétite (oxyde de fer noir) ou des ferrites.


c – Chlorures

Principe : Le chlore présent dans l’échantillon sous forme d’acide hypochloreux et/ou d’ion

hypochlorite réagit immédiatement avec le DPD [ N, N -diethyl-p- phenylène - diamine ] en

même temps que le chlore présent dans l’échantillon pour former une coloration rouge

proportionnelle à la concentration du chlore.

Note : si la solution vire temporairement au jaune après addition du réactif, ou provoque

l’affichage HORS – GAMME, diluer un nouvel échantillon et recommencer l’essai. Une

légère perte de chlore peut se produire lors, de la dilution. Multiplier le résultat par le facteur

de dilution approprié.

d – Dosage des nitrites

Principe : Les nitrites dans l’échantillon réagissent avec l’acide sulfanilique pour former un

sel de diazonium qui réagit avec l’acide chromotropique pour produire un complexe coloré

rose dont la coloration est proportionnelle à la quantité de nitrites présents.

e– Dosage des nitrates

Principe : Les nitrates présents dans l’échantillon réagissent avec l’acide chromotropique en

milieu fortement acide pour former un produit de couleur jaune avec un maximum

d’absorbance à 410 nm.

f– Dosage de l’ammoniac libre

Principe : Cette méthode détermine « l’ammoniac » en présence de monochloramine. La

monochloramine et l’ammoniac libre peuvent exister dans les échantillons d’eau potable

lorsque la désinfection à la chloramine est utilisée. L’hypochlorite est ajouté pour se combiner

à l’ammoniac libre et former plus de monochloramine. La monochloramine réagit avec le

salicylate pour former le 5- aminosalicylate. Ce composé est oxydé en présence d’un

catalyseur au nitroprussiate pour former un complexe coloré bleu. La coloration bleue est

masquée par la coloration Jaune du réactif en excès pour donner une solution finale de couleur

verte.

L’ammoniac libre est déterminé en mesurant les intensités de couleur, avec et sans additions

d’hypochlorite.

Modes opératoires - pH mode opératoire

· Appuyer sur le bouton ON/OFF pour mettre l’appareil sous tension ;

· Rincer l’électrode avec l’eau distillée et l’essuyer avec un mouchoir jetable ;

· Plonger l’électrode dans la solution à mesurer à une profondeur minimum de quatre

centimètres ;

· Attendre que la valeur soit stable avant la lecture ;

· Rincer à nouveau l’électrode avec de l’eau distillée et l’essuyer avec un mouchoir jetable

propre pour réaliser la mesure suivante.

Fonctionnement du turbidimètre

· Appuyer sur le bouton d’alimentation électrique situé à l’arrière de l’appareil ;



· Remplir une cuvette propre jusqu’au trait (30 ml) avec de l’eau à analyser en évitant la

formation de bulle d’air ;

· Tenir la cuvette par le bouchon et l’essuyer avec mouchoir doux sans peluches pour retirer

les gouttes d’eau et les traces de doigts ;

· Placer la cuvette dans le puits de mesure et fermer le capot ;

· Presser la touche SIGNAL.AVG pour choisir le mode d’intégration du signal (actif ou non)

· Presser la touche UNITS pour sélectionner l’unité de mesure N.T.U ;

· Lire et noter le résultat affiché ;

· Ouvrir le capot et retirer la cuvette du puits de mesure ;

· Vider la cuvette et la rincer avant la mesure suivante.

Mode opératoire de la dureté totale.

· Allumer le spectrophotomètre DR/4000, presser la touche de fonction PROGRAM.

HACH. Sélectionner le numéro de programme mémorisé pour la dureté du magnésium

225. presser ENTER et régler la longueur d’onde à 522 mn.

· Verser 100 ml d’eau à analyser dans une éprouvette graduée, bouchée de 100 ml.

· Ajouter une goutte de solution d’EDTA à une autre cuvette (échantillon préparé) et agiter

pour mélanger.

· Placer le blanc dans le puits de mesure, fermer le capot et presser sur la touche ZERO.

L’affichage indique : 0,00 mg / l mg-CaCo3.

· Placer l’échantillon préparé dans le puits de mesure. Fermer le capot · Presser sur la touche

de fonction READ et lire le résultat en mg/l de mg-CaCo3 ou mg.

· Sans retirer la cuvette du puits de mesure, presser select programme et entrer le numéro de

programme mémorisé pour la dureté du calcium 220. Presser ENTER.

L’affichage indique : 0,00 mg/l Ca-CaCo3

· Placer la troisième (3ème) cuvette dans le puits de mesure. Fermer le capot et presser la

touche READ. Lire le résultat en mg/l de CaCo3.

Mode opératoire du dosage du fer

· Allumer le spectrophomètre DR/4000

· Presser la touche de fonction PROGRAM. HACH. Sélectionner le numéro de programme

mémorisé pour le fer (fe), méthode ferrozine en entrant 2175 au clavier numérique. Presser

ENTER.

· L’affichage indique : PROGRAM. HACH : 2175 fer, ferrozine. La longueur d’onde

(d) 562 nm est automatiquement sélectionnée.

· Remplir une cuvette jusqu’au trait 25 ml avec l’échantillon

· Ajouter le contenu d’une gélule de solution de ferrozine à la cuvette (échantillon préparé).

· Agiter pour mélanger.

· Presser la touche de fonction DEMAR.MINUT. Une période de réaction de 5 minutes

commence.

NB En présence de fer, une coloration violette se développe.

· Remplir une autre cuvette (le blanc) avec 25 ml d’échantillon.

· Lorsque le minuteur sonne, placer le blanc dans le puits de mesure. Fermer le capot.

· Presser la touche de fonction ZERO. L’affichage indique : 0,000 mg/l fe

· Placer l’échantillon préparé dans le puits de mesure. Fermer le capot. Le résultat en

mg/l fe s’affiche.

Fonctionnement de l’appareil de mesure de la conductivité électrique :

· Retire l’électrode de son étui de protection

· Rincer l’électrode à l’eau distillée



· Plonger la cellule dans l’échantillon à analyser

· Appuyer sur + ON/OFF pour mettre l’appareil sous tension

· Vérifier que Arng soit affiché si non appuyer sur __

· Verifier que n FL soit affiché sinon appuyer sur TC jusqu’à apparition

· Verifier que la température et l’unité Sal soient affichées sinon sur _ jusqu’à leur

apparition.

· Appuyer sur la touché _ jusqu’à ce que s’affiche TDS sur l’écran

· Attendre que la valeur soit stable avant de prendre la mesure des solides totaux dissous

(TDS)

· Appuyer sur la touché _ jusqu’à ce que s’affiche Lin, ARNG et le lire la valeur de la

Conductivité en 115 /cm

· Retirer l’électrode de la solution à mesurer et mettre dans son étui de protection.

Chlore, mode opératoire

· Mettre l’appareil sous tension

· Entrer le numéro 80 du programme mémorisé pour le chlore libre et total

· Ajuster la longueur d’onde à 530 nm

· Placer le blanc (25 ml d’échantillon).

· Ajuster le zéro de l’appareil en appuyant sur la touche ZERO

· Parallèlement remplier une autre cuvette de 25 ml avec l’échantillon.

· Ajouter le contenu d’un sachet de réactif DPD pour chlore libre à l’échantillon

· Agiter pendant 20 secondes (en présence de chlore une coloration rose se développe)

· Placer immédiatement le mélange d’échantillon plus réactif dans le puits de mesure.

· Appuyer READ et le résultat en mg/l s’affiche.

Annexe 23

MATERIELS - METHODES ET MILIEUX DE CULTURE

1. Matériel

1.1. Matériel de prélèvement

Dans cette étude, 5 échantillons composés de : Eau de Puits, Robinet, Forage .

.Le matériel de prélèvement est constitué des éléments suivants : - Une glacière

- Glace

- Flacon plastique et en verre de 500ml

1.2. Matériel de laboratoire

Il s’agit de matériel classique d’analyse microbiologique du laboratoire de LCVD.

