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REPUBLIQUE ALGERIENNE DEMOCRATIQUE ET POPULAIRE Ministère de l'Enseignement Supérieur et de le Recherche Scientifique

FACULTE DES SCIENCES

DEPARTEMENT DE BIOLOGIE LABORATOIRE DE PHYSIOLOGIE VEGETALE

MEMOIRE Présenté pour l'obtention du diplôme de

MAGISTER En

PHYSIOLOGIE VEGETALE Option

Ecophysiologie Végétale

Présenté par

r

Intitulé : Action de la salinité sur les caractéristiques physiologiques, biométriques, hydriques et minérales de la fève Vicia faba L. conduite dans un substrat sableux amendé à 7 % de bentonite

Année 2011-2013

Soutenu devant le jury : 15 janvier 2014

Pr. HADJADJ Aoul Seghir Président Université d’Oran. Professeur

Pr. BELKHODJA Moulay Rapporteur Université d’Oran. ProfesseurDr. CHAFI Mohamed Elhabib Examinateur Université d’Oran. M.C.A. Pr. REGUIG Yssad Houcine Examinateur Université de Mostaganem. Professeur

M .GHAMNIA Youcef

REMERCIEUMENT

Je tiens à remercier Mr. BELKHOUDJA MOULAY , professeur à l’université

d’oran , d’avoir eu l’amabilité de diriger ce travail. Qu’il trouve ici, l’expression de ma

profonde et sincère reconnaissance pour tous ses efforts, sa générosité, son savoir, ses

critiques constructives et sa confiance.

J’adresse mes plus vifs remerciements à monsieur HADJADJ AOUL SEGHIR

.Professeur à L’université D’Oran accepté de présider ce jury. Je tiens également à lui

exprimer toute ma reconnaissance pour l’attention qu’il a porte à ce travail.

Je remercie également Mr REGUIG YSSAD HOUCINE, Professeur à l’université

Mentouri de Mostaganem, de m’avoir fait l’honneur d’évaluer mon travail.

.

J’exprime également ma reconnaissance au Docteur CHAFI MOHAMED EL HABIB

maitre de conférence A à L’université D’oran d’avoir eu d’accepter l’amabilité d’accepter de

jurer de ce travail .

Mes sentiments de gratitude sont adressés à :

_ Monsieur MOHAMED ARBAOUI pour son encouragement et son soutien moral.

_ Madame IBSSAR SOUMIA et à Madame GOUACH IMENE pour m’avoir toujours

aidé au traitement de mes mémoires.

J’exprime ma reconnaissance au DIRECTEUR et tout le personnel de lycée

LATROCHE DJILLALI de Mazagron , pour avoir mis à ma disposition le matériel

nécessaire à mon expérimentation.

Je remercie enfin tous les membres du laboratoire de la Post-graduation de

Physiologie végétale qui ont participé de pré ou de loin à la réalisation de ce travail.

Dédicace A la mémoire de mon ange Yassine

A ceux qui m’ont aidé à tout surmonter,

m’ont soutenue et m’ont encouragée :

Mon merveilleux papa et maman,

Ma très chère épouse,

Mes petites filles Sarra, Wiam

Mes adorables sœurs et frères

A ma belle-famille

RESUME Dans ce travail, on a réalisé une étude comparative vis-à-vis de la salinité avec une

association de la bentonite après une et deux semaines de stress . L’impact de la salinité,

appliquée durant une et deux semaines à l’aide de sels combinés NaCl (100 et 200 meq)

et de NaCl+CaCl2 (100 et 200 meq) chez la feve Vicia faba L. L’aspect de la germination,

biométrique, hydrique et nutritionnel ont été retenus comme étant des indices probables de

tolérance au stress salin. Les résultats obtenus indiquent que la fève semble exprimer une

sensibilité à l’action de la salinité aussi bien sous forme de NaCl+CaCl2 que de NaCl, aux

concentrations modérées (100 meq.) au stade de la germination. En effet plus le sel

n’augmente, la précocité, la vitesse, le taux final diminuent et le temps moyen s’allonge.

Le suivi de la production de la croissance en hauteur, de l’évolution de matière

fraîche et de matière sèche ont permis de conclure que la salinité diminue

considérablement la croissance générale de la plante et le rendement en feuilles

après deux semaine de stress. La croissance foliaire et racinaire en longueur et en

volume n’est pas atteinte par le stress salin.

Les résultat des indicateur hydrique tels que la teneur relative en eau (RWC)

démontrent que les différentient concentration salines combine à 7 % de la bentonite

provoque une dévaluation de RWC de la zone basale et médiane des plantes sous

traitement de NaCl 200 meq après une et deux semaines de stress .

Les pertes en eau par la transpiration (RWL) ont accusé une baisse chez les deux zones

(mediane ,basale ) de la plante après deux semaines de stress quelque soit le traitement

comparativement aux plantes témoins .

La salinité a provoqué des variations de teneurs de quelques cations. Ainsi,

l’accumulation du sodium est hautement significative par rapport aux témoins, chez les

feuilles des plantes traitées 200 meq de NaCl après deux semaines de stress ,

l’accumulation de ce cation est non significative. Concernant le K+, , la teneur en K+

diminue au niveau des feuilles de la feve lorsque l’intensité du stress augmente, l’inverse

est observé au niveau des feuilles. En ce qui concerne le calcium, l’effet du stress est

hautement significatif sur l’accumulation de Ca++ au niveau des feuilles sous le traitement

salin de NaCl+CaCl2 à 200 méq, et au niveau des racines sous le même traitement à 100m

et 200 méq.

Enfin , les 7% de bentonite et suggèrent une nutrition minérale nom équilibrée pour les

trois cations Na+ , K+ et Ca++ dans deux organes cibles de la plante en question ,

Mots cle ; Vicia faba L .salinité , bentonite, germination , bilan hydrique ,bilan miniral ,

SUMMARY In this work, we conducted a comparative study in the view of salinity with a combination

of bentonite after one and two weeks of stress. The impact of salinity, applied for one to

two weeks with combination of salts , NaCl (100 and 200 meq ) and NaCl + CaCl2 (100

and 200 meq ) in the broad bean Vicia faba L. The appearance of germination, biometric ,

water and nutrition were identified as probable evidence of tolerance to salt stress . The

results indicate that the bean seems to express a sensitivity to the action of salinity as well

as NaCl + CaCl2 than NaCl at moderate concentrations ( 100 meq . ) .At the germination

stage . Indeed the more salt increases , earliness, the speed , the final rate and decrease the

average time lengthens.

Monitoring the production of height growth , the evolution of fresh matter and dry

matter have concluded that salinity significantly reduces overall plant growth and leaf yield

after two weeks of stress. The leaf and root length and volume growth is not achieved by

salt stress .

The results of the water indicator such as the relative water content (RWC ) show that

there is a difference betewin salt concentration combined with 7% bentonite causes a

devaluation of the RWC and median basal area treatment plants under NaCl and 200 meq

after two weeks of stress.

Water loss through transpiration ( RWL ) has declined in both areas ( median , basal )

of the plant after two weeks of stress regardless of the treatment compared to control

plants.

Salinity has caused some changes in levels of cations. Thus, the accumulation of

sodium is highly significant compared with controls in the leaves of the treated 200 meq

NaCl after two weeks of stress plants , the accumulation of this cation is not significant. On

the K + , K + content decreased in leaves of broad bean when the intensity of the stress

increases , the opposite is observed in the leaves tes showing calcium, the effect of stress

is highly significant on the accumulation of Ca + + in leaves under salt treatment NaCl +

CaCl2 to 200 meq , and the roots under the same treatment to 100m and 200 meq .

Finally, 7 % bentonite and suggest a name balanced mineral nutrition for the three

cations Na + , K + and Ca + + in two target organs of the plant in question ,

Keywords : Vicia faba L , salinity , bentonite , germination ; minéral balance ; water

balance .

ـــــــــــــــــــــــــــــــةــــالصــــــــــــــالـــــــــــــخـــــــــــ

. علي ) البنتونيت(من الطين % 7 خلطها معالملوحة مع لتأثير مقارنة إجراءتم من خالل هذه الدراسة

من اإلجهاد الملحي أسبوعينو أسبوعلفترة نبات الفول

مول ملي 200 و 100(بمقدار NaCl الصوديوم كلوريد لح الطعامم -نوعان من الملح التجربةاستعملنا في هذه

).مكافيءملي مول 200و 100(بمقدار NaCl+CaCl2 وملح الطعام مع كلوريد الكالسيوم )مكافىء

مع حساب النسبة المئوية أسابيعخالل ثالثة االنتاش تطور و سرعة قياستم المرحلة األولي من التجربة في

مقارنة لالنتفاش باللوحظ تباين كبير في سرعة والمدة الزمنية وزن البذور في نهابة هذه الفترة و , منتشه للبذور ال

مقارنة مع لبذور الشاهد اشلالنتنقصان كبير في الوزن الجاف و ارتفاع النسب المئوية مع الشاهد كما لوحظ

ظ انخفاض في نسب البذور و كذا نقصان طفيف لوح NaCl . البذور التي و ضعت في محلول كلوريد الصوديوم

نفس النتائج مع تغيير طفيف لوحظ عند البذور الموضوعة في محلول كلوريد الصوديوم و . في الوزن الجاف

NaCl+CaCl2 كلوريد الكالسيوم

أسبوع حي لمدة المل قسم منه لإلجهاد يوم ثم عرض 48من التجربة ترك نبات الفول ينمو لمدة الثانيةفي المرحلة

ليتم بعدها تحليل مختلف العينات من الناحية المرفولوجة والمائيه و المعدنية كمؤشرات . و القسم األخر ألسبوعين

في عدد كان واضحا حيث اختالف. لوحظ اختالف و تباين في النتائج باختالف تراكيز الملح. لمقاومة الملوحة

ملي مول 200ضافة إلي حجم الجذر و مساحة األوراق عند تركيز األوراق ونسبة طول الجذر علي الساق باإل

ملي مول مكافيء 200مكاقيء من كلوريد الصوديوم و خليط كلوريد الصودبوم و كلوريد الكالسيوم

بالنسبة للمحتوي المائي ونسبة تبخر الماء لوحظ انخفاض شديد عند النباتات المعرضة لإلجهاد بالمقارنة مع

.هد خاصة في المنطقة الوسطي والسفلية للنبات بالمقارنة مع الشاهدالشا

لحي في تغير و تراكم بض االيونات في مستوي األوراق و الجذور رغم وجود الم اإلجهادعالوة علي ذلك تسبب

البنتونيت حيث لوحظ زيادة تركم الصوديوم في األوراق كلما زادت نسبة الملح مع انخفاض في نسبة تراكم

كما لوحظ ارتفاع في نسبة تراكم شوارد الكالسيوم عند النباتات المعرضة لخليط .البوتاسيوم و ارتفاعها في الجذور

.ملي مول مكافيء 200كلوريد الصوديوم وكلوريد الكالسيوم بالمقارنه مع الشاهذ خاصة عن دتزكيز

زن مابين الشوارد و بالتالي إحداث مقاومة من البنتونيت غير مجدية إلحداث نوا %7في األخير لحظنا ان نسبة

.فعالة لإلجهاد الملحي

(العناصر المعدنية , نبات الفول البنتونيت االجهاد الملحي القياسات الحيوية االنتاش : الكلمات المفتاحية

Na+ , K+ وCa++ (

LISTE DES FIGURES Figure1 différents organes de la fève (Vicia faba L.)………………………………16 Figure2 Cinétique de la germination des graines germées(en %) en boîte de Pétri durant trois semaines de stress salin au NaCl et au NaCl+CaCl2…………………………………………………………………………………………………………31. Figure 3 Coefficient de vélocité (cv) et temps moyens de germination (Tm) des graines de la fève Vicia faba.L durant trois semaines de stress salin au NaCl et au NaCl+CaCl2………………………………….33 . Figure4 Taux final (%) de la germination des graines germées de la fève Vicia faba.L durant trois semaines de stress salin au NaCl et au NaCl+CaCl2………………………………………………………….34 . Figure 5 Poids sec perdus des graines germées de la fève Vicia faba.L après trois semaines de stress salin au NaCl et au NaCl+CaCl2. …………………………………………………………………………..35 Figure 6 Nombre des feuilles des plantes de Vicia faba.L mesuré après une et deux semaines de stress salin au NaCl et au NaCl+CaCl2……………………………………………………………………………………………………………………………..36 Figure 7 Rapport longueur de la racine /longueur des tiges des plantes de Vicia faba.L mesuré après une et deux semaines de stress salin au NaCl et au NaCl+CaCl2 ……………………………………………………37 Figure 8 Rapport biomasse séchée biomasse racinaire /biomasse aérienne (BSR/BSA) des plantes de Vicia faba.L mesuré après une et deux semaines de stress salin au NaCl NaCl+CaCl2……………………………38 Figure 9 Volume des racines des plantes de Vicia faba.L mesuré après une et deux semaines de stress salin au NaCl et au NaCl+CaCl2…………………………………………………………………………………….40 Figure 10 La surface foliaire des plantes de Vicia faba.L mesuré après une et deux semaines de stress salin au NaCl et au NaCl+CaCl2……………………………………………………………………………………41 Fig.11- Teneur relative en eau en % (RWC) de la partie aérienne chez Vicia faba. L traitée avec NaCl et NaCl+CaCl2 après une et deux semaines…………………………………………………………………….42 Figure 12 Teneur relative en eau en % (RWC) dans les différentes zones (apicale, médiane et basale) chez Vicia faba. L traitée, après une semaine, avec NaCl et NaCl+CaCl2. ………………………………………44 Figure 13 Teneur relative en eau en % (RWC) dans les différentes zones (apicale, médiane et basale) chez Vicia faba. L traitée, après deux semaines, avec (NaCl et NaCl+CaCl2)…………………………………….44 Figure 14 Teneur relative en eau (RWC%) dans les zones (apicale, médiane et basale) chez Vicia faba. L traitée, après une semaine, avec NaCl ………………………………………………………………………45 Figure 15 Teneur relative en eau en % (RWC) dans les zones (apicale, médiane et basale) chez Vicia faba. L traitée, après une semaine, avec NaCl et NaCl+CaCl2…………………………………………………….46 Figure 16 La perte d’eau par transpiration (RWL) de la partie aérienne chez Vicia faba. L traitée, après une semaine, avec NaCl…………………………………………………………………………………………47 Figure 17 La perte d'eau par transpiration (RWL) de la partie aérienne chez Vicia faba. L traitée, après deux semaines, avec NaCl……………………………………………………………………………………48 Figure 18 La perte d'eau par transpiration (RWL) de la partie aérienne chez Vicia faba. L traitée, après une semaine, avec NaCl+CaCl2………………………………………………………………………………….49

Figure 19 La perte d'eau par transpiration (RWL) de la partie aérienne chez Vicia faba. L traitée, après deux semaines, avec NaCl NaCl+CaCl2……………………………………………………………………………50

Figure 20 La Perte d’eau par transpiration (RWL) dans la zone apicale chez Vicia faba. L traitée, après une semaine, avec le NaCl……………………………………………………………………………………….52

Figure 21 La perte d'eau par transpiration (RWL) dans la zone apicale chez Vicia faba. L traitée, après deux semaines,avec NaCl…………………………………………………………………………………………53 Figure 22 La perte d'eau par transpiration (RWL) dans la zone apicale chez Vicia faba. L traitée, après une semaine, avec NaCl et NaCl+CaCl2……………………………………………………………………………54 Figure 23 La perte d'eau par transpiration (RWL) dans la zone apicale chez Vicia faba. L traitée, après deux semaines, avec NaCl+CaCl2………………………………………………………………………………….55 . Figure 24 La perte d'eau par transpiration (RWL) dans la zone médiane chez Vicia faba. L traitée, après une semaine avec NaCl………………………………………………………………………………………56 Figure 25 La perte d'eau par transpiration (RWL) dans la zone médiane chez Vicia faba. L traitée, après deux semaines, avec NaCl……………………………………………………………………………………57 Figure 26 La perte d'eau par transpiration (RWL) dans la zone médiane chez Vicia faba. L traitée, après une semaine, avec NaCl+CaCl2……………………………………………………………………………………59

Figure 27 La perte d'eau par transpiration (RWL) dans la zone médiane chez Vicia faba. L traitée, après deux semaines, avec NaCl+CaCl2………………………………………………………………………………60

Figure 28 La perte d'eau par transpiration (RWL) dans la zone médiane chez Vicia faba. L traitée, après une semaine, avec NaCl…………………………………………………………………………………………61 Figure 29 La perte d'eau par transpiration (RWL) dans la zone médiane chez Vicia faba. L traitée, après deux semaines, avec NaCl…………………………………………………………………………………….62 Figure 30 La perte d'eau par transpiration (RWL) dans la zone médiane chez Vicia faba. L traitée, après une semaine, avec NaCl+CaCl2…………………………………………………………………………………64 Figure 31 La perte d'eau par transpiration (RWL) de la zone médiane chez Vicia faba. L traitée, après deux semaines, avec NaCl+CaCl2…………………………………………………………………………………65 Figure 32 Teneur en sodium (Na+) de feuille et racine des plantes de Vicia faba L. mesuré après une semaine de stress salin au NaCl et au NaCl+CaCl₂………………………………………………………….66 Figure 33 Teneur en sodium (Na+) de feuille et racine des plantes de Vicia faba L. mesuré après deux semaines de stress salin au NaCl et au NaCl+CaCl₂……………………………………………………………………………………67

Figure 34 Teneur en potassium(K⁺) de feuille et racine des plantes de Vicia faba L. mesuré après une semaine de stress salin au NaCl et au NaCl+CaCl₂……………………………………………………………………………………69 Figure 35 Teneur en potassium(K⁺) de feuille et racine des plantes de Vicia faba L. mesuré après deux semaines de stress salin au NaCl et au NaCl+CaCl₂ ………………………………………………………70 Figure 36 Teneur en calcium(Ca⁺⁺) de feuille et racine des plantes de Vicia faba.L mesuré après une semaine de stress salin au NaCl et au NaCl+CaCl₂ …………………………………………………………71 Figure 37 Teneur en calcium(Ca⁺⁺) de feuille et racine des plantes de Vicia faba.L mesuré après deux semaines de stress salin au NaCl et au NaCl+CaCl2 ……………………………………………………………………………………….72. Figure 38 Ratio K+/Na+ de feuille et racine des plantes de Vicia faba.L mesuré après une semaine de stress salin au NaCl et au NaCl+CaCl 2 ……………………………………………………………………………74 Figure 39 Ratio K+/Na+ de feuille et racine des plantes de Vicia faba.L mesuré après deux semaines de stress salin au NaCl et au NaCl+CaCl2……………………………………………………………………….75 Figure 40 Ratio Na+ / Ca+2 de feuille et racine des plantes de Vicia faba.L mesuré après une semaine de stress salin au NaCl et au NaCl+CaCl2 ………………………………………………………………………76 Figure 41 Ratio Na+ / Ca+2 de feuille et racine des plantes de Vicia faba.L mesuré après deux semaines de stress salin au NaCl et au NaCl+CaC…………………………………………………………………….77

LISTE DES TABLEAUX PAGES Tableau 1 Caractéristiques minéralogiques de la bentonite de M'Zila (Mostaganem)…………………..13 Tableau 2 Caractéristiques physico-chimiques de la bentonite de M'Zila (Mostaganem) .........................13 Tableau3 Les nutriments contenus dans 100 g des graines sèches de la fève…………………………….16 Tableau4 Apport nutritionnel pour 100 g …………………………………………………………………17 Tableau 5 Composition de la solution saline……………………………………………………………….19

Tableau 6 Composition de la solution saline……………………………………………………………….20 Tableau 7 Composition de la solution nutritive de (HOAGLAND )……………………………………….21

Tableau 8 Test statistique de signification de Fisher (P= 5%) de la cinétique de germination de la fève Vicia faba.L durant trois semaines de stress salin à l’aide du logiciel SPSS8……………………………………32 Tableau 9 Test statistique de Fisher de la vitesse de germination au seuil de signification de 5% pour les graines de la fève Vicia faba.L durant trois semaines de stress salin au NaCl et au NaCl+CaCl2…………………33 Tableau 10 Test statistique de signification de ficher (P=5%) Taux final (%) de la germination des graines germées de la fève Vicia faba.L durant trois semaines de stress salin……………………………………….34 Tableau 11 Test statistique de signification de ficher (P=5%) de Poids sec perdus des graines de la fève Vicia faba.L après trois semaines de stress salin……………………………………………………………35 Tableau 12 Test statistique de signification de ficher (P=5%) de nombre des feuilles des plantes de Vicia faba.L mesuré après une et deux semaines de stress salin……………………………………………………36 Tableau 13 Test statistiques de signification de ficher (P=5%) de rapport longueur de la racine /longueur des tiges des plantes de Vicia faba.L mesuré après une et deux semaines de stress salin……………………38 Tableau 14 Test statistique de signification de ficher (P=5%) du rapport biomasse séchée biomasse racinaire /biomasse aérienne (BSR/BSA) des plantes de Vicia faba.L mesuré après une et deux semaines de stress Salin…………………………………………………………………………………………………..39 Tableau 15 Test statistiques de signification de ficher (P=5%) de volume des racines des plantes de Vicia faba.L mesuré après une et deux semaines de stress salin……………………………………………………40 Tableau 16 Test statistique de signification de ficher (P=5%) de la surface foliaire des plantes de Vicia faba.L mesuré après une et deux semaines de stress salin……………………………………………………42 Tableau 17 Analyse statistique à l’aide de test de Ficher (à p=5%) de la teneur relative en eau (RWC) de la partie aérienne chez Vicia faba. L traitée, après une et deux semaines, avec NaCl et NaCl+CaCl2………….43 Tableau 18 Analyse statistique à l’aide de test de Ficher (à p=5%) de la teneur relative en eau (RWC) dans les différentes zones (apicale, médiane et basale) chez Vicia faba. L traitée, après une semaine, avec (NaCl et NaCl+CaCl2) ………………………………………………………………………………………………….45 Tableau 19 Analyse statistique à l’aide de test de Ficher (à p=5%) le RWC dans les zones (apicale, médiane et basale) chez Vicia faba. L traitée, après deux semaines, avec NaCl et NaCl+CaCl2……………………………46

Tableau 20 Analyse statistique à l’aide de test de Ficher (à p=5%) de la perte d’eau par transpiration (RWL) de la partie aérienne chez Vicia faba. L traitée, après une et deux semaines, avec NaCl…………….49 Tableau 21 Analyse statistique à l’aide de test de Ficher (à p=5%) de perte d’eau par transpiration (RWL) de la partie aérienne chez Vicia faba. L traitée, après une et deux semaines, avec NaCl+CaCl2

………………………………………………………………………………………………………………...51 Tableau22 Analyse statistique à l’aide de test de Ficher (à p=5%) des pertes d'eau par transpiration (RWL) dans la zone apicale chez Vicia faba. L traitée, après une et deux semaines, avec NaCl…………………53 Tableau 23 Analyse statistique à l’aide de test de Ficher (à p=5%) de la perte d'eau par transpiration (RWL) dans la zone apicale chez Vicia faba. L traitée, après deux semaines, avec NaCl+CaCl2…………55 Tableau 24 Analyse statistique à l’aide de test de Ficher (à p=5%) de la perte d'eau par transpiration (RWL) dans la zone médiane chez Vicia faba. L traitée, après deux semaines, avec NaCl………………….58 Tableau 25 Analyse statistique à l’aide de test de Ficher (à p=5%) de la perte d'eau par transpiration (RWL) dans la zone médiane chez Vicia faba. L traitée, après deux semaines, avec NaCl et NaCl+CaCl2…60 Tableau 26- Analyse statistique à l’aide de test de Ficher (à p=5%) de la perte d'eau par transpiration (RWL) dans la zone basale chez Vicia faba. L traitée, après une et deux semaines, avec NaCl. ………………….63

Tableau 27 Test statistique de signification de ficher (P=5%) de la perte d'eau par transpiration (RWL) dans la zone basale chez Vicia faba. L traitée, après une et deux semaines, avec NaCl+CaCl₂……………………….65. Tableau 28 Test statistique de signification de ficher (P=5%) de la teneur en sodium (Na+) de feuille et racine des plantes de Vicia faba L. mesuré après une et deux semaines de stress salin……………………68 Tableau 29 Test statistique de signification de ficher (P=5%) de la teneur en potassium (K+) des feuilles et racines des plantes de Vicia faba.L mesuré après une deux semaine de stress salin au NaCl et au NaCl+CaCl₂………………………………………………………………………………………………………………………………………………71 Tableau 30 Test statistique de signification de ficher (P=5%) de teneur en calcium(Ca⁺⁺) de feuille et racine des plantes de Vicia faba.L mesuré après une et deux semaine de stress salin au NaCl et au NaCl+CaCl2……………………………………………………………………………………………………………………………………………………….73

Tableau 31 Ratio K+/Na+ de feuille et racine des plantes de Vicia faba.L mesuré après une et deux semaines de stress salin au NaCl et au NaCl+CaCl2 …………………………………………………..75 Tableau 32 Test statistique de signification de ficher (P=5%) de ratio Na+/Ca++ de feuille et racine des plantes de Vicia faba.L mesuré après une et deux semaines de stress salin au NaCl et au NaCl+CaCl2……….78

