caractérisation d’un nouveau pigment produit par une ...depot-e.uqtr.ca/7568/1/prix doyen_jessica...
TRANSCRIPT
Jessica Kelly Moisan1,2, Fatma Meddeb1,3, Jodrey Bergeron4, Benoit Daoust4, Marc Beauregard1,2 1. Centre de recherche sur les matériaux lignocellulosiques, 2. PROTEO, Université Laval, 3. Buckman Canada 4. Département de chimie, biochimie et physique, Université du Québec à Trois-Rivières
Utilisation à pH alcalin
Secteur médicale (Transporteur de
médicaments)
Agroalimentation (antioxydant)
Industrie de la peinture (colorants)
Rendement de production augmenté à
5,2 mg/L
Pigment attribué à la famille des
caroténoides
Mise en évience d’ une capacité
antioxydante
Stabilité dans les solvants organiques
Notre équipe est spécialisé dans le criblage et
l’identification de microorganismes à partir
d’échantillons environnementaux
Microbacterium oxydans, une souche produisant
un pigment en présence de lumière, a été
identifiée
Les pigments présentent un grand intérêt en
biotechnologies industrielles (agroalimentataion,
cosmétique, pharmaceutique, matières plastique,
pâtes et papiers …).
Caractérisation d’un nouveau pigment produit par une
souche photochromogénique Microbacterium oxydans
1. Correa-Llantén et al (2012) Antioxydant
Capacity of Novel Pigments from an Antarctic
Bacterium. The Journal of Microbiology Vol
50, No 3: 374-379.
2. Ibrahim A.S.S (2008) Production of
Carotenoids by a Newly Isolated Marine
Micrococcus sp. Biotechnology 7(3): 469-474.
2. Meddeb F, Moisan JK, Beauregard M.
(2015) Wood Decay Bacteria Strains
Producing Extracellular Hydrolitic Enzymes.
Microbes and Environments (Soumis).
3. Meddeb F, Moisan JK, Beauregard M.
(2015) Characterization of Novel pigment-
Produced from photochromogenic
Microbacterium oxydans. Applied
Microbiology and Biotechnology (En
préparation).
Introduction
Méthodologie
Résultats Conclusions
Applications
Références
Remerciements
Production massive de Microbacterium Oxydans
Figure 4: Spectre UV-Vis
Objectifs
Caractérisation biophysique du nouveau pigment
Détermination de la structure du pigment
0,0
0,2
0,4
0,6
0,8
190 240 290 340 390 440 490 540 590
Ab
s
Wavelength (nm)
Caractérisation
0
5000
10000
15000
20000
25000
400 500 600 700 800
Inte
nsi
té d
e f
luo
.
Wavelenght
Figure 5: Spectre
d’émission de fluorescence
Extraction et purification du pigment
Figure 8: Stabilité du pigment dans les solvents organiques Figure 7: Stabilité du pigment en fonction du pH
0,0
0,3
0,5
0,8
1,0
DO
(4
37
nm
)
Solvent
0 J
3 J
10 J0
0,2
0,4
0,6
0,8
1
DO
43
7 n
m
pH
0 J
3 J
10 J
Optimisation de la production
Milieux de culture
Temps d’incubation
Taux d’aération
90
92
94
96
98
100
102
5001000150020002500300035004000
% T
ran
smit
tan
ce
Longueur d'onde (nm)
Milieu Aération
(rpm) Temps (hrs)
XM (g L-1)
PM (mg L-1)
Y P/X
(mg L-1)
LB Broth 100
24 0,0009 0,45 4 48 0,020 0,55 5
215 24 0,034 0,65 6 48 0,050 0,85 8
LB Broth 1/10
100 24 0,0002 0,20 2 48 0,015 0,25 2
215 24 0,025 0,45 4 48 0,015 0,65 5
Optimisation de la production du pigment
Milieu Aération
(rpm) Temps (hrs)
XM (g L-1)
PM (mg L-1)
Y P/X
(mg L-1)
Marine Broth
100 24 0,009 0,7 7 48 0,020 0,9 9
215 24 0,015 0,6 6 48 0,029 0,8 8
Marine Broth 1/10
100 24 0,008 0,8 8 48 0,014 1,2 12
215 24 0,022 0,6 6 48 0,021 0,9 9
Optimisation de l’extraction
Figure 6: Spectre Infra-rouge
Tableau 1: Optimisation de la production de pigment dans
le milieu LB Broth.
Figure 2: Chromatgraphie
sur couche mince après
purification
Caractérisation spectroscopique
Caractérisation de la stabilité
Tableau 2: Optimisation de la production de pigment dans
le milieu Marine Broth.
Figure 1: Comparaison de deux méthodes d’extraction
Purification Capacité antioxydante
Figure 3: 1 mg de pigment
équivaut à 213 µg de Trolox
(TEAC)