Ce matériel est constitué de :

Autoclave atteignant 121°C

Four Poupinel atteignant 180°C

Bain marie de 47°C

Etuve à 36°C, 42°C, 44°C

Balance

Homogénéisateur (Stomacher)

Sac stomacher

Agitateur magnétique

Bec bunsen

Pipettes stériles de 2ml à écoulement total

Boîtes de pétri stériles 90 mm

Erlenmeyer 250 ml



Tubes à essai de 15 ml

Eprouvette de 100 m

Flacons de 250ml

Loupe compteur de colonie Bioblock 50971

Hotte à flux laminaire

Four pour stériliser la vaisselle

Rampe de filtration

Membrane 0,5µm

Méthodologie

Méthode de prélèvement

La glacière et flacon utilisés sont Lavés. La Glace doit être de bonne qualité pour le transport

des échantillons jusqu’au laboratoire.

3. Milieux de culture

3.1. Eau Peptonée Tamponnée (E.P.T)

(Pré-enrichissement)

Composition g/litre :

Peptone 10g

Chlorure de sodium 5g

Tampon phosphaté 10g

Préparation :

Dissoudre 25g/litre, éventuellement répartir dans les flacons de 250ml ou 500 ml ;

Autoclaver 15 minutes à 121oc ;

pH= 7,2 ± 0,1

Bouillon préparé est limpide et incolore

PLATE COUNT AGAR (PCA) :


Peptone de caséine 5g

Extrait de levure 2,5 g

D(+) glucose 1g

Agar –agar 14g

Préparation :

Dissoudre 22,5g/litre, autoclaver (15min à 121OC).

Pour la mise en évidence des caséolytique, on peut

Ajouter avant la stérilisation 10 ml de lait écrémé ou 1g

De lait écrémé en poudre.

PH

: 7,0 ± 0,1.

Les boites de milieu sont limpides et incolores

6 Agar viande –foie

Composition type /litre

Base viande –foie 20 g

Glucose 0,75 g

Amidon 0,75

Sodium sulfite 1,2 g

Fer citrate ammoniacal 0,5 g

Agar-agar 11 g

Préparation :

Dissoudre 34g/litre, si possible, répartir en flacons ou tubes,

Autoclaver (15min. à121°C).

PH

: 7,4 ± 0,2.



SLANETZ et BARTLEY

Composition type g /litre


Peptone de farine de soja 5g

Extrait de levure 5g

D(+) glucose 2g

Azide de sodium 0,4g

Phosphate dipotassique 4g

Agar -agar 10g

Triphényl2, 3,5, tétrazolium chlorure 0,1g

Préparation.

Ajouter 41g à 1litre de l’eau déminéralisée par chauffage dans un bain- marie bouillant ou un

courant de vapeur, pour stériliser, chauffer encore20 minutes à 1000c dans un courant de

vapeur Ne pas passer à l’autoclave.

PH

: 7,2 ± 0,2.

Agar à l’esculine et à la bile

Composition type g/litre.

Extrait de viande 3g

Peptone de viande 5g

Bile de bœuf 40g

Esculine 1g

Citrate de fer (III) 0,5g

Agar- agar 14,5g

Préparation :

Dissoudre 64g/litre, autoclaver (15min à 1210c. Ne pas surchauffer.

Après refroidissement vers 45-500c, ajouter éventuellement 5

0/0 de sérum. Couler en boites.

PH

: 6,6 ± 0,2.

Les boites de milieu sont limpides et bleuâtre brun.

Agar au Tergitol -7

Composition type g/ litre.

Peptone de viande ; 5g

Extrait de levure ; 3g

Lactose; 10g

Heptadécylsulfate de sodium; 0,1g

Bleu de bromothymol; 0,025g

Agar-agar ; 12g

Préparation :

Dissoudre 54,10g/litre, autoclaver, si besoin ajouter au milieu refroidi à 45 – 500c 4 ml /litre

d’une solution à10/0 de 2,3,5 triphényltétrazolium chlorure, mélanger et couler en boites.

PH

: 6,9 ± 0,1.

Rappaport et vassiliadis (RV)

(Bouillon d’enrichissement des salmonelles)



Peptone de farine de soja 1g



Chlorure de magnésium 36g

Chlorure de sodium 8g

Di potassium hydrogénophosphate 0,4g

Dihydrogénophosphate de potassium 0 ,6g

Vert malachite 0,0036

Préparation :

Dissoudre 50g /litre, éventuellement en chauffant légèrement, verser dans des tubes à essai,

autoclaver avec prudence 15 min à 115°C

pH= 7,2 ± 0,1

Le milieu préparé se conserve au moins 7 mois au réfrigérateur.

Agar lactose et saccharose au vert brillant et au rouge de phénol (BPLS)

(Milieu d’isolement des salmonelles)

Composition type g/litre :


Peptone de caséine ; 5g

Extrait de viande ; 5g

Lactose ; 10g

Saccharose ; 10g

Chlorure de sodium ; 3g

Phosphate di sodique ; 2g

Rouge phénol ; 0,08g

Vert brillant ; ,0125g

Agar-agar ; 12g

Préparation :

Dissoudre 52g/litre, autoclaver (15 min. à 121°C), couler en boites.

PH

: 6,9 ± 0,1

Les boites de milieux sont limpides et légèrement brunâtre.

Agar à la lysine et au fer

Milieu d’identification des salmonelles)

Composition type g/litre :


Extrait de levure ; 3g

D(+) glucose ; 1g

Monochlorhydrate de L-lysine 10g

Thiosulfate de sodium ; 0,04g

Citrate ferrique d’ammonium ; 0,5g

Pourpre de bromocrésol 0,02g

Agar-agar ; 12,5g

Préparation :

Dissoudre 52g/litre, répartir en tubes, autoclaver

(15 min. à 121°C). Laisser solidifier en position inclinée.

PH

: 6,7 ± 0,1

Le milieu prêt à l’emploi est limpide et gris violet

Tableau 59 : Présentation des colonies sur les milieux de culture

N° Microorganismes Méthodes Milieux de

culture

Couleur des

colonies



1 FMAT NF.EN ISO6222 PCA Diverses couleurs

2 Coliformes totaux NF.EN ISO9308-1 Agar Tergitol

7

jaunes

3 Coliformes fécaux (E.coli) NF.EN ISO9308-1 Agar Tergitol

7

jaunes

4 Entérocoques

(Streptocoques D)

NF.EN ISO7899-2 Rouge avec halo

rougeatre

5 Spores de bactéries ASR NF EN ISO6461-2 Agar Viande

foie

Noires

6

Salmonelles

ISO 6579

-EPT

-Bouillon

rappaport

Agar BPLS

-Agar à la

lysine et au

fer

-Rose

-Rouge avec halo

rouge

-Grise violette

Schémas 12 : Recherche de la FMAT

Dilution 10-1

10-2

10-3

10-4

10-5

Eau à analyser

à 9 ml d’eau

stérile

Gélose

PCA

à 1 ml

1 ml 1 ml 1 ml 1 ml 1 ml



Schéma 13 : Recherche des Coliformes

Phase II - Confirmation

Eau

à analyser

100 ml 10 ml 1 ml 0,1

ml

Milieu Eykman

d’Eikman Incubation 24 h à 43° C

Phase I - fermentation

on

Milieu Endo



(Dénombrement FMAT)

Domaine d’application

Cette méthode de dénombrement des micro-organismes revivifiables (FMAT) présents dans

l’eau sur un milieu de culture nutritif gélosé(PCA) après incubation en aérobiose à 36°C est

applicable à l’analyse des eaux destinées à la consommation humaine, y compris des eaux en

récipients fermés et des eaux minérales naturelles.