LISTE DES PHOTOS

Photo.1- les graines de Vicia faba L ………………………………………………………19 Photo .2- La germination des graines……………………………………………………………..27 Photo.3-Dispositif expérimental adopté a laboratoire après trois jours aprés la germination…….27 Photo.4-Dispositif expérimental adopté à laboratoire après trois semaines après la germination..27 Photo.5-Dispositif expérimental adopté à laboratoire après 06 semaines après la germination …28 Photo.6- Les feuilles trempons dans des tubes a l’eau distillé ………………………….28 Photo.7- Dosage des éléments minéraux par spectrophotomètre à flamme ………………28 Photo8- Effet combinée de la salinité et de la bentonite sur la plante de la féve après une semaine de stress……………………………………………………………………………………………29 Photo.9- Effet combinée de la salinité et de la bentonite sur la plante de la féve après une semaine de stress……………………………………………………………………………………………29 Photo.10- Effet combinée de la salinité et de la bentonite sur la plante de la féve après deux semaines de stress…………………………………………………………………………………30 Photo11 Effet combinée de la salinité et de la bentonite sur la plante de la féve après deux semaines de stress…………………………………………………………………………………30 Photo.12- Effet combinée de la salinité et de la bentonite sur la plante de la féve après deux semaines de stress…………………………………………………………………………………30

LISTE DES ABREVIATIONS U.N.E.S.C.O : United Nations Educational and Cultural Organization UV : Ultra violet USA : United State American. g : gramme ° C : degré Celsius Ph : potentiel hydrométrique m : mètre % : pourcentage NaCl : Chlorure de sodium CaCl2 : Chlorure de calcium HCl : Acide chlotohydrique g/l : grame par litre ha : hectare mn : minute Na+ : Sodium K+ : Potassium Ca+2 : : calcium F.A.O : Food and Agriculture Organisation meq : Milliéquivalent par litre Cv : Coefficient de vélocité. Tm : Temps moyen de germination. MS : Matière sèche MF : Matière fr ais PA : Partie Aérienne RWC : Relative Water Content RWL : Rate Water Lost (transpiration) LT : Longueur des Tiges LR : Longueur des Racines SF : Surface Foliaire BSR : Biomasse Séchée Racinaire BSA : Biomasse Séchée Aérienne cm³ : centimètre cube cm2 : centimètre carré T : Temps H :heure SPSS : Statistical Package of Social science Ps : Poids sec Pf :Poids frais Pi : Poids initial CR : La capacité de Rétention

TABLE DES MATIERES PAGES

Introduction 1

CHAPITRE I : SYNTHESE BIBLIOGRAPHIQUES

I - La salinité 3 1-Définition

2- Définition de sols salés

3-Origine de la salinité des sols

4 - Les différents types de la salinisation

a-Salinisation primaire

b-Salinisation secondaire

5-Importance de la salinité

6-Les effets de l’excès de sels sur les sols

7- Les méthodes de reconnaître les sols salins

8-La salinité et la plante

II - Les stress 7 1-Définition de stress 2-Les formes de stress

a-Biotique b-Abiotique

Stress salin

Stress hydrique

Stress ionique

Stress nutritionnel

3- Les plantes et le stress salin

4-Effets du stress salin sur la plante

a-Sur la germination

b-Sur l’absorption

c- Sur la croissance et le développement

5 – Mécanismes de réponses des plantes au stress

a - La tolérance des plantes au stress salin

b - D'adaptation à la salinité

1-Adaptations morphologiques

2-Adaptations anatomiques

III- La bentonite 12

1-Historique et définition

2-Types de bentonites

3-L'utilisation de la bentonite

4-Caractéristiques physico-chimique de la bentonite de mostaganem

5 -Bentonite en agriculture

IV-La fève Vicia faba L. 14

1-Présentation de la fève

Classification systématique

2-Etude biochimique de la fève

3 - Intérêts écologiques

4 - Intérêts économiques

CHAPITRE II – MATERIEL ET METHODES

I-Matériel végétal 19

II- Méthodes 1-Préparation des boîtes de Pétri

2- Préparation des graines 3-Les solutions saline-

a - Préparation des solutions salines de (Na Cl ) b- Préparation des solutions salines de (Na Cl et CaCl₂)

4– Préparation des pots

5-Préparation du substrat de culture

6-Repiquage des graines germées

7- L’arrosage

III- Application du stress 22

IV- Prélèvement et préparation du matériel végétal

V – Analyse du matériel végétal

1-La germination des graines durant trois semaines de stress salin

1-La cinétique de germination

2-La vitesse de germination

3-Taux final de germination

4- Poids sec perdus des graines

II- Paramètres Biométrique

1-Détermination du nombre des feuilles

2-Rapport longueur de la racine /longueur de la tige (LR/LT) 3-Rapport biomasse séchée racinaire /biomasse séchée aérienne (BSR/BSA)

4-Le volume des racines

5- Surface foliaire (cm2)

III-Paramètres Hydrique a - La teneur relative en eau (RWC) b- La perte d'eau transpiration (RWL)

V- Extraction des éléments minéraux (Na+ - K+ - Ca++ )

VI-Analyse statistique 26

CHAPITRE III – RESULTATS ET DISCUSSIONS Réponses physiologiques, biométriques, hydriques et minérales

I – La germination des graines durant trois semaines de stress salin 31

1-Cinétique de la germination des graines

a – Sous traitement de NaCl

b – Sous traitement NaCl + CaCl2

2 –Vitesse de la germination

a – Sous traitement NaCl


3- Taux final de la germination des graines a – Sous traitement de NaCl


4 – Poids sec perdus des graines a – Sous traitement de NaCl b – Sous traitement NaCl + CaCl2

II – Etude biométriques de la fève Vicia faba.L après une et deux semaines de stress salin 35

1 - Nombre de feuilles après une et deux semaines de stress a – Sous traitement de NaCl


2-Rapport longueur de la racine /longueur de la tige (LR/LT) après une et deux semaines de stress

a – Sous traitement de NaCl b – Sous traitement NaCl + CaCl2

3-Rapport biomasse séchée racinaire /biomasse séchée aérienne (BSR/BSA)


4-Le volume des racines (cm³)


5-Surface foliaire (cm2) a – Sous traitement d b – sous traitement NaCl + CaCl2

III – BIlan Hydrique de la feve vicia faba.L apres une et deux semaines de stress saliin 42

1-La teneur relative en eau (RWC en %) a-La partie aérienne après une et deux semaines de stress salin – Sous traitement de NaCl

– Sous traitement de NaCl + CaCl2

b- Les zones apicale-médiane-basale Après une semaine de stress

– Sous traitement de NaCl – Sous traitement de NaCl + CaCl2

Après deux semaines de stress – Sous traitement de NaCl – Sous traitement NaCl + CaCl2

2-La perte d’eau par transpiration (Relative Water Loss mg.cmˉ².mnˉ¹)

a- partie aérienne – Sous traitement de NaCl

Après une semaine de stress

Après deux semaines de stress




b- La zone apicale – Sous traitement de NaCl






c- La zone médiane

– Sous traitement de NaCl






d- La zone basale – Sous traitement de NaCl






III-Bilan des sels mineraux dans la plante vicia faba.l (feuille et racine) 65

1- Teneur en sodium (Na+)


a– Sous traitement de NaCl b– Sous traitement NaCl + CaCl2



2- Teneur en potassium (K+) Après une semaine de stress



a– Sous traitement de NaCl b– Sous traitement de NaCl + CaCl2

3-Teneur calcium (Ca++)



Après deux semaines de stress a– Sous traitement de NaCl

b– Sous traitement de NaCl + CaCl2

4-Etude du ratio K+/Na+ selon les organes de la plante

Après une semaine de stress a– Sous traitement de NaCl




5-Etude du ratio Na+ / Ca+2 selon les organes de la plante Après une semaine de stress



b– Sous traitement de NaCl + CaCl

DISCUSSION ET CONCLUSION GENERALE 79

REFERENCES BIBLIOGRAPHIQUES

ANNEXES

INTRODUCTION GENERALE

INTRODUCTION GENERALE La faiblesse de la production agricole en Algérie constitue une des principales contraintes

pour répondre aux besoins de la consommation. En effet, la pression démographique à

entraîné la raréfaction des sols cultivés sur les terres et une diminution des jachères.

L’Algérie occidentale se caractérise par une particulièrement importante des

milieux salés. Les zones salées s’étendent surtout dans l’étage bioclimatique semi-aride et

aride à hiver chaud .La zone aride représentent 95 % du territoire national (HALITIM.,

1988)

Les surfaces agricoles affectées dans le monde seraient de 340 millions d’ha, soit

23% des terres cultivées dans le monde (CHEVERRY., 1995). Selon ( SZABOLCS,. 1994), un

milliard d’ha est menacé, dont 3,2 millions d’ha en algérie (BELKHODJA et BIDAI ,. 2004)

La salinisation des sols et de l’eau est l’un des principaux facteurs abiotiques qui

limitent la productivité végétale (AL-KARAKI., 2000 ; BAATOUR et al., 2004), et le

rendement agricole (ZID et GRIGNON., 1991; ZHU., 2001).

Une étude menée dans le cadre du Programme International de Recherche sur les

techniques d’irrigation et de drainage évalue la superficie des terres potentiellement

menacées par l’excès de la salinité à 500.000 ha (PNUD et BANQUE MONDIALE, .2005)

Dans la plupart des régions agrumicoles, les vergers sont irrigués par des eaux

salines (BENYAHIA et al., 1998). Certaines de ces études ont montré les différentes

corrélations pouvant exister entre les espèces halophytes et les paramètres édaphiques,

entre autres (texture, salinité, pH…etc.).

La présence de sels solubles en forte concentration dans le sol affecte les

mécanismes physiologiques de la plante et constitue un facteur limitant majeur de la

production végétale (BAJI et al., 1998).

Les effets de la salinité sur la productivité sont différents en fonction des

groupes des végétaux, par exemple les légumineuses tels que le pois et le haricot sont

les plus sensibles.

Les effets du sel sur les mécanismes physiologiques des végétaux sont parmi les

principales contraintes du développement des plantes, par exemple le NaCl retarde ou

inhibe la germination des graines (LEVY et al,. 1990) ainsi que la croissance des jeunes

plantes (ROMERO et al .,1998). La fructification est également affectée aussi bien au

niveau quantitatif que qualificatif (HEUER et al,. 1994 ; BEECHER ., 1993 ; MIZRAHI et

PASTERNAK., 1985 ; LELAND., 1994). Parmi les zones les plus touchées par le phénomène

de la salinité, les sols côtiers en raison de la fragilité des composants sableux et de leur

incapacité à retenir l’eau. Pour contribuer à la résolution de ces sols, nous nous sommes

intéressés dans notre expérimentation à des tests de comportement d’une légumineuse,

la fève, cultivée sur substrat sableux bentonisé sous contrainte saline. La bentonite est

utilisée pour ses nombreuses propriétés en particulier dans la conservation de l’eau, la

réduction de l'évaporation et l’augmentation de la capacité d’échange cationique (PETER

et al ., 1985. DEJOU., 1987 ; BENKHALIFA et DAOUD. ,1998; HALILAT et TESSIER.,2006 ).

L’addition de cette argile constitue une alternative afin d’améliorer le potentiel agricole

du matériau sableux.

L’usage des légumineuses comme la fève dans les systèmes de culture est une

opportunité pour améliorer la fertilité des sols en azote et les rendements des cultures,

(MARTINES et al ., 2007). La fève est une légumineuse riche en protéines végétales, en

glucides, en vitamines du groupe B et en vitamine C, et en fibres. C’est un des légumes le

plus cultivé dans le bassin méditerranéen. La récolte mondiale de fèves s'élève à 4,75

millions de tonnes (FAO., 2002), dont la fève fraîche (1,02 millions de tonnes) et la fève

sèche (3,73 millions de tonnes).

L objectif de ce travail s’oriente vers la connaissance de certains mécanismes liés à

l’adaptation aux contraintes salines (NaCl et NaCl+ CaCl₂) de l’espèce Vicia faba conduite

sur substrat sableux bentonisé.

Notre travail comporte trois parties :

- dans la première nous exposons une recherche bibliographique sur les données

relatives aux stress abiotiques et les propriétés physico- chimiques de la bentonite.

- la deuxième partie expose la méthodologie adoptée, par la préparation des

échantillons, le protocole expérimental et la technique d’analyse retenue dans notre

étude.

- Enfin une troisième partie aborde les résultats obtenus.

SYNTHESE BIBLIOGRAPHIQUE

I - LA SALINITE 1. Définition La salinisation des sols est une accumulation de sels solubles à la surface ou en

dessous de la surface des sols, à des niveaux nuisibles pour la croissance des plantes et/ou

les sols. En dépassant un certain seuil de minéralisation, le sol acquiert le caractère salé et

les végétaux subissent une sécheresse physiologique due à une pression osmotique trop

forte et à une toxicité en certains éléments.

On peut définir la salinité des sols comme étant la présence de concentrations

excessive de sels solubles, ou lorsque les concentrations en Na+, Ca++, Mg++ sous formes

de chlorures, carbonates, ou sulfates sont présentes en concentrations anormalement

élevées (ASLOUM., 1990). Un sol salé indique la prédominance de Na Cl.

La salinité des sols et des eaux constitue un obstacle majeur sur la croissance des

végétaux dans les régions arides et semi-arides. Elle est un facteur limitatif majeur de la

productivité agricole, ces charges en sels soumettent les plantes à un stress permanent

(BENNABI ., 2005).

2- Définition de sols salés

Les sols salés ou sols halomorphes appelés actuellement sols salsodiques

représentent un pourcentage important de la surface totale des sols dans le monde

(CHERBURY., 1991). Ils sont ceux dont l’évolution est dominée par la présence de fortes

quantités de sels solubles, ou par la richesse de leur complexe absorbant en ions, provenant

de ces sels et susceptibles de dégrader leurs caractéristiques et propriétés physiques, en

particulier leur structure génétiquement, les sols sont constitués par deux unités très

différentes, les salisols, dans lesquels les sels de sodium, de calcium ou de magnésium sont

sous la forme soluble de sels simples ou complexes.

Les sodisols à complexe sodique dans lesquels les cations, essentiellement le

sodium sont sous la forme échangeable, les sels solubles étant très peu abondants

(BOUTEYRE et LOYER., 1992). On parlera en général de sol salé lorsque la

concentration en sels des solutions dépasse 0.5 g/ l, cette concentration est le plus souvent

mesurée par la conductivité électrique de la solution du sol (ROBERT., 1996).

3- Origine de la salinité des sols

En moyenne, la terre perd 10 ha de terres cultivable par minute, dont 03 ha à cause de

la salinisation. Les régions du monde les plus affectées par la salinisation sont la Tunisie,

l'Égypte, l'Iraq, l'Iran, le Pakistan et la Californie (FAO.,2002).

Les roches et les sols sont érodés par l'eau, de petites quantités des sels minéraux

qu'ils contiennent sont entraînées jusqu’aux fleuves et les couches aquifères, s'infiltrant

ainsi dans l'eau d'irrigation. Si on utilise trop peu d'eau dans un champ, les sels s'incrustent

dans le sol. Mais le plus grave danger pour le sol est l'eau en trop grande quantité qui

cause son engorgement et élève à son tour le niveau de la nappe phréatique. Le sol

fonctionne alors comme une éponge, aspirant l'eau dans la rhizosphère par capillarité. Cet

effet peut attirer l'eau à la surface sur environ 1,5 m, selon les sols. L'eau s'évapore et le sel

reste autour des racines, entravant leur capacité d'absorber l'eau. Ce processus se produit en

particulier dans les régions arides (CHERBUY ., 1991).

L’origine des sels responsables de cette salinité est diverse : marine actuelle ou

ancienne, pétrographique due aux ions libérés par l’altération de certaines roches

sédimentaire, volcanique, hydrothermale, éolienne apportée par des embruns ; elle est aussi

très souvent anthropique induite par la mise en valeur hydro agricole et autres

aménagements (eaux d’irrigation, remontées de nappes phréatiques, engrais, solutions

nutritives des serres et des cultures hors sol, effluents urbains, etc.) (SERVANT., 1975;

ZID et GRIGNON., 1991; HASAN., 1995).

Certaines pratiques d’utilisation des terres contribuent considérablement à la

salinisation du sol en modifiant l’abondance et l’écoulement de l’eau et des sels dans la

rhizosphère. En général, le recours à la jachère augmente la teneur en eau de la

rhizosphère, ce qui peut entraîner une élévation de la nappe phréatique et une augmentation

de la concentration des sels solubles à la surface du sol ou à proximité ( WIEBE et al.,

2001).

4 - Les différents types de la salinisation

a-Salinisation primaire

On distingue en général la salinisation primaire, liée à la présence naturelle

relativement concentrée de sels (proximité des mers ou d'océans, présence de dépôts de

sels...) (LAHLOUET al., 2000). 80% des terres salinisées ont une origine naturelle.

L’origine de cette salinisation est, soit géologique, marine ou lagunaire correspond à une

salinisation liée au fonctionnement naturel des terrains, sous l’influence du climat, de

l’altération des roches et de la dynamique des eaux (BABA SIDI-KACI ., 2010).

La source principale de sels dans le sol sont les minéraux naturels de la croûte terrestre

(BRYSSINE., 1961). Les sels solubles peuvent provenir :

- Soit de l’altération des roches contenant des minéraux sodiques potassiques et

magnésiques. En région arides et semi-arides, ces sols se concentrant sur place ; dans les

dépressions fermées,

- Soit de dissolution des évaporites contenant des chlorures, des sulfates, etc. Les

évaporites se localisent essentiellement dans les bassins élémentaires.

- Soit de l’altération des roches volcaniques (SERVANT., 1976) .Le matériau géologique,

par le biais de l’altération peut libérer les éléments nécessaires à la formation des sels

solubles (altération de minéraux primaires riches en sodium, de roches volcaniques, des

produits de l’hydrothermalisme riches en soufre et en chlore, ou encore dissolution des

évaporites, qui sont des accumulations salines anciennes). En effet, durant le processus

d’altération chimique, qui implique hydrolyse, hydratation, solution, oxydation et

carbonatation, les sels sont libérés progressivement avant de subir une solubilisation.

Cependant les causes premières de salure sont fréquemment éloignées dans l’espace du

territoire prospecté (GAUCHER et BURDIN., 1974).L’origine des sels peut se trouver

dans les dépôts lagunaires ou matériaux salés plus ou moins récents qui peuvent être eux-

mêmes des roches mères des sols et fournir leurs sels aux oueds qui les transportent

jusqu’aux nappes superficielles plus ou moins profondes sous les sols des vallées et basses

plaines (GAUCHER et BURDIN., 1974).

b-salinisation secondaire

20% des terres salinisées, soit près de 15 Mha sur le continent Africain, ont une

origine « anthropique ». On parle alors de salinisation « secondaire », induite par l’activité

humaine, liée aux pratiques agricoles et en en particulier à l’irrigation. La salinisation

secondaire est généralement à l’origine de la diminution de la productivité de la terre car la

forte concentration de sel dans le sol s’oppose à la bonne production, par conséquent, les

terres cultivées affectées par Na Cl perdent progressivement leurs fertilités. A l’échelle

globale, la salinité des sols n’est pas un problème spécifique d’une région ou d’un climat

donné ; au contraire, si on observe la répartition des sols salins on constate que l’effet de la

contrainte saline affecte toutes les régions du monde (HOSNI ., 2008).

5-Importance de la salinité

La salinité est un indicateur dynamique de la nature du régime de change. C’est un

paramètre écologique important dans son propre droit, La concentration totale est plus

importante car la plupart des cultures répondent à la concentration ionique totale du milieu

de croissance (effet osmotique) plutôt qu'à un ion spécifique (BABA SIDI.,2010). La

salinité présente des effets bénéfiques sur la germination et la croissance de quelques

espèces à des niveaux très faibles (bien que non quantifiés par les auteurs) de NaSO4, de

NaCl, de MgSO4 et de NaCO3 (ASLOUM., 1990).

6-Les effets de l’excès de sels sur les sols

La salinisation a pour principales conséquences une augmentation de la pression

osmotique, une toxicité pour les végétaux due à l'accumulation de certains ions, dont Na+,

et une dégradation du sol. Le défrichement (ou défrichage) provoque aussi la salinisation.

Contrairement à la végétation primitive, les cultures laissent le sol nu certaines périodes de

l'année. Les pluies survenant à ces moments ne seront pas absorbées et provoqueront le

même phénomène de diffusion du sel vers la surface . L’excès de sel dans un sol, modifie

ses propriétés physico-chimiques. Cette altération des conditions édaphiques constitue un

stress indirect pour la croissance des plantes. (ALLAOUI ., 2006).

La salinisation du sol limite considérablement la production des cultures et par

conséquent a des effets négatifs sur la sécurité alimentaire. Les conséquences se

répercutent à la fois en termes socioéconomiques et environnementaux. La prévention et la

mise en valeur des sols salins demandent une gestion intégrée, prenant en considération les

aspects socio-économiques, le suivi et l’entretien des périmètres d’irrigation et la

réutilisation et/ou la gestion maîtrisée des rejets des eaux de drainage. La pratique d’une

irrigation et d’un drainage efficients, combinée à de bonnes pratiques culturales, peut

prévenir et, dans certains cas, réduire la salinisation. Si des mesures appropriées de

restauration des sols très fortement salinisés ne sont pas prises à temps, le retrait de la

parcelle irriguée de la production est parfois la solution ultime. ( STITOU et GALLEZ .,

1982 ;ALLAOUI .,2006).

7- Les méthodes de reconnaître les sols salins

Il ya plusieurs méthodes pour savoir et connaitre les sols salins on peut citer :

la germination retardée/réduite

la croissance rachitique

les dégâts foliaires

les croûtes de sel

les terres engorgées

8-La salinité et la plante

la salinisation des sols se manifeste comme l’un des principaux facteurs limitant le

développement des plantes (BOUDA et al., 2011). Dans les régions arides et semi-

arides, les plantes doivent être irriguées afin de garantir les cultures et d'augmenter la

production~ Dans ces régions, la mauvaise qualité des eaux d'irrigation accompagnée d'un

drainage insuffisant entraient souvent une accumulation de sels dans le sol. La physiologie

des plantes poussant dans des sols salés est ainsi altérée, ce qui réduit leur croissance et

leur rendement (BESRI et al., 2011).

II- LES STRESS 1-définition de stress

Le stress est un ensemble de conditions qui provoquent des changements de

processus physiologiques résultant éventuellement en dégâts, dommages, blessures,

inhibition de croissance ou de développement ,il est défini aussi comme le

dysfonctionnement (rupture d’un équilibre fonctionnel) produit dans un organisme ou dans

un système vivant d'après (JONES et al .,1989 et DUTUIT et al .,1994).

Par exemple par une carence au niveau d’un écosystème, toute contrainte externe qui

limite la productivité en deçà de la potentialité génétique d’une plante peut être considérée

comme stress GRIME(1979) et LEVITT (1980) décrit la physiologie du stress en

l’abordant dans son aspect physique. Le stress est une contrainte qui peut se résumer à une

ou plusieurs forces de déformation appliquées à un corps.

2-Les formes de stress

On peut citer les différentes formes

a-Biotique

Imposé par d’autres organismes (insectes, herbivores…), ils sont nombreux et ont

pour origine les virus, les organismes phytophages et les pathogènes. Afin d’y faire face, la

plante met en place un système de défense qui fait intervenir une chaîne de réactions. Les

protéines végétales défensives produites font office de rempart contre les agents nuisibles

(SHILPI et NARENDRA., 2005).

b-Abiotique

Provoqué par un défaut ou excès de l'environnement physico-chimique comme la

sécheresse, les températures extrêmes, la salinité. Parmi les conditions environnementales

qui peuvent causer un stress abiotique, on distingue : les inondations, la sécheresse, les

basses ou hautes températures, la salinité excessive des sols ou des eaux, la présence d’un

minéral inadéquat dans le sol, cas des métaux lourds, l’excès de lumière qui stimule la

photo inhibition, le cas de faible éclairement, les radiations UV, les composés

phytotoxiques comme l’ozone qui est un haut réacteur oxydant, la pollution de l’air, les

produits oxydés formés à partir des réactions de pesticides . La sécheresse, le froid et la

salinité sont les stress les plus fréquents et les plus étudiés. Ils peuvent imposer aux plantes

des modifications métaboliques, physiologiques et phénologiques.Le stress peut déclencher

plusieurs réponses à plusieurs niveaux de la plante (SHILPI et NARENDRA., 2005).

Stress salin

Le stress salin est un excès d'ions en particulier mais pas exclusivement aux ions

Na+ et Cl- (HOPKINS., 2003). Le stress salin est dû à la présence de quantités importantes

de sels potentiels hydriques. Il réduit fortement la disponibilité de l'eau pour les plantes, on

parle alors de milieu "physiologiquement sec" (TREMBLIN., 2000).

La quantité de sels dans le sol que les plantes peuvent supporter, sans grand

dommage pour leur culture, varie avec les familles, les genres et les espèces, mais aussi les

variétés considérées (LEVIGNERON et al.,1995).

Ces mêmes auteurs précisent que, les conséquences d’un stress salin peuvent résulter

de trois types d’effets que le sel provoque chez les plantes :

Stress hydrique :

une forte concentration saline dans le sol est tout d’abord perçue par la plante comme une

forte diminution de la disponibilité en eau. Cela nécessite un ajustement osmotique adapté,

afin que le potentiel hydrique cellulaire demeure inférieur à celui du milieu extracellulaire

et à celui du sol. Ce phénomène assure d’une part, la poursuite de l’absorption de l’eau du

sol, et d’autre part, la rétention de l’eau intracellulaire et le maintien de la turgescence.