Référence : NF EN ISO 6222

Définition

La définition suivante s’applique :

Micro-organismes revivifiables : toute bactérie aérobie, levure ou moisissure, capable de

former des colonies dans le milieu spécifié et dans les conditions d’essai décrites ci-dessous.

Principe

Ensemencement de 1 millilitre d’un échantillon non dilué ou de ses diverses dilutions par

mélange homogène au milieu PCA maintenu en surfusion à une température de 36°C+/-1

pendant 48h.

Calcul du nombre d’unités formant colonie (UFC) par millilitre (ml) d’échantillon à partir du

nombre de colonies formées dans le milieu.

Echantillonnage

Prélèvement des eaux de robinet, puits, forage et eau minérale

Mode opératoire

Préparation

Travailler sous la hotte à flux laminaire ou utiliser le bec bunsen.

Préparer 1 boîte de pétri stérile par échantillon et par dilution. Numéroter les boîtes et noter la

date. Transférer, à l’aide d’une pipette stérile 1ml d’eau à analyser ainsi que des dilutions

dans chacune des boîtes. Faire couler la gélose PCA, environ 15 à 20 ml et homogénéiser

avec l’inoculum. Laisser solidifier.

Incubation

Incuber les boîtes dans l’étuve à 36°C+/-1 pendant 48h.

Comptage des colonies

Compter toutes les colonies y trouvant dans la boite en utilisant le compteur colonies.

Effectuer le calcul en fonction des dilutions.

Expression des résultats

Exprimer les résultats sous la forme du nombre d’unités formant colonies par millilitre

(UFC/ml)

20UFC/ml pour FMAT à 36°C

5. Méthodes de dénombrement.

Méthode de routine pour le Dénombrement de la flore aérobie mésophile totale (FMAT). par

comptage des colonies à 36°C NF.EN ISO6222

1ml 1ml 1 ml

3. Séries de dilutions 1:10 1:100 1:1000



4. ENSEMENCEMENT Transférer 1ml de chaque dilution dans une boîte de Pétri

Pétri + 15-20 ml de Gélose PCA

5. Incubation 36 0 C pendant 48 heures

6. comptage compter les boîtes qui contiennent 30 –300 colonies

7. Expression Unité Format Colonie UFC

C

V (n1+0,1x n2) d

Où :

c = est la somme des colonies caractéristiques comptées sur les deux boîtes retenues

V = correspond au volume

n1= Nombre de boite de la première dilution

n2= Nombre de boite de la deuxième dilution

D = est le taux de dilution correspondant à la première dilution la plus forte)

Arrondir les résultats calculés à deux chiffres significatifs.

Pour cela, si le troisième chiffre est inférieur à 5, le chiffre précédent pas à modifier ; si le

troisième chiffre est supérieur ou égale à 5, le précédent est augmenté d’une unité

2-Recherche des coliformes Fécaux ou Escherichia coli dans l’eau.

2.1Objet

Les coliformes Fécaux ou Escherichia coli sont intéressants car un très grand nombre

d’entre eux vivent en abondance dans les matières fécales des animaux à sang chaud et de ce

fait, constituent des indicateurs fécaux de la première importance.

Par ailleurs, les résistances aux agents antiseptiques, au chlore et à ses dérivés sont voisines

de la résistance des bactéries pathogènes vis à vis desquelles ce type de traitement est

instauré. Les coliformes constituent donc des indicateurs d’efficacité de traitement.

2.2Domaine d’application

Cette Etude s ‘applique aux coliformes fécaux ou Escherichia coli dans les échantillons des

eaux.

2.3 Référence

Norme NF EN ISO 9308-1.

2.4 Définition

.Coliformes fécaux ou Escherichia coli : Entérobactéries coliformes pouvant former des

colonies à la température de 44°C+/-1.

2.5 Principe

La méthode comprend plusieurs étapes ; dont les principales sont les suivantes :

-filtration de 100ml d’eau sur une membrane de 0,45µm

-dépôt des membranes sur gélose lactosé TTC et au Tergitol 7

-incubation à 44°C+/-1 pendant 24h voir 48h pour le dénombrement Escherichia coli -

comptage des colonies caractéristiques

44°C



2.6 Echantillonnage

Prélever 500ml d’eau dans le flacon 500ml

2.7 Mode opératoire

2.7.1 Préparation des boîtes :

Avec une boîte contenant la gélose Tergitol 7 TTC. Numéroter coliformes fécaux ou

Escherichia coli 44°C

2.7.2 Filtration :

Le bec bunsen doit être allumé près de la rampe pendant la filtration.

Allumer le bec bunsen stérilisé la pince en la plongeant dans le flacon d’alcool et la passer

sur la flamme. A l’aide de la pince, déposer sur le support de la rampe de filtration une

membrane Recouvrir la membrane d’un entonnoir et le fixer à la rampe à l’aide d’une pince

Verser 100ml ou 250 ml d’eau à analyser dans l’entonnoir. Mettre la pompe en marche et

ouvrir le robinet de la rampe de filtration. Attendre que la totalité du volume soit filtré.

Fermer le robinet et enlever l’entonnoir. Réaliser les dilutions si nécessaires.

2.7.3 Dépôts des membranes :

Le bec bunsen doit être allumé près de la rampe pendant le dépôt.

Prendre la membrane avec la pince, préalablement stérilisée à l’alcool puis sur la flamme, et

le déposer sur la boîte de pétri préparée comme indiqué ci- dessus. Veiller à ne pas

emprisonner de bulles d’air sous la membrane. La pince doit être stérilisée avant chaque dépôt

ou retrait de membrane du support.

2.7.4 Incubation

Incuber la boîte dans l’étuve à 44°C+/-1 pendant 24 h. Dans le cas où aucune colonie n’est

apparue après 24h, une seconde lecture est faite après 48h pour des cas ou les colonies ne sont

pas typiques.

2.7.5 Comptage des colonies

Examiner les membranes et considérer comme bactéries lactose positives toutes les colonies

typiques, quelle que soit leur taille, aussi sur la membrane les colonies présente une coloration

jaune.

Pour le test d’indole repiqué de préférence toutes les colonies typiques obtenues ou un

nombre représentatif (au moins 10) dans un tube contenant le bouillon au tryptophane

(8.6) à l’aide d’une anse ou d’une pipette pasteur.

Incuber le tube à 44 ± 1°c pendant 24 h et contrôler la production d’indole en ajoutant 0,2ml

à 0,3 ml de réactif de kovacs . L’apparition d’une coloration rouge à la surface du bouillon

confirme la production d’indole.

Considérer toutes les colonies ayant une réaction positive à l’indole, comme étant des E. coli

2.7.6 Expression des résultats

A partir du nombre de colonies caractéristiques dénombrées sur les membranes et en tenant

compte du résultat de test d’indole de confirmation effectué, calculer le nombre E. coli, de

bactéries coliformes fécaux présentes dans 100ml d’échantillon.

Lecture coliformes thermotolérants

Déposer la membrane sur la Gélose

lactosée au TTC et Tergitol 7 Sèche et solide

Filtration sur membrane 0,45µm

100ml ou 250ml

Incubation :

24 à 48 h à 44°C

Tes

t co

nfi

rmat

if

E. co

li

10 colonies



Réaction positive donne

Une coloration jaune des colonies sur la

membrane.

Résultat : considérer toutes les

colonies ayant une réaction

positive à l’indole, comme étant

des E. coli

Résultat : nombre de bactéries lactose positives/ 100 ml d’eau

Recherche et dénombrement des entérocoques intestinaux dans l’eau. Méthode par

filtration sur membrane

Objet :

La procédure décrit l’ensemble des étapes nécessaires pour la recherche et le

dénombrement des entérocoques intestinaux (Streptocoques fécaux du groupe D) dans l’eau.


La présente procédure spécifie une méthode pour la recherche et le dénombrement des

entérocoques intestinaux dans les eaux de boisson, les eaux de piscine et d’autres eaux

désinfectée ou propre. L’abondance de matières en suspension peut empêcher l’application de

cette méthode.

Référence

Norme NF EN ISO 7899

Définition

Entérocoques intestinaux : bactéries capables de réduire le chlorure de 2, 3,5 triphényl-

tetrazolium en formazan et d’hydrolyser l’esculine à 44°C sur les milieux Slanetz et Bartley et

gélose à la bile, à l’esculine et à l’azoture.

Principe

Ce principe est fondé sur la filtration, de 100ml d’eau ou 250ml si il s’agit d’une eau

minérale, à travers une membrane filtrante ayant une porosité de 0.45µm. Le filtre est placé

sur la gélose Slanetz et Bartley. Après incubation à 37°C pendant 48h, on confirme en

transférant la membrane sur la gélose à la bile, à l’esculine et à l’azoture (BEA). Les

entérocoques intestinaux hydrolysent l’esculine sur ce milieu en 2h. Le produit de la réaction,

la 6-7-dihydroxycoumarine, se combine aux ions ferriques pour donner un composé brun à

noir qui diffuse dans le milieu. On incube la gélose à 44°C pendant 2h.

Echantillonnage

Prélever 500ml d’eau dans le flacon 500ml

Mode opératoire

Préparation des boîtes pour la filtration:

2 boîtes de pétri l’une contenant la gélose Slanetz , l’autre Bartley. Numéroter les boîtes et

noter la date.

Bouillon au tryptophane Incubation :

24h à 44°C

0,2ml ou 0,3ml

réactifs Kovacs Production d’indole

Bouillon au tryptophane



Filtration :

Le bec bunsen doit être allumé près de la rampe pendant la filtration.

Allumer le bec bunsen, stériliser la pince (6.8) en la plongeant dans le flacon d’alcool (8.2) et

la passer dans la flamme. A l’aide de la pince, déposer sur chaque support de la rampe de

filtration une membrane. Recouvrir la membrane d’un entonnoir et le fixer à la rampe à

l’aide d’une pince.

Verser 100ml d’eau à analyser dans l’entonnoir. Dans le cas d’une eau minérale, filtrer

250ml. Mettre la pompe en marche et ouvrir les robinets. Attendre que la totalité du volume

soit filtré. Fermer les robinets et enlever l’entonnoir. Réaliser les dilutions si nécessaire.

Dépôts des membranes :

Le bec bunsen doit être allumé près de la rampe pendant le dépôt.

Prendre les membranes avec la pince , préalablement stérilisée à l’alcool et sur la flamme, et

les déposer chacune dans une boîte de pétri préparée comme indiqué au 9.1. Veiller à ne pas

emprisonner de bulles d’air sous la membrane. La pince doit être stérilisée avant chaque dépôt

ou retrait de membrane du support.

Incubation

Incuber la boîte dans l’étuve à 37°C+/-1 pendant 48h. Incuber l’autre boîte dans l’étuve à

44°C+/-1pendant 24h. Dans le cas où aucune colonie n’est apparue après 24h, une seconde

lecture est faite après 48h (24+24) d’incubation.

Lecture :

Après incubation considérer comme typiques toutes les colonies bombées montrant une

couleur rouge, marron ou rose, soit au centre soit sur l’ensemble de la colonie. S’il y a des

colonies typiques, effectuer une confirmation.

Confirmation :

Transférer la membrane et les colonies, au moyen de pinces stériles, sans retournement, sur

une boîte de gélose BEA à 44°C pendant 2h. Considérer les colonies typiques montrant une

couleur brune dans le milieu environnant comme donnant une réaction positive, et les

compter comme entérocoques intestinaux. Dénombrer-les, sur chacune des boîtes à l’aide de

la loupe Bioblock ou du compteur bic).


Indiquer s’il y a présence ou absence de colonies

Dénombrement des spores de bactéries anaérobies sulfito-réductrices dans l’eau

Objet :

La procédure décrit l’ensemble des étapes nécessaires pour le dénombrement des

spores de bactéries anaérobies sulfito-réductrices dans l’eau.


La présente procédure spécifie une méthode le dénombrement des spores de bactéries

anaérobies sulfito-réductrices dans différents types d’eau, notamment dans le cas où une prise

d’essai de grand volume n’est pas nécessaire..

Référence

Norme NF T90-415.Octobre 1985.

Définition

Spores de bactéries anaérobies sulfito-réductrices : formes de résistance de micro-

organismes se développant en anaérobiose à 37°C en 24h et/ou 48h en gélose viande-foie en

donnant des colonies typiques réduisant le sulfite de sodium.



Principe

Incorporation de 5ml d’eau à analyser, après destruction des formes végétatives des bactéries

par chauffage à 80°C pendant 10min de 20ml d’eau à analyser, au milieu viande foie .

L’incorporation se fait par ensemencement en tube. Les tubes sont incubés à 37°C+/-1

pendant 24 à 48h sous anaérobiose. On dénombre les colonies entourées d’un halo noir.

Echantillonnage

. Prélever 500ml d’eau dans le flacon 500ml

Mode opératoire

Préparation des tubes à ensemencer:

Le jour de l’analyse, faire fondre 4 tubes par échantillon contenant 20ml de gélose viande foie

au bain marie à 100°C. Désaérer soigneusement durant le chauffage. Refroidir rapidement à

55°C environ.

Destruction de la forme végétative :

Faire chauffer les tubes contenants 20ml d’eau à analyser dans un bain-marie à 80°C+/-1.

Vérifier que la température est atteinte en introduisant un thermomètre dans un tube témoin

contenant de l’eau. Maintenir à 80°C+/-1 pendant 10min et refroidir rapidement à environ

55°C.

Ensemencement et incubation :

Ensemencer sous la hotte à flux laminaire ou utiliser le bec bunsen.

Introduire 5ml d’eau analyser issu des 20ml à l’aide d’une pipette stérile, dans un tube

contenant 20ml de viande foie. Mélanger doucement sans incorporer d’air et refroidir

rapidement sous un courant d’eau froide. Incuber les tubes dans l’étuve 37°C pendant 24 à

48h.

Lecture :

Faire une première lecture après 24h et une seconde à 48h. Considérer comme résultant d’une

spore de bactérie anaérobie sulfito-réductrice, toute colonie noire entourée d’un halo noir.

Dénombrer à l’aide du compteur colonies bic. Tenir compte des dilutions s’il y a lieu.


Le critère de qualité est 1/20ml.

Recherche des salmonelles dans les EAUX

Recherche des salmonelles dans les eaux.

1. Objet et domaine d’application :

La procédure décrit l’ensemble des étapes nécessaires pour la recherche des

Salmonelles dans les eaux destinées à l’alimentation humaine ou animale.

2. Référence : ISO 6579-2007

3. Définition

Salmonelle : microorganismes formant des colonies typiques sur des milieux sélectifs

solides et possédant les caractéristiques biochimique et sérologiques décrites lorsque l’essai

est exécuté selon la présente procédure.

4. Principe

La recherche de salmonelles nécessite quatre étapes successives.



Tout d’abord un pré enrichissement dans de l’eau peptonée tamponée, incubé à 37°C pendant

20h, puis un enrichissement sur bouillon Rappaport Vassiliadis, incubé à 42°C et bouillon

MKTTn, incubé à 37°C pendant 24h. On isole ensuite les cultures sur gélose au vert brillant

(GVB), rambach et Hecktoen et en incubant à 37°C pendant 24 à 48h. Enfin on réalise l’étape

d’identification en repiquant les colonies caractéristiques sur galerie API 20 E.

5 Echantillonnage

Prélever 500ml d’eau dans 10 flacons 500ml

6 Mode opératoire

Préparation :

6.1.2 Pré enrichissement

Filtrer 5000 ml à analyser sur membrane de 0,5µm introduire la membrane dans un sachet

stomacher. Ajouter 225 ml d’eau peptonée tamponnée puis homogénéiser au stomacher

pendant 60 sec. On obtient ainsi une suspension mère.