Lorsque l’ajustement osmotique n’est pas suffisant, l’eau a tendance à quitter les cellules,

ce qui provoque un déficit hydrique et la perte de la turgescence.

stress ionique: en dépit d’un ajustement osmotique correct, la toxicité

ionique survient lorsque l’accumulation de sels dans les tissus perturbe l’activité

métabolique.

stress nutritionnel: des concentrations salines trop fortes dans le milieu,

provoquent une altération de la nutrition minérale, en particulier vis-à-vis des transporteurs

ioniques cellulaires. Le sodium entre en compétition avec le potassium et le calcium, et le

chlorure avec le nitrate, le phosphore et le sulfate.

3- Les plantes et le stress salin

L’eau est une ressource indispensable pour les végétaux ((CALU, .2006) . Sa présence est

une condition incontournable pour que toute plante puisse se développer et assurer ses

fonctions physiologiques vitales. Cependant, suivant le milieu naturel, cette ressource n’est

pas toujours facile d’accès dans le sol. Ainsi les plantes présentes sur des surfaces sèches et

salées vont se retrouver exposées à un stress hydrique important, contre lequel elles

devront lutter pour survivre (CALU, .2006). Dans le cas d’un stress salin, une double

problématique se pose à l’organisme végétal: d’un côté, la présence de sel, en abaissant le

potentiel hydrique du sol, menace l’approvisionnement en eau de la plante et de l’autre,

l’absorption de sel dans les tissus menace le bon fonctionnement physiologique des

cellules (GIRARD et al., 2005).). Face à ce danger, toutes les plantes ne sont pas égales.

Certaines, nommées glycophytes, ne sont pas capables de supporter la présence de sel. Les

halophytes, au contraire, développent des réponses physiologiques pour assurer leur

approvisionnement en eau tout en préservant leur métabolisme (CALU,.2006).

4-Effets du stress salin sur la plante

a-sur la germination :

la germination des graines est le stade le plus sensible aux stress salin et hydrique

(BOULGHALAGH et al., 2006). On peut considérer que la plupart des plantes sont plus

sensibles à la salinité durant leurs phases de germination et de levée (MAILLARD., 2001).

Parmi les causes de l'inhibition de la germination en présence de sel, la variation de

l'équilibre hormonal a été évoquée (UNGAR.,1991 ; KABAR.,1986; DEBEZ et al.,2001)

.Plusieurs auteurs ont montré un retard de la germination causé par la salinité chez

plusieurs espèces (NDOUR et DANTHU.,2000; BOULGHALAGH et al.,2006;BENATA

et al.,2006). La réduction du potentiel osmotique de la solution du sol empêche

l’imbibition de la graine suite à une diminution des activités enzymatiques et une forte

absorption de Na+ par rapport à K+, ce qui conduit à une toxicité embryonnaire et un retard

dans les processus métabolique ( ADEL et BADER.,2002).

b-sur l’absorption:

les sels de la solution du sol peuvent se concentrer à hauteur de 2 à 5 fois leur valeur

initiale. Ceci cause une augmentation de la pression osmotique de la solution du sol et rend

encore plus difficile pour les racines d’extraire l’eau du sol. C'est ce qu'on appelle une

sécheresse physiologique (MAILLARD., 2001). Les effets osmotiques du stress salin

peuvent également limiter la croissance des racines, ce qui limite les possibilités

l’absorption des éléments nutritifs du sol (JABNOUNE., 2008).

c- sur la croissance et le développement :

un stress salin extrême conduit au nanisme et à l’inhibition de la croissance racinaire. Les

feuilles deviennent sclérosées avant même d’avoir fini leur croissance et l’organisme tout

entier risque de dépérir assez vite (CALU., 2006). Les sels accumulés dans le sol peuvent

limiter ou complètement arrêter la croissance du végétal suite à une élévation de la

pression osmotique du milieu et/ou à l’effet toxique spécifique des éléments (ARBAOUI et

al., 1999).La salinité diminue la croissance des glycophytes en modifiant l’équilibre

hydrique et ionique des tissus (GREENWAY et MUNNS., 1980 ; OUERGHI et al., 1998).

5 – Mécanismes de réponses des plantes au stress

a-la tolérance des plantes au stress salin

La caractérisation physiologique de la tolérance des végétaux a la salinité résulte de

processus qui permettent au végétal d'absorber l'eau et les sels minéraux à partir de

substrats à faibles potentiels hydriques, mais aussi de vivre en acceptant la présence

importante de sodium dans ses tissus; les halophytes qui accumulent le plus de sodium

(GREENWAY, H. et MUNNS, R., 1980 ;GUERRIER.,1984), se signalent ainsi par une

forte capacité d'élaboration de composés organiques (GUERRIER.,1984), ces deux

facteurs permettant le maintien d'une haute pression osmotique interne qui favorise les

échanges d'eau entre les compartiments externe et cellulaire (BOUCHOUKH.,2010).

b - d'adaptation à la salinité

1-Adaptations morphologiques

La succulence, qui se traduit par une accumulation d'eau dans les cellules

constitutives des tissus des organes aériens, est l'un des caractères les plus communs aux

halophytes. La succulence des cellules foliaires augmente, se traduisant par une

augmentation de l'épaisseur des feuilles sont l'une des modifications qui apparaît de façon

plus importante chez les espèces les plus tolérantes. On note de plus la réduction de la

surface foliaire, par exemple chez Cressa cretica et Tamarix gallica (RAACHE et

KARBOUSSA., 2004); la présence d'une cuticule épaisse et l'apparition plus précoce de la

lignification de quelques organes à la fin de leur cycle de vie (POLJAKOFF et al., 1975;

RAACHE et al., 2004).

2-Adaptations anatomiques

Des modifications anatomiques apparaissent au niveau des différents organes lors

d'un Stress salin. Selon (POLJAKOFF et al., 1975), on observe des modifications du

cortex qui, chez les halophytes est constitué de deux à trois couches de cellules seulement,

ainsi qu'une diminution du diamètre de la stèle au niveau des racines du blé et chez la tige

de la tomate, où le cortex devient épais alors que le nombre de vaisseaux conducteurs

diminue. D'autres modifications s'observent sous l'effet de la salinité comme la raréfaction

des stomates, la présence de tissus de soutien et l'abondance du parenchyme aquifère

(BENHAMIDA et al., 2005).Certaines plantes peuvent développer différentes stratégies

qui leur permettent de réguler les concentrations internes en ions. Lors d'un stress salin, les

halophytes sont capables de compartimenter les ions Na+ et Cl- au niveau vacuolaire.

Certaines halophytes possèdent des structures spécialisées, appelées « glandes à sel »,

constituées d'une à plusieurs cellules, sont souvent protégées par une mince cuticule

perforée de pores, situées au niveau des cellules épidermiques des feuilles et des tiges,

ayant pour rôle d'excréter le sel, lorsque la charge minérale des tissus est excessive

(THOMSON., 1975), c’est le cas du tamarix.

III- LA BENTONITE 1- Historique et définition

L’expression bentonite a été introduite pour la première fois par le géologue

américain KHIGHT en 1988 elle dérive de Fort benton, région de Rock Green au

Wyoming (USA), qui signifie une argile colloïdale naturelle de couleur gris-blanc formée

par le vieillissement de cendres volcaniques ,son composant principal est la

montmorillonite, c’est d’ailleurs sa présence qui confère à la bentonite sa faculté de

gonfler de 10 à15 fois de son volume et absorber 7 fois son poids en eau (SIGG., 1991).

2-Types de bentonites

En fonction de la nature du cation échangeable présent, il existe à l'état naturel deux

types de bentonites:

Les bentonites sodiques, où le sodium est le cation échangeable majoritaire, elles

ont un fort pouvoir de gonflement et d'adsorption.

Les bentonites calciques, où le calcium est le cation échangeable majoritaire, elles

ont un pouvoir de gonflement et d'adsorption plus faible que les bentonites sodiques.

3-L'utilisation de la bentonite

Parmi l’application principale de la bentonite dans le monde on peut citer :

amendement de sols trop secs (sablonneux) à raison de 500 g/m2 chaque année

pendant 5 ans.

raffinage du pétrole.

additif dans la fabrication du papier.

additif pour détergents.

traitement des eaux usées.

laques et peintures.

cosmétiques, traitement de l'acné.

huile pour transformateurs.

lustres en céramique.

Les forages

La céramique

4-Caractéristiques physico-chimique de la bentonite de mostaganem

La bentonite utilisée provient du gisement de M'Zila, district de Mostaganem, au

Nord-Ouest de l'Algérie. Les caractéristiques minéralogiques (tableau 1) et physico-

chimiques (tableau 2) font apparaître que cette bentonite est essentiellement composée de

montmorillonite calcique. Une analyse granulométrique a par ailleurs montré un degré de

dispersion assez élevé des dimensions des particules avec toutefois 46,2% inférieures à

1.μm (ENOF ., 1967 ; ACHOUR et SEGHIRI ., 2002).

Tableau 1: Caractéristiques minéralogiques de la bentonite de M'Zila (Mostaganem)

Montmorillonite Quartz Carbonates Feldspaths Biotites

45 à 60% 15 à

20%

8 à 10% 3 à 5% 8 à 10%

Tableau 2: Caractéristiques physico-chimiques de la bentonite de M'Zila (Mostaganem)

5 -Bentonite en agriculture

D’après REGIUEG et BELKHODJA., (2008), la bentonite contribue à

l’augmentation de la teneur en azote assimilable dans le sol portant l’association

blé-Pchich .Ces teneurs augmentent d’avenage dans le substrat sableux bentonite

à 10% au stade de tallage de blé .Selon (HALILAT et TESSIER., 2006) , la

bentonite améliore les paramètres chimiques des sols sableux .De point de vue

économique l’application de la bentonite an agriculture permet d’améliorer la

structures des sols sableux susceptibles d’augmenter la production agricoles,

d’économiser l’eau et les éléments fertilisants.

V -LA FEVE Vicia faba L

1-Présentation de la fève

La fève est une plante potagère de la famille des papillionacées cultivée depuis

la plus haute Antiquité. Originaire de Perse, elle tenait dans nos contrées le rôle haricot

avant que ce dernier ne soit importé d'Amérique du Sud (ABDALLAH.,1979). On n'en

consomme en revanche que les graines, fraîches ou séchées (SCHULTZ ., 1972). La fève

est cultivée dans le sud de la France et sur tout le pourtour méditerranéen, elle constitue

toujours une des bases de l’alimentation en Afrique du Nord et en Orient

(WIKIPEDIA .,2010 ; LADIZING., 1975 ) . Ce sont des plantes herbacées robustes,

pouvant dépasser 1 mètre. Les feuilles sont pennées et terminées par une pointe, avec des

folioles larges, de couleur glauque ; inflorescence en racème de deux à cinq fleurs (parfois

fleur solitaire), à corolle blanche ou rosée, avec des taches noires sur les ailes. Le fruit est

une gousse contenant des graines de forme ovale et aplatie avec une peau épaisse, les

fèves qui ont la forme d'un gros haricot aplati est une dicotylédone à la famille des

légumineuses ; elles ont a chromosome grands et moins nombreux que chez la plupart

espèces dans les genre 2n=12 (BELKHODJA., 1996 ;site web WIKIPEDIA.,2010) .

Surface spécifique (m2/g)

Poids spécifique (g/cm3

pH Capacité d'échange (meq/100g

Cations échangeables (meq/100g) Ca2+ Na+ Mg2+

65,0 2,71 9,00 75,8 43,6 25,2 4,8

D’après (GALLAIS et BANNEROT .,1992), la classification basée sur le critère de la

taille des graines est généralement retenu .L’espèce Vicia faba L., renferme à son tour

deux sous-espèces:

Vicia faba major, la fève maraîchère à grosses graines destinées à la

consommation humaines.

Vicia faba minor ; la petite fève ou féverole utilisée pour

l’alimentation du bétail

Vicia faba equina ; la fève à cheval à grains moyen aussi appelée féverole

ou févette dans certain region .comme son nom l’indique elle également destinée à

l’alimentation du bétail.

Classification systématique : Selon (LINNE., 1753) la fève est

classée comme suit

-Règne Plantae

-Sous - Règne Tracheobionta

Division Magnoliophyta

Classe Magnoliopsida

Sous Classe Rosidae :

Ordre des Fabales

Famille des Fabaceae

Genre Vicia

Espèce Faba

La figure 1 représente l’aspect de plante vicia faba L .Il s’agit d’une plante

robuste, grimpante, qui peut atteindre plus d’une mètre .ses feuilles composées de 2 à 7

folioles, sont alternes sur la tige de section carrée. Ses fleurs, disposées en racèmes, sont

blanches avec un point noir sur les ailes. Ses fruits sont des gousses, caractéristiques de la

famille des Fabacées (EVANT ., 1959 ; FOLTETE ., 2010) .les racines de la plante

possèdent des nodules à l’intérieur desquelles des cellule géante servent d’abri à une

bactérie symbiotique , appartement à l’espèce rhizobium leguminosarum .cette bactérie

est capable de capter le diazote atmosphérique et de la fixé dans le sol sous forme d’ion

utilisables par la plante (FOLTETE . , 2010). La fève est localisée dans l'étage

bioclimatique de 250 mm de pluie, tolère bien le froid (HERZOG., 1984) et les hautes

températures; la somme de températures nécessaires pour accomplir son cycle végétatif

varie de 1900 à 2000 heures (CARLU., 1952). La fève préfère les sols profonds, silico-

argileux riches en matières nutritives et en humus (KOLEV., 1976).

Fig .1. Différents organes de la fève (Vicia faba L.)

2-Etude biochimique de la fève

L’analyse biochimique montrant les nutriments contenus dans 100 g de graines

sèches de la fève (DUC., 1981)

Tableau .3 - Les nutriments contenus dans 100 g des graines sèches de la fève

Nutriment (%)

Calories 3.44

Humidité 10.1

Protéine 25.5

Graisse 1.3

Hydrate de carbone total 5.95

Fibre alimentaire 6.8

Cendre 3.0

B-équivalent de carotène 1.3

Thiamine de magnésium 0.38

Riboflavine de magnésium 0.24

Tryptophane niacine de magnésium 2.1

Magnésium 1.62

Tableau4 - Apport nutritionnel pour 100 g

Elément nutritionnels Pour 100 g

Calories 64 Kcal Eau 82g - Protéines 5.4g - Glucides 10g Lipides : 0.3g -Fibres 6.5g - Potassium 210mg Magnésium 18mg Phosphore 105mg Calcium 24mg Fer 01mg Vitamine B1 0.3mg Vitamine B2 0.2mg Vitamine C 28mg

La fève contient d’autres facteurs répréhensibles comprenant le cyanogène, acide phytique,les

tannins et les inhibiteurs de la trypsine (WILLIAMS et al .,1988). La fève contient plusieurs

facteurs antinutritionnels possibles ; cependant, leurs effets sont moins aigus et les inhibiteurs de

protéase sont (2%) aux concentrations beaucoup inférieures comparé au soja (HULSE., 1980 ;

LAUMONNIER

3 - Intérêts écologiques

la fève est localisée dans l’étage bioclimatique de 250mm de pluie, tolère bien le froid et

les hautes températures (HERZOG. , 1984 ;CARLU.,1952). Sa température optimale de pousse

se situe aux environ de 200 C (FOLTETE., 2010).la somme de températures nécessaires pour

accomplir son cycle végétatif varie de 1900 à 20000 C (CARLU., 1952).la fève préfère les sols

profonds ,silico-argileux riches en matières nutritives et en humus (KOLOV .,1976).

Cette plantes a capables de s'adapter à des sols très pauvres, et tr ès dégradés, ont donc un

rôle améliorateur des sols, en plus d'un intérêt alimentaire (SINGH et JAUHAR., 2005).

La fève est très sensible a la pollution du sol, ce qui en fait un modèle végétatif utilisé en

écotoxicologue dans un grand nombre d’étude (NOURI., 2012) . La fève est on outre aussi

employée pour étudier les réponses des marqueurs du stress oxydant (RADETSKI et al .,

2004) ; et d’autre défenses antitoxiques de la plante comme les phytochélatines

(BERAUD.,2007).

4 - Intérêts économiques

La récolte mondiale de fèves s'élève à 4,75 millions de tonnes (FAO., 2002), dont : Fèves

vertes (1,02 millions de tonnes) et Fèves sèches (3,73 millions de tonnes).En algérie la

culture de la fève est très répondue dans les plaines côtières et les zones sublittorales avec

une surface cultivée d’environ 65000 ha et une production comprise entre 20000 et 38000

tonnes par an (BENACHOUR et al ., 2007). La fève est une légumineuse riche en

protéines végétales, en glucides, en vitamines du groupe B et en vitamine C. Elle l’est

également en fibres: quelques fèves croquées en début de repas sont un excellent moyen de

lutter contre la constipation. C’est un des légumes bénéfiques du régime méditerranéen

(DUC., 1981).

MATERIEL ET METHODES

CHAPITRE II : MATERIEL ET METHODES

I-MATERIEL VEGETAL

Le matériel végétal utilisé est une légumineuse la fève (Vicia faba L) . Les graines de sont

choisies du lot selon leurs tailles, l’état sanitaire et la couleur du tégument, puis conservées dans

un réfrigérateur à 4° C.Les graines sélectionnées sont désinfectées à l’eau javel pendant 5mn

pour éliminer toute contamination fongique puis elles sont passées par plusieurs rinçages à

l’eau distillée plusieurs fois pendant 3mn.

II- METHODES 1- Préparation des boîtes de Pétri

Les boîtes de Pétri utilisés ont un diamètre de 19 cm et une épaisseur de 3cm ces

boites sont lavées à l’eau ordinaire puis à l’eau distillées puis sont séchées et tapissées par 4 à

5 couches de papiers filtres, ces boites sont auparavant étiquetées. 2 - Préparation des graines

Dans chaque boîte 5 graines sont semées bien distantes les unes des autres. Les boîtes sont

entreposées dans une étuve réglée entre 22 et 25° C.

Ensuite, nous ajoutons à chaque boîte de Pétri échantillons témoin 10 ml d'eau distillée

et 10 ml de solution concentrée des échantillons soumis à l'essai pendant 21 jours.

Photo.1- les graines de Vicia faba L

3- les solutions saline

a - Préparation des solutions salines de (Na Cl)

Les solutions salines sont préparées pour le premier protocole d’arrosages à partir d’une

concentration de chlorure de sodium à100 meq et 200meq. Tableau 5 - Composition de la solution saline

NaCl (meq) 100 meq 200 meq

NaCl (g.lˉ¹) 5.85 11.70

- Le chlorure de sodium : C’est un sel soluble dans l’eau et totalement dissociant en

(Na+ Cl-) il augmente la vitesse de l’absorption de l’eau dans les cellules dans les

concentrations normales, mais il devient toxique dans les concentrations plus élevés

- Le deuxième protocole d’arrosages à partir d’une combinaison de deux sels différents le

chlorure de sodium (NaCl) et le chlorure de calcium(CaCl₂) sont mélangés (V/V) préparés

dans un litre d’eau distillée à deux concentrations différentes, 100meq.lˉ¹ et 200 meq.lˉ¹.

- Chlorure de calcium CaCl₂) : C’est un sel soluble moins toxique que le chlorure de

sodium, un catalyseur de croissance.

b- Préparation des solutions salines de (Na Cl et CaCl₂)

La préparation de 100meq .lˉ¹ de solution saline composée de NaCl+CaCl2.

Les solutions des deux sels sont mélangées pour obtenir un volume de 2 litres à une

concentration de 100meq .lˉ¹ et la même méthode pour la préparation d’une concentration

de 200meq .lˉ¹

Tableau 06 - Composition de la solution saline

Témoin 100 meq 200meq

NaCl g/lˉ¹ Solution nutritive 5.85 11.70

CaCl g/lˉ¹ Solution nutritive 5.50 11.1

4– préparation des pots

Les pots utilisés de diamètre 15 cm et de 22cm de hauteur, de poids 1kg .Le fond de

chaque pot a été garni d’une couche de gravier afin d’assure d’un bon drainage, sur cette couche

est déposée une bande à gaze pour retenir le substrat.

5-Préparation du substrat de culture

Le substrat utilisé est un mélange sable récupéré au bord de la mer. Lavé plusieurs fois

à l’esprit de sel puis avec de l’eau distillée .Pour tester la pureté de se sable ,il a été procédé à

utilisation du nitrate d’argent .Ce sable est étalé sur du papier pour sécher. Dans les pots ce

sable est mélangé avec du terreau commercial (2volume /1volume) et 7 % de bentonite.

La bentonite sous sa forme naturelle granulée a été préalablement broyée à l’aide d’un

broyeur manuel et tamisé au tamis à maille de 2mm pour obtenir une poudre fine afin de faciliter

son enfouissement et son mélange.

6 -Repiquage des graines germées

Après germination et l’apparition de la radicule ,les plantules de la fève sont repiquées

soigneusement et mises en pots à raison de 1 graine par pot à une profondeur de 1cm avec un

léger tracement immédiatement arrosés avec de l’eau distillée pour permettre un bon contacte

sol-graine ,puis déposées dans une serre située à l’université d’oran.

7- L’arrosage

L’irrigation est effectuée à l’eau distillée à la capacité de rétention qu’est déterminé par la

différence entre la quantité d’eau apporté avant l’arrosage et celle récupéré après 24h de

décantation (méthode adoptée par le laboratoire) soit 80 ml le volume d’arrosage calculé.

L’arrosage est effectué 3 fois par semaine, 2 fois à l’eau déminéralisée et une fois à la solution

nutritive de type (HOAGLAND et ARNON ., 1938) diluée au 1/1000ème couramment utilisé au

laboratoire de physiologie végétale.

Tableau 7 -Composition de la solution nutritive de (HOAGLAND . ; 1938) Composants

Nomenclature Poids en g/l

Nitrate de potassium KNO3 191.90

Nitrate de calcium (NO3)2 Ca 4H2O 129.80

Nitrate d’ammonium NO3 NH4 210

Sulfate de magnésium SO4Mg 7H2O 61.5

Phosphate mono potassique PO4H2K 54.40

Di-potassium

hydrogénophosphate

PO4K2H 3H2O 34.23

Chlorure de manganèse Cl2Mn 4H2O 1.80

Sulfate de cuivre Cu SO4 5H2O 0.176

Sulfate de zinc Zn SO4 7H2O 0.219

Acide borique H3BO3 2.861

Molybdate d’ammonium MO7 O24 (NH4)

7H2O

0.285

Complexe ferrique EDTA ferrique

(C10H12FeN2NaO8)

0.050

III- Application du stress

Au 48ème jour après le repiquage, nous avons appliqué le stress salin aux plantes. Il

se répartit en 5 traitements de 05 répétitions. Les plantes traitées sont arrosées une fois aux

différentes solutions salines à 60% de la CR.

Les plantes témoins reçoivent la solution nutritive tous les deux jours

jusqu’à deux semaines.

Un 1er lot de plantes est stressé à NaCl 100et 200 meq.

Un 2ème lot est stressé à NaCl + CaCl2 100et 200 meq .

IV- Prélèvement et préparation du matériel végétal

Après avoir déterré les plantes, nous avons soigneusement séparé les tiges, les

feuilles ainsi que les racines afin d’éviter toute contamination avec le substrat de culture.

V – Analyse du matériel végétal

Elle est réalisée par des observations et des mesures biométriques sur feuilles, les

tiges et les racines et physiologique (RWC, RWL), enfin le dosage de quelques cations

dans les feuilles et les racines (Na⁺ , K⁺ , Ca⁺⁺).

I-La germination des graines durant trois semaines de stress salin

1 - cinétique de germination La cinétique de germination est une courbe de germination qui décrive le déroulement

de la germination du lot de semences considéré placé dans des conditions bien précise. Elle

représente le plus souvent l'évolution des pourcentages de germination cumulés en fonction

du temps. Cette cinétique est établie à partir des taux cumulés de graines germées c'est-à-

dire la variation des taux de germination en fonction du temps exprimé en jour sous toutes

les conditions de traitement testé. Les courbes de germination donnent une idée complète

de l'évolution de la germination d'un lot de semences placé dans des conditions

déterminées.

2-La vitesse de germination

La vitesse de germination permet d’exprimer l’énergie de germination responsable de

l’épuisement des réserves de la graine. C’est la variation dans le temps des taux de

germination dès l’apparition de la première pointe de la radicule d’une ou des graines

jusqu’à la stabilité de la germination, s'exprimant par le taux de germination obtenu à un

moment donné.

Elle peut s’exprimer par différentes méthodes :

Par le taux de germination obtenu à un moment donné, par le temps moyen

(t50) qui correspond à la germination de 50% du lot de graines (10).

le temps nécessaire à l’obtention de 50 % de germination,

Par le coefficient de vélocité (cv) proposé par Kotowski (1926) avec un

temps moyen

de germination (Tm), qui représente l’inverse *100 du coefficient de vélocité

N1 + N2 + N3 +……………. + Nn cv = -------------------------------------------------- x 100

N1T1 + N2T2 + N3T3 +…….NnTn

N1T1 + N2T2 + N3T3 +…..NnTn

Tm = ------------------------------------- N1 + N2 + N3 +……………Nn

N1 = nombre de graines germées au temps T1.

N2 = nombre de graines germées entre le temps T1 et T2

N3, …. Nn = graines germées au temps T3… ….jusqu'au temps Tn

TIMSON (1965) a proposé de calculer la vitesse de germination par la somme des

pourcentages partiels obtenus.

Zn = N1 + N2 + ……….Nn

N1, N2, N3,…….., Nn représentent les pourcentages de graines germées après un

jour, deux ……, n jours .

Nous avons retenu les deux formules de Kotowski consistant à calculer le coefficient de

vélocité (cv), et le temps moyen de germination Tm),

3-Taux final de germination

Ce paramètre constitue le meilleur moyen d’identification de la concentration saline

qui présente la limite physiologique de germination des graines. Il est exprimé par le

rapport nombre de graines germées sur nombre total de graines.

4-Poids sec perdu des graines

le poids sec perdu des graines est calculé sur la baise de la différance entre le poids des

graines avant et après la germination.

II - paramètres biométriques

1- Détermination du nombre des feuilles

Le nombre des feuilles de chaque plante a été déterminé avant l’application de

traitement salin et après une et deux semaines de stress salin.

2-Rapport longueur de la racine /longueur de la tige (LR/LT)

Le rapport (LR/LT) est calculé sur la baise de la division entre la longueur de

racine et la longueur de tige

3 - Rapport biomasse séchée racinaire /biomasse séchée aérienne (BSR/BSA)

Le rapport (BSR/BSA) est calculé sur la baise de la division entre la biomasse

séchée de la parte racinaire et la biomasse séchée de la partie aérienne

4 - Mesure Le volume des racines

Il est mesuré par immersion du système racinaire dans une éprouvette graduée (en

ml) remplie d’eau, selon le principe de la poussée d’Archimède, soit : «Le volume d’un

corps immergé est égal au volume du liquide déplacé (dénivellation).

5- la surface foliaire

la surface foliaire (Sf) est estimée selon la méthode de PAUL et al .,(1979) qui

consiste à placer la feuille du papier calque, à découper les contours de la feuille puis

peser la partie du calque représentant la feuille (Pf), à déterminer par pesée le poids

(Pq) correspondant à une surface (Sq) connue d’un carré de même papier calque et

à déduire la surface de la feuille (Sf) par la formule :

Sf (cm2) = ( ∗ )

III- Paramètres physiologiques

1 - La teneur relative en eau (RWC)

Est déterminée selon la méthode de (BARRS et WEATHERLEY., 1968 ;

SCIPPA ). Le limbe foliaire coupé à sa base, est immédiatement pesé pour déterminer le

poids frais (PF). Les feuilles sont ensuite placées dans un tube à essai contenant de l'eau

distillée, puis maintenu à l'obscurité à 4°C pendant 12 heures. Ces feuilles sont récupérées

et essuyées délicatement avec un papier buvard et pesées à nouveau pour déterminer le

poids en pleine turgescence (Ppt). Le poids sec (PS) est déterminé après passage des

feuilles dans une étuve pendant 48 heures à 80°C.

La teneur relative en eau est calculée par la formule suivante proposée par BARRS

et WEATHERLEY.,1962) adoptée plus tard par (SCIPPA et al .,2004).

RWC (%) = × 100

2 - La perte d'eau transpiration (RWL)

Est évaluée selon la méthode de (CLARKE et MCLAIG., 1982). La feuille est

coupée à la base du limbe, la partie sectionnée est trempée immédiatement dans un tube à

essai rempli d'eau distillée et placée à l'obscurité à une température de 4°C pendant 12

heures. A la pleine turgescence, les feuilles sont essuyées et pesées, ce qui constitue le

poids initial (Pi). Elles sont ensuite placées sur une paillasse au laboratoire, à température

ambiante. Des pesées sont effectuées à trois temps différents : après 30 mn (RWL30), 60

mn (RWL60) et 120 mn (RWL120).

Enfin la surface foliaire (Sf) est estimée selon la méthode de PAUL et al .,(1979)

qui consiste à placer la feuille du papier calque, à découper les contours de la feuille

puis peser la partie du calque représentant la feuille (Pf), à déterminer par pesée le

poids (Pq) correspondant à une surface (Sq) connue d’un carré de même papier

calque et à déduire la surface de la feuille (Sf) par la formule :

Sf (cm2) = ( )

La perte d’eau par transpiration est déterminée par l’équation selon (CLARKE et

MCKAIG .,1982) puis( ARAUS et al .,1991)

RWLx (mg d’eau perdu .cmˉ².mnˉ²)= (Pi -ptx). .

V- Extraction des éléments minéraux

Les analyses de quelques éléments minéraux ont été effectuées sur les

feuilles, les et les racines et ont porté sur la détermination des teneurs en potassium, en

calcium et en potassium.

Le choix du dosage de ces cations est basé sur que le fait que:

Les ions, Na+ et K+ jouent un rôle clef dans le processus

d’osmorégulation.

Le Ca++ assure une fonction importante dans le signal de la réponse au

stress.

Les feuilles et les racines de chaque plante sont enveloppées séparément dans du

papier aluminium, puis numérotées. Les lots de chacun des organes sont étuvés pendant 48

heures à 80°C. Les échantillons sont broyés à l’aide d’un broyeur. La fine poudre obtenue

est placée dans des piluliers fermés hermétiquement.

500 mg de matériel végétal préalablement séchés, sont introduits dans un creuset

en porcelaine. Le creuset est placé dans un four dont la température est augmentée

progressivement jusqu’à 500°C et qui est ainsi maintenue pendant 2 heures. Un pallier est

effectué aux alentours de 200°C jusqu’à la fin du dégagement de fumées. Après

refroidissement, les cendres sont humectées avec quelques gouttes d’eau distillée puis on

ajoute 2 ml d’HCl au 1/2. On évapore à sec sur plaque chauffante. On ajoute une seconde

fois 2 ml d’HCl, on laisse en contact 10 minutes et on filtre dans des fioles jaugées de 50

ml. Après avoir ajusté au trait de jauge puis homogénéisé par agitation manuelle, les

solutions sont transvasées dans des godets sur lesquels le numéro de l’échantillon est

inscrit. Cette solution se prête aux dosages par spectrophotomètre à flamme pour les trois

éléments minéraux à savoir le sodium, le potassium et le calcium.

Dosage du sodium et du potassium par le spectrophotomètre à flamme

Pour chaque élément minéral à doser, des solutions étalons à des concentrations connues

devons être préparer à partir d’une solution mère 01 g.l̄ ¹ pour chaque élément, à partir de

cette dernière, les solutions filles où solutions étalons peuvent être facilement reproduites.

-Le potassium

Pour préparer une solution standard de potassium, il faut mettre 1.000 g du chlorure de

potassium (KCl) desséché dans une fiole jaugée d’un litre de capacité et compléter le

volume avec de l'eau déminéralisée jusqu’au trait de jauge.

-Le sodium

Pour préparer une solution standard de sodium, il faut mettre 1.000 g du chlorure de

sodium (NaCl) desséché dans une fiole jaugée d’un litre de capacité, compléter le volume

avec de l'eau déminéralisée jusqu’au trait de jauge.

-Le calcium

Pour préparer une solution standard de calcium, il faut mettre 1.000 g du chlorure de

calicium (CaCl₂) desséché dans une fiole jaugée d’un litre de capacité, compléter le

volume avec de l'eau déminéralisée jusqu’au trait de jauge.

VI-Analyse statistique

Afin de déterminer la significativité des traitements appliqués sur les différents

paramètres étudiés, nous avons procédé à des analyses de la variance et à la comparaison

des moyennes à l’aide du test de Ficher à α= 5 % sur 5 échantillons (feuilles, racines)

analysés et de chaque traitement à l’aide du logiciel SPSS7

Photo .2- La germination des graines

Photo.3-Dispositif expérimental adopté a laboratoire après trois jours aprés la germination

Photo.4-Dispositif expérimental adopté à laboratoire après trois semaines après la germination

Photo.5-Dispositif expérimental Photo.6- Les feuilles trempons dans des tubes à l’eau distellé adopté à laboratoire après 06 semaines après la germination

Photo.7- Dosage des éléments minéraux par spectrophotomètre à flamme

Photo.8- Effet combinée de la salinité et de la bentonite sur la plante de la féve après une semaine de stress à gauche plante témoin au milieu plante arrosée à 100meq de NaCL a droite plante arrosée à 200meq de NaCl

Photo9- Effet combinée de la salinité et de la bentonite sur la plante de la féve après une semaine de stress a gauche plantes arrosées à 100meq de NaCL+ CaCl2 a droite plantes arrosées à 200meq de NaCL+ CaCl2

Photo.10- Effet combinée de la salinité et de la bentonite sur la plante de la féve après deux semaines de stress

Photo.11- Effet combinée de la salinité et de la bentonite sur la plante de la féve après deux semaines de stress à droite plante témoin et plante arrosée à 200meq de NaCL a gauche plante témoin et plante arrosée à 100meq de NaCl

Photo12- Effet combinée de la salinité et de la bentonite sur la plante de la fève après deux semaines de stress à droite plante témoin et plante arrosée à 200meq de NaCL+ CaCl2 a gauche plante témoin et plante arrosée à 100meq de NaCL+ CaCl2

RESULTAT ET DISCUSSIONS

Réponses physiologiques, biométriques, hydriques et minérales

I – La germination des graines durant trois semaines de stress salin

1-Cinétique de la germination des graines


La figure 2 schématise le taux cumulé quotidien de la germination des graines. Il

faut remarquer qu’avec l’augmentation de la concentration du NaCl, la germination est

retardée. Des modifications de la cinétique de germination sont aussi observées, 84% des

graines déposées dans l'eau distillée ont germé dés les 15 éme jour après le semis ; dés le

9ème et le 12ème jour, la germination passe respectivement à des taux de 44% et 60%.

Au 18 ème jour du semis, l'évolution de la germination des graines traitées à 100

meq de NaCl attend un niveau stationnaire de 32% ; les mêmes observations sont pour

les graines traitées à 200 meq de NaCl avec un taux seulement de 16%.

Fig.2- Cinétique de la germination des graines germées(en %) en boîte de Pétri durant trois semaines de stress salin au NaCl et au NaCl+CaCl2.


La figure 2 illustre le comportement des graines traitées sous NaCl+CaCl2. Le taux

0

10

20

30

40

50

60

70

80

90

100

3 6 9 12 15 18 21

taux

cum

ulés

des

gra

ines

ger

mée

s

jour apres semi

Témoin NaCl100meq NaCl200meq

NaCl+CaCl₂100 NaCl+CaCl₂200

cumulé des graines germées séjournant dans 100 meq de sels progresse lentement jusqu’à

atteindre un taux de 44% après 18 jours. Pour un traitement de 200meq le taux cumulé

des graines germées est de 20 %.

Le test statistique du tableau 8 indique que l’effet de la salinité est significatif par

rapport à la germination quotidienne.

Tableau 8- Test statistique de signification de Fisher (P= 5%) de la cinétique de germination de la fève Vicia faba.L durant trois semaines de stress salin à l’aide du logiciel SPSS8.

Taux de germination(%)

Témoin NaCl 100 meq

NaCl 200meq

NaCl +CaCl2 100meq

NaCl +CaCl2 200meq

3ème jour 20±2 0 0 0 0 6 ème jour 32±1.2 8±0.78S 4± 09S 12 ±2S 0 9 ème jour 44 ±0.78 12± 3S 4±1 S 20± 2.12S 4 ±0.45S 12 ème jour 64±3 20± 2S 8±1.5S 24± 1.1 S 8 ± 03.2S 15 ème jour 84±1.2 28± 3.24S 8 ±2.3S 32± 3.7S 8 ±2.5S 18 ème jour 84±2.6 28± 1.1S 12±1S 44±3.2 S 20± 2.26S 21 ème jour 84±4.3 32±3 S 16±1.6S 44 ± 3.6S 20±3 .4S

S : Effet significatif.

2 –Vitesse de germination a – Sous le traitement NaCl

Les graines témoins qui contient l’eau distillée marquent la vitesse de germination la

plus élevée (56.28%), et le temps moyen le plus court (1.77 jours). Le temps moyen de

germination chez les graines arrosées à 100 meq est de 4.05 jours avec une vitesse

moyenne de 24.63%. Le coefficient de vélocité le plus faible (22,8%) est celui des graines

arrosées à la solution saline de NaCl à 200meq, et le temps moyen le plus tardif est de

(4.38 jours) par rapport au témoin .

b – Sous le traitement NaCl+CaCl2

Le coefficient de vélocité est de 56.28% pour les graines recevant de l’eau distillée.

Quand les graines de fève sont arrosées aux solutions salines (100 meq) , le Cv diminue

jusqu’a 33.33% , pour 200 meq le cv diminue à 20% (figure 5).

Le temps moyen de germination (Tm) le plus court a été observé chez les graines

témoin (1.77 jours). Ce dernier augmente est atteint 3 jours lorsqu’on applique la solution

NaCl + CaCl2 à 100 meq . Le Tm atteint 5 jours chez les graines arrosées avec la solution

de NaCl + CaCl2 à 200 meq.

Fig.3 - Coefficient de vélocité (cv) et temps moyens de germination (Tm) des graines de la fève Vicia faba.L durant trois semaines de stress salin au NaCl et au NaCl+CaCl2.

L’analyse de la variance représentée au tableau 11 révèle un effet significatif par

rapport au témoin, en effet la vitesse de germination diminue et le temps moyen s’allonge

avec l’intensité du sel. Tableau 9 - Test statistique de Fisher de la vitesse de germination au seuil de signification de 5% pour les graines de la fève Vicia faba.L durant trois semaines de stress salin au NaCl et au NaCl+CaCl2 .

Témoin NaCl 100meq

NaCl 200meq

NaCl+CaCl2

100meq NaCl+CaCl2

200meq

Cv(%) 56.28±0.032 24.63±1.7 S 22.8±0.967S 33.33±1.9 S 20±0.81 S Tm 1.77±0.04 4.05±0.12 S 4.38±0.06 S 3±0.08 S 5±0.16 S

S Effet significatif.

3- Taux final de la germination des graines a – Sous le traitement de NaCl

On observe une grande différence de taux final de la germination dans la solution salin 100 et 200 meq par rapport au témoin après trois semaines de stress salin, les graines témoins atteignent 84% de germination. Les graines recevant 100 et 200 meq , le taux de germination égale 32% et 16%.

L’analyse de la variance du tableau 9 révèle clairement que le taux final de la germination chez les graines de fève expose une différence significative par rapport au témoin.

0

10

20

30

40

50

60

Témoin 100 200 100 200

NaClmeq NaCl+CaCl2 meq

vite

sse

de g

erm

inat

ion

Cv Tm

Fig.4 - Taux final (%) de la germination des graines germées de la fève Vicia faba.L durant trois semaines de stress salin au NaCl et au NaCl+CaCl2.

b – Sous le traitement NaCl + CaCl2

On ce qui concerne les graines stressées sous solution NaCl+CaCl2 100 et 200 meq, on remarque une différence entre 44et 20% de taux de germination par rapport au témoin durant trois semaines. L’analyse de la variance tableau 10 révèle clairement que le taux de germination chez les graines de fève Vicia faba.L expose une différence significative aux traitements additionnées par rapport au témoin.

Tableau 10- Test statistique de signification de ficher (P=5%) Taux final (%) de la germination des graines germées de la fève Vicia faba.L durant trois semaines de stress salin.


NaCl 200meq

NaCl +CaCl2

100meq NaCl +CaCl2 200meq

% de germination 84±3.33 32±4.33S 16±1S 44±3.33S 20±3.33S S Effet significatif.

4 – Poids sec perdus des graines a – Sous traitement de NaCl

Il faut noter une grande différence du poids sec perdu chez les graines témoins par

rapport aux graines stressés sous solution NaCl 100 et 200meq ; les graines témoins

perdent (5.90g) durant la germination . Pour les graines stressés, le poids secs perdu et

entre (0.90g) et (0.47g).

0102030405060708090

100

Témoin 100 200 100 200

NaClmeq NaCl + CaCl2meq

% de germination

Fig.5- Poids sec perdus des graines germées de la fève Vicia faba.L après trois semaines de stress salin au NaCl et au NaCl+CaCl2.

b – Sous NaCl+CaCl2 Les mêmes observations sont signalées pour les graines stressés sous solution

NaCl+CaCl2 100 et 200meq soit des poids secs respectifs de 2.03 g et 1.02 g.

Les résultats du tableau 11 indiquent que la salinité à 100 et 200 meq agit

significativement sur le poids sec des graines germées sous traitement NaCl et

NaCl+CaCl2

Tableau 11-Test statistique de signification de ficher (P=5%) de Poids sec perdus des graines de la fève Vicia faba.L après trois semaines de stress salin

S Effet significatif. II – Etude biométrique de la fève Vicia faba.L après une et deux semaines de stress salin

1 - Nombre de feuilles après une et deux semaines de stress

a – Sous traitement de NaCl Les résultats moyens illustrés sur la figure 6, révèlent que le nombre des feuilles de

fève Vicia faba.L est de 35 et 45 après une et deux semaines de stress chez les plantes

témoins, alors que chez les plantes traitées par NaCl le nombre de feuilles est de 25, 27 à

0

1

2

3

4

5

6

7

8

témoin 100 200 100 200

NaClmeq NaCl +CaCl₂meq

poid

sec

perd

u


NaCl 200 meq

NaCl+CaCl2 100meq

NaCl+CaCl2 200meq

Poids secs perdu(g)

5.84±1 0.90±0.37S 0.47±0.30S 2.03±1S 1.02±0.41S

100meq et de 26, 28 à 200meq. La contrainte saline dans sa globalité n’a pas induit de

grande différence au niveau de ce paramètre après une semaine de stress salin mais après

deux semaines, la différence de nombre de feuilles est remarquable.

Fig.6- Nombre des feuilles des plantes de Vicia faba.L mesuré après une et deux semaines de stress salin au NaCl et au NaCl+CaCl2.

b – Sous traitement de NaCl+CaCl₂

Les résultats obtenus ne montrent aucune différence entre les plantes stressées

sous solution NaCl+CaCl₂ par rapport au NaCl. Le nombre de feuilles des plantes de fève

Vicia faba.L est de 28 et 30 feuilles après une et deux semaines de stress à 100meq est de

27 et 28 à 200meq.

Les données de l’analyse statistique du Tableau 12 signalent que l’effet de la

salinité sur le nombre des feuilles est très hautement significatif, sauf au niveau des

feuilles sous NaCl+CaCl₂ 100meq où l’effet est non significatif après une semaine de

stress salin .

Tableau 12 - Test statistique de signification de ficher (P=5%) de nombre des feuilles des plantes de Vicia faba.L mesuré après une et deux semaines de stress salin Témoin NaCl

100 meq NaCl

200 meq NaCl+CaCl2

100meq NaCl+CaCl2

200meq Après une semaine 35±1 25±1S 26±2.51S 28±1.52NS 27±1.52S Après deux semaines 45±1 27±1S 28±2S 30±1.5S 28±1S S Effet significatif. NS Effet non significatif 2-Rapport longueur de la racine /longueur de la tige (LR/LT) après une et deux semaines de stress salin a – Sous traitement NaCl

05

101520253035404550

0 100 200 100 200

Témoin NaClmeq NaCl+CaCl2meq

nom

bre

des

feul

les

traitement

après unesemaine

après deuxsemaine

Les résultats illustrés de la figure 7 montrent une différence significative pour les

plantes témoins après une et deux semaines de stress. Cette différence ne s’est pas

exprimée pour les plantes stressées à 100et 200meq.

Fig.7- Rapport longueur de la racine /longueur des tiges des plantes de Vicia faba.L mesuré après une et deux semaines de stress salin au NaCl et au NaCl+CaCl2.

b – Sous traitement de NaCl + CaCl₂ Le rapport de la longueur racine sur la longueur des tiges(LR/LT) des plantes de

Vicia faba.L mesuré après une et deux semaines de stress salin montre une différence

hautement significative entre les plantes témoins par rapport aux plantes sous solution

NaCl+CaCl₂. (figure7)

Les résultats du Tableau 13 indiquent que l’effet du traitement salin au NaCl au

rapport ( LR/LT ) est significative ; l’exception faite aux plantes stressées à 100 et 200 meq

après une semaine de stress de NaCl+CaCl2 où le sel présente un effet non significatif .

Après deux semaines de stress, l’analyse statistique illustrée dans le Tableau 13

révèle l’effet non significatif sur le rapport LR/LT sous l’effet de la concentration saline

à 100 et 200meq de NaCl. Toutefois la différence reste significative entre les plantes

témoin et les plantes traités par le NaCl+CaCl₂.

Tableau 13- Test statistiques de signification de ficher (P=5%) de rapport longueur de la racine /longueur des tiges des plantes de Vicia faba.L mesuré après une et deux semaines de stress salin .

Témoin NaCl NaCl NaCl+CaCl2 NaCl+CaCl2

0

0,05

0,1

0,15

0,2

0,25

témoin 100 200 100 200

NaCl meq NaCl+CaCl₂meq

Rapp

ort L

r/Lt

après unesemaine

après deuxsemaines

100 meq 200 meq 100meq 200meq

Après une semaine 0.102±0.041 0.119±0.047S 0.142±0.056S 0.113±0.045NS 0.100±0.041NS

Après deux semaines 0.130±0.051 0.125±0.001NS 0.136±0.004NS 0.112±0.0032S 0.094±0.003S

S : significatif. NS : non significatif 3-Rapport biomasse séchée racinaire /biomasse séchée aérienne (BSR/BSA) après une et deux

semaines de stress salin


Les résultats illustrés dans la figure 8 montrent une différence significative pour les

plantes témoins après une et deux semaines de stress. Cette différence n’a pas été

remarquée chez les plantes stressées 100et 200meq.

Fig.8 - Rapport biomasse séchée biomasse racinaire /biomasse aérienne (BSR/BSA) des plantes de Vicia faba.L mesuré après une et deux semaines de stress salin au NaCl NaCl+CaCl2.

b – Sous traitement de NaCl + CaCl₂

Le rapport biomasse séchée racinaire sur biomasse séché aérienne (BSR/BSA) des

plantes de Vicia faba.L mesuré après une et deux semaines de stress salin montre une

différence entre les plantes témoins et les plantes sous solution NaCl+CaCl₂, cette

différence est très hautement significative.

L’analyse de la variance pour les deux types de sels (NaCl et NaCl + CaCl2)

(Tableau 14) a montré une différence significative par rapport au témoin, sauf pour les

plantes arrosées au NaCl + CaCl2 100meq après une semaine de traitement.

00,05

0,10,15

0,20,25

0,30,35

0,40,45

témoin 100 200 100 200


Rapp

ort B

SR/B

SA

après unesemaine

aprésdeuxsemaine

Après deux semaines, on remarque un effet non significatif sur le rapport (BSR/BSA)

sous les concentrations salines de 100 et 200meq de NaCl ,et de 200 meq de NaCl +

CaCl2 , pour la concentration saline de 100 de NaCl + CaCl2 , l’effet est significatif.

Tableau 14 - Test statistique de signification de ficher (P=5%) du rapport biomasse séchée biomasse racinaire /biomasse aérienne (BSR/BSA) des plantes de Vicia faba.L mesuré après une et deux semaines de stress salin.

Témoin NaCl

100 meq

NaCl

200meq

NaCl+CaCl2

100meq

NaCl+CaCl2

200meq

Après une semaine 0.21±0.012 0.24±0.056S 0.28±0.014S 0.18±0.038NS 0.28±0.028S

Après deux semaines 0.31±0.09 0.24±0.018NS 0.28±0.03NS 0.19±0.0.8S 0.29±0.029NS

S Effet significatif. NS Effet non significatif

4-Le volume des racines (cm³) après une et deux semaines de stress salin


Le traitement des plantes au NaCl ne montre pas de grande différence par rapport aux

plantes témoins après une semaine de stress (figure 9). En effet, le volume racinaire est de

7.02 cm³, 6.00 cm³ et 5.83 cm³ respectivement aux traitement à 100 , 200 meq et au

témoin. On note toutefois que les racines des plantes arrosées par la solution saline à

200meq ne semblent pas être affectées dans leur développement et enregistrent une légère

augmentation de leur volume (1.02 cm3 ) par rapport au témoin, mais après deux semaines

de stress la différence est significative .

Fig.9 - Volume des racines des plantes de Vicia faba.L mesuré après une et deux semaines de stress salin au NaCl et au NaCl+CaCl2.


Les plantes stressées ne montrent aucune différence par apport aux plantes témoin

après une semaine de stress (figures9), le volume racinaire est de 5.85cm³, 5.90cm³ et

5.83cm³ respectivement aux traitements à 100meq, 200meq et au témoin.

Après deux semaines de stress on observe une différence remarquable aux plantes traitées

par rapport aux plantes témoin.

L’étude statistique (Tableau 15) indique que la différence entre les volumes des

racines ne présente pas une différence significative en comparant avec l’apport de la

solution nutritive après une semaine et deux semaines de stress quelque soit le traitement.

Tableau 15- Test statistiques de signification de ficher (P=5%) de volume des racines des plantes de Vicia faba.L mesuré après une et deux semaines de stress salin.