Incuber les 250 ml de suspension mère à 37°C pendant 20h.

6.1 .3 Enrichissement :

Transférer 0,1ml de la culture obtenue en 8.1.2. dans un tube contenant 10ml du milieu

rappaport Vassili adis

.Incuber ce dernier tube à l’étuve à 42°C pendant 24h.

6.1.4 Isolement :

Après Enrichissement, prélever à l’aide d’une anse, étaler à la surface la boîte pré coulée de

Gélose au Vert Brillant par stress.

Incuber la boîte dans l’étuve à 37°C pendant 24h.

6.1.5. Recherche

Examiner la boîte afin de rechercher la présence de colonies typiques de salmonelles.

Si le développement est faible, incuber de nouveau les boîtes pendant 24h à 37°C.

Rechercher une dernière fois la présence de salmonelles.

6.1.6 Confirmation à l’aide d’une galerie API 20 E :

Prélever sur la boîte d’isolement après incubation au moins deux colonies considérées comme

typiques. Réaliser une suspension bactérienne puis ensemencer sur la galerie API 20.

Incuber la galerie dans l’étuve à 37°C (5.11) pendant 24h. Réaliser alors la lecture en se

référant au catalogue API 20 E.

6.1.7 Expression des résultats

Ecrire le résultat de la recherche (absence/présence) sur la feuille de paillasse. Reporter le

résultat sur le rapport d’analyse. Les critères de qualité son propre à chaque produit, se

reporter à la procédure de ce dernier

SCHEMA Recherche Salmonelles dans les eaux

1 SUSPENSION Mère filtré sur membrane 5000 ml Eau + EAU PEPTONEE TAMPONNEE

2. HOMOGENISATION



Galerie API 20E

AU STOMACHER 400 pendant 1 min, laisser revivifier 30min

3 3 incubations

4

5

Lecture : colonies caractéristiques

sur le milieu utilisé de salmonelles

présumées

6

Lecture : se reporter aux directives API 20E.

6.2 A l’aide Agar à la lysine et au fer

Lecture :

Microorganismes Couche épaisse Plan incliné Formation de H2S

Salmonelles Violette Violet Noir

Résultat : absence ou présence / 500 ml d’eau .

ANNEXE 24

VIII-11-Analyses génétiques par PCR [177]

- Matériel de laboratoire : le matériel doit être composé :

Automate, d’autoclave, hotte à flux laminaire, congélateur, RT-PCR, pipettes Pasteur,

verrerie, boites de Pétri, anse, Electrophorèse, microscopes,

- Système de pipetage (pipettes monocanal et multicanaux avec cônes correspondants)

garantissant l'absence de contamination entre les solutions pipetées.

- Portoirs,

-Tubes Eppendorf de 1.5 ml,

- Embouts à filtre,

-Gants

-Conteneur de table pour recevoir des matières et instruments usés.

- EPI (Equipement de Protection Individuelle)

- Thermocycleur pour PCR en temps réel (Rotor Gene 6000) ;

- Appareil de filtration de type M80 de fabrication allemande (Repulsion motor)

0-5000trs /min)

-Incubateur ;

- micro centrifugeuse

- Agitateur de type Vortex® ;

- boites de pétri, 50-60 mm

- Réfrigérateur / chambre froide ;

- Congélateur -18°C;

- Système de visualisation et d'enregistrement du produit amplifié ;

Bouillons d’enrichissement sélectifs : Bouillon de Bolton, Bouillon de Preston, Bouillon

d’Exeter, Bouillon de Park et Sanders, CCDB,

1 colonie 1 colonie

1 oëse 1 oëse

Incubation : 24 h à 37°C Incubation : 24 h à 37°C 6.1 Galerie API 20 E

1 ml 0,1ml

Incubation : 24 h à 37°C Incubation : 24 h à 37°C

Incubation : 24 h

à 42°C Incubation : 24 h à

37°C Gélose sélective 1 gélose

au vert brillant Sèche et solide

Gélose sélective 2

gélose Rambach

ou Heck Sèche et solide

Suspension mère

10 ml MKTTn

Bouillon Rappaport-Vassiliadis Vert, 10ml

Incubation : 24 h à 37°C Pré-enrichissement

Enrichissement

Isolement

Identification



- Solution de NaCl 0,9%

- Kit d’extraction d’ADN

- Kit d’amplification en temps réel ;

Milieux solides sélectifs contenant du sang :

• Gélose de Preston

• Gélose de Skirrow

• Gélose de Butzler

• Campy-cefex

Milieux solides contenant du charbon :

• mCCDA (milieu gélosé modifié au charbon, à la céfoperazone et au désoxycholate), version

légèrement modifiée du milieu initialement décrit CCDA).

• Gélose Karmali ou CSM (milieu sélectif au charbon)

• Gélose CAT agar (céfoperazone, amphotéricine B et teicoplanine), favorisant la croissance

de C. upsaliensis.

La Polymerase Chain Reaction (PCR) est une méthode basée sur la multiplication sélective

de séquences d'ADN cibles. C'est un procédé d'amplification moléculaire qui mime le

processus naturel de synthèse de l'ADN.

Cette technique analytique permet de détecter des séquences d'ADN spécifiques présentes

dans un produit. C'est une technique appliquée pour la détection d'OGM, mais aussi pour la

détection d'allergènes ou l'identification d'espèces.

Les séquences cibles peuvent être des promoteurs ou terminateurs d'une construction

génétique, dans le cadre d'un screening, ou bien des séquences spécifiques.

La PCR en temps réel

La PCR en temps réel combine l'amplification avec la détection et la quantification d'un

signal fluorescent.

Dans le cadre des OGM, la quantification est effectuée par le ratio ADN OGM / ADN total de

l'espèce cible.

Etapes de la PCR

Etape 1 : Dénaturation



Pendant la dénaturation, réalisée à une température de 95°C, l'ADN double-brin est séparé en

ses deux brins d'ADN constitutifs.

Etape 2 : Hybridation

Lors de l'étape d'hybridation, un oligonucléotide (la sonde) s'apparie à la séquence d'ADN qui

lui est complémentaire. Deux molécules spécifiques, le rapporteur et le quencher bordent les

extrémités de cet oligonucléotide. Le quencher piège la fluorescence du rapporteur tant que

l'un et l'autre sont liés à la sonde non dégradée. Pendant l'hybridation, la sonde s'apparie à

l'ADN de l'échantillon à une température de 70°C si l'échantillon contient la séquence cible

recherchée.

Etape 3 : Polymérisation

Un deuxième oligonucléotide, l'amorce, s'hybride en amont, à quelques paires de bases de

distance de la sonde. Une enzyme, l'ADN polymérase initie à 60°C la synthèse de l'ADN à

partir de l'amorce en direction de la sonde.



Etape 4 : Emission de fluorescence

Durant cette dernière étape, l'enzyme dégrade la sonde et poursuit la synthèse du second brin

d'ADN. Il en résulte que le rapporteur n'est plus localisé à proximité du quencher. La

fluorescence émise par le rapporteur n'est alors plus piégée. Le signal fluorescent peut être

quantifié.

Les étapes 1 à 4 sont répétées de 35 à 50 fois. À la fin de ce processus, la quantité d'ADN

génétiquement modifiée est déterminée par la mesure de la fluorescence. Ce système est très

sensible et permet souvent de détecter moins de dix copies d'ADN génétiquement modifiées.