Témoin NaCl

100 meq

NaCl

200 meq

NaCl+CaCl2

100meq

NaCl+CaCl2

200meq

Après une semaine 5,83±1 7,02±1NS 6±2NS 5,85±0.81NS 5,9±0.81NS

Après deux semaines 10±2.04 7,66±1.84NS 6,03±0.84NS 6,5±1.63NS 6,06±0.45NS

S : Effet significatif. NS Effet non significatif

5- Surface foliaire (cm2) après une et deux semaines de stress salin

0

2

4

6

8

10

12

14

Témoin 100meq 200meq 100meq 200meq

NaCl NaCl +CaCl2

après une semaine

apré deux semaine


Les plantes stressées au NaCl montrent une grande différence sur la surface foliaire par

apport aux plantes témoins après une et deux semaines de stress, les valeurs moyennes de

la surface foliaire obtenues chez les plantes témoins (figure.10) après une semaine et de

13.8 cm2. Après deux semaines de stress les résultats indiquent une forte augmentation

de la surface par rapport aux plantes stressées à la salinité. En effet, cette surface varie à

la baisse de 9,07 à 9,62 cm2.

Fig.10- La surface foliaire des plantes de Vicia faba.L mesuré après une et deux semaines de stress salin au NaCl et au NaCl+CaCl2.

b – Sous traitement NaCl + CaCl₂

La valeur moyenne de la surface foliaire est de 13.8 cm2 chez les plantes non traitées

par rapport aux plantes traités aux NaCl + CaCl₂ (10.13cm2) pour 100 meq et ( 8.53 cm2

) pour 200 meq après une semaine de stress. Les valeurs de la surface foliaire entre les

plantes témoins et les plantes stressées au NaCl + CaCl₂ après deux semaines de stress

montrent que l’effet de la salinité est nom significatif.

L’étude statistique (Tableau 16) indique que les différences entre la surface foliaire

des plantes sous traitement ne présentent pas de différences significatives par rapport au

témoin après une semaine et deux semaines quelque soit le traitement , sauf les plantes

sous solution saline NaCl 200 meq et au NaCl + CaCl₂ 200meq .

Tableau 16 - Test statistique de signification de ficher (P=5%) de la surface foliaire des plantes de Vicia faba.L mesuré après une et deux semaines de stress salin

0

2

4

6

8

10

12

14

16

18

témoin 100 200 100 200

NaCl meq NaCl+CaCl₂

surf

ace

folia

ire

après unesemaine

après deux semaines

Témoin NaCl

100 meq

NaCl

200 meq

NaCl+CaCl2

100meq

NaCl+CaCl2

200méq

Après une semaine 13,8±0.54 9,07±0.87NS 9,62±0.91NS 10,13±0.47NS 8,53±0.79S

Après deux semaines 14,04±1.71 9,51±0.99NS 8,8±1.58S 11,52±1.13NS 9,16±1.34NS

S Effet significatif. NS Effet non significatif III – Bilon hydrique de la fève Vicia faba L. après une et deux semaines de stress salin

1-La teneur relative en eau (RWC)

a-La partie aérienne après une et deux semaines de stress salin


La teneur relative en eau ne présente aucune différence significative entre les

différents traitements (figure 11). Après une semaine de stress salin, nous avons observé

une diminution de 6 et 14% respectivement sous l’effet de 100 et 200 meq de NaCl,

comparativement aux plants témoins qui enregistrent 77.52%. Cependant, après deux

semaines de stress, le RWC foliaire a enregistré des valeurs de 17 et 18% consécutivement

sous l’effet de 100 et 200 meq de NaCl par rapport aux plants témoins.

Fig.11- Teneur relative en eau en % (RWC) de la partie aérienne chez Vicia faba. L traitée avec NaCl et NaCl+CaCl2 après une et deux semaines.

– Sous traitement de NaCl+CaCl₂

0102030405060708090

témoin 100 200 100 20


RWC(

%)

après une semaine après deux semaine

Nos résultats obtenus après une semaine de stress, ont montré clairement une nette

diminution du RWC en effet, les deux doses salines 100 et 200 meq de NaCl+CaCl2, ont

enregistré respectivement 10 et 13% par rapport au témoin (figure 11).

En outre, le RWC après deux semaines de stress salin diminue sensiblement avec

une valeur de 31% par rapport au témoin (figure 11).

L’étude statistique des valeurs enregistrées lors de la première semaine et de la

deuxième semaine de traitement, a donné une différence significative entre les différents

traitements et le témoin, sauf à 100meq de NaCl n’a donné aucune différence significative

(tableau 17)

Tableau 17 – Analyse statistique à l’aide de test de Ficher (à p=5%) de la teneur relative en eau (RWC) de la partie aérienne chez Vicia faba. L traitée, après une et deux semaines, avec NaCl et NaCl+CaCl2.


NaCl 200meq

NaCl+CaCl₂ 100meq

NaCl+CaCl₂ 200meq

RW

C(

%)

Après une semaine 77.62±2.5 71.72±1.65NS 63.45±3.09S 67.53±2.27S 64.51±2.62S Après deux semaines 80.12±3.3 63.61±2.65S 62.82±2.59S 63.25±2.45S 59.27±3.71S

S : significatif. NS : non significatif

b- Les zones apicale-médiane-basale



La figure 12, a présenté un RWC évalué au niveau de plusieurs étages de la plante,

nous avions constaté des différences à 100 et 200meq de NaCl en comparant au témoin.

Par ailleurs, une remarque a été faite concernant les valeurs enregistrées par le témoin

(79.71 ; 74.74 et 78.12%) qui se rapprochent entre elles, alors que chez les plants stressés,

il y a eu une variation sensible de 8 à 12 % dans la zone apicale, de 5 à 12 % dans la zone

médiane et de 15 à 23% au niveau de la zone basale.

Fig.12 - Teneur relative en eau en % (RWC) dans les différentes zones (apicale, médiane et basale) chez Vicia faba. L traitée, après une semaine, avec NaCl et NaCl+CaCl2.

– Sous traitement de NaCl + CaCl₂ Nos résultats obtenus (figure13), ont donné un RWC dans les différentes zones

(apicale, médiane et basale), n’ont donné aucune différence significative entre les plantes traités et le témoin, par contre, il faut signaler une diminution des valeurs de 7 et 14% dans la zone apicale, de 5 à 8% dans la zone médiane et de 6 à 12% dans la zone basale respectivement par les traitements 100 et 200 meq de NaCl+CaCl₂ et ceci en comparaison au témoin.

Fig.13 - Teneur relative en eau en % (RWC) dans les différentes zones (apicale, médiane et basale) chez Vicia faba. L traitée, après deux semaines, avec (NaCl et NaCl+CaCl2).

Les calculs statistiques nous ont permis de déceler une différence significative (tableau 18) entre les différents traitements, sauf dans le cas de la zone médiane traitée après une semaine avec 100 meq de NaCl et 100, 200 meq de NaCl+CaCl2 n’a présenté aucune différence significative. Par contre, dans la zone basale, cette différence a été significative pour les traitements suivants (100 et 200meq de NaCl et 200meq de NaCl+CaCl₂).

0

20

40

60

80

100


RWC(

%)

Traitement

zone apicale zone médiane zone basale

0

20

40

60

80

100

Témoin NaCl+CaCl₂00meq NaCl+CaCl₂ 200meq

RWC(

%)

Traitement


Tableau 18- Analyse statistique à l’aide de test de Ficher (à p=5%) de la teneur relative en eau (RWC) dans les différentes zones (apicale, médiane et basale) chez Vicia faba. L traitée, après une semaine, avec (NaCl et NaCl+CaCl2)

S : Effet significatif. NS : Effet non significatif



Nos observations ont donnés des différences au niveau des différentes zones des plants

stressés par rapport au témoin (figue 14). Cependant, les plants qui n’ont subit aucun

traitement salin ont retenu 82.67, 86.16 et 71.65% respectivement au niveau des zones

(apicale, médiane et basale), sauf, les plants traités à la salinité ont montré une nette

diminution en donnant des valeurs atteignant jusqu’à 73.28 et 57.8% dans la zone apicale,

63.40 et 58.40% dans la zone médiane et 49.28 et 45.80% dans la zone basale

respectivement aux traitements 100 et 200 meq de NaCl.

Fig.14 - Teneur relative en eau (RWC%) dans les zones (apicale, médiane et basale) chez Vicia faba. L traitée, après une semaine, avec NaCl.

0

20

40

60

80

100


RWC(

%)

Traitement



NaCl 200 meq

NaCl+CaCl₂ 100meq

NaCl+CaCl₂ 200meq

RW

C(%

) Zone apicale 79.71±3.06 72.98±1.34S 64.95±2.28S 72±3.15S 64.61±1.54S Zone médiane

74.74±4.08 69.82±2.90NS 62.66±4.08S 69.62±4.15NS 66.24±3.43NS

Zone basale 78..12±4.81 63.66±2.53S 57.12±3.28S 72.39±2.11NS 62.67±4.15S

Sous traitement de NaCl + CaCl₂

Fig.15 - Teneur relative en eau en % (RWC) dans les zones (apicale, médiane et basale) chez Vicia faba. L traitée, après une semaine, avec NaCl et NaCl+CaCl2.

Selon les résultats mentionnés dans la figure 15, il en résulte que la présence de

NaCl+CaCl₂ dans le milieu de culture des plants a induit une diminution de la teneur

relative en eau dans les différentes zones, cependant, chez les plants témoins cette teneur a

varié de 82.71, 86.16 et 71.65% respectivement dans les zones (apicale, médiane et

basale), alors qu’en présence de NaCl+CaCl₂, ces valeurs ont baissés en enregistrant 69.33

et 63.68% dans la zone apicale, 60.96 75.4% dans la zone médiane et dans la zone basale

62.5 et 53.17 % respectivement aux traitement 100 et 200meq.

Nous avons remarqué qu’à travers l’étude statistique (tableau 19), qu’il existe une

différence significative entre les différents traitements et le témoin.

Tableau 19 – Analyse statistique à l’aide de test de Ficher (à p=5%) le RWC dans les zones (apicale, médiane et basale) chez Vicia faba. L traitée, après deux semaines, avec NaCl et NaCl+CaCl2.

S : Significatif. NS : Non significatif 2-La perte d’eau par transpiration (mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹)

0

20

40

60

80

100

Témoin NaCl+CaCl₂00meq NaCl+CaCl₂ 200meq

RWC(

%)

Traitement



NaCl 200 meq

NaCl+CaCl₂ 100meq

NaCl+CaCl₂ 200meq

RWC (%)

Zone apicale 82.67±4.66 73.28±2.07S 57.8±2.36S 69.33±3.63S 63.68±4.47S Zone médiane 86.16±3.81 63.40±4.76S 58.40±2.64S 60.96±3.80S 75.4±2.88S Zone basale 71.65±2.65 49.28±2.55S 45.80±3.79S 62.51±3.35S 53.17±3.32S

a-partie aérienne



La transpiration a diminué au cours du temps et en fonction de la salinité (figure

12). Les résultats de l’estimation de cette caractéristique à la 30ème minute, ont montré de

faibles basses déperditions en eau, obtenues par les plants cultivés sous contraintes salines

(100 et 200 meq) en donnant des valeurs respectives de 0.034 et 0.031 (mg

d’eau.cmˉ².mnˉ1) par rapport au témoin, pour lequel ce paramètre reste le plus fort avec

0.040 (mg d’eau.cmˉ².mnˉ1).

Bien qu’après 60 minutes, les résultats obtenus ont montré également une

diminution par rapport aux résultats précédents. Ils étaient respectivement de 0.030, 0.016

et 0.010 (mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹), pour les plants témoins, ceux stressés avec 100 et 200 meq

de NaCl.

Fig.16- La perte d’eau par transpiration (RWL) de la partie aérienne chez Vicia faba. L traitée, après une semaine, avec NaCl.

A la fin de l’expérience (après 120 minutes), les valeurs de RWL se sont atténuées

par rapport à celles enregistrées précédemment (après 30 et 60 minutes). Cependant, nous

avons relevé 0.016, 0.011, et 0.006 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹ respectivement chez le témoin,

100 et 200 meq de NaCl.

00,005

0,010,015

0,020,025

0,030,035

0,040,045

30' 60' 120'

Pert

e d'

eau

par t

rans

pira

tion

temps

témoin NaCl100meq NaCl200meq

Fig.17- La perte d'eau par transpiration (RWL) de la partie aérienne chez Vicia faba. L traitée, après deux semaines, avec NaCl

Après 30 minutes de stress, nous avons observé les quantités de RWL avec 0.013 et

0.011 mg d’eau.cmˉ².mnˉ1, sous l’influence des doses de 100 et 200 meq de NaCl, nous

avons remarque une forte diminution de l’eau dans la partie étudiée de la plante en

affichant 0.040 mg d’eau.cmˉ².mnˉ1.

Après deux semaines de stress salin, la comparaison des résultats obtenus de la

perte d’eau par transpiration, après 60 et 120 minutes (figure 7), nous a permis de constater

un taux de réduction beaucoup plus ou moins important chez les plants traités par rapport

au témoin. Par ailleurs, le taux de réduction le plus élevé chez le témoin a été de 10% ; par

contre, la perte d’eau chez les plants stressés aux 100 et 200 meq a varié entre 2 et 5%.

L’étude statistique à l’aide de test de Ficher (à p=5%), nous a montré que l’effet du

stress salin sur la perte d’eau par transpiration après 30 minutes a été significatif (tableau

20), la diminution du taux de déperdition en eau (RWL) calculé à la 60ème et la 120ème

minute a été significativement influencé par la salinité après une et deux semaines de

stress. Seulement, après une semaine de stress, la perte d’eau par transpiration calculée à la

120ème minute n’a exprimé aucune différence significative sous l’effet de 100meq de NaCl

0

0,005

0,01

0,015

0,02

0,025

0,03

0,035

0,04

0,045

0,05

30' 60' 120'

prte

d'e

au p

ar tr

ansp

irat

ion

(RW

L)

Temps


Tableau 20- Analyse statistique à l’aide de test de Ficher (à p=5%) de la perte d’eau par transpiration (RWL) de la partie aérienne chez Vicia faba. L traitée, après une et deux semaines, avec NaCl.

RW

L(m

g.cm

ˉ2 .m

n)

Temps Témoin NaCl 100mq NaCl 200meq

après une

semaine

30mn 0.040±0.001 0, 034±0. 010S 0,031±0.0068S

60 mn 0,030±0.001 0,016±0.0015S 0,010±0.0011S

120 mn 0,016±0.002 0,011±0.008NS 0,006±0.0005S

après deux

semaines

30 mn 0,040±0.006 0,013±0.00225S 0,011±0.0016S

60 mn 0,032±0.0041 0,0063±0.0010S 0,006±0.001S

120 mn 0,023±0.005 0,0043±0.0010S 0,0021±0.00035S

S : Significative NS : Non significative

Sous traitement de NaCl+CaCl₂

Après une semaine de stress Au début de l’expérience c’est-à-dire après 30 minutes, les quantités d’eau perdues par

les plants témoins ont été de 0.040 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹, d’autre part, chez les plants traités

avec 100 et 200 meq de NaCl+CaCl₂, le RWL a été de 0.031 et 0.015 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹ .

Fig.18- La perte d'eau par transpiration (RWL) de la partie aérienne chez Vicia faba. L traitée, après une semaine, avec NaCl+CaCl2 .

Les résultats obtenus, après 60 minutes, ont montré également une diminution par

rapport aux résultats précédents. Ces valeurs ont été respectivement de 0.030, 0.026 et 0.01

mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹ chez le témoin, 100 et 200 meq de NaCl+CaCl₂.

0

0,005

0,01

0,015

0,02

0,025

0,03

0,035

0,04

0,045

30' 60' 120'

Pert

e d'

eau

par t

rans

pira

tion

(RW

L)

Temps

Témoin NaCl+CaCL₂100meq NaCl+CaCL₂ 200q

Tandis qu’à la fin de l’expérience (après 120 minutes), le RWL a été atténué par

rapport à celui enregistré précédemment (après 30 et 60 minutes). Nous avons aussi relevé

0.016, 0.0097 et 0.0032 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹ respectivement par le témoin, 100 et

NaCl+CaCl₂.


Nos résultats obtenus, après 30 minutes, ont permis de voir les quantités suivantes

0.040, 0.031 et 0.015 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹ respectivement chez le témoin, 100 et 200 meq

de NaCl+CaCl₂ (figure 19).

En outre, après 60 minutes d’expérience, les résultats obtenus ont montré également

une diminution par rapport aux résultats précédents. Ces données ont été 0.026, 0.0 14 et

0.012 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹ respectivement chez le témoin, 100 et 200 meq de NaCl+CaCl₂

(figure 19).

A la fin de l’expérience (après 120 minutes), le RWL s’est atténué par rapport à

celui enregistré précédemment (après 30 et 60 minutes). De même, nous avons relevé

0.023, 0.01 et 0.0065 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹ respectivement chez le témoin, 100 et 200 meq

de NaCl+CaCl₂ (figure 19.).

Fig.19- La perte d'eau par transpiration (RWL) de la partie aérienne chez Vicia faba. L traitée, après deux semaines, avec NaCl et NaCl+CaCl2 .

0

0,005

0,01

0,015

0,02

0,025

0,03

0,035

0,04

0,045

0,05

30' 60' 120'

Pert

e d'

eau

par t

rans

pira

tion

(RW

L)

Temps


L’analyse statistique à l’aide de test de Ficher (à p=5%) a montré clairement l’effet

de la salinité du milieu de culture sur le RWL à la 30ème minute est significatif (tableau 21),

en effet, la diminution du RWL calculé à la 60ème et la 120ème minute a été

significativement influencé par la présence de sel dans la solution nutritive. Par contre, le

RWL mesuré à la 60ème minute n’a exprimé aucune différence significative entre 100 meq

NaCl+CaCl2 et le témoin et ceci après une semaine de stress.

Tableau 21- Analyse statistique à l’aide de test de Ficher (à p=5%) de perte d’eau par transpiration (RWL) de la partie aérienne chez Vicia faba. L traitée, après une et deux semaines, avec NaCl+CaCl2 .

RW

L (m

g.cm

ˉ2 .m

n )

Temps Témoin NaCl+CaCl₂

100meq

NaCl+CaCl₂

200meq

après une

semaine

30mn 0.040±0.001 0,031±0.0056S 0,015±0.0029S

60 mn 0,030±0.001 0,0261±0.0010NS 0,01±0.007S

120 mn 0,016±0.002 0,0097±0.0015S 0.0032±0.002S

après deux

semaines

30 mn 0,040±0.006 0,018±0.005S 0,016±0.001S

60 mn 0,032±0.0041 0,014±0.0025S 0,012±0.0015S

120 mn 0,023±0.005 0,01±0.0075S 0,0065±0.001S

S : Significatif. NS : Non significatif

b -La zone apicale

Sous traitement de NaCl

Après une semaine

Nous avons noté le RWL à deux temps différents 30 et 60 minutes, des valeurs ont

été enregistrées à 30 minutes chez le témoin avec 0.048 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹, à 100 meq de

NaCl avec 0.02 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹ et enfin, à 200 meq de NaCl avec 0.016 mg

d’eau.cmˉ².mnˉ¹ ; des réactions identiques ont été enregistrées à 60 minutes, avec des

valeurs 0.030, 0.012 et 0.011 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹ respectivement chez le témoin, 100 et

200 meq de NaCl + CaCl₂ (figure 20).

Fig.20- La Perte d’eau par transpiration (RWL) dans la zone apicale chez Vicia faba. L traitée, après une semaine, avec le NaCl.

Après 120 minutes d’expérience, les valeurs de RWL se sont atténuées par rapport à

celles enregistrées précédemment (à 30 et 60 minutes). Nous avons déchiffré les valeurs

suivantes 0.0096, 0.005 et 0.004 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹ respectivement chez le témoin, 100

et 200 meq de NaCl (figure 20)


Les quantités d’eau perdues par les plantes soumises uniquement à la solution

nutritive, et ceci après 30 minutes d’expérience, sont de l’ordre de 0.11 mg

d’eau.cmˉ².mnˉ¹, alors que pour les plants stressés avec 100 meq de NaCl ont donné une

moyenne 0.059 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹ et les plants traités avec 200 meq de NaCl ont montré

une valeur de 0.010 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹ (figure 21).

Egalement, après 60 minutes d’expérience, les plants stressés ont exprimé une

réduction par rapport aux résultats de l’essai après 30 minutes. Nous avons décelé lors de

cette étape (après 30mn) des valeurs comme suit 0.059, 0.018 et 0.0083 mg

d’eau.cmˉ².mnˉ¹ respectivement par le témoin, 100 et 200 meq de NaCl (figure 21).

0

0,01

0,02

0,03

0,04

0,05

0,06

30' 60' 120'Pert

e d'

eau

par t

rans

pira

tipn

de

la z

one

apic

ale

Temps


Fig.21- La perte d'eau par transpiration (RWL) dans la zone apicale chez Vicia faba. L traitée, après deux semaines, avec NaCl.

En fin d’expérience, c’est-à-dire après 120 minutes, le RWL a diminué sous l’effet

de la salinité en enregistrant les chiffres suivants 0.035 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹ par le témoin,

0.0035 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹ sous l’effet de 100meq de NaCl et 0.0021 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹

chez les plants soumis à 200 meq de NaCl.

En conséquence, les calculs statistiques ont donné des différences significatives

entre les différents traitements et ceci pour les trois relevés (30ème, 60ème et 120ème), excepté

les plants soumis à la dose de 100 meq de NaCl, qui n’ont donné aucune différence

significative (tableau 22).

Tableau22 - Analyse statistique à l’aide de test de Ficher (à p=5%) des pertes d'eau par transpiration (RWL) dans la zone apicale chez Vicia faba. L traitée, après une et deux semaines, avec NaCl.

RW

L(m

g.cm

ˉ2 .m

n)

Temps Témoin NaCl 100mq NaCl 200meq

après une

semaine

30mn 0,048±0.002 0,020±0.008S 0,016±0.001 S

60 mn 0,030±0.0032 0,012±0.002 N S 0,011±0.001 S

120 mn 0,0096±0.0006 0,005±0.0008 S 0,004±0.0003 S

après deux

semaines

30 mn 0.110±0.0016 0,059±0.0004 S 0,010±0.0008 S

60 mn 0,059±0. 0065 0,018±0.0001 S 0,0083±0.00024 S

120 mn 0,035±0007 0,0035±0.0004 S 0,0021±0.001 S

S : Effet significatif. NS : Effet non significatif


0

0,02

0,04

0,06

0,08

0,1

0,12

30' 60' 120'Pert

e d'

eau

par t

rans

pira

tion

de

la z

one

apic

ale

Temps


Après une semaine de stress Dans cette phase de notre essai, après 30 minutes, le témoin a enregistré un RWL

qui avoisine les 0.048 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹, qui a été très supérieur aux ceux affichés par

les plants stressés 0.017 et 0.015 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹ respectivement sous les doses de 100

et 200 meq de NaCl+CaCl2 (figure 22).

Les plants ont continué à présenter une régression du RWL, après 60 minutes

d’expérience (fig.). Les valeurs affichées ont été comme suit : 0.030, 0.014 et 0.012 mg

d’eau.cmˉ².mnˉ¹ respectivement par le témoin, 100 et 200meq de NaCl+CaCl₂.

Fig.22- La perte d'eau par transpiration (RWL) dans la zone apicale chez Vicia faba. L traitée, après une semaine, avec NaCl et NaCl+CaCl2.

Nous avons constaté aussi qu’après 120 minutes d’expérience, les données de RWL a baissé

davantage, pour enfin donner 0.0096, 0.010 et 0.009 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹ respectivement chez le

témoin, 100 et 200 meq de NaCl+CaCl₂.


Au niveau de cette étape et après 30 minutes d’essai, la quantité d’eau perdue par le

témoin a été de 0.010 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹, tandis que, les plants traités avec 100 meq de

NaCl+CaCl₂ ont montré un RWL de 0.058 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹ et 0.021 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹

enregistré par 200meq de NaCl+CaCl2.

0

0,01

0,02

0,03

0,04

0,05

0,06

30' 60' 120'

Pert

e d'

eau

par t

rans

pira

tion

de

la

zone

api

cale

Temps


Fig.23 - La perte d'eau par transpiration (RWL) dans la zone apicale chez Vicia faba. L traitée, après deux semaines, avec NaCl+CaCl2.

L’étape suivante de l’expérience, c’est-à-dire après 60 minutes, les résultats obtenus

ont montré une diminution du RWL par rapport à l’étape précédente. Effectivement, les

valeurs du RWL ont été respectivement chez le témoin, 100 et 200 NaCl+CaCl2, comme suit

0.059, 0.0097 et 0.0042 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹ (figure 23).

Tableau 23 – Analyse statistique à l’aide de test de Ficher (à p=5%) de la perte d'eau par transpiration (RWL) dans la zone apicale chez Vicia faba. L traitée, après deux semaines, avec NaCl+CaCl2.

RW

L (m

g.cm

ˉ2 .m

n)es

éta

pes


100meq

NaCl+CaCl₂

200meq

après une

semaine

30mn 0,048±0.002 0,017±0.0040 S 0,015±0.0016 S

60 mn 0,030±0.0032 0,014±0.0016 S 0,012±0.0040 S

120 mn 0,0096±0.0006 0,010±0.0040 S 0.009±0.00048 S

après deux

semaines

30 mn 0.110±0.0016 0, 05±0.0016 S 0,021±0.0032 S

60 mn 0,059±0. 0065 0,0097±0.0040 S 0,0042±0.00081 S

120 mn 0,035±0.007 0,0085±0.0032 S 0,0020±0.0040 S


Dans cette étape (après 120 minutes d’expérience), nous avons remarqué une

diminution progressive de la valeur de RWL en affichant respectivement 0.035, 0.0085 et

0.0020 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹ par le témoin, 100 et 200 meq de NaCl+CaCl₂ (figure 23.).

0

0,02

0,04

0,06

0,08

0,1

0,12

30' 60' 120'Pert

e d'

eau

par t

rans

pira

ton

de la

zon

e ap

ical

e

Temps


L’étude statistique (tableau 23) nous a permis de voir une différence significative entre

les différents traitements et ceci pendant les étapes (30ème, 60ème et 120ème minute).

C - La zone médiane

-Sous traitement de NaCl


Sous l’effet de NaCl, les plants ont présenté, après 30 minutes d’expérience, des

valeurs de RWL faibles par rapport à celles affichées par le témoin, ainsi, les deux

traitements 100 et 200 meq de NaCl ont donné respectivement 0.025 et 0.016 mg

d’eau.cmˉ².mnˉ¹, tandis que chez le témoin, ce RWL a été enregistré avec 0.048 mg

d’eau.cmˉ².mnˉ¹ (figure 24).

Fig. 24- La perte d'eau par transpiration (RWL) dans la zone médiane chez Vicia faba. L traitée, après une semaine, avec NaCl.

Par ailleurs, les valeurs de la perte d’eau par transpiration (RWL) ont continué de

baisser après 60 minutes d’expérience, pour donner enfin 0.030, 0.023 et 0.013 mg

d’eau.cmˉ².mnˉ¹ respectivement chez le témoin, 100 et 200 meq de NaCl (figure 24).

En même temps, nous avons constaté une baisse progressive du RWL après 120

minutes d’essai pour arriver à donner les valeurs suivantes 0.029 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹

(témoin), 0.018 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹ (100 meq de NaCl) et 0.010 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹ (200

meq de NaCl) (figure24).

0

0,01

0,02

0,03

0,04

0,05

0,06

30' 60' 120'

Perd

e d'

eau

par t

rans

pira

tion

de

la z

one

méd

iane

Temps

Témoin NaCl100meq NaCl 200q


Après 30 minutes d’expérience, les quantités d’eau perdues par les plants soumis

uniquement à la solution nutritive sont de 0.042 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹, par contre, les plants

traités avec du NaCl ont présenté un faible RWL de 0.019 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹ sous l’effet

de 100 meq et 0.011 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹ sous l’effet de 200 meq (figure 25)

Selon nos résultats obtenus après 60 minutes d’expérience, nous avons constaté une

diminution du RWL par rapport aux résultats précédents (après 30 minutes). En effet, les

valeurs affichées sont respectivement 0.030, 0.016 et 0.0096 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹ chez les

plants témoins et stressés avec 100 et 200 meq de NaCl (figure 25).

Fig.25- La perte d'eau par transpiration (RWL) dans la zone médiane chez Vicia faba. L traitée, après deux semaines, avec NaCl.

A l’issu de cette expérience (après 120 minutes), la quantification de la perte d’eau

par les plantes a vu une diminution progressive. Ainsi, les plants stressés au NaCl ont

présenté un RWL de 0.012 et 0.0088 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹ respectivement sous l’effet de

100 et 200 meq par rapport au témoin qui lui a donné une valeur supérieure de 0.028 mg

d’eau.cmˉ².mnˉ¹ (fig.)

Par ailleurs, nous avons remarqué une augmentation du taux de déperdition du

(RWL) qui a été déterminé aux différentes étapes (30, 60 et 120ème minute), a été

significativement influencée par la salinité au niveau de la zone médiane, après une et deux

semaines de stress (tableau 24), seulement, après une semaine de stress et après 60 minutes

d’expérience, sous l’effet de la dose de 100 meq de NaCl, l’effet est non significatif.

00,005

0,010,015

0,020,025

0,030,035

0,040,045

0,05

30' 60' 120'

Perd

e d'

eau

par t

rans

pira

tion

de

la z

one

med

iane

Temps


Tableau 24 – Analyse statistique à l’aide de test de Ficher (à p=5%) de la perte d'eau par transpiration (RWL) dans la zone médiane chez Vicia faba. L traitée, après deux semaines, avec NaCl.

RW

L (m

g.cm

ˉ2 .m

n)

Temps Témoin NaCl 100meq NaCl 200meq

après une

semaine

30mn 0,048±0.0024 0,025±0.0040S 0,016±0.0017S

60 mn 0,030±0.0032 0,023±0.0032NS 0,013±0.00032S

120 mn 0,029±0.0006 0,018±0.0016S 0,010±0.0028S

après deux

semaines

30 mn 0,042±0.0019 0,019±0.0016S 0.011±0.00032

60 mn 0,030±0.0010 0,016±0.0018S 0.0096±0.0016

120 mn 0,028±0.0010 0,012±0.00017S 0.0088±0.00015

S: Significatif. NS: Non significatif

Sous traitement de NaCl+CaCl₂


La figure 25, représente les trois étapes d’expérience (30, 60 et 120ème minutes), nous distinguons que l’évolution de la transpiration dans la zone médiane ou le taux de déperdition en eau des feuilles chez les plants soumis à la salinité subit de sensibles

variations par rapport au témoin qui lui a donné, après 30 minutes, un RWL de 0.048 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹ bien supérieur aux deux doses de salinité qui ont affiché 0.021 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹ à 100 meq de NaCl+CaCl₂ et 0.01 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹ à 200 meq de NaCl+CaCl₂.

Ce RWL, après 60 minutes d’expérience, a continué à diminuer sous l’effet de la

salinité en présentant les valeurs suivantes 0.014 et 0.010 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹ respectivement sous 100 et 200 meq de NaCl+CaCl2 par rapport au témoin qui a donné la valeur de 0.030 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹ (figure 26.).

Fig.26- La perte d'eau par transpiration (RWL) dans la zone médiane chez Vicia faba. L traitée, après une semaine, avec NaCl+CaCl2.

0

0,01

0,02

0,03

0,04

0,05

0,06

30' 60' 120'

Pert

e d'

eau

par t

rans

pira

tion

de

la z

one

med

iane

Temps


A la fin de l’expérience (après 120 minutes), les valeurs de la perte d’eau par

transpiration se sont atténuées par rapport à celles enregistrées précédemment aux 30ème et

60ème minutes. On a relevé 0.001 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹ sous 100 meq de NaCl+CaCl₂ et

0.008 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹ à la dose de 200 meq de NaCl+CaCl₂ alors que le témoin lui, a

affiché un RWL de 0.029 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹ (figure 26).


Après 30 mn d’exposition à l’air libre, les niveaux en eau les plus élevés ont été

notés au niveau du témoin avec la valeur de 0.042 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹. Par ailleurs, les

plants arrosés à la solution saline 100 et 200 meq de NaCl+CaCl2, ont subis une baisse du

taux de 0.015 et 0.011 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹ comparés au témoin (figure 27).

Après 60 mn, les résultats obtenus montrent également une diminution par rapport

aux résultats précédents. Ils sont respectivement de 0.030, 0.0097 et 0.006 mg

d’eau.cmˉ².mnˉ¹, pour les plants témoins, ceux stressés à solution saline 100 et 200 meq de

NaCl+CaCl₂ (figure 27).

Fig. 27- La perte d'eau par transpiration (RWL) dans la zone médiane chez Vicia faba. L traitée, après deux semaines, avec NaCl+CaCl2.

A la fin de l’expérience (après 120 minutes), les quantités d’eau perdues par

transpiration, chez les plants stressés, ont baissés d’avantage sous l’influence de la salinité.

Effectivement, les valeurs enregistrées lors de cette étape ont été comme suit : 0.028, 0.0045

et 0.0020 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹ respectivement chez le témoin, 100 et 200 meq de

NaCl+CaCl₂ (figure 27).

00,005

0,010,015

0,020,025

0,030,035

0,040,045

0,05

30' 60' 120'

Pert

e d'

eau

par t

rans

pira

tion

de

la z

one

méd

iane

Temps


Tableau 25 – Analyse statistique à l’aide de test de Ficher (à p=5%) de la perte d'eau par transpiration (RWL) dans la zone médiane chez Vicia faba. L traitée, après deux semaines, avec NaCl et NaCl+CaCl2.

RW

L(m

g.cm

ˉ2 .m

n)

Temps Témoin NaCl+CaCl2

100meq

NaCl+CaCl2

200meq

après une

semaine

30mn 0,048±0.0024 0,021±0.0032S 0,017±0.0006S

60 mn 0,030±0.0016 0,014±0.0016NS 0,010±0.00048S

120 mn 0,029±0.0043 0,001±0.00048S 0,008±0.0008S

après deux

semaines

30 mn 0,042±0.0019 0,015±0.0036S 0.011±0.00032

60 mn 0,030±0.0016 0,0097±0.0018S 0.0060±0.0016

120 mn 0,028±0.0010 0,0045±0.0017S 0.0020±0.00015


L’analyse statistique a révélé une différence significative entre les différents

traitements et ceci est valable pour les trois étapes de l’expérience (30ème, 60ème et 120ème) (tableau 25).

d- La zone basale

Sous traitement de NaCl


Sous l’effet d’une semaine de stress avec le NaCl, la zone basale a donné des

valeurs moyennes de RWL, après 30 minutes d’expérience, qui ont montré l’intensité de la

perte d’eau (fig. 25). Cependant, le RWL a été chez 0.013 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹ à la dose de

100 meq et 0.010 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹ à 200 meq, en contre partie, le témoin a chiffré une

valeur bien supérieure de 0.038 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹.

Après 60 minutes d’expérience, les résultats obtenus ont montré une diminution

plus progressive par rapport à l’étape précédente (fig. 25). Ces valeurs ont été 0.034,

0.0087 et 0.0055 mg d’eau. cmˉ².mnˉ¹ respectivement par le témoin, 100 et 200 meq de

NaCl.

En fin, les données enregistrées, au cours de cette ultime étape de l’expérience

(après 120 minutes), ont baissés pour donner les valeurs de RWL les plus faibles. En effet,

nous avons relevé chez les plants stressés 0.0065 mg d’eau.cm-2.mn-1 sous l’effet de 100

meq de NaCl et 0.0041 mg d’eau.cm-2.mn-1 sous l’effet de 200meq de NaCl par rapport au

témoin qui a enregistré une valeur de 0.028 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹.

Fig.28- La perte d'eau par transpiration (RWL) dans la zone médiane chez Vicia faba. L traitée, après une semaine, avec NaCl.


Au cours de la première étape de l’expérience (après 30 minutes) (fig. 29), des

quantités d’eau perdues par les plants soumis uniquement à la solution nutritive (témoin)

ont été décelées avec 0.021 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹, cependant, les plants traités avec 100 et

200 meq de NaCl ont présenté les valeurs respectives de 0.0097 et 0.0070 mg

d’eau.cmˉ².mnˉ¹.

Fig.29- La perte d'eau par transpiration (RWL) dans la zone médiane chez Vicia faba. L traitée, après deux semaines, avec NaCl.

0

0,005

0,01

0,015

0,02

0,025

0,03

0,035

0,04

0,045

0,05

30' 60' 120'Pert

e d'

eau

par t

rans

pira

tion

de

la z

one

basa

le

Temps


0

0,005

0,01

0,015

0,02

0,025

30' 60' 120'

Pert

e d'

eau

par t

rans

pira

tion

(R

WL)

de

la z

one

basa

le

Temps


Dans cette étape d’expérience, après 60 minutes, les résultats obtenus ont montré

également une diminution par rapport aux résultats précédents. Nous avons enregistré

0.015 mg d’eau.cm-2.mn-1 chez le témoin, 0.005 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹ sous l’effet de 100

meq de NaCl et enfin, sous la dose de 200 meq de NaCl, les données ont été de 0.0030 mg

d’eau.cmˉ².mnˉ¹ figure 29).

A la fin de l’expérience (après 120 minutes), les valeurs de la RWL se sont

atténuées par rapport à celles enregistrées précédemment (après 30 et 60 minutes). Nous

avons relevé les valeurs suivantes 0.010, 0.0012 et 0.00088 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹

respectivement chez le témoin,, 100 et 200 meq de NaCl (figure 29).

Les calculs statistiques à l’aide de test de Ficher (à p=5%) par rapport aux plants

non stressés, ont montré l’effet du stress salin sur la perte d'eau par transpiration au niveau

de la zone médiane (après 30ème, 60ème et 120ème minute), pendant une et deux semaines de

stress avec NaCl, ont dégagé une différence significative entre les différents traitements

(tableau 26).

Tableau 26- Analyse statistique à l’aide de test de Ficher (à p=5%) de la perte d'eau par transpiration (RWL) dans la zone basale chez Vicia faba. L traitée, après une et deux semaines, avec NaCl.


Sous traitement NaCl + CaCl2


Le début de l’expérience (après 30 minutes), les quantités d’eau perdues par les

plants témoins ont été de 0.038 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹ et les plants traités ont affiché 0.013

mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹ à la dose de 100 meq de NaCl+CaCl2 et sous l’effet 200 meq, le

RWL a été de 0.013 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹ (figure30).

Dans la continuité de l’expérience (après 60 minutes), les résultats affichés ont

montré une diminution progressive. En effet, les valeurs enregistrées au cours de cette

RW

L(m

g.cm

ˉ2 .m

n)

Temps Témoin NaCl 100meq NaCl 200meq

après une

semaine

30mn 0,038±0.0081 0,013±0.0022 S 0.010±0.0011s S

60 mn 0,034±0.0081 0,0087±0.002 S 0,0055±0.0053 S

120 mn 0,028±0.001 0,0065±0.0016 S 0,0041±0.00024 S

après deux

semaines

30 mn 0,021±0.0020 0,0097±0.0024 S 0,0070±0.0026 S

60 mn 0,015±0.0012 0,005±0.00081 S 0.0030±0.001 S

120 mn 0,010±0.00015 0,0012±0.00017 S 0,00088±0.00053 S

étape, ont été de 0.034, 0.011 et 0.010 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹ respectivement par le témoin,

100 et 200 meq de NaCl+CaCl₂ (figure 30).

A la fin de l’expérience (après 120 minutes), les valeurs de RWL se sont atténuées

par rapport à celles enregistrées précédemment (après 30 et 60 minutes). Effectivement, les

valeurs enregistrées ont été 0.028, 0.007 et 0.006 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹ par les traitements

respectifs témoins, 100 et 200 meq de NaCl+CaCl₂ (figure 30).

Fig.30- La perte d'eau par transpiration (RWL) dans la zone médiane chez Vicia faba. L traitée, après une semaine, avec NaCl+CaCl2.


Le RWL s’est manifesté au cours de cette étape (après 30 minutes), avec des quantités d’eau perdues par les plants, irrigués avec de la solution nutritive, ont été de 0.021 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹, alors que les plants stressés ont présenté 0.012 mg d’eau.cm-

2.mn-1 sous 100 meq de NaCl+CaCl2 et 0.01 mg d’eau.cm-2.mn-1 sous 200 meq de NaCl+CaCl₂ (figure 31).

Négativement, les données de RWL (après 60 minutes) ont été 0.015, 0.008 et 0.007 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹ respectivement par le témoin, 100 et 200 meq de NaCl+CaCl₂ (figure 31).

Pendant cette ultime étape (après 120 minutes d’expérience), les valeurs de RWL

ont diminué par rapport à celles enregistrées précédemment (après 30 et 60 minutes). En

plus, nous avons relevé 0.010, 0.005 et 0.004 mg d’eau.cmˉ².mnˉ¹ respectivement chez le

témoin, 100 et 200 meq de NaCl+CaCl₂ (figure 31).

0

0,005

0,01

0,015

0,02

0,025

0,03

0,035

0,04

0,045

0,05

30' 60' 120'

Pert

ed'e

au p

ar tr

ansp

irat

ion

de la

zon

e ba

sale

Temps


Fig.31- La perte d'eau par transpiration (RWL) de la zone médiane chez Vicia faba. L traitée, après deux semaines, avec NaCl+CaCl2.

L’analyse statistiques à l’aide de test de Ficher (à p=5%) a donné une différence significative entre les différents traitements concernant la zone basale, après 30, 60 et 120 minutes d’expérience, et ceci après une semaine et deux semaines de stress salin (tableau 27). Tableau 27- Test statistique de signification de ficher (P=5%) de la perte d'eau par transpiration (RWL) dans la zone basale chez Vicia faba. L traitée, après une et deux semaines, avec NaCl+CaCl₂.

RW

L(m

g.cm

ˉ2 .m

n)


100meq

NaCl+CaCl₂

200meq

après une

semaine

30mn 0,038±0.0081 0,013±0.0022 S 0.013±0.0011s S

60 mn 0,034±0.0081 0,011±0.002 S 0,010±0.0053 S

120 mn 0,028±0.001 0,0078±0.0016 S 0,0067±0.00024 S

après deux

semaines

30 mn 0,021±0.0020 0,012±0.0024 S 0,0010±0.0026 S

60 mn 0,015±0.0012 0,008±0.00081 S 0.0070±0.001 S

120 mn 0,010±0.00015 0,005±0.00017 S 0,004±0.00053 S


III-Bilan des sels minéraux dans la plante vicia faba.L (feuille et racine)

1- Teneur en sodium (Na+)

Après une semaine de stress :

a– Sous traitement de NaCl

La figure (32) montre que pour les plantes Vicia faba.L, le sodium tend à migrer

vers le système foliaire. Cette cation s’accumule davantage lorsque le milieu de culture

0

0,005

0,01

0,015

0,02

0,025

30' 60' 120'

Pert

e d'

eau

par t

rans

pira

tion

de

la z

one

basa

le

Temps


s’enrichit en NaCl; son taux passe de 47 ppm dans les feuilles des plantes témoins à 67.3

ppm et 88.90ppm respectivement dans les feuilles des plantes nourries à 100 et 200 meq de

NaCl (tableau 15).

Les valeurs enregistrées pour l’accumulation de sodium au niveau des racines ont

tendance à augmenter également en fonction du niveau de salinité. Le taux de sodium

passe de 72.26 ppm pour les plantes non stressées à 99.15ppm pour celles traitées à

100meq, et à 110.36 ppm pour 200meq de sels combinés après une semaine de stress

salin.

Fig.32-Teneur en sodium (Na+) de feuille et racine des plantes de Vicia faba L. mesuré

après une semaine de stress salin au NaCl et au NaCl+CaCl₂.

b – Sous traitement de NaCl+CaCl₂:

Les résultats obtenus chez les plantes Vicia faba.L mentionnés dans la figure (32)

montrent une légère diminution dans le sens traitées, 100 meq puis 200 meq au niveau des

feuilles. Cependant, les taux pour ce cation varient selon l’organe et le milieu salin. En

effet, chez les plantes témoins, le taux de Na+ dans les feuilles passe de 47.21 ppm à 55.24

pour le traitement 100 meq et à 63.27 ppm pour 200meq.

Au niveau des racines, ce taux demeure plus élevé que pour celui des feuilles, Chez les

racines, le taux de sodium passe de 72.26ppm pour les plantes arrosées à la solution

nutritive à 87.40 ppm dans le milieu à 100 meq puis à 95.14 ppm à 200 meq.

0

20

40

60

80

100

120

témoin 100 200 100 200

NaClmeq NaCl+CaCl₂ meq

Tene

ur e

n so

dium

(Na⁺

)

Traitement

feuille racine

-Après deux semaines de stress salins

a – Sous traitement de NaCl :

Selon les résultats illustrés dans la figure 33 et le tableau 28 les teneurs en Na⁺

accumulés dans les feuilles de fève varient entre 55.38 ppm pour le témoin et (73.12,

99.79) ppm respectivement en présence de 100 et 200meq de NaCl.

Dans les racines ; nous constatons que la teneur de ce cation est plus élevée lorsque les

plantes sont stressées à la solution saline avec un taux de l’ordre 103.56 ppm pour 100

meq et de 120.12 ppm pour 200 meq contre 78.69 ppm pour les plante non traitées.

Fig.33-Teneur en sodium (Na+) de feuille et racine des plantes de Vicia faba L. mesuré après deux semaines de stress salin au NaCl et au NaCl+CaCl₂


D’après les résultats obtenus après deux semaines de stress salin, nous constatons que

les teneurs en sodium dans les racines sont plus élevées comparativement à celles

enregistrées chez les feuilles . Les valeurs enregistrées pour l’accumulation de sodium au

niveau des feuilles ont tendance à augmenter en fonction du niveau de salinité. Le taux de

sodium passe de 55.38 ppm pour les plantes non stressées à 60.24 ppm pour celles traitées

à 100 meq et

70.42 ppm à 200meq de sels combinés après deux semaines de stress salin .

0

20

40

60

80

100

120

Témoin 100 200 100 200

NaClmeq NaCl+CaCl₂ meq

Tene

ur e

n so

dium

(Na⁺

)

Traitement

feuille racine

Chez les racines, le taux de sodium passe de 78.69 ppm pour les plantes arrosées à la

solution nutritive à 97.40 ppm à 100 meq et à 100.02 ppm à 200meq.

Tableau 28 - Test statistique de signification de ficher (P=5%) de la teneur en sodium (Na+) de feuille et racine des plantes de Vicia faba L. mesuré après une et deux semaines de stress salin

Témoin NaCl

100meq

NaCl

200meq

NaCl+CaCl2

100meq

NaCl+CaCl2

200meq

Après une

semaine

feuille 47.21±1.96 67.3±2.28S 88.90±3.98s 55.24±3.61S 63.27±3.01S

racine 72.26+3.13 99.15±4.96 S 110.36±4.95 S 87.40±3.28 S 95.14±3.56 S

Après deux

semaines

feuille 55.38±1.5 73.12±3.36 s 99.79±+3.68S 60.24±4.25 NS 70.42±2.29S

racine 78.69±1.55 103.56±4.20S 120.12±3.35S 97.40±3.28S 100.02±4.49S


Les résultats du tableau 28 indiquent que les plantes sous NaCl à (100 , 200 meq) et

NaCl+CaCl₂ à (100 , 200 meq) agissent significativement sur l’accumulation du Na+

particulièrement chez les feuilles et les racines après une semaine de stress . Par contre l’effet est

non significatif après deux semaines de stress pour les plantes traitées à 100 meq de NaCl+CaCl₂. A

partir de 100 et 200 meq du NaCl, et 200meq du NaCl+CaCl₂ l’effet est très hautement

significatif au niveau des feuilles et des racines.

2- Teneur en potassium (K+)

Après une semaine de stress salin :


Selon la figure 34, l’addition de sel a induit chez les plantes Vicia faba.L une

augmentation de la teneur en potassium dans leurs feuilles. Cependant, l’accumulation de

cet ion a été plus importante sous la concentration de 100 meq, et de 200 de NaCl , le taux

de potassium passe de 47.21 ppm pour les plantes arrosées à la solution nutritive à 67.3

ppm dans le milieu de 100 meq puis à 88.90. ppm dei 200 meq.

Fig.34-Teneur en potassium(K⁺) de feuille et racine des plantes de Vicia faba L. mesuré après une semaine de stress salin au NaCl et au NaCl+CaCl₂ Nos résultats mettent en évidence l’augmentation de la teneur potassium chez les

racines en présence de sel. Son accumulation varie en fonction de la concentration , la

teneur de potassium la plus importante est enregistrée chez les plantes arrosées à 200meq.

Au niveau des racines des plantes témoins, le potassium présente un taux de 72.26

ppm contre un taux de 99.15 ppm pour les plantes traitées à 100 meq et 110.36 ppm pour

celles à 200 meq


La figure (34) représente les taux de potassium au niveau des organes de Vicia faba .L

par rapport à la concentration en sel du milieu de culture, qui révèle une diminution

considérable au niveau des feuilles traitées par rapport à celles non traitées. Ce taux évolue

de 47.21 ppm pour les plantes témoins à 55.24 ppm et 63.27ppm pour les deux

traitements salins à 100 et 200meq de NaCl+CaCl2.

Au niveau des racines des plantes témoins, le potassium présente un taux de 72.26

ppm contre un taux de 87.40 ppm pour les plantes traitées à 100 meq et 95.14 ppm pour

celles à 200 meq.

Après deux semaines de stress salins


Les valeurs enregistrées pour l’accumulation de potassium au niveau des feuilles ont

tendance à augmenter légèrement en fonction du niveau de salinité. Le taux de potassium

passe de 55.38 ppm pour les plantes non stressées à 73.12 ppm pour celles traitées à 100

0102030405060708090

Témoin 100 200 100 200

NaClmeq NaCl+CaCl ₂ meq

Tene

ur e

n po

tass

ium

(K⁺)

feuille racine

meq, puis à 89.19 ppm à 200meq de sels combinés après deux semaines de stress salin

Au niveau des racines des plantes témoins, le potassium présente un taux de 78.69 ppm contre un taux de 103.56 ppm pour les plantes traitées à 100 meq et 120.12 ppm pour celles à 200 meq.

Fig.35-Teneur en potassium(K⁺) de feuille et racine des plantes de Vicia faba L. mesuré après deux semaines de stress salin au NaCl et au NaCl+CaCl₂


Les résultats obtenus dans les plantes non soumises au stress salin montrent que la

variation du potassium est très faible entre les feuilles et les racines. Les teneurs en

potassium sont plus élevées dans les feuilles des plantes à concentration salines 100 et 200

meq. Où les valeurs varient entre 60.24 ppm et 70.42 ppm par rapport au témoin 55.38

ppm.