VIII-11-1 Protocole de la PCR [178, 179]

VIII-11-1-1 Matériel

VIII-11-1-2 Analyse des échantillons par la méthode de la PCR en temps réel

Mode opératoire :

VIII-11- 1-3 Extraction de l’ADN

Le protocole fourni par le fabriquant du kit d’extraction (« Ribo - Sorb Rotor-Gene 6000

Amplisens®) »a été suivi (Annexe)

Principe du « kit FEP/FRT Salmonelles, Shigelles et Vibrio.» : Le kit « FEP/Salmonella

spp., Shigella spp. et Vibrio cholerae.» est un test PCR en temps réel pour la détection de

Salmonelles, de Shigelles et de Vibrio dans l’eau. L’ADN est extrait à partir des échantillons,

puis amplifié en temps réel avec un reporteur fluorescent coloré à sonde spécifique de

Salmonelles, de Shigelles et de Vibrio et un contrôle interne (IC). Le contrôle interne sert de

contrôle d’amplification pour chaque échantillon traité et permet de détecter une inhibition de



la réaction d’amplification pour chaque échantillon. Le gène cible d’amplification est

23ctxAB/Vibrio; 23FRT/Salmonella ; 23FEP/Shigella.

VIII-11-1-4 Préparation des mélanges réactionnels pour l’amplification

Le volume total de la réaction d’amplification pour chaque échantillon a été de 25μl (15μl de

PCR-mix et 10μl ADN).

Lors de la détection de Salmonelles, Shigelles et Vibrio pour N échantillon on a introduit dans

un tube : 10 × (N+1) μl de RT-PCR-mix-1(Salmonelles, Shigelles et Vibrio). /IC, 5,0 × (N+1)

μl de PCR-mix-2 et 0,5 × (N+1) μl de TaqF Polymérase. Le tube a été agité au vortex puis

centrifugé brièvement.

Chaque échantillon, contient 15μl du mélange réactionnel pour Salmonella spp., Shigelles et

Vibrio cholerae. et on ajoute à chaque puits 10μld’ADN de l’échantillon correspondant.

Avant l’ajout de ces 10μl, l’extrait d’ADN de chaque échantillon est centrifugé une nouvelle

fois 2mn à 13000trs/mn et c’est partir du surnageant que sont prélevés ces 10μl (le culot étant

susceptible d’inhiber la réaction).

Un panel de 2 contrôles a été préparé en ajoutant 10μl d’ADN-tampon dans le puits étiqueté

contrôle négatif, et 10μl de Salmonella, Shigella et Vibrio/ ICC +au puits étiqueté C+

(Salmonelles, Shigelles et Vibrio).

Cônes, tubes Eppendorfs, tubes Falcone, tubes PCR 0,2ml, boîtes de Pétri, micropipettes, mortier, eau stérile.

Stomacher.

Cuve d’électrophorèse horizontale.

Générateur de courant.

Thermocycleur Geneamp PCR system 9700 Applied Biosystems.

Centrifugeuse de paillasse.

Vortex.

Geldock Biorad.

Incubateur EHRET (0-80°C).

VIII-11-1-2 Analyse des échantillons par la méthode de la PCR en temps réel

VIII.11.1.2.1 Principe du « kit FEP/FRT Salmonella spp./Shigella spp./Vibrio cholerae » : Le kit « FEP/FRTSalmonella spp./Shigella spp./Vibrio cholerae .» est un test PCR en temps réel pour

la détection de Salmonella spp./Shigella spp./Vibrio cholerae . dans l’eau, et les fèces. L’ADN est

extrait à partir des échantillons, puis amplifié en temps réel avec un reporteur fluorescent coloré à

sonde spécifique de Salmonella spp./Shigella spp./Vibrio cholerae. et un contrôle interne (IC). Le

contrôle interne sert de contrôle d’amplification pour chaque échantillon traité et permet de détecter

une inhibition de la réaction d’amplification pour chaque échantillon. Le gène cible d’amplification

est 23ctxAB/Vibrio; 23FRT/Salmonella ; 23FEP/Shigella.



VIII.11.1.2.2 Mode opératoire.

Extraction de l’ADN : Le protocole fourni par le fabriquant du kit d’extraction (« Ribo - Sorb Rotor-Gene 6000

Amplisens®) » a été suivi :

1-Chauffage deʺ Solution de Lyse’’ au thermostat à 65°C jusqu’à la disparition totale des

éventuels cristaux.

2-Disposition sur un portoir du nombre requis de tubes stériles en polypropylène de 1,5 ml

(un tube pour chaque échantillon et un tube pour le contrôle négatif).

3-Ajouter 100 μl de chaque échantillon au tube correspondant.

4-Ajouter de 100 μl de Contrôle Négatif au tube étiqueté contrôle négatif.

5-Ajouter dans chaque tube450μl de Solution de Lyse (Thio cyanate de Guanidine) mélange

au vortex vigoureux et incubation 15 min à 65°C (cette température varie en fonction de la

bactérie) puis ré-centrifugation pendant 5 secondes.

6-Ajouter 10μl de Contrôle Interne, mélange au vortex vigoureux et incubation 5 min à

65°C.

7- Ajouter 30μl de Solution Adsorbente, mélange au vortex vigoureux et centrifugation

pendant 2 min à 13000trs /min.

8-Melange au vortex périodiquement puis centrifugation de tous les tubes 1mn à

13000trs/min.

9-Utilisation de la micropipette avec embouts stériles munis de Filtre pour éliminer le

surnageant de chaque tube sans toucher au culot (en changeant d’embouts entre échantillons).

10-Ajouter 400μl de Solution de lavage 1 à chaque tube, Mélange au vortex vigoureux et

centrifugation 1mn à 13000 trs/min puis élimination du surnageant de chaque tube (comme à

l’étape 9).

11-Ajouter 500 μl de Solution de lavage 2 (éthanol à 70%) à chaque tube, Mélange au vortex

vigoureux et centrifugation 1mn à 13000trs /min puis élimination du surnageant de chaque

tube (comme à l’étape 10).

12-Ajouter 400μl de Solution de lavage 3(d’acétone) à chaque tube, Mélange au vortex

vigoureux et centrifugation 1mn à 13000trs /min puis élimination du surnageant de chaque

tube (comme à l’étape 9).

13-Incubation de tous les tubes avec capuchons ouverts pendant 5 mn à 65°C.

14-Remise en suspension du culot par ajout de 50 μl de DNA-élution à chaque culot.

15-Incubation pendant 5 mn à 65°C et mélange au vortex périodiquement.

16-Centrifugation de tous les tubes pendant 2 mn à vitesse maximale de 13000 trs / min.

Les surnageants contiennent les ADN prêts être amplifiés immédiatement et peuvent être

conservés à -20°C pour une utilisation ultérieure.

VIII.11.1.2.3.Préparation des mélanges réactionnels pour l’amplification :

Tableau 59:Préparation des mélanges de réactifs pour PCR en temps réel

Volume de réactif pour un

teste

Volumes de réactifs pour la quantité de réaction

10 5,00 0,50

Quantité

d’échantillon

à tester

Nombre

de

réaction

PCR -

Mélange-1-

FEP /FRT

PCR -

Mélange-2-

FEP /FRT

Polymérase

(TaqF)

2 6 60 30 3,0

4 8 80 40 4,0

6 10 100 50 5,0

8 12 120 60 6,0

10 14 140 70 7,0



12 16 160 80 8,0

14 18 180 90 9,0

16 20 200 100 10,0

18 22 220 110 11,0

20 24 240 120 12,0

22 26 260 130 13,0

24 28 280 140 14,0

26 30 300 150 15,0

28 32 320 160 16,0

Tous les réactifs ont été agités au vortex puis centrifugé brièvement.

Chaque échantillon, contient 15μl du mélange réactionnel pour Salmonella/Shigella/ou Vibrio

cholerae et on ajoute à chaque Eppendorf 10μld’ADN de l’échantillon correspondant. Avant

l’ajout de ces 10μl, l’extrait d’ADN de chaque échantillon est centrifugé une nouvelle fois

2mn à 13000trs/mn et c’est partir du surnageant que sont prélevés ces 10μl (le culot étant

susceptible d’inhiber la réaction).

Un panel de 2 contrôles a été préparé en ajoutant 10μl d’ADN-tampon dans l’Eppendorf

étiqueté contrôle négatif, et 10μl de Salmonella spp. /Shigellea spp./Vibrio choleraeICC dans

l’Eppendorf étiqueté contrôle positif.

Autre méthode d’analyse par la PCR

Extraction de l’ADN total

L’extraction et la purification de l’ADN constituent une étape clé pour toutes les étapes de

biologie moléculaire. Dans notre cas, l’extraction est réalisée directement sur du merguez

contaminé par une souche de Sal/Shi/Vibrio, pour Salmonella indirectement en utilisant un

milieu liquide de pré-enrichissement comme dans le cas de la recherche bactériologique.

Pré-enrichissement

Le pré-enrichissement de merguez contaminé est effectué par la dilution (au 1/10) de

25g de cette viande dans 225 ml d’eau peptonée tamponnée dans un sachet stomacher stérile

et ceci sous hotte aspirante.

Le mélange est broyé dans un stomacher, puis aliquoté dans des flacons de 50 ml stériles.

Les aliquots sont incubés à 37°C pendant 18 à 24 heures puis stockés à -20°C.

Préparation des mélanges réactionnels pour l’amplification

Le volume total de la réaction d’amplification pour chaque échantillon a été de 25μl (15μl de

PCR-mix et 10μl ADN).

Lors de la détection de Sal/Shi/Vibrio, pour N échantillon on a introduit dans un tube : 10 ×

(N+1) μl de RT-PCR-mix- Sal/Shi/Vibrio. /IC, 5,0 × (N+1) μl de PCR-mix-2 et 0,5 × (N+1)

μl de TaqF Polymérase. Le tube a été agité au vortex puis centrifugé brièvement.

Chaque échantillon, contient 15μl du mélange réactionnel pour Sal/Shi/Vibrio et on ajoute à

chaque puits 10μld’ADN de l’échantillon correspondant. Avant l’ajout de ces 10μl, l’extrait

d’ADN de chaque échantillon est centrifugé une nouvelle fois 2mn à 13000trs/mn et c’est



partir du surnageant que sont prélevés ces 10μl (le culot étant susceptible d’inhiber la

réaction).

Un panel de 2 contrôles a été préparé en ajoutant 10μl d’ADN-tampon dans le puits étiqueté

contrôle négatif, et 10μl de Sal/Shi/Vibrio / ICC +au puits étiqueté C+ Sal/Shi/Vibrio.

Le protocole d’extraction utilisé a été modifié et développé à partir d’un protocole préexistant,

élaboré par l’équipe de Fattouch et al. [29].

Pour extraire l’ADN génomique, nous utilisons le tampon TE (Tris HCl pH8 10mM, EDTA

pH8 2mM), additionné de triton X100 et de β-Mercoptoéthanol: pour 5ml de tampon

d’extraction, 4,9ml de TE est mélangé à 50μl de triton X100 et 50μl de β-Mercoptoéthanol.

· Pour le cas de merguez non pré-enrichi, on découpe 100 mg et on y ajoute, par fractions de

400μl, 1,5ml de Tampon d’extraction (préchauffé à 65°C), ensuite le tout est broyé dans un

mortier.

· Pour le cas de la viande de merguez préenrichie, 15 ml des aliquots cités précédemment

(2.3.1) sont centrifugés pendant 15 minutes à 8000 rpm et l’extraction est ensuite effectuée à

partir du culot. Le tampon d’extraction est ajouté à 700μl à tout le culot obtenu jusqu’à sa

solubilisation.

· L’extraction est également effectuée à partir du liquide de pré enrichissement également par

ajout de 700μl de tampon d’extraction.

Le mélange des 3 produits d’extraction est chauffé à 65°C pendant une heure avec une

agitation toutes les 15 minutes, puis centrifugé pendant 15 minutes à 8000 rpm. Ensuite,

700μl du surnagent est récupéré et 700μl de chloroforme-isopropanol (24/1 v/v) y est ajouté.

Le tout est homogénéisé abondamment par vortex, puis centrifugé encore une fois pendant 15

minutes à 8000 rpm. A 400μl de surnageant obtenu sont ajoutés 40μl (V/10) d’acétate de

sodium 3M et deux à trois volumes d’éthanol absolu (préalablement stocké à -20°C).

Renverser doucement plusieurs fois le mélange obtenu afin d’observer la méduse d’ADN s’il

y a eu lieu, puis incuber toute une nuit à -20°C (ou bien 30’ à -80°C). Après centrifugation

15’ à 8000 rpm, le culot est lavé à l’éthanol 70%, centrifugé (15 minutes à 8000 rpm) puis

séché pendant deux heures sous la hotte et suspendu dans 30μl de TE 1x (Tris – HCl 10mM

pH8, EDTA 2mM pH8).

La technique PCR

La réaction PCR a été effectuée sur plusieurs échantillons: soit l’ADN génomique extrait à

partir de merguez, soit directement à partir des bactéries pour analyser la spécificité des

amorces, notamment pour les témoins positifs et négatifs. Dans ce dernier cas, la

manipulation est une colonie PCR.



Colonie PCR

La technique colonie PCR consiste à extraire l’ADN bactérien par ébullition en effectuant un

choc thermique. Une seule colonie bactérienne isolée sur milieu solide TSA est prélevée puis

mise dans 50μl d’eau stérile et portée à ébullition à 100°C pendant 2 à 5 minutes. La solution

est ensuite centrifugée quelques minutes à 4000 rpm et le surnageant contenant l’ADN est

récupéré.

La réaction de PCR

Le mélange réactionnel est préparé dans un seul tube PCR à raison de 12 μl/tube. 1 μl

d’extrait d’ADN génomique est additionné au tube en présence d’amorces spécifiques 50

μM, les dNTPs à 0,2 mM, du MgCl2 25 mM, le tampon de la Taq polymérase 5X et de l’eau

stérile. 0,12μl de la Taq polymérase (0,6 U/ μl) est ajoutée pour la réaction de polymérisation

en chaîne. Chaque cycle initial se compose d’une dénaturation, d’un appariement et d’une

élongation des amorces. Le dernier cycle se termine par une phase un peu plus longue afin

d’assurer une reconstitution complète de l’ADNc illustré dans la figure 3.

94°C 94°C 68°C 68°C

3 min 30 sec 45 sec 7 min

Th

30 sec

Figure 3 : Les étapes de la PCR

Les séquences des couples d’amorces utilisées ainsi que leurs températures d’hybridation

spécifiques sont résumées dans le Tableau ci dessous

Primers Séquence Th expérimentale Taille des

produits PCR

(pb)

S139 GTGAAATTATCGCCACGTTCGGGCAA 64 284

S141 TCATCGCACCGTCAAAGGAACC

Salss 21 GCTCTTTCGTCTGGCATTATC 55,9 351

Salss 18 AACTTCATCGCACCGTCA



Salss 21 GCTCTTTCGTCTGGCATTATC 52,5 182

Salss 16 CGCGTTCTGAACCTTT

Les primers : séquences et températures d’hybridation et tailles attendues du produit PCR

Optimisation de la PCR

Afin de déterminer les conditions optimales de la PCR, deux paramètres ont été optimisés : la

quantité d’ADN et la concentration de MgCl2. Pour cela les mixes de la PCR ont été préparés

en ajoutant des quantités croissantes d’ADN et de MgCl2, en présence des témoins négatifs.

D’abord, en fixant la concentration en Mg2+ et en variant celle de l’ADN, ensuite en fixant la

concentration d’ADN et en variant la concentration en Mg2+.

Les amorces utilisées pour ces expériences sont SalSS-21-SalSS-18 et SalSS-21-SalSS-16.

Héminested PCR en un seul tube

L’héminested PCR en un seul tube repose sur le principe qu’après la première PCR, le produit

est réamplifié à l’aide d’un couple d’amorces qui est constitué d’un primer sens de la première

PCR Salss 21 et d’un primer antisens Sallss 16 localisé à l’intérieur de la zone amplifiée, La

préparation du mélange réactionnel pour la réaction de l’héminested PCR en un seul tube est

la même que celle citée dans le paragraphe II.4.2. Trois amorces sont utilisées lors de

l’amplification du gène invA permettant d’obtenir deux produits PCR de tailles différents. La

température d’hybridation utilisée pour les trois amorces est 52,5°C.