Au niveau des racines des plantes témoins, le potassium présente un taux de

78.69 ppm contre un taux de 97.40 ppm pour les plantes traitées à 100 meq et 100.02 ppm

pour celles à 200 meq.

L’analyse statistique du tableau 29 montre l’existence d’un effet très hautement

significatif des plantes traitées ; au niveau deux organes pour les deux traitements (100 et

200 meq du NaCl et NaCl+CaCl2) après une et deux semaines de stress salin.

Tableau 29-Test statistique de signification de ficher (P=5%) de la teneur en potassium (K+) des feuilles et racines des plantes de Vicia faba.L mesuré après une deux semaine de stress salin au NaCl et au NaCl+CaCl₂

0102030405060708090

100

Témoin 100 200 100 200


Tene

ur e

n po

tass

ium

(K⁺)

Traitement

feuille racine

Témoin NaCl 100meq

NaCl 200meq

NaCl+CaCl2

100meq NaCl+CaCl2

200meq Après une semaine

feuille 37..33±3.30 77.52±3.75 S 70.03±5.06 S 45.61±4.88 S 52.13±4.16 S racine 36.14±3.54 69.13±4.20 S 75.18±4.32 S 40.44±3.97 S 58.77±5.89 S

Après une semaine

feuille 38.54±6.05 73.12±5.86 S 89.79±1.70 S 41.36±2.48 S 54.65±4.22 S racine 32.12±4.28 72.81±3.47 S 87.25±3.63 S 51.13±4.99 S 60.14±3.14 S


3- Teneur calcium (Ca++)

Après une semaine de stress salin

a –Sous traitement de NaCl

Chez les plantes Vicia faba.L, le taux de calcium des plantes cultivées témoins, varie

d’un organe à l’autre, ainsi que pour les plantes en situation stressante (figure36). Au

niveau des feuilles de plantes témoins, le taux enregistré est élevée à celui des plantes

stressées à 100meq de NaCl (37.33 et 77.52 ppm) respectivement. Une diminution légère

de70.03 ppm est noté pour les plantes en milieu salin à 100 meq .

Le taux de Ca++ des racines se manifeste de la même manière que les feuilles. Sa valeur

chez les plantes témoins est de l’ordre de 36.34 ppm, puis augmente à 69.13ppm pour le

traitement à 100 meq, et 75.18 à 200 meq de NaCl.

Fig.36-Teneur en calcium(Ca⁺⁺) de feuille et racine des plantes de Vicia faba.L mesuré après une semaine de stress salin au NaCl et au NaCl+CaCl₂ b – Sous traitement de NaCl+CaCl₂ Le traitement salin des plantes Vicia faba.L provoque une faible accumulation

de calcium dans les organes. La variation des teneurs en Ca++ est faible entre les plantes

0

10

20

30

40

50

60

témoin 100 200 100 200

Tene

ur e

n ca

liciu

m(C

⁺⁺)

Traitement

feuille racine

traitées et les témoins (figure 37). Les feuilles des plantes témoins présentent un taux de

37.33 ppm, cette valeur augmente légèrement (45.61ppm) sous le traitement NaCl+CaCl₂ à

100 meq . Cette augmentation demeure faible sous le traitement à 200meq avec un taux de

52.13 ppm.

Les racines présentent un comportement différent de celui des feuilles. En effet, la teneur

en Ca++ tend à augmentée légèrement avec la concentration saline , elle passe de 36.14

ppm chez les plantes témoins à 40.44ppm pour les traitements à NaCl+CaCl₂ à 100meq,

et 58.77ppm à200meq .

Après deux semaines de stress salin


En effet, chez les plantes témoins, le taux de Ca++ dans les feuilles passe de 38.54

ppm à 73.12 ppm pour le traitement 100 meq et à 89.79ppm pour 200 meq .

Au niveau des racines, ce taux demeure plus bas que pour celui des feuilles, l’addition de

sel ne cause pas de changement dans les taux de cet élément, le taux de calcium passe de

32.12ppm pour les plantes arrosées à la solution nutritive à 72.81 ppm dans le milieu à

100 meq puis à 87.25 ppm à 200 meq.

Fig.37-Teneur en calcium(Ca⁺⁺) de feuille et racine des plantes de Vicia faba.L mesuré après deux semaines de stress salin au NaCl et au NaCl+CaCl2 .

b – Sous traitement de NaCl+CaCl₂: Les résultats obtenus dans les plantes non soumises au stress salin, montrent que

la variation du calcium est très faible entre les feuilles et les racines. Les teneurs en

calcium sont moins élevées dans les feuilles des plantes à concentration salines de 100 et

0

10

20

30

40

50

60

70

Témoin 100 200 100 200


Tene

ur e

n ca

liciu

m(C

a⁺⁺)

Traitement

feuille racine

200 meq. Où les valeurs varient entre 41.36 ppm et 54.65 ppm par rapport au témoin

(38.54ppm ).

Au niveau des racines des plantes témoins, le calcium présent un taux de 32.12

ppm contre un taux de 51.13 ppm pour les plantes traitées à 100 meq et 60.14ppm pour

celles à 200 meq

Les plantes de fève stressées n’accumulent pas significativement le calcium au

niveau des feuilles et des racines soumises à un stress de 100 et 200 meq du NaCl et

NaCl+CaCl2. après une semaine de stress. Les feuilles des plantes traitées à 100 et 200méq

du NaCl n’affichent pas de résultat significatif sur le taux d’accumulation de calcium après

deux semaines de stress. Il en est de même pour les racines où ce taux présente une réponse

significative vis-à-vis du stress quelque soit le traitement (tableau 30).

Tableau 30- Test statistique de signification de ficher (P=5%) de teneur en calcium(Ca⁺⁺) de feuille et racine des plantes de Vicia faba.L mesuré après une et deux semaine de stress salin au NaCl et au NaCl+CaCl

Témoin NaCl

100meq

NaCl

200meq

NaCl+CaCl2

100meq

NaCl+CaCl2

200meq

Après une

semaine

feuille 28.17±1.65 43.03±3.36 S 46.17±1.73 S 49.18±4.06 S 55.12±0.84 S

racine 11.25±3.15 22.65±0.84 S 18.25±1.71 S 32.17±4.03 S 36.56±1.68 S

Après deux

semaines

feuille 36.45±0.89 36.17±4.94N S 42.51±1.68N S 51.02±3.27 S 57.12±2.38 S

racine 12.12±1.69 23.12±1.61 S 23.56±3.2 S 36.25±4.73 S 37.10±4.09 S


4-Etude du ratio K+/Na+ selon les organes de la plante



La figure 38 illustre que le ratio K+/Na+ chez les feuilles évolue à la hausse sous la

solution saline de 100 meq, Puis il chute significativement lorsque la concentration passe à

200 meq, le même comportement est signalé chez les racines qui enregistrent des valeurs

supérieures dans les deux traitements salins par apport aux plantes non stressées.

Fig.38 - Ratio K+/Na+ de feuille et racine des plantes de Vicia faba.L mesuré après une semaine de stress salin au NaCl et au NaCl+CaCl 2 .


Le quotient K⁺/Na ⁺ est inferieur à un aux doses salines 100 meq et 200 meq et aux

témoins ,même observation à était remarquée dans les racines chez les plantes témoins, et

pour les traitements à NaCl+CaCl₂ à 100 meq.et à 200 meq les valeurs de ratio K⁺/Na⁺

varie entre 0.46 et 0.61 par rapport au témoin .



Le rapport K⁺/Na⁺ est élevé au fur et à mesure que la concentration saline

appliquée dans les solutions salines 100 et 200 meq augmente par rapport aux témoins, le

quotient K⁺/Na⁺ atteint sa valeur entre 1 et 0.89 dans les feuilles ; même comportement

est signalé chez les racines qui enregistrent des valeurs inferieur à celles des feuilles.

0

0,2

0,4

0,6

0,8

1

1,2

1,4

Témoin 100 200 100 200

NaCl meq NaCl+CaCl2meq

rati

o K⁺

/Na⁺

Traitement

feuille racine

00,20,40,60,8

11,21,41,6

Témoin 100 200 100 200


Rati

ok+/

na+

Traitement

feuille racine

Fig.39 - Ratio K+/Na+ de feuille et racine des plantes de Vicia faba.L mesuré après deux semaines de stress salin au NaCl et au NaCl+CaCl2

b – Sous traitement de NaCl+CaCl₂

Le même comportement est signalé chez les plantes sous NaCl+CaCl₂ qui

enregistrent des valeurs inferieures dans les deux traitements salins par apport aux plantes

non stressées après deux semaines de stress chez les feuilles et les racines mais Le

rapport K⁺/Na⁺ reste toujours égale à1.

Le test statistique (tableau31) ne révèle aucunes différences significatives

comparativement aux plantes non stressées, contrairement aux racines après une semaine

de stress la différence elle est hautement significative pour les valeurs de ratio enregistrés

chez les feuilles après une semaine de stress est les feuilles et les racines après deux

semaines de stress salin .

Tableau 31- Ratio K+/Na+ de feuille et racine des plantes de Vicia faba.L mesuré après une et deux semaines de stress salin au NaCl et au NaCl+CaCl2 .

Témoin NaCl

100meq

NaCl

200meq

NaCl+CaCl2

100meq

NaCl+CaCl2

200meq

Après une

semaine

feuille 0.79±0.12 1.15±0.15S 0.78±.08 S 0.82±0.12 S 0.82±0.14 S racine 0.50±0.02 0.69±0.11NS 0.68±0.18 NS 0.46±0.11 NS 0.61±0.12 NS

Après deux

semaines

feuille 0.69±0.09 1±0.45 NS 0.89±0.09 NS 0.68±0.18 NS 0.77±0.12 NS racine 0.40±0.11 0.99±0.10S 0.72±0.04 NS 0.52±0.09 NS 0.60±0.05 NS


6-Etude du ratio Na+ / Ca+2 selon les organes de la plante



Le ratio Na+/Ca++ chez les feuilles augmente significativement avec l’augmentation de

la concentration saline dans le milieu, comparativement avec le témoin qui est moins élevé.

Même observation à était observé chez les racines dans les plantes stressés et témoins.

b – Sous traitement de NaCl+CaCl2

Le même comportement a était signalé chez les feuilles des plantes traitées par le

NaCl+CaCl2 qui enregistre des valeurs variantes à 100 et 200 meq par rapport au témoin

(1.67), le taux de ratio égale a ( 1.26 ; 1.99) .Dans les racines ,les valeurs de rapport

Na+/Ca++ est de (1.18 ; 1.23 ) par rapport au témoin (6.13).

Fig.40 - Ratio Na+ / Ca+2 de feuille et racine des plantes de Vicia faba.L mesuré après une semaine de stress salin au NaCl et au NaCl+CaCl2 .



Le rapport Na+/Ca++ augmente au fur et à mesure que la concentration salines

change de 100 à 200meq par rapport au témoin, le ratio Na+/Ca++ atteint sa valeur entre

1.98 et 2.34 aux concentrations salines 100 et 200meq dans les feuilles, même

comportement est signalé chez les racines qui enregistrent des valeurs supérieurs

comparativement à celles enregistrées chez les feuilles.

0

1

2

3

4

5

6

7

8

Témoin 100 200 100 200


Rati

o N

a⁺/C

a⁺⁺

Traitement

feuille racine

01234567

Témoin 100 200 100 200


Rati

o N

a⁺/C

a⁺⁺

Traitement

feuille racine

Fig.41- Ratio Na+ / Ca+2 de feuille et racine des plantes de Vicia faba.L mesuré après deux semaines de stress salin au NaCl et au NaCl+CaCl2 .

b – Sous traitement de NaCl+CaCl2

La figure 41 illustre que le ratio Na+/Ca++ chez les feuilles évolue à la hausse sous

l’effet de la solution saline à 200 meq , puis il chute significativement lorsque la

concentration devient 100 meq par rapport au témoin. Même observation à était remarquée

chez les racines des plantes stressés et témoins, les valeurs de ratio Na+/Ca++ varie entre

2.68 et 2.69 par rapport le témoin (6.40).

L’analyse statistique du tableau 32 révèle l’influence de la salinité à différents

traitements appliquées sur le paramètre étudie des organes. Le rapport Na+/Ca++ après

une semaine de stress est non significatif au niveau des feuilles des plantes traitées à NaCl

100 et 200 meq ainsi qu’au niveau des racines des plantes traitées à 200meq. L’effet est

marqué significativement au niveau des feuilles et des racines des plantes traitées à

NaCl+CaCl2. Les feuilles et les racines des plantes traitées à NaCl et NaCl+CaCl2

présentent un effet hautement significatif sur le rapport après deux semaines de stress salin

sauf les feuilles des plantes sous NaCl+CaCl2 à 200 meq .

Tableau 32- Test statistique de signification de ficher (P=5%) de ratio Na+/Ca++ de feuille et racine des plantes de Vicia faba.L mesuré après une et deux semaines de stress salin au NaCl et au NaCl+CaCl2

Témoin NaCl

100meq

NaCl

200meq

NaCl+CaCl 2

100meq

NaCl+CaCl 2

200meq

Après une

semaine

feuille 1.67±0.07 1.54±0.14 NS 1.92±0.12 NS 1.14±0.14 S 1.14±0.05 S

racine 6.13±0.63 4.31±0.09 S 6.04±0.24 NS 2.71±0.06 S 2.60±0.1 S

Après deux

semaines

feuille 1.52±0.31 1.98±0.11 S 2.34±0.39 S 1.18±0.16 S 1.23±0.05 NS

racine 6.40±0.5 4.47±1 S 5.09±0.30 S 2.68±0.13 S 2.69±0.19 S

DISCUTIONS ET CONCLUSION

GENERALE

DISCUSSIONS ET CONCLUSION GENERALE

La salinité est une contrainte majeure qui affecte la croissance et le développement

des plantes dans les régions arides et semi-arides qui souffrent de problèmes de la

salinisation des sols. La réponse des graines à la salinité pourrait être un indicateur de la

tolérance des plantes au sel pour les stades ultérieurs du développement (MISRA et

DWIVEDI., 2004).

Le comportement de l’espèce vicia faba l a été évalué à travers différents

paramètres (germination biométriques , hydriques, et nutritionnels) sous stress salin au

NaCl et au NaCl+CaCl2 à 100 et 200 meq combiné de la bentonite 7%.

L’étude de l’effet de la salinisation sur a cinétique de la germination des graines

pendant la germination montre que la fève possède un critère de tolérance vis-à-vis au

teneur des sels NaCl+CaCl2 à 100 meq, ce taux reste sensible au NaCl 100 et 200meq.

L’analyse de cette cinétique montre généralement une phase de latence, due à

l'imbibition des graines. Pour les graines arrosées à l’eau distillée, les premières

germinations apparaissent le 6ème jour après le semis avec un taux de 32% ; la

progression de la germination est néanmoins rapide par rapport aux autres traitements.

Le taux de germination atteint maximum à partir du 15ème jour avec 84% des graines

germées. La vitesse de germination exprimée son par le coefficient de vélocité est la plus

élevée (56.28%) chez le lot arrosé à l’eau distillée avec un temps moyen de germination de

1.77 jours.

Dés l’application du stress salin, les premières germinations apparaissent aussi le 6ème

jour après le semis, le taux de germination est autant plus faible que la concentration en

NaCl est plus forte (8%) à 100 meq et (4%) à 100 meq de la solution saline.

La vitesse de germination, exprimée en coefficient de vélocité (Cv) est

proportionnellement inversée par rapport à la concentration en sel. Elle diminue avec

l’augmentation de la concentration en NaCl passe de 24.63% chez les graines stressées à

100meq à 22.8% pour les graines recevant 200meq de la solution saline.

Au contraire le temps moyen (Tm) s’allonge avec l’augmentation de la

concentration en NaCl, il passe de 4.03 jours à 100meq à 4.38 jours à 200meq.

Le taux final de germination est de 32% pour les graines stressées à 100 meq de

NaCl +CaCl2, il diminue et atteint 16 % pour les graines recevant 200meq de la solution

saline.

Avec l’application du stress salin au NaCl +CaCl2, le Cv diminue à 33.33% pour

les graines stressées à 100 meq de sel et de 20% chez les graines arrosées à 200 meq de

NaCl +CaCl2.Le Tm augmente proportionnellement avec la concentration de la solution

saline ; il passe de 3 jours (à 100meq) à 5 jours (à 200meq de NaCl +CaCl2).

Le taux final de germination est de 44% pour les graines stressées à 100 meq de

NaCl +CaCl2, il diminue et atteint 20 % pour les graines recevant 200meq de la solution

saline.

Pour le poids perdu pendant la germination, on observe une forte diminution

(5.84g) lorsque les graines reçoivent l’eau distillé. Quand aux graines stressées au NaCl,

la diminution de poids pendant la germination est plus lente que celle des graines

témoins. Elle est beaucoup plus lente chez les graines arrosées à 200 meq (0.47g). Par

contre, le poids perdu à100meq est de 0.90g . En combinant le NaCl au CaCl2, le poids

perdu des graines stressées à 100meq est de 2.03 g. Ce n’est pas le cas pour les graines

stressées à 200 meq qui marquent une faible diminution du poids (1.02g).

L’augmentation de la concentration de sel réduit retarde la germination, et cela

dépend de la concentration et de la nature du stress salin appliqué (NaCl et NaCl+CaCl2).

Cette constatation se confirme par la nette corrélation négative et hautement

significative révélée entre toutes les paramètres de la germination et le stress salin

(r = -0, 572**, r = -0.788**, r = -0.671**).

Des résultats similaires ont été obtenus pour plusieurs espèces glycophytes

(JEANNETTE et al ., 2002) et même halophytes ( ATIA et al.,2009) exposées à des

concentrations variant d’une espèce à une autre . La germination des plantes, qu'elles que

soient halophytes ou glycophytes est affectée par la salinité. Selon les espèces, l'effet

dépressif peut être de nature osmotique ou toxique (HAJLAOUI et al., 2007).

Plusieurs études ont indiqué que les graines des glycophytes et des halophytes

répondent de la même manière au stress salin, en réduisant le nombre total des graines

germées et en accusant un retard dans l’initiation du processus de la germination (MNIF.,

2004).

Des concentrations élevées de sels, particulièrement le chlorure de sodium (NaCl),

peuvent inhiber la germination des graines à cause des effets osmotiques et toxiques. Le

faible potentiel externe peut inhiber l’activité enzymatique des graines et retarder la sortie

et le développement de la radicule (PEREZ et TAMBELINI, 1995).d’après DEMIR et

al (2003) le taux final de germination ne change pas beaucoup mais le temps de

germination diminue avec la diminution de la concentration du NaCl.

En effet une augmentation sensible de la précocité, la vitesse et le taux final de

germination des graines stressées avec 50 et 100 meq de NaCl+CaCl2.l-1 par rapport à la

même concentration en NaCl utilisé seul (BOUMIA.,2011).

Dés l’addition de CaCl2 au NaCl, les graines sont plus précoces à germer. Selon

GIRIJA et al (2002) puis TOBE et al., (2002), l’effet améliorateur du calcium sur la

germination des graines stressées au NaCl et d’autres sels n’est pas très bien connu. Selon

NEKAMURA et al. (1990) à trouvé que Ca+2 améliore la germination des graines sous

stress salin en facilitant l’hydratation qui pourrait être due à la grande conductivité

membranaire en présence de Ca+2.

Les conséquences de l’intensité de la salinité révèlent une bonne tolérance et une

hétérogénéité d’expression par rapport à la fève. La réponse varie d’un organe à un autre,

d’une espèce à une autre, selon la nature et l’intensité du stress. Nos observations sur les

feuilles montrent que le nombre des feuilles changent selon la concentration du sel.

La diminution de nombre de feuilles est observée chez l’espèce sous les deux

traitements salins NaCl à( 100 et 200meq )et à NaCl+CaCl2 ( 100 et200meq) après une et

deux semaines de stress . Avec l’application du stress salin au NaCl, le nombre égale à 25

et 27 feuilles pour le traitement à 100 meq et à26 et 28 feuilles chez les plantes arrosées

à 200 meq de NaCl. Le nombre augmente légèrement avec la concentration de la solution

saline ; il passe de 28 et 30 feuilles (à 100meq) à 27 et 28 feuilles à 200meq de (NaCl

+CaCl2). Dans ce travail on peut expliquer nos résultats (différence significative observé

chez Vicia faba.L) par une défoliation entraînée par le stress salin avec des corrélations

positive (r=0.768**) sous le NaCl +CaCl2 à 100 meq après une semaine de stress.

Sous les deux traitements, de NaCl et de NaCl+CaCl2 (100 et 200meq), le rapport

longueur de la racine /longueur des plantes de Vicia faba.L ne manifeste aucun

changement ; alors que les plantes stressées à 100et 200 méq à NaCl+CaCl2 présentent des

modifications importantes au niveau de ce paramètre après une semaine de stress. Ces

résultats révèlent que la salinité a une influence sur ce paramètre, mais à des niveaux de

stress importants.

Nos observations après deux semaines de stress sur le rapport LR/LT montrent une

différence selon la concentration en sel, l'effet de la salinité a été significativement et

négativement corrélé sur le rapport LR/LT r =-.0777** et sur la surface foliaire

r = 0.761**.

Nos résultats montrent que, la croissance racinaire en volume semble indifférente à

la contrainte saline et ne présente pas de différence significative vis-à-vis du niveau de

salinité, bien que les racines constituent le premier site de contact entre la plante et la forte

concentration en sel du milieu externe.

Ainsi, le volume des racines de fève augmente légèrement par rapport au témoin

par une différence de 1.8 cm3 sous le traitement NaCl à 100 meq et de 1 cm3 pour 200 meq

après une semaine de stress .Par contre, le traitement salin à NaCl+CaCl2 appliqué sur les

plantes enregistrent de faible réduction de volume par rapport au témoin, par une

différence de 0,03 cm3 sous concentration 100meq, et de 3cm3 sous le traitement salin à

200 meq .

Le volume racinaire des plantes de la fève sous le traitement NaCl+CaCl2

semble indifférent au niveau de la concentration en sel, il présente une diminution de 3et

de 5,3 cm3 par rapport au témoin. Pour le fève l’effet combiné de la salinité et de la

bentonite sur le volume racinaire est corrélé négativement et non significativement (r = -

0..701**) et (r = -0.650**). Plusieurs travaux se sont intéressés à l’effet de la salinité et de

la bentonite sur le comportement de fève, Selon OSMOND et al (1980), les halophytes

comme Atriplex spp, montrent une stimulation de croissance à des concentrations

importantes de NaCl, qui sont inhibitrices de croissance chez les glycophytes. L’action de

sels .dans notre travail, est d’autant plus marquée que la concentration saline, confortant

ainsi les résultats trouvés par SANCHEZ –BLANCO et al (1991) .qui ont montré que la

diminution du poids secs de la feuille chez les tomates est une conséquence de la salinité.

BAJJI et al (1998), rapporte que, le taux de croissance relative de la partie

aérienne décroit à la réponse de 150 mM de NaCl pendant que les racines ne sont pas

affectées. Le taux de croissance des racines diminue progressivement à des stress de forte

intensité. Ainsi, cet auteur confirme la nature halophile d’Atriplex halimus.

L’adition de la bentonite à des doses de 7% dans les substrats de cultures et en présence de

traitement salin améliore nettement le bilan hydrique des plantes. Une diminution

significative de la teneur en eau est enregistrée quand les substrats de culture sont traités à

7 % de bentonite. L’effet de stress salin se traduit par une diminution de la teneur relative

en eau chez le fève, ce taux est corrélé négativement et significativement au stress salin

soit (r= -701**.r= -903**) respectivement de la partie arienne après une et deux semaines

de stress salin.

Le RWC de la zone( apicale, médiane et basale ) chez les plantes témoin est plus

élevé par rapport aux plantes traitées au NaCl et au NaCl +CaCl2 quelque soit la

concentration, on note une corrélation positive non significatives (r = 0.747** et

r = 0.771**) après une semaine de stress salin .après deux semaines de stress le RWC de

déférente zone reste plus élevé par rapport aux plante témoin ,on observe une forte

diminution de teneur relative en eau , la salinité appliquée provoque une diminution

significativement remarquable soit (r = 0.740**et r = 0.792).

Des travaux récents ont démontré également que la bentonite de Mostaganem

accroit la manière appréciable la teneur en eau du substrat ce qui traduit par une

augmentation de la teneur des plante de la tomate (BENKHALIFA., 2007).d’après

BACHIR BOUIADJRA(2008) la teneur en eau dans la fève cultivée dans le substrat

sableux amendé à 5% de bentonite est très élevée.

Selon JOSEPH et al (2009) la salinité est un phénomène complexe comportant

un stress osmotique due à la diminution des quantités d’eau dans la rhizosphère.

L’amélioration des sols sableux avec la bentonite riche en montmorillonite

améliore bien les caractéristiques physico-chimiques et hydriques des sols sableux

(BOUSNINA et MEHIRI., 1997 ; BENKHLIFA et DAOUD., 1998) due à la corrélation

qui existe entre la teneur en eau du substrat et la quantité d’argile adoptée (TESSIER.,

1994).

Pour la perte d’eau par transpiration (RWL), l’effet de la salinité se traduit par

l’évolution de ce paramètre chez la fève, une corrélation négative et non significative entre

ce paramètre et les traitements salins après une et deux semaines de stress r = - 698* et

r = -557* à la 30eme mn de la partie aérienne.une corrélation positive et retenue r = 0890**,

r = 0.881** ,r= 0.752**, r=. 0.692** et r = 0.957 ** respectifs à la 60eme et la 120 eme mn

après une et deux semaines de stress salin.