Analyse de l’ADN par électrophorèse sur gel d’agarose

Les acides nucléiques sont des macromolécules poly anioniques uniformément chargées, nous

pouvons donc les faire migrer dans un champ électrique.

Le gel d’agarose est préparé comme suit :

1,5 g d’agarose est introduit dans 100 ml de tampon TBE1x et chauffé jusqu’à dissolution de

l’agarose (la solution doit devenir limpide). Le gel d’agarose est refroidi à 45°C environ

qu’on ajouter du BET. Le gel est par la suite coulé dans la cuve d’électrophorèse après avoir

déposé le peigne pour former les puits de dépôt. On laisse le gel se polymériser pendant 20

minutes et on l’immerge par la suite par le tampon de migration (TBE 1X). Les échantillons

d’ADN sont mélangés à 1/5 du volume de tampon de dépôt 5x et la migration est ensuite

effectuée à 100 volts, 200 mA. Après migration, la visualisation de l’ADN se réalise grâce à

la présence du BET qui est un colorant fluorescent. Du fait de la planéité de sa structure, cette

molécule possède la propriété de s’intercaler entre les paires de bases des acides nucléiques,

où sa fluorescence dans le visible est exaltée. Elle est révélée par excitation sous illumination

par UV courts (vers 300nm) en plaçant le gel sur le transilluminateur. L’ADN coloré montre

ainsi une fluorescence.



Limite de détection

Une colonie de Salmonelle Thyphimirium isolée est introduite dans 5 ml de LB, la culture est

incubée toute une nuit à 37°C. Après lecture de la D.O à 600 nm, 100 μl de la suspension

bactérienne est dilué dans 9,9 ml d’eau physiologique stérile (dilution 10-2), d’autres dilutions

de l’ordre de 10-4, 10-6 ,10-8 et 10-10 sont réalisées. Pour chaque dilution, on prend 100 μl

qu’on étale sur une boite de LB solide incubée à 37°C. Le dénombrement de ces boites

s’effectuera après deux jours d’incubation.

100 μl de chaque dilution est dilué dans 225 ml d’eau peptonée contenant 25 g de viande

Merguez saine. La solution de pré enrichissement est incubée une nuit à 37°C. Après

l’extraction, l’ADN extraite à partir de chaque dilution est amplifiée par héminested PCR

dans un seul tube en utilisant les trois amorces spécifiques. L’ADN obtenue est quantifié sur

gel d’agarose à 1,5% et visualisée sous UV.

Clonage et préparation des témoins positifs

Le clonage consiste à isoler un fragment d'ADN et à le multiplier à l'identique en l’insérant

dans une molécule d'ADN porteuse appelée vecteur, dans notre cas le plasmide utilisé est le

PGMET-easy. Le clonage est réalisé en deux étapes principales : la ligature et la

transformation.

Ligature

La réaction de la ligation est réalisée dans le tube réactionnel de 10 μl contenant le vecteur

PGEM-T easy, le tampon de la ligation concentré 10 fois, le produit PCR à cloner

(100 ng) et l’enzyme de ligature la T4 DNA ligase à 3 U/ μl et de l’eau stérile. La réaction est

incubée toute une nuit à 4°C.

Transformation bactérienne

On part d’une solution mère de pré-culture incubée une nuit à 37°c dans 5 ml de milieu

LB liquide. La solution bactérienne est par la suite transférée dans 50 ml de LB et incubée à

37°C avec une forte agitation environ 3 heures. La croissance bactérienne est suivie par la

lecture de la densité optique (D.O) à 600 nm (cellules viables) jusqu’à atteindre a valeur de

0,5. La solution microbienne est centrifugée à 4000 rpm pendant 10 minutes. Le culot

récupéré est lavé avec une solution CaCl2 100mM (10-20ml), centrifugé à 4000 rpm pendant

10 minutes. Le culot est suspendu dans 2 ml CaCl2 100mM, agiter doucement et ligoter

100μl par tube.

On ajoute 5μl de produit de ligation par tube de 100μl et on agite d’une façon très douce. On

effectue un choc thermique en incubant 30 minutes la solution dans la glace, puis 3 minutes à



42°C. 400μl de milieu LB liquide sont ajoutés aux tubes qui seront incubés une heure à 37°C

avec une agitation moyenne. La solution est centrifugée à 4000rpm pendant 15 minutes. Le

culot récupéré dans 100μl de LB liquide auquel on ajoute 20μl de X-Gal 80μg/ml. La solution

finale obtenue est étalée sur milieu solide LB-agar additionnée de l’ampicilline à 50 μg/ml.

Sélection des clones transformés

Les bactéries ayant insérées les plasmides se développent sur un milieu contenant

l’ampicilline car elles ont intégré à travers le plasmide le gène le gène qui code la b lactamase,

responsable de la résistance à l'antibiotique. De plus, la coloration bleue/blanche permet de

sélectionner les colonies ayant insérées les plasmides avec l’insert ou le plasmide sans. Cette

identification repose sur le fait que chaque colonie bleue est constituée par un clone de

cellules qui synthétisent la b galactosidase (la b galactosidase catalyse l'hydrolyse du substrat

X-gal, et chaque colonie blanche est constituée par un clone de cellules qui ne synthétisent

pas la b galactosidase fonctionnelle. Il ne peut y avoir hydrolyse de X-gal, il n'y a donc pas de

libération de produit bleuté.

NB : Le protocole d’analyse par la PCR est fonction du fabriquant de l’appreil et les

amorces utilisées pour la détection des molécules d’acide nucléique (ADN et ARN)



FICHE D’ENQUETE



ANNEXE 26

QUESTIONNAIRE POUR « ETUDE DE LA QUALITE PHYSICO-CHINIQUE ET

BACTERIOLOGIQUE DES SOURCES D’EAUX A CONAKRY »

Prénoms et Nom du propriétaire :_________________________________________

Commune : __________________ Quartier : __________________Secteur___________

PARAMETRES SANITAIRES

Présence de couvercle :………………. Absence de couvercle :……

Puisoir fixe :………….. Puisoir non fixe :…..……..

Margelle haute :…………. Margelle basse :……….

Présence d’ordures à proximité :….. Absence d’ordures à proximité :……

WC bétonné :...….. WC non bétonné

Puits en amont de la latrine…….. Puits en aval de la latrine…….

Puits situé à plus de 15 m de la latrine... Puits situé à moins de 15 m de la latrine.

APPRECIATION DE L’ETAT SANITAIRE

(Cocher les cages correspondantes aux appréciations)

Présence de Couvercle Absence de couvercle

Puisoir fixe Puisoir non fixe

Margelle haute Margelle basse

Présence d’ordures à proximité Absence d’ordures à proximité

WC Bétonné WC non bétonné

Puits en amont Puits en aval

Puits à plus de 15 m des latrines Puits à moins de 15 m des latrines

PARAMETRES BACTERIOLOGIQUES

1- Dénombrement des bactéries indicatrices des pollutions :

FMAT Nombre………..…………Coliformes totaux Nombre ……….

Escherichia coli Nombre…………Entérocoques Nombre ………..,

Bactéries ASR Nombre…………..et Salmonelles



2- Recherche et Identification des germes pathogènes par la PCR

Salmonelle : Shigelle : Vibrion :

PARAMETRES PHYSICO-CHIMIQUES ET CHIMIQUES

pH………Température………Turbidité…….TDS…….Conductivité……Potentiel redox…..

Nitrites…..Nitrates…..Fer…..Cholures……Manganèse……Arsenic…..Fluor…..

Candidat : Taliby CAMARA

institut de recherche en biologie appliquee de...

Documents