Aux différentes zones de plantes, nous observons une différente diminution de perte en

eau après une et deux semaines de stress à la 30eme mn dont les coefficients de corrélation

sont : r = - 0.777**, r = -0.773**, r = -0.788**, r = -0.773**, r = -0.630* et r = -0.599*.

Les résultats montrent que les différentes concentrations salines ont provoqué une

dévaluation de la perte d’eau par transpiration d’une zone a une autre des plantes testées à

la 60eme et 120eme mn, une corrélation négative a été relevée respectivement pour les zones

apicale, médiane et basale : r = -0.761**, r = -00.740** ,r = 0.684** ,r = - 0.743**,

r = - 0.790** ,r = -773**, r =- 0.781**.

La diminution de la transpiration de l’atriplex serait une conséquence de la

fermeture des stomates lorsque le stress salin s’intensifie, pour minimiser les pertes en eau.

Le maintien d’une certaine quantité d’eau intracellulaire permet également de

diluer les sels introduits, ce qui explique l’impossibilité d’observer les stomates au

microscope optique. (MONNEVEUX, P., 1989 ; ABOUSSOUANE et al ., 1985) pensent

que cette résistance stomatique se manifeste par une présence de nombreux stomates de

petites tailles et à fermeture rapide.

HELLER, R et al (2004) notent que les plantes soumises à un stress salin

ferment leurs stomates plus tôt que les plantes en conditions normales, cela augmente la

résistance stomatique du fait de la diminution de l’absorption hydrique. En outre,

(NILSON et al . ,2007) ont établi la relation entre la transpiration et la résistance

stomatique chez Arabidopsis thaliana, par l’augmentation de cette résistance lors du stress

salin, afin de minimiser les pertes d’eau. Selon (HOPKINS et al., 2003 ; HELLER, R et

al., 2004) , la transpiration devient plus importante dans le cas des feuilles à cuticule

mince. D’après nos résultats, la transpiration chez la fève dans la zone médiane est plus

importante que chez les zones apicale et basale, ceci s’explique par la taille et l’endroit des

feuilles.

L’analyse des éléments minéraux Na+, K+ et Ca+2, sous l’effet de la salinité suggère

une variabilité cationique de la réponse de fève comme étant un bon marqueur

physiologique au stress salin.

Nos résultats montrent que la combinaison salinité-bentonite induit une

augmentation significative de sodium accumulé dans les parties aériennes et souterraines

de vicia faba .L .Cette augmentation est corrélée positivement avec les concentration de

NaCl et NaCl+CaCl2 après une et deux semaines de stress salin (r = 0.936** et

r =0.944**), et ( r = 0.882** et r = 0.888**) .

CHADLI et BELKHODJA (2007), notent que l’apport d’une solution saline au

NaCl+CaCl2 ou à l’eau de mer provoque chez les plantes de la fève Vicia faba L. une

migration du Na+ vers les parties aériennes avec une forte accumulation dans les tiges des

plantes. Dans les racines, le Na+ atteint son maximum à salinité modérée (300 méq de

NaCl+CaCl2), alors que sous stress salin sévère (400 meq et à l’eau de mer), son

accumulation ralentit lentement. Il est conçu que la tolérance à la salinité chez les

glycophytes est leur capacité à éviter l’accumulation excessive foliaire de cations

monovalents, notamment le Na+ (LAZOF et CHEESEMAN., 1988 ; BELKHODJA.,

1996). L’augmentation des taux de sodium est due d’une part à la nature sodique de cette

argile (BENKHLIFA., 1997), et d’autre part à la grande mobilité du Na+ facilitant son

entraînement par l’eau infiltrée à l’état de sels solubles (REGUIG., 2007).

Des travaux menés par TREMBLIN et FERARD (1994) puis OUERGHI et al (2000),

montrent que les teneurs en Na+ sont plus élevées dans les parties aériennes et que ce

cation migre vers les feuilles pour s’y accumuler. Ce transfert de Na+ des organes

souterrains vers les parties aériennes et son enrichissement augmente avec l’intensité et la

durée du stress salin (OUERGHI et al., 2000).

Le potassium joue un rôle dans le control de la turgescence cellulaire (SAIRAM et

TYAGI. ,2004), contribue également dans la réduction du potentiel osmotique des cellules

racinaires pour faciliter les processus de solutés (HOUALA. , 2007). Par conséquence, le

maintien d’un de K+ adéquat est essentiel pour la survie de la plante dans le milieu salin

(HOUALA. , 2007). L’adjonction de la bentonite se traduit par de légères diminutions du

potassium dans les deux organes de la plante. Le niveau du potassium diminue

considérablement avec l’application de la combinaison sel-bentonite.

Les feuilles et racines des plantes cultivées dans les substrats à 7% de bentonite,

accumulent des quantités de potassium sous l’effet de la solution saline par rapport au

témoin. L’apport des concentrations croissantes en NaCl et NaCl+CaCl2 se traduit par une

légère l’accumulation de cette cation .On note une corrélation significative et positive

entre la teneur en potassium dans les feuilles et les racines (r = 0.925** et r= 0.958**)et (r

= 0.872** et r = 0.937**) respectivement après une et deux semaines de stress.

Nos résultats convergent vers ceux obtenus par BOUKRAÂ (2008) sur les plantes

d’Atriplex halimus traitées au NaCl ou NaCl+CaCl2 à 300 et 600 meq, où les teneurs de K+

baissent dans les feuilles quand le milieu salin est concentré en NaCl, mais augmentent

dans les tiges, comparativement aux plantes témoins. Par ailleurs, avec l’utilisation du

NaCl+CaCl2. OULD EL HADJ-KHELIL (2001) signale que les teneurs en K+ diminuent

dans les plantes de tomate cultivées en présence de NaCl à 50 mM et de NaCl à 100 mM.

La teneur en K+ diminue fortement dans tous les organes, et rapporte que, cette diminution

est relié avec la forte augmentation de la teneur en sodium, tout particulièrement dans la

tige et les feuilles âgées. comme dans la plupart des glycophytes sensibles au sel une

augmentation de ions Na+ inhibe l’absorption, la distribution et l’utilisation de K+

(ASHRAF et al.,2004 ;VOIGT et al.,2009). Cette action est due à la concurrence qui existe

entre ces deux ions sur les mêmes sites électro négatifs des transporteurs membranaire

(MAATHIUS et AMTMANN.,1999,MEZNI et al.,2002 ).

En ce qui concerne le calcium, le taux varie selon l’organe et l’effet du stress. Un

effet très hautement significatif du taux de Ca++ est signalé au niveau des feuilles et des

racines sous le même traitement de 100 et 200 meq après une semaine de stress .Il semble

que ce cation augmente de taux selon l’intensité du stress au niveau des racines sous le

traitement salin de NaCl+CaCl2 à 100 et 200 meq après une et deux semaines. Un effet

très hautement significatif des teneurs en Ca++ est signalé au niveau des feuille et des

racines de la fève avec des corrélations de (r = 0.887** et r = 0.891**) après une semaine

et (r = 0.882** et r = 0.897**) après deux semaines de stress.

D’après CHADLI et BELKHODJA (2007), le Ca++ s’accumule dans le sens

racines, tiges et feuilles des plantes de fève, stressées au NaCl+CaCl2 à différents niveaux

de concentrations et à l’eau de mer. La charge calcique est très importante dans les tiges et

les Feuilles sous stress salin sévère alors qu’il n’est présent qu’à l’état de traces dans les

racines.

L’association des ions Na+ et Ca++ avec Cl- dans le milieu sous forme de

chlorures diversifie les modalités de migration et les capacités d’accumulation ionique

dans les organes des plantes (BELKHODJA., 1996). Le Ca++ assure un transport sélectif

des cations comme le K+ vers les feuilles (LÄUCHLI et STELTER., 1982) ;(ZID et

GRIGNON., 1991), et augmente la résistance à la salinité en maintenant l’intégrité

membranaire (LYNCH et al., 1987).

Avec la combinaison de bentonite-salinité le ratio K+ /Na+ devient plus important

dans les conditions normales (plantes témoins), ce ratio est l’égerment élevé au niveau des

feuilles que les racines. Chez les feuilles, pour les concentrations de NaCl à100meq est

l’égerment supérieur à 1 après une et deux semaines de stress. Le ratio K+ /Na+ diminue

de 1 dans les feuilles et les racines pour les concentrations de NaCl à200meq et de

NaCl+CaCl2 à 100 et 200meq. Une corrélation significative et négative du ratio K+ /Na+ au

niveau du système foliaire pour toutes les concentrations de NaCl et de NaCl+CaCl2 (r = -

724**), et non significative et positive dans les racines après une semaine de stress (r =0.

756**) . Les deux organes présentent des corrélations non significatives et positives ( r

= 0.824** et r = 0.818**) après deux semaines de stress salin.

Nos résultats ont été confirmé par plusieurs recherches. BACHIR

BOUIADJRA (2008) confirme que le substrat traités à5% de bentonite combinées aux

concentrations salines sont les moins contraignantes pour une nutrition équilibrée en

sodium et potassium chez les feuilles et les racines de la fève. La richesse de la bentonite

en Ca++ améliore la teneur de potassium dans les plantes (ACHOUR et YOUCEF ., 2001).

Le ratio K+ /Na+ peut être augmenté par un rapport de calcium (Ca+) externe qui serait

capable de réduire l’activité de certains canaux, ainsi que celle des canaux d’entrée de

Na+(MURATA et al., 1998) .

D’après (SHABALA et CUIN ., 2008 ; AMTMANN et LEIGH .,2010),l’action

conjuguée des différents systèmes de transport situés au niveau des membranes plasmiques

et vacuolaires et impliquant les voies plus ou moins sélectives des ions K+ et Na+.

La tolérance au sel n’est pas toujours associés à une moindre accumulation de

sodium (COLLINS et al., 2008) mais plutôt à la capacité de maintenir un équilibre ionique

(ESTAN et al. ,2005, ALBACETE et al ., 2009) dans ces conditions de salinité associé

avec des dose de bentonite l’aptitude d’absorbation de potassium par les racines devient un

facteur important qui influes le niveau de sélectivité ioniques (ALEM et AMRI., 2005).

Les traitements salin de NaCl montre une corrélation significative et négative du

ratio Ca+2/Na+ au niveau des feuilles (r = -0.784**), et au niveau des racines la corrélation

et non significative et positive (r = 0.834**) après une et deux semaines de stress

semaine.

Le traitement amendé au CaCl2 rend ce ratio plus important, cette amélioration

présentée par une corrélation positive au niveau des feuilles et des racines (r = 0.829** et

r = 0.813**) aprés une semaine de stress .et (r = 0.703** et r = 0.948**) après deux

semaine de stress .D’après RENGEL (1992),un supplément de Ca++ corrige dans une

certaine mesure l’effet des sels. BOUAOUINA et al (2000), indiquent que le sel exerce dès

la plus faible dose un effet dépressif sur l’absorption, l’accumulation racinaire et le

transport vers les parties aériennes de Ca++ chez le blé dur (Triticum turgidum L).

L’adition du CaCl2 dans le milieu a pour but de constater le rôle du calcium qui

peut non seulement contribuer à l’ajustement osmotique pendant les périodes néfastes,

mais à des rôles très importants dans le métabolisme de la plante contrairement au Na+ qui

peut être toxique pour les plantes(lAREDJ .,2013).

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ANNEXES

CORRELATION

Germination :

Tableau1-Corrélation entre les traitements salins et la germination (%germination .vitesse de germination .pois secs perdus)

Paramètre morphologique :

Tableau2-Corrélation entre les traitements salins est le nombre feuilles après une semaine et deux semaines de stress salin

Tableau3-Corrélation entre les traitements salins est le rapport longueur racine / longueur tiges après une semaine et deux semaines de stress salin

Corrélations

-,572*,026

15-,788** ,924**,000 ,000

15 15-,671** ,971** ,967**,006 ,000 ,000

15 15 15

Corrélation de PearsonSig. (bilatérale)NCorrélation de PearsonSig. (bilatérale)NCorrélation de PearsonSig. (bilatérale)NCorrélation de PearsonSig. (bilatérale)N

traitem

VITESG

POISG

PSECG

traitem VITESG POISG PSECG

La corrélation est significative au niveau 0.05 (bilatéral).*.

La corrélation est significative au niveau 0.01 (bilatéral).**.

Corrélations

-,367,178

15-,578* ,768**,024 ,001

15 15

Corrélation de PearsonSig. (bilatérale)NCorrélation de PearsonSig. (bilatérale)NCorrélation de PearsonSig. (bilatérale)N

traitem

NES

NSS

traitem NES NSS



Tableau4-Corrélation entre les traitements salins est le rapport biomasse séchés racine / biomasse séchés tiges après une semaine et deux semaines de stress salin

**La corrélation est significative au niveau 0.01 (bilatéral).

*La corrélation est significative au niveau 0.05 (bilatéral).

Tableau5-Corrélation entre les traitements salins est le volume racinaire après une et deux semaines de stress salin

**La corrélation est significative au niveau 0.01 (bilatéral).

*La corrélation est significative au niveau 0.05 (bilatéral).

Corrélations

-,119,673

15-,777** ,612*,001 ,015

15 15


trat

LRLTS

LRLTSS

trat LRLTS LRLTSS



Corrélations

,464,081

15-,192 ,160,493 ,568

15 15


trait

RBSS

RBSSS

trait RBSS RBSSS

Corrélations

-,025,928

15-,467 ,277,080 ,317

15 15


tratem

VOMRS

VOMRSS

tratem VOMRS VOMRSS

Tableau6-Corrélation entre les traitements salins est la surface foliaire après une et deux semaines de stress salin

La teneur relative en eau (RWC en %) :

Tableau7-Corrélation entre les traitements salins est la teneur relative en eau (RWC) de la partie aérienne des plantes de Vicia faba mesurée après une et deux semaines de stress salin

Tableau8-Corrélation entre les traitements salins est le teneur relative en eau (RWC%) de la zone (apicale-médiane-basale) des plantes de Vicia faba mesuré après une et deux semaine de stress salin

Corrélations

-,502,057

15-,334 ,761**,224 ,001

15 15


traitem

SURFASFS

SURFAFSS

traitem SURFASFS SURFAFSS


Corrélations

-,650**,009

15-,701** ,903**,004 ,000

15 15


traitem

RWCS

RWCSS

traitem RWCS RWCSS


Tableau9-Corrélation entre les traitements salins est La perte d'eau par transpiration (RWL) de la partie aérienne après une et deux semaines de stress salin

Tableau10-Corrélation entre les traitements salins est La perte d'eau par transpiration (RWL) de la zone apicale des plantes de Vicia faba mesuré après une et deux semaines de stress salin

Corrélations

-,625*,013

15-,330 ,645**,229 ,009

15 15-,397 ,784** ,751**,143 ,001 ,001

15 15 15-,613* ,770** ,811** ,771**,015 ,001 ,000 ,001

15 15 15 15-,459 ,458 ,547* ,591* ,720**,086 ,086 ,035 ,020 ,002

15 15 15 15 15-,342 ,742** ,793** ,945** ,827** ,719**,212 ,002 ,000 ,000 ,000 ,003

15 15 15 15 15 15

Corrélation de PearsonSig. (bilatérale)NCorrélation de PearsonSig. (bilatérale)NCorrélation de PearsonSig. (bilatérale)NCorrélation de PearsonSig. (bilatérale)NCorrélation de PearsonSig. (bilatérale)NCorrélation de PearsonSig. (bilatérale)NCorrélation de PearsonSig. (bilatérale)N

traitem

ZONEAPIS

ZONEMÉDS

ZONEBASS

ZONEAPSS

ZONEMESS

ZONEBSS

traitem ZONEAPIS ZONEMÉDS ZONEBASS ZONEAPSS ZONEMESS ZONEBSS



Corrélations

-,698**,004

15-,516* ,895**,049 ,000

15 15-,791** ,811** ,849**,000 ,000 ,000

15 15 15-,557* ,662** ,752** ,747**,031 ,007 ,001 ,001

15 15 15 15-,453 ,629* ,741** ,692** ,987**,090 ,012 ,002 ,004 ,000

15 15 15 15 15-,633* ,557* ,547* ,665** ,927** ,900**,011 ,031 ,035 ,007 ,000 ,000

15 15 15 15 15 15


traitem

RWL30S

RWL60S

RWL120S

RWL30SS

RWL60SS

RWL120SS

traitem RWL30S RWL60S RWL120S RWL30SS RWL60SS RWL120SS



Tableau11-Corrélation entre les traitements salins est La perte d'eau par transpiration (RWL) de la zone médiane des plantes de Vicia faba mesuré après une et deux semaines de stress salin

Tableau11-Corrélation entre les traitements salins est La perte d'eau par transpiration (RWL) de la zone basale des plantes de Vicia faba mesuré après une et deux semaines de stress salin

Corrélations

-,787**,000

15-,716** ,916**,003 ,000

15 15-,740** ,946** ,919**,002 ,000 ,000

15 15 15-,773** ,994** ,908** ,951**,001 ,000 ,000 ,000

15 15 15 15-,684** ,961** ,872** ,895** ,941**,005 ,000 ,000 ,000 ,000

15 15 15 15 15-,743** ,984** ,886** ,898** ,974** ,937**,001 ,000 ,000 ,000 ,000 ,000

15 15 15 15 15 15


traitem

RWLZA30S

RWLZA60S

RWLZ120S

RWZA30SS

RWA600SS

RWZ120SS

traitem RWLZA30S RWLZA60S RWLZ120S RWZA30SS RWA600SS RWZ120SS


Corrélations

-,788**,000

15-,796** ,944**,000 ,000

15 15-,773** ,982** ,951**,001 ,000 ,000

15 15 15-,773** ,986** ,930** ,973**,001 ,000 ,000 ,000

15 15 15 15-,781** ,958** ,943** ,977** ,978**,001 ,000 ,000 ,000 ,000

15 15 15 15 15-,722** ,949** ,882** ,951** ,952** ,936**,002 ,000 ,000 ,000 ,000 ,000

15 15 15 15 15 15


traitem

RWLM30S

RWLM60S

RWLM120S

RWLM30SS

RWLM60SS

RWL120SS

traitem RWLM30S RWLM60S RWLM120S RWLM30SS RWLM60SS RWL120SS


Teneur en sodium (Na+) :

Tableau11-Corrélation entre les traitements salins est la teneur en sodium (Na+) des feuilles et racines des plantes de Vicia faba mesuré après une et deux semaines de stress salin

- Teneur en potassium (K+)

Tableau12-Corrélation entre les traitements salins est la teneur en potassium (K+) des feuilles et racines des plantes de Vicia faba mesuré après une et deux semaines de stress salin

Corrélations

-,630*,012

15-,629* ,985**,012 ,000

15 15-,656** ,928** ,962**,008 ,000 ,000

15 15 15-,599* ,976** ,942** ,866**,018 ,000 ,000 ,000

15 15 15 15-,395 ,925** ,887** ,780** ,943**,145 ,000 ,000 ,001 ,000

15 15 15 15 15-,267 ,835** ,812** ,679** ,863** ,899**,336 ,000 ,000 ,005 ,000 ,000

15 15 15 15 15 15


traitem

RWB30S

RWB60S

RWB120S

RWB30SS

RWB60SS

RWB120SS

traitem RWB30S RWB60S RWB120S RWB30SS RWB60SS RWB120SS



Corrélations

,200,475

15,368 ,936**,177 ,000

15 15,139 ,944** ,882**,622 ,000 ,000

15 15 15,376 ,866** ,850** ,848**,167 ,000 ,000 ,000

15 15 15 15

Corrélation de PearsonSig. (bilatérale)NCorrélation de PearsonSig. (bilatérale)NCorrélation de PearsonSig. (bilatérale)NCorrélation de PearsonSig. (bilatérale)NCorrélation de PearsonSig. (bilatérale)N

traite

NAFS

NARS

NAFSS

NARSS

traite NAFS NARS NAFSS NARSS


Teneur calcium (Ca++) :

Tableau13-Corrélation entre les traitements salins est la teneur en calcium (Ca++) des feuilles et racines des plantes de Vicia faba mesuré après une et deux semaines de stress salin

Tableau14-Corrélation entre les traitements salins est ratio K+/Na+ de feuille et racine des plantes de Vicia faba mesuré après une et deux semaine de stress salin

Corrélations

-,018,948

15,137 ,925**,627 ,000

15 15,007 ,882** ,958**,980 ,000 ,000

15 15 15,260 ,872** ,936** ,937**,350 ,000 ,000 ,000

15 15 15 15


traitem

KFS

KRS

KFSS

KRSS

traitem KFS KRS KFSS KRSS


Corrélations

,887**,000

15,891** ,802**,000 ,000

15 15,882** ,794** ,694**,000 ,000 ,004

15 15 15,897** ,900** ,903** ,797**,000 ,000 ,000 ,000

15 15 15 15


traitem

CAFS

CARS

CAFSS

CARSS

traitem CAFS CARS CAFSS CARSS


Tableau15-Corrélation entre les traitements salins est ratio Na+/K+ de feuille et racine des plantes de Vicia faba mesuré après une et deux semaine de stress salin

Tableau16-Corrélation entre les traitements salins est ratio Na+/Ca++ de feuille et racine des plantes de Vicia faba mesuré après une et deux semaine de stress salin

Corrélations

-,724**,002

15-,057 -,148,840 ,598

15 15-,062 -,139 ,756**,826 ,620 ,001

15 15 15-,042 -,364 ,824** ,816**,881 ,183 ,000 ,000

15 15 15 15


traitem

RATKNAFS

RATKNARS

RKNAFSS

RKNARSS

traitem RATKNAFS RATKNARS RKNAFSS RKNARSS


Corrélations

,203,468

15-,021 ,212,939 ,449

15 15,000 ,231 ,690**

1,000 ,407 ,00415 15 15

-,315 ,351 ,703** ,829**,253 ,200 ,003 ,000

15 15 15 15


traitem

RANAKFS

RANAKRS

RTNAKFSS

RNAKRSS

traitem RANAKFS RANAKRS RTNAKFSS RNAKRSS


Corrélations

-,506,054

15-,784** ,834**,001 ,000

15 15-,417 ,829** ,713**,122 ,000 ,003

15 15 15-,893** ,703** ,948** ,551*,000 ,003 ,000 ,033

15 15 15 15


traitem

RNACAFS

RRNACARS

RNACAFSS

RNACARSS

traitem RNACAFS RRNACARS RNACAFSS RNACARSS



RESUMEDans ce travail, on a réalisé une étude comparative vis-à-vis de la salinité avec uneassociation de la bentonite après une et deux semaines de stress . L’impact de lasalinité, appliquée durant une et deux semaines à l’aide de sels combinés NaCl(100 et 200 meq) et de NaCl+CaCl2 (100 et 200 meq) chez la feve Vicia faba L.L’aspect de la germination, biométrique, hydrique et nutritionnel ont été retenuscomme étant des indices probables de tolérance au stress salin. Les résultatsobtenus indiquent que la fève semble exprimer une sensibilité à l’action de lasalinité aussi bien sous forme de NaCl+CaCl2 que de NaCl, aux concentrationsmodérées (100 meq.) au stade de la germination. En effet plus le sel n’augmente, laprécocité, la vitesse, le taux final diminuent et le temps moyen s’allonge. Le suivide la production de la croissance en hauteur, de l’évolution de matière fraîche et dematière sèche ont permis de conclure que la salinité diminue considérablement lacroissance générale de la plante et le rendement en feuilles après deux semaine destress. La croissance foliaire et racinaire en longueur et en volume n’est pasatteinte par le stress salin. Les résultat des indicateur hydrique tels que la teneurrelative en eau (RWC) démontrent que les différentient concentration salinescombine à 7 % de la bentonite provoque une dévaluation de RWC de la zonebasale et médiane des plantes sous traitement de NaCl 200 meq après une et deuxsemaines de stress . Les pertes en eau par la transpiration (RWL) ont accusé unebaisse chez les deux zones (mediane ,basale ) de la plante après deux semaines destress quelque soit le traitement comparativement aux plantes témoins . La salinitéa provoqué des variations de teneurs de quelques cations. Ainsi, l’accumulation dusodium est hautement significative par rapport aux témoins, chez les feuilles desplantes traitées 200 meq de NaCl après deux semaines de stress , l’accumulation dece cation est non significative. Concernant le K+, , la teneur en K+ diminue auniveau des feuilles de la fève lorsque l’intensité du stress augmente, l’inverse estobservé au niveau des feuilles. En ce qui concerne le calcium, l’effet du stress esthautement significatif sur l’accumulation de Ca++ au niveau des feuilles sous letraitement salin de NaCl+CaCl2 à 200 méq, et au niveau des racines sous le mêmetraitement à 100m et 200 méq. Enfin , les 7% de bentonite et suggèrent unenutrition minérale nom équilibrée pour les trois cations Na+ , K+ et Ca++ dansdeux organes cibles de la plante en question ,

Mots clés :

Vicia Faba L.; Salinité; Bentonite; Germination; Bilan Hydrique; Bilan Miniral ;Stress ; Ratio ; Bilan Biométrique; RWL; RWC.

action de la salinité sur les caractéristiques ...theses.univ-oran1.dz/document/th4167.pdf · je...